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    分離膠采血管對(duì)激素類檢測(cè)項(xiàng)目的影響

    2013-05-30 10:54:32孫延生趙春蘭陳志友
    關(guān)鍵詞:照管膠管廠家

    賀 松,孫延生,趙春蘭,陳 莉,陳志友

    (深圳市蛇口人民醫(yī)院a.檢驗(yàn)科,b.護(hù)理部,廣東 深圳518067)

    分離膠采血管在國(guó)際上已經(jīng)使用了近30年,由于他們能夠快速和簡(jiǎn)便的分離血清或血漿,增加一些分析項(xiàng)目的保存穩(wěn)定性,減少溶血和可用于自動(dòng)化儀器直接上機(jī)檢測(cè),被廣泛用于各類實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目。由于市場(chǎng)的需要,近年來(lái),我國(guó)的采血管廠家也開始大量的生產(chǎn)分離膠采血管,并被大量實(shí)驗(yàn)室采用。然而,分離膠采血管在制造過程中添加了一些物質(zhì),并且試管中的分離膠有潛在的吸收被分析物或者釋放可能影響化學(xué)物質(zhì)分析的干擾物,直接影響檢測(cè)結(jié)果。因此采血管可能成為實(shí)驗(yàn)室分析前誤差的主要來(lái)源。對(duì)于分離膠采血管對(duì)檢測(cè)項(xiàng)目的影響,國(guó)際上進(jìn)行了大量的研究,但主要是針對(duì)幾個(gè)國(guó)際大品牌,而我國(guó)國(guó)內(nèi)使用最多的國(guó)產(chǎn)采血管少見報(bào)道,特別是針對(duì)一些在人體內(nèi)含量低的激素類項(xiàng)目的檢測(cè)。本文研究了國(guó)產(chǎn)分離膠采血管對(duì)一些激素類項(xiàng)目的檢測(cè)結(jié)果的影響。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    1.1.1 全血標(biāo)本全部來(lái)自本院門診患者,參加實(shí)驗(yàn)的患者均用分離膠試管和對(duì)照管各采血一支,每個(gè)檢測(cè)項(xiàng)目標(biāo)本數(shù)為30份,所有的患者均為成人(>18歲),性激素檢測(cè)標(biāo)本全部來(lái)源于女性,甲狀腺功能檢測(cè)標(biāo)本來(lái)源為男女混合。

    1.1.2 選取市場(chǎng)上常用的二個(gè)廠家的國(guó)產(chǎn)分離膠塑料試管,一廠家為山東威高集團(tuán)醫(yī)用高分子制品股份有限公司生產(chǎn)的塑料分離膠采血管(簡(jiǎn)稱A管),另一廠家為浙江拱東醫(yī)療科技有限公司生產(chǎn)的塑料分離膠采血管(簡(jiǎn)稱B管),對(duì)照管選取美國(guó)BD公司的無(wú)添加塑料試管,規(guī)格均為:Φ13mm×100mm。

    1.1.3 所有標(biāo)本按照我們科室常規(guī)標(biāo)本處理程序,符合CLSI有關(guān)標(biāo)本處理的相關(guān)規(guī)程[1],即標(biāo)本采集后在最長(zhǎng)不超過2h內(nèi)以1,300×g離心力離心10min,各項(xiàng)檢測(cè)均在標(biāo)本采集后6h內(nèi)完成。

    1.2 方法

    1.2.1 性激素檢測(cè) 促黃體生成素(LH)、促卵泡生成素(FSH)、睪酮(T)、絨毛膜促性腺激素beta亞基(beta-HCG)、孕酮(Prog)、雌二醇(E2)、泌乳素(PRL),檢測(cè)儀器為美國(guó)雅培ARCHITECT i2000型化學(xué)發(fā)光免疫分析儀,以及配套試劑、標(biāo)準(zhǔn)液,質(zhì)控血清采用美國(guó)伯樂(BIO-RAD)公司定值質(zhì)控血清。

