賈俊強(qiáng) , 吳瓊英 , 徐金玲 , 杜金娟 , 顏 輝 , 桂仲爭(zhēng)
(1.江蘇科技大學(xué) 蠶業(yè)研究所,江蘇 鎮(zhèn)江 212018;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院 蠶業(yè)研究所,江蘇 鎮(zhèn)江 212018;3.江蘇科技大學(xué) 生物與化學(xué)工程學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江 212018)
血管緊張素轉(zhuǎn)換酶 (Angiotensin-Ⅰ converting enzyme,ACE)是一種調(diào)節(jié)人體血壓的二肽羧基肽酶,廣泛分布在人體組織和血漿中,且在肺毛細(xì)血管中的含量最為豐富[1]。ACE通過控制腎素-血管緊張素系統(tǒng)(Renin-angiotensin system,RAS)和激肽釋放酶-激肽系統(tǒng)(Kallikrein-kinin system,KKS)調(diào)節(jié)人體血壓。ACE抑制肽作為生物活性肽的一種,具有無毒副作用和對(duì)正常血壓無影響的優(yōu)點(diǎn),長(zhǎng)期服用可以達(dá)到預(yù)防、控制和輔助治療高血壓之目的[4]?,F(xiàn)已成功從草魚蛋白[2]、紫菜蛋白[3]、蛋清蛋白[4]、乳清蛋白[5]和麥胚蛋白[6]等食源蛋白中分離得到高活性的ACE抑制肽。
隨著ACE抑制肽研究的深入,研究者發(fā)現(xiàn)貯存環(huán)境、加工工藝和胃腸道酶消化等因素能夠?qū)е翧CE抑制肽的活性降低,甚至喪失[3,7]。 因而,開發(fā)ACE抑制肽時(shí),除了具有較高的ACE抑制活性外,還要在生產(chǎn)、貯藏及體內(nèi)消化吸收過程中具有較強(qiáng)的穩(wěn)定性。目前,已有大量食源蛋白ACE抑制肽的穩(wěn)定性被研究,如:紫菜源ACE抑制肽[3]和蛋清源ACE抑制肽[7]等。然而,有關(guān)蠶蛹源ACE抑制肽穩(wěn)定性的研究尚未見報(bào)道。
本課題組在前期研究工作中利用酶解技術(shù)從蠶蛹蛋白中制備出了高活性ACE抑制肽[8]。在此基礎(chǔ)上,作者對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽的熱穩(wěn)定性、耐酸堿性和抗腸道酶消化能力等性能進(jìn)行研究,同時(shí),研究了蠶蛹源ACE抑制肽的抑制動(dòng)力學(xué)和抑制后ACE的紫外光譜變化,為蠶蛹源ACE抑制肽的工業(yè)化生產(chǎn)和應(yīng)用提供技術(shù)和理論支持。
1.1.1 主要試劑和原料 蠶蛹:由農(nóng)業(yè)部蠶桑產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)測(cè)試中心(鎮(zhèn)江)提供。蠶蛹先用乙醚脫脂,50℃烘干后粉碎,過80目篩備用;胃蛋白酶、胰蛋白酶和α-胰凝乳蛋白酶:均購自生工生物工程(上海)有限公司;堿性蛋白酶(alcalase):購自諾維信(中國)生物技術(shù)有限公司;馬尿酰組氨酰亮氨酸(HHL)和血管緊張素轉(zhuǎn)換酶(ACE):購自 Sigma-Aldrich公司;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.1.2 主要儀器 Pellicon小型超濾系統(tǒng):美國Millipore公司;UV-2100型分光光度計(jì):尤尼柯(上海)儀器有限公司;UV-2450紫外吸收分光光度計(jì):日本Shimadzu公司;SSY-H型恒溫水浴鍋:上海三申醫(yī)療器械有限公司;LR10-24A型離心機(jī):北京雷勃爾有限公司;WH-2微型漩渦混合儀:上海滬西分析儀器廠;FDU-2100型冷凍干燥機(jī):上海愛朗儀器有限公司;DC-1500噴霧干燥機(jī):上海達(dá)程實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司。
1.2.1 蠶蛹源ACE抑制肽的制備
1)蠶蛹蛋白的提取:取10 g蠶蛹粉,加入100 mL蒸餾水,用1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH至8.0,在室溫下攪拌1 h后,5 000 r/min離心10 min,取上清液,然后用1 mol/L HCl將其pH調(diào)節(jié)至4.0,靜置30 min后5 000 r/min離心10 min,收集沉淀,將沉淀透析48 h,然后冷凍干燥備用。
