張寧 劉榮梅 束長(zhǎng)龍 張杰 李海濤 高繼國
(1. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,哈爾濱 150030;2. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所植物病蟲害生物學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100193)
蘇云金芽胞桿菌(Bacillus thuringiensis,Bt)為革蘭氏陽性菌,Bt在芽胞的形成過程中能夠產(chǎn)生殺蟲晶體蛋白(Insecticidal Crystal Proteins,ICPs),這種伴胞晶體蛋白對(duì)鱗翅目、鞘翅目、雙翅目、膜翅目等多種重要的害蟲都有特異性的毒殺作用。1996年,Estruch等[1]在Bt發(fā)酵上清液中發(fā)現(xiàn)了營(yíng)養(yǎng)期殺蟲蛋白(Vegetative Insecticidal Proteins,VIPs)。VIPs與Bt在芽胞形成的過程中產(chǎn)生的殺蟲晶體蛋白的同源性極低。VIPs分為Vip1、Vip2、Vip3和Vip4,其中尤其Vip3A 蛋白對(duì)鱗翅目夜蛾科害蟲(如小地老虎、草地貪夜蛾、甜菜夜蛾和棉鈴蟲等)具有廣譜高效的殺蟲活性[2]。其中Vip3Aa蛋白間的氨基酸序列同源性都在95%以上,但其序列間個(gè)別氨基酸的差異也會(huì)導(dǎo)致對(duì)害蟲毒力和殺蟲譜的變化[3]。本試驗(yàn)采用的Vip3Aa39和Vip3Aa11蛋白氨基酸序列間僅存在39個(gè)位點(diǎn)的不同,但Vip3Aa39和Vip3Aa11對(duì)小地老虎、小菜蛾、棉鈴蟲的殺蟲活性差別較大,根據(jù)本實(shí)驗(yàn)室生物活性測(cè)定,Vip3Aa39對(duì)小地老虎的50%致死濃度(LC50)為5.43 μg/mL,而Vip3Aa11的LC5073.62 μg/mL;Vip3Aa39對(duì)小菜蛾的LC50為140.64 μg/mL,而Vip3Aa11對(duì)小菜蛾的殺蟲活性極低;Vip3Aa11對(duì)棉鈴蟲LC50為35.18 μg/mL,而 Vip3Aa39 的LC50僅 為 286.99 μg/mL[6]。 所 以定位和分析Vip3A蛋白的功能特異性區(qū)域,對(duì)研究Vip3Aa蛋白的殺蟲活性及殺蟲譜具有重要意義。
現(xiàn)在,人們?cè)絹碓疥P(guān)注對(duì)已有蛋白質(zhì)的基因改造,發(fā)明了多種蛋白質(zhì)突變體基因庫構(gòu)建方法[4],其中就包括同源及非同源的多種重組方法。本研究選用了本實(shí)驗(yàn)室克隆的對(duì)小菜蛾等農(nóng)業(yè)害蟲生物活性不同的vip3Aa39[6]和vip3Aa11[7]基因?yàn)槟康幕?,將兩個(gè)基因片段進(jìn)行同源隨機(jī)重組,得到一系列同源重組產(chǎn)物。將不同的重組產(chǎn)物利用Gateway[5]技術(shù)克隆到供體載體(Donor vector),構(gòu)建一個(gè)Vip3A的隨機(jī)重組文庫。旨在獲得高毒力、具有殺蟲特異性的Vip3A蛋白的同時(shí),也為進(jìn)一步研究Vip3A類蛋白高毒力及殺蟲特異性相關(guān)功能區(qū)域奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 菌株和質(zhì)粒 轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒pEB-Vip3Aa39的Rosetta(DE3)菌株和轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒pET28a-Vip3Aa-11的BL21菌株為中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所生物技術(shù)組實(shí)驗(yàn)室所有。pDONR221菌株購于Invitrogen公司。Escherichia coliJM109為實(shí)驗(yàn)室保存菌。