    1.2.2 甲狀腺功能檢測(cè) 游離三碘甲狀腺原氨酸(FT3)、游離甲狀腺素(FT4)、總?cè)饧谞钕僭彼幔═T3)、總甲狀腺素(TT4)、促甲狀腺激素(TSH),檢測(cè)儀器為西門子公司CENTAUR XP化學(xué)發(fā)光免疫分析儀,以及配套試劑、標(biāo)準(zhǔn)液,質(zhì)控血清采用美國(guó)BIO-RAD公司定值質(zhì)控血清。

    1.3 統(tǒng)計(jì)處理

    采用配對(duì)t檢驗(yàn),以及相關(guān)回歸分析,Bland-Altman分析,以雙側(cè)P<0.05為有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 采用A管的標(biāo)本與對(duì)照管對(duì)部分激素項(xiàng)目檢測(cè)結(jié)果的比較

    2.1.1 對(duì)于試管A,7項(xiàng)性激素和5項(xiàng)甲狀腺功能項(xiàng)目,每項(xiàng)檢測(cè)選取的標(biāo)本數(shù)均為30例,但由于有兩例標(biāo)本E2>1 000pg/ml,一例<10pg/ml,一例HCG>225 000mIU/ml,一例TT3>8.00ng/ml,TT4>30.00μg/dl,兩例FSH<0.05μIU/ml,最終進(jìn)行分析的標(biāo)本數(shù)見表1。

    表1 A廠家分離膠管與無(wú)添加管激素指標(biāo)結(jié)果比較(±s)

    表1 A廠家分離膠管與無(wú)添加管激素指標(biāo)結(jié)果比較(±s)

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    2.1.2 數(shù)據(jù)經(jīng)配對(duì)t檢驗(yàn)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,結(jié)果顯示:除Prog,E2,和FT4外,其余9個(gè)項(xiàng)目A管和對(duì)照管間沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。經(jīng)相關(guān)分析,所有檢測(cè)項(xiàng)目的相關(guān)系數(shù)的P值均小于0.05,顯示A分離膠管與對(duì)照管結(jié)果有良好的相關(guān)性,各項(xiàng)目相關(guān)系數(shù)分別為:PRL,r=0.999;Prog,r=0.998;beta-HCG,r=0.999;FSH,r=1.000;LH,r=1.000;E2,r=0.999;T,r=0.951;FT3;FT4,r=0.992;TT3,r=0.921;TT4,r=0.919;TSH,r=1.000。Bland-Altman分析兩管之間的偏差結(jié)果見表2。

    2.2 采用B管的標(biāo)本與對(duì)照管對(duì)部分激素項(xiàng)目檢測(cè)結(jié)果的比較

    對(duì)于試管B,7項(xiàng)性激素和5項(xiàng)甲狀腺功能項(xiàng)目,每項(xiàng)檢測(cè)原本選取的標(biāo)本數(shù)均為30例,但由于有兩例標(biāo)本E2<10,Prog>40,所以最終檢測(cè)的標(biāo)本數(shù)見表3,數(shù)據(jù)經(jīng)配對(duì)t檢驗(yàn)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,結(jié)果顯示:FT4外,其余11個(gè)項(xiàng)目分離膠管和對(duì)照管間沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。所有檢測(cè)的相關(guān)系數(shù)的P值均小于0.05,顯示B管和對(duì)照管結(jié)果有良好的相關(guān)性,PRL檢測(cè)兩種試管的相關(guān)系數(shù)r=0.999;Prog,r=0.995;HCG,r=1.000;FSH,r=1.000;LH,r=1.000;E2,r=0.999;T,r=0.980;FT3,r=0.958;FT4,r=0.912;TT3,r=0.950;TT4,r=0.907;TSH,r=0.933。Bland-Altman分析兩管之間的偏差結(jié)果見表2。

    表2 兩個(gè)廠家分離膠管與對(duì)照管對(duì)一些激素項(xiàng)目測(cè)定結(jié)果平均偏差及95%置信區(qū)間

    表3 B廠家分離膠管與無(wú)添加管激素指標(biāo)結(jié)果比較(±s)