2)蠶蛹蛋白的酶解與超濾分離:將蠶蛹蛋白用蒸餾水配制成質(zhì)量濃度為10 g/L懸浮液,在酶解溫度50.8℃、酶解pH 9.0和加酶量3 500 U/g條件下,用Alcalase酶解120 min,酶解結(jié)束后在沸水浴中滅酶5 min,冷卻至室溫后,5 000 r/min離心10 min,收集上清液,將該上清液用截留相對(duì)分子質(zhì)量為5 000的超濾膜進(jìn)行分離,透過液即為蠶蛹源ACE抑制肽。
1.2.2 體外ACE抑制活性的測(cè)定 蠶蛹源ACE抑制肽的體外活性測(cè)定參照文獻(xiàn)[9]報(bào)道的方法。將10 μL蠶蛹源ACE抑制肽與 10 μL ACE溶液(酶活力為0.1 U/mL,用pH 8.3的100 mmol/L硼酸鈉緩沖溶液(含300 mmol/L NaCl)配制),在37℃下預(yù)熱5 min, 加入 45 μL、5 mmol/L HHL 溶液 (用 pH 8.3的100 mmol/L硼酸鈉緩沖溶液 (含300 mmol/L NaCl)配制),在37℃反應(yīng)30 min,反應(yīng)結(jié)束后立即加入 85 μL、1 mol/L HCl溶液終止反應(yīng);在反應(yīng)液中加入1 mL乙酸乙酯,振蕩2 min后,4 000 r/min離心10 min,取出800 μL有機(jī)相溶液轉(zhuǎn)入玻璃管中,在100℃下蒸發(fā)30 min,蒸發(fā)后的殘?jiān)屑尤?00 μL雙蒸水,混勻后在228 nm下測(cè)定吸光度(D228nm),每個(gè)樣品重復(fù)3次。另以雙蒸水代替酶解產(chǎn)物作為空白樣品。按下式計(jì)算蠶蛹源ACE抑制肽的體外活性:
式中,I為ACE抑制率;A為空白組的吸光度;B為反應(yīng)體系中沒有加入ACE時(shí)的吸光度;C為反應(yīng)體系中有ACE和蠶蛹源ACE抑制肽時(shí)的吸光度。
1.2.3 蠶蛹源ACE抑制肽的穩(wěn)定性試驗(yàn)
1)熱穩(wěn)定試驗(yàn):將蠶蛹源ACE抑制肽溶液(質(zhì)量濃度0.72 mg/mL)的pH調(diào)節(jié)至7.0,分別在4、37、50、80℃處理不同時(shí)間,測(cè)定其ACE抑制活性。
2)酸、堿穩(wěn)定性試驗(yàn):將蠶蛹源ACE抑制肽溶液(質(zhì)量濃度0.72 mg/mL)的pH值分別調(diào)節(jié)至2.0、5.0、7.0和10.0,在20℃放置不同時(shí)間,測(cè)定其ACE抑制活性。
3)干燥方式試驗(yàn):將干燥的蠶蛹源ACE抑制肽在室溫放置不同時(shí)間,然后將其配置成0.5 mg/mL溶液,測(cè)定ACE抑制活性。冷凍干燥:溫度-85℃,真空度<10 Pa;噴霧干燥:出風(fēng)口溫度100℃,進(jìn)風(fēng)口溫度190℃,進(jìn)料速度10 mL/min;熱風(fēng)干燥:溫度55℃;真空干燥:溫度45℃,真空度<0.01 MPa。
4)體外消化試驗(yàn):根據(jù)Wu等[10]報(bào)道的方法(略有修改)進(jìn)行體外消化試驗(yàn)。取100 mL蠶蛹源ACE抑制肽溶液(質(zhì)量濃度0.5 mg/mL),將其pH值調(diào)節(jié)至2.0后,加入胃蛋白酶(1 750 U/g),在37℃下保溫2 h,然后將酶解溶液的pH調(diào)節(jié)至7.0,加入胰蛋白酶(2 500 U/g)和 α-胰凝乳蛋白酶(1 000 U/g),在37℃下保溫4 h后,沸水滅酶10 min,取樣測(cè)定ACE抑制率。
1.2.4 葡聚糖凝膠G-50色譜分析 用蒸餾水作為洗脫液,流速為 1 mL/min,上樣量為 200 μL,凝膠柱規(guī)格為1.0 cm×30 cm,檢測(cè)波長(zhǎng)為220 nm。
1.2.5 蠶蛹源ACE抑制肽的抑制動(dòng)力學(xué)試驗(yàn) 根據(jù)Barbana等[11]報(bào)道的方法研究蠶蛹源ACE抑制肽的抑制動(dòng)力學(xué)。在不同馬尿酰組氨酰亮氨酸(HHL)底物濃度下,測(cè)量ACE的活性,ACE的活性用 228 nm的吸光度(A228nm)表示,用 1/A228nm和 1/HHL作圖評(píng)價(jià)蠶蛹源ACE抑制肽的抑制模式,并通過曲線的回歸方程得到蠶蛹源ACE抑制肽的抑制常數(shù)Ki。
1.2.6 蠶蛹源ACE抑制肽與ACE作用的紫外光譜分析 在400 μL ACE溶液中迅速加入50 μL蠶蛹源ACE抑制肽,在37℃下分別測(cè)定0、10 min時(shí)的紫外光譜。掃描條件:樣品池的光徑為1 cm,在200~500 nm下用紫外分光光度計(jì)掃描。