    表3 B廠家分離膠管與無(wú)添加管激素指標(biāo)結(jié)果比較(±s)

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    3 討論

    本文選取了兩家在國(guó)內(nèi)用量較大的國(guó)內(nèi)廠家的塑料分離膠采血管,對(duì)照管我們選取了美國(guó)BD公司的無(wú)添加塑料采血管,一般認(rèn)為,玻璃試管由于其惰性被公認(rèn)為對(duì)檢測(cè)結(jié)果無(wú)影響,但國(guó)際上多個(gè)研究已經(jīng)證實(shí)BD公司的無(wú)添加塑料采血管與其無(wú)添加玻璃采血管相比對(duì)免疫項(xiàng)目分析結(jié)果無(wú)影響[2-4]。

    理想的分離膠采血管應(yīng)該對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果無(wú)影響,然而,一些報(bào)道顯示標(biāo)本量,儲(chǔ)存時(shí)間,溫度和膠的種類可能影響膠對(duì)藥物的吸收,疏水性藥物如苯妥英鈉、苯巴比妥、卡馬西平、奎尼丁、利多卡因可能被疏水性分離膠吸附,這種吸附可使血清中藥物濃度下降20%到50%[6],孕酮在儲(chǔ)存6天后濃度可下降50%[7]。并且,分離膠也會(huì)釋放物質(zhì)入血,可能干擾被分析物的檢測(cè)。

    本研究分別比較了國(guó)內(nèi)銷量較大的2家廠家生產(chǎn)的分離膠采血管與對(duì)照的美國(guó)BD公司生產(chǎn)的無(wú)添加塑料管對(duì)一些激素類項(xiàng)目檢測(cè)結(jié)果的差別,血標(biāo)本的分離和檢測(cè)時(shí)間我們按照我們科室的日常工作流程,符合CLSI H18-A3對(duì)標(biāo)本處理的規(guī)定。結(jié)果顯示,與BD公司的無(wú)添加塑料管比較,A分離膠管在Prog,E2,和FT4項(xiàng)目有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,Bland-Altman分析顯示,兩管之間Prog差值的均值為1.4%,95%的置信范圍為-11.6%到14.4%,按我國(guó)衛(wèi)生部臨床檢驗(yàn)中心臨床實(shí)驗(yàn)室間質(zhì)量評(píng)價(jià)該項(xiàng)目可接受范圍25%,認(rèn)為這種變化的大小不能造成臨床差異。同樣FT4,平均偏差為-3.1%,95%置信范圍為-13.6%到7.4%,按25%的可接受范圍,認(rèn)為兩管之間的偏差不能造成臨床差異,但E2,兩管之間的偏差均值為-10.9%,95%的置信范圍為-29.6%到7.9%,超過25%的可接受范圍,這與A Morovat等報(bào)道相似[5,9],A Morovat等 比較 BD 公司的SST兩代分離膠管與無(wú)添加玻璃管,E2項(xiàng)目舊Vacutainer SSTTMII管與BD無(wú)添加塑料管之間的偏差均值達(dá)到+7.7%,95%置信范圍為0.0到+17.9%,新BD分離膠血清管與BD無(wú)添加塑料管之間的偏差均值達(dá)到+2.1%,95%置信范圍為-2.8%到+9.4%,雖然兩管與對(duì)照管比較差值都沒有超過臨床可接受范圍,但與其他項(xiàng)目相比兩管之間出現(xiàn)較大的偏差,分析A廠家分離膠管為什么比BD分離膠血清管對(duì)雌二醇項(xiàng)目與對(duì)照管相比出現(xiàn)較大偏差,原因可能為,我們部分標(biāo)本離心分離時(shí)間接近NCCLS規(guī)定的標(biāo)本分離允許的最長(zhǎng)時(shí)間2h,這樣血標(biāo)本與分離膠接觸的時(shí)間較長(zhǎng),有可能對(duì)結(jié)果造成影響;還可能A廠家分離膠管比BD管更易對(duì)E2造成吸附。

    與A廠家試管不同的是,B廠家塑料分離膠血清管與對(duì)照管比較,只有FT4項(xiàng)目有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05),Bland-Altman分析顯示,兩管之間FT4差值的均值為4.3%,95%的置信范圍為-6.4%到14.9%,按我國(guó)衛(wèi)生部臨床檢驗(yàn)中心臨床實(shí)驗(yàn)室間質(zhì)量評(píng)價(jià)該項(xiàng)目可接受范圍25%,認(rèn)為這種變化的大小不能造成臨床差異。

    評(píng)價(jià)分離膠管質(zhì)量除了對(duì)檢測(cè)結(jié)果的影響外,還包括分離膠對(duì)儀器等的影響,如分離膠管中膠的碎片或硅油滴可能漂浮于血漿和血清內(nèi),可能黏附于標(biāo)本探針、比色杯或在免疫分析中與載體或其他物質(zhì)相結(jié)合,油性球可能阻隔和絕緣電極,由此改變電極的功能和分析物濃度的檢測(cè)[7],一些膠的成分溶解在血液中,從而影響一些藥物的性質(zhì)[8]。這些因素在本文都沒有進(jìn)行討論,但就對(duì)激素類項(xiàng)目檢測(cè)結(jié)果影響而言,我們認(rèn)為國(guó)產(chǎn)A管和B管均能滿足臨床日常工作需要。

    由于不斷有新的檢測(cè)方法運(yùn)用,新的檢驗(yàn)項(xiàng)目開展,而實(shí)驗(yàn)室的工作人員很少去評(píng)估血液采集器具對(duì)檢驗(yàn)結(jié)果的影響,采血管可能對(duì)檢測(cè)結(jié)果的影響往往容易被實(shí)驗(yàn)人員忽視,所以實(shí)驗(yàn)室工作人員應(yīng)該警惕由于采血管的成分造成的潛在干擾,應(yīng)積極和采血管制造廠家以及診斷試劑和檢測(cè)儀器生產(chǎn)廠家緊密合作,最小化或最好能防止采血管對(duì)檢測(cè)儀器、試劑、被分析物最終對(duì)檢測(cè)結(jié)果的影響。

    [1]CLSI Document H18-A3.Procedures for the handling and Processing of Blood Specimens Approved Guideline-Third Edition,2004,24(38):

    [2]Raffick AR Bowen,Yung Chan,Joshua Cohen,et al.Effect of Blood Collection Tubes on Total Triiodothyronine and Other Laboratory Assays[J].Clinical Chemistry,2005,51(2):424.

    [3]Smets EML,Dijkstra-Lagemaat JE,Blankenstein MA.Influence of blood collection in plastic vs.glass evacuated serum-separator tubes on hormone and tumour marker levels[J].Clin Chem Lab Med,2004,42(4):435.

    [4]Preissner CM,Reilly WM,Cyr RC,et al.Plastic versus glass tubes:effects on analytical performance of selected serum and plasma hormone assays[J].Clin Chem,2004,50(7):1245.

    [5]A Morovat,TS James,SD Cox,et al.Comparison of Bayer Advia Centaur immunoassay results obtained on samples collected in four different Becton Dickinson Vacutainer tubes[J].Ann Clin Biochem,2006,43(6):481.

    [6]Dasgupta A,Yared MA,Wells A.Time-dependent absorption of therapeutic drugs by the gel of the Greiner Vacuette blood collection tube[J].Ther Drug Monit,2000,22(4):427.

    [7]Bowen RA,Hortin GL,Csako G.Impact of blood collection devices on clinical chemistry assays[J].Clin Biochem,2010,43(1):4.

    [8]Ji SQ,Evenson MA.Effects of contaminants in blood-collection devices on measurements of therapeutic drugs[J].Clin Chem,1983,29(3):456.

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