2.1.1 溫度對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響 不同溫度對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響見圖1。從圖1可以看出,在4℃和37℃保存時(shí),隨著保存時(shí)間的延長(zhǎng),蠶蛹源ACE抑制肽的活性基本不變,在3 h時(shí)活性仍然保留初始時(shí)的92.2%以上;當(dāng)保存溫度為50℃時(shí),隨著保存時(shí)間的延長(zhǎng),蠶蛹源ACE抑制肽的活性緩慢降低,在3 h時(shí)活性為初始時(shí)的75.9%;當(dāng)保存溫度為80℃時(shí),隨著保存時(shí)間的延長(zhǎng),蠶蛹源ACE抑制肽的活性迅速降低,在3 h時(shí)活性為初始時(shí)的41.4%,這主要是因?yàn)楦邷丶铀倭薃CE抑制肽的裂解[12]。由此可以看出,蠶蛹源ACE抑制肽在低溫下活性較穩(wěn)定,而在高溫下則活性喪失嚴(yán)重,這與已報(bào)道的紫菜源ACE抑制肽的熱穩(wěn)定性[3]基本一致。
圖1 溫度對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響Fig.1 Effects of temperature on activities of ACE-inhibitory peptides from silkworm pupae
2.1.2 pH對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響 不同pH對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響見圖2。從圖2可以看出,在pH 7條件下保存時(shí),蠶蛹源ACE抑制肽的活性較穩(wěn)定,保存3 h的活性為初始時(shí)的89.5%;當(dāng)保存pH值為2、5、10時(shí),蠶蛹源 ACE抑制肽的活性喪失較大,保存3 h后活性分別喪失了56.0%、46.4%和27.5%。試驗(yàn)結(jié)果表明,蠶蛹源ACE抑制肽在中性條件下穩(wěn)定性較好,而在強(qiáng)酸和強(qiáng)堿條件下穩(wěn)定性較差。這可能是因?yàn)閺?qiáng)酸堿條件造成ACE抑制肽的肽鏈斷裂,結(jié)構(gòu)破壞,最終導(dǎo)致ACE抑制肽的活性降低[3]。
圖2 pH對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響Fig.2 Effects of pH on activities of ACE-inhibitory peptides from silkworm pupae
2.1.3 干燥方式對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響干燥方式對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響見圖3。
圖3 干燥方式對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響Fig.3 Effects of drying methods on activities of ACE-inhibitory peptides from silkworm pupae
從圖3可以看出,在4種干燥方式中,冷凍干燥對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽的活性影響最小,干燥后蠶蛹源ACE抑制肽(0.5 mg/mL)的活性為71.3%;其次為噴霧干燥,干燥后蠶蛹源ACE抑制肽(0.5 mg/mL)的活性為64.6%,為冷凍干燥活性的90.5%;而熱風(fēng)干燥和真空干燥對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽的活性影響較大,干燥后蠶蛹源ACE抑制肽的活性迅速下降,僅為冷凍干燥活性的42.3%和56.4%。此外,室溫保存試驗(yàn)表明,冷凍干燥、噴霧干燥、真空干燥和熱風(fēng)干燥的ACE抑制肽均具有良好的穩(wěn)定性,保存60 d后活性基本不變。由此可以看出,冷凍干燥和噴霧干燥是干燥ACE抑制肽的理想方法。然而,由于冷凍干燥存在干燥時(shí)間長(zhǎng)、設(shè)備昂貴、能耗高等缺點(diǎn),不宜用于工業(yè)化生產(chǎn)。因此,噴霧干燥是工業(yè)化干燥蠶蛹源ACE抑制肽的最佳選擇。
2.1.4 腸道酶消化對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響 蠶蛹源ACE抑制肽經(jīng)腸道消化后,其ACE抑制活性變化見表1。從表1可以看出,蠶蛹源ACE抑制肽經(jīng)胃蛋白酶消化后,其活性顯著降低 (P<0.05),比消化前降低了13.1%,相似的現(xiàn)象也被發(fā)現(xiàn)在蛋清源ACE抑制肽的消化研究中。Miguel研究發(fā)現(xiàn):胃蛋白酶能夠引起蛋清源ACE抑制肽活性降低,使其IC50值比消化前提高了54.5%[13]。這可能是由于胃蛋白酶水解了部分ACE抑制肽,使其成為了失活片段,因而活性降低。然而,經(jīng)胃蛋白酶消化的蠶蛹源ACE抑制肽進(jìn)一步被胰蛋白酶和α-胰凝乳蛋白酶共同消化后,其活性反而顯著提高(P<0.05),比胃蛋白酶消化后的活性提高了8.2%。這可能是因?yàn)橐鹊鞍酌负挺?胰凝乳蛋白酶水解后又產(chǎn)生了新的ACE抑制肽,該現(xiàn)象在麥胚源ACE抑制肽的體外消化試驗(yàn)中也被發(fā)現(xiàn)[14]。
表1 腸道酶消化對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽活性的影響Table 1 Effects of intestinal enzyme degradation on activities of ACE-inhibitory peptides from silkworm pupae
為了進(jìn)一步研究腸道酶消化對(duì)蠶蛹源ACE 抑制肽活性的影響,分別對(duì)消化前、胃蛋白酶消化和胃蛋白酶+胰蛋白酶+α-胰凝乳蛋白酶消化的蠶蛹源ACE抑制肽進(jìn)行葡聚糖凝膠層析分離,層析分離效果見圖4。從圖4可以看出,消化前和消化后均存在兩個(gè)主要峰a和b。胃蛋白酶消化后,峰a的面積比消化前降低,而峰b的面積比消化前增加,這說明胃蛋白酶消化后,蠶蛹源ACE抑制肽向小相對(duì)分子質(zhì)量轉(zhuǎn)變;當(dāng)進(jìn)一步用胰蛋白酶+α-胰凝乳蛋白酶消化后,其峰a和b分別向右輕微移動(dòng),這說明胰蛋白酶+α-胰凝乳蛋白酶的消化使蠶蛹源ACE抑制肽的相對(duì)分子質(zhì)量進(jìn)一步變小。此結(jié)果說明,腸道酶消化降解了部分蠶蛹源ACE抑制肽,使其變成失活片段或新的ACE抑制肽,最終導(dǎo)致蠶蛹源ACE抑制肽在消化前后的活性發(fā)生了變化。
圖4 蠶蛹源ACE抑制肽的葡聚糖凝膠G-50色譜圖Fig.4 Sephadex G-50 chromatogram of ACE-inhibitory peptides from silkworm pupae
利用Lineweaver-Burk雙倒數(shù)作圖法對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽的抑制模式進(jìn)行研究。蠶蛹源ACE抑制肽的ACE抑制曲線見圖5。
圖5 蠶蛹源ACE抑制肽的ACE抑制曲線Fig.5 ACE inhibition curves of the ACE-inhibitory peptides from silkworm pupae
從圖5可以看出,當(dāng)蠶蛹源ACE抑制肽的質(zhì)量濃 度 分 別 為 0、0.01、0.05 mg/mL 時(shí) , 它 們 的Lineweaver-Burk雙倒數(shù)曲線相交于y軸,這說明蠶蛹源ACE抑制肽對(duì)ACE的抑制模式是競(jìng)爭(zhēng)性抑制[15]。這與已報(bào)道的草魚源ACE抑制肽[2]、大豆源ACE抑制肽[10]和灰樹花源ACE抑制肽[16]等的抑制模式相同。根據(jù)Lineweaver-Burk雙倒數(shù)曲線的回歸方程,得到蠶蛹源ACE抑制肽的抑制常數(shù) (Ki)為0.06 mg/mL,遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于降血壓藥物 Captopril的 Ki值(0.006 7 μg/mL)[17],這表明蠶蛹源 ACE 抑制肽對(duì)ACE的抑制活性遠(yuǎn)低于Captopril。盡管蛹源ACE抑制肽的活性沒有Captopril的高,但卻遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于綠豆源 ACE抑制肽 (Ki=0.31 mg/mL)[11]、 紅扁豆源ACE抑制肽(Ki=0.46 mg/mL)[11]和油菜籽源 ACE抑制肽(Ki=0.2 mg/mL)[18]。
在蛋白質(zhì)的紫外吸收光譜中,色氨酸和酪氨酸在280 nm波長(zhǎng)附近有一個(gè)吸收峰;苯丙氨酸在257 nm波長(zhǎng)附近有一個(gè)吸收峰[19]。蠶蛹源ACE抑制肽對(duì)ACE的紫外光譜影響見圖6。從圖6可以看出,ACE與蠶蛹源ACE抑制肽相互作用30 min后,在240~280 nm附近的紫外吸光值發(fā)生明顯的變化。與對(duì)照組(0 min)相比,相互作用30 min后,ACE的紫外吸光值在240~280 nm附近均明顯升高。紫外光譜變化反映了蛋白質(zhì)在溶液中的構(gòu)象變化,紫外吸光度的增加說明蛋白質(zhì)分子發(fā)生了伸展[19-20]。此結(jié)果初步說明,蠶蛹源ACE抑制肽能夠改變ACE的分子結(jié)構(gòu),而這種結(jié)構(gòu)變化是導(dǎo)致ACE的酶活降低甚至完全喪失的直接原因。
圖6 蠶蛹源ACE抑制肽對(duì)ACE的紫外光譜影響Fig.6 Effects of ACE-inhibitory peptides from silkworm pupae on ultraviolet spectrum of ACE
蠶蛹源ACE抑制肽耐高溫性能較差,在酸和堿環(huán)境中不穩(wěn)定。冷凍干燥和噴霧干燥對(duì)蠶蛹源ACE抑制肽的活性影響較?。慌c其它干燥方式相比,噴霧干燥的效率最高,適宜工業(yè)化生產(chǎn)。此外,蠶蛹源ACE抑制肽具有較強(qiáng)的耐受胃蛋白酶、胰蛋白酶和α-胰凝乳蛋白酶消化的能力,經(jīng)該3種消化酶處理后,蠶蛹源ACE抑制肽仍能保留初始活性的94.0%;蠶蛹源ACE抑制肽對(duì)ACE的抑制模式為競(jìng)爭(zhēng)性抑制,其抑制常數(shù)(Ki)為0.06 mg/mL,是一種活性較強(qiáng)的ACE抑制劑。蠶蛹源ACE抑制肽對(duì)ACE的紫外光譜有明顯影響,使ACE在240~280 nm附近的紫外吸光值明顯增加,初步揭示了蠶蛹源ACE抑制肽能夠改變ACE的分子結(jié)構(gòu)。
[1]Cushman D W,Cheung H S,Sabo E F,et al.Development and design of specific inhibitors of angiotensin-converting enzyme[J].The American Journal of Cardiology,1982,49(6):1390-1394.
[2]Chen J,Wang Y,Zhong Q,et al.Purification and characterization of a novel angiotensin-I converting enzyme (ACE) inhibitory peptide derived from enzymatic hydrolysate of grass carp protein[J].Peptides,2012,33(1):52-58.
[3]何榮海,馬海樂.條斑紫菜ACEI肽結(jié)構(gòu)鑒定與性能試驗(yàn)[J].江蘇大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2012,33(4):430-434.HE Rong-hai,MA Hai-le.Structure characterization and performance determination of Porphyra yezoensis ACEI peptides[J].Journal of Jiangsu University:Natural Science Edition,2012,33(4):430-434.(in Chinese)
[4]Yu Z,Liu B,Zhao W,et al.Primary and secondary structure of novel ACE-inhibitory peptides from egg white protein[J].Food Chemistry,2012,133(2):315-322.
[5]Pan D,Cao J,Guo H,et al.Studies on purification and the molecular mechanism of a novel ACE inhibitory peptide from whey protein hydrolysate[J].Food Chemistry,2012,130(1):121-126.
[6]趙偉睿,馬海樂,賈俊強(qiáng),等.超聲波對(duì)麥胚蛋白性質(zhì)及其酶解物ACE抑制活性的影響[J].食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2010,29(2):177-182.ZHAO Wei-rui,MA Hai-le,JIA Jun-qiang,et al.Effect of ultrasound treatment on the defatted wheat germ protein properties and its ACE inhibition activity[J].Journal of Food Science and Biotechnology,2010,29(2):177-182.(in Chinese)
[7]于志鵬,趙文竹,于一丁,等.蛋清蛋白質(zhì)降壓肽的化學(xué)及酶穩(wěn)定性研究[J].食品科學(xué),2010,31(9):23-26.YU Zhi-peng,ZHAO Wen-zhu,YU Yi-ding,et al.Stability of antihypertensive peptides from egg white protein to chemicals and enzymes[J].Food Science,2010,31(9):23-26.(in Chinese)
[8]賈俊強(qiáng),徐金玲,吳瓊英,等.酶解蠶蛹蛋白制備血管緊張素轉(zhuǎn)換酶抑制肽的工藝優(yōu)化[J].蠶業(yè)科學(xué),2011,37(5):872-877.JIA Jun-qiang,XU Jin-ling,WU Qiong-ying,et al.Optimization of technology for preparation of angiotensin-converting enzyme inhibitory peptides from silkworm pupal protein by enzymatic hydrolysis[J].Science of Sericulture,2011,37(5):872-877.(in Chinese)
[9]Muguerza B,Ramos M,Sánchez E,et al.Antihypertensive activity of milk fermented by Enterococcus faecalis strains isolated from raw milk[J].International Dairy Journal,2006,16(1):61-69.
[10]Wu J,Ding X.Characterization of inhibition and stability of soy-protein-derived angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptides[J].Food Research International,2002,35(4):367-375.
[11]Barbana C,Boye,J I.Angiotensin I-converting enzyme inhibitory properties of lentil protein hydrolysates:determination of the kinetics of inhibition[J].Food Chemistry,2011,127(1):94-101.
[12]劉靜波,于志鵬,趙文竹,等.蛋清源ACE抑制肽結(jié)構(gòu)鑒定及其穩(wěn)定性[J].吉林大學(xué)學(xué)報(bào):工學(xué)版,2011,41(2):579-584.LIU Jing-bo,YU Zhi-peng,ZHAO Wen-zhu,et al.Characterization and stability of ACE inhibitory peptides derived fromegg white protein[J].Journal of Jilin University:Engineering and Technology Edition,2011,41(2):579-584.(in Chinese)
[13]Miguel M,Alonso M J,Salaices M,et al.Antihypertensive,ACE-inhibitory and vasodilator properties of an egg white hydrolysate:effect of a simulated intestinal digestion[J].Food Chemistry,2007,104(1):163-168.
[14]Matsui T,Li C H,Tanaka T,et al.Depressor effect of wheat germ hydrolysate and its novel angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptide,Ile-Val-Tyr,and the metabolism in rat and human plasma[J].Biological&Pharmaceutical Bulletin,2000,23(4):427-431.
[15]Quirós A,Contreras M M,Ramos M,et al.Stability to gastrointestinal enzymes and structure–activity relationship of β-caseinpeptides with antihypertensive properties[J].Peptides,2009,30(10):1848-1853.
[16]Choi H S,Cho H Y,Yang H C,et al.Angiotensin I-converting enzyme inhibitor from Grifola frondosa[J].Food Research International,2001,34(2-3):177-182.
[17]Tsai J,Chen T,Sun Pan B,et al.Antihypertensive effect of bioactive peptides produced by protease-facilitated lactic acid fermentation of milk[J].Food Chemistry,2008,106(2):552-558.
[18]Makinen S,Johannson T,Gerd E V,et al.Angiotensin I-converting enzyme inhibitory and antioxidant properties of rapeseed hydrolysates[J].Journal of Functional Foods,2012,4(3):575-583.
[19]吳丹,徐桂英.光譜法研究蛋白質(zhì)與表面活性劑的相互作用[J].物理化學(xué)學(xué)報(bào),2006,22(2):254-260.WU Dan,XU Gui-ying.Study on protein-surfactant interaction by spectroscopic methods[J].Acta Physico-Chimica Sinica,2006,22(2):254-260.(in Chinese)
[20]Tang C,Yang X,Chen Z,et al.Physicochemical and structural characteristics of sodium caseinate biopolymers induced by microbial transglutaminase[J].Journal of Food Biochemistry,2005,29(4):402-421.