1.1.2 主要試劑和工具酶 Gateway BP Clonase Ⅱ E-nzyme Mix購自Invitrogen公司;2×TaqPCR Master-Mix、DNA Ladder Marker購自博邁德生物公司;PrimerSTAR Max DNA Polymerase 購自大連寶生物公司;質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒、PCR純化試劑盒購自AxyPrep生物技術(shù)有限公司。PCR引物合成和測(cè)序委托上海生工生物工程有限公司。DNA marker:100 bp ladder plus 購自博邁德生物公司。其余試劑均為國產(chǎn)分析純以上或進(jìn)口超級(jí)純產(chǎn)品。
1.1.3 培養(yǎng)基 液體LB:胰蛋白胨1%,酵母提取物0.5%,氯化鈉1%。固體LB:在液體培養(yǎng)基中加1.5%瓊脂。
1.2.1 質(zhì)粒DNA的提取 利用質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒提取大腸桿菌中的質(zhì)粒pEB-Vip3Aa39、pET28a-Vip3Aa11和pDONR221。
1.2.2 重組目的基因的引物設(shè)計(jì) 根據(jù)已得到的vip3Aa39、vip3Aa11序列和attB1、attB2位點(diǎn)序列,設(shè)計(jì)引物。由于attB位點(diǎn)序列過長(zhǎng),設(shè)計(jì)兩步PCR。各引物名稱及序列如下:VIP3AA39-5:GTACAAAAAAGCAGGCTATGAATAAT;VIP3AA39-3:TTACTTAATTGAGACATCGTTAAACTTTACAAGA;VIP3AA-11-5:ATGAACAAGAATAATACTAAATTAAGCACAAGA;VIP3AA11-3:GTACAAGAAAGCTGGGTCTTAATAGAGACATCGT;attB1:GGGGACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCT;attB2:GGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGGGT(下劃線為attB1、attB2的部分序列)。
1.2.3 重組質(zhì)粒的構(gòu)建 分別以pEB-Vip3Aa39,pET28a-Vip3Aa11質(zhì)粒為模板,利用已設(shè)計(jì)引物 VIP3A-A39-5、VIP3AA39-3 和 VIP3AA11-5、VIP3AA11-3進(jìn)行第一步PCR,分別在vip3Aa39基因的5'端加上attB1位點(diǎn)的部分序列,在vip3Aa11基因的3'端加上attB2位點(diǎn)的部分序列,且引物之間的長(zhǎng)度為整個(gè)基因的完整序列;再分別以第一步PCR產(chǎn)物為模板,利用引物attB1、VIP3AA39-3和VIP3AA11-5、attB2,進(jìn)行第二步PCR,分別使vip3Aa39基因的5'端加上attB1全位點(diǎn)序列,使vip3Aa11基因的3'端加上attB2全位點(diǎn)序列。
提取載體pDONR221質(zhì)粒,將第二步PCR反應(yīng)產(chǎn)物attB1-Vip3Aa39和Vip3Aa11-attB2分別用PCR純化試劑盒進(jìn)行純化,最后用 Gateway BP重組試劑盒中的Gateway BP ClonaseⅡenzyme mix 2 μL 進(jìn)行25℃[8]過夜重組反應(yīng),獲得重組質(zhì)粒。重組反應(yīng)示意圖見圖1。
1.2.4 Vip3A隨機(jī)重組文庫的構(gòu)建 重組質(zhì)粒加入2 μL蛋白酶K,37℃溫浴10 min,轉(zhuǎn)化大腸桿菌JM109,挑取所有克隆。
1.2.5 陽性克隆的鑒定 將重組質(zhì)粒進(jìn)行PCR初步鑒定,測(cè)序由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院重大科學(xué)工程開放實(shí)驗(yàn)室完成。根據(jù)測(cè)序結(jié)果,確定陽性克隆子。
圖1 Gateway技術(shù)同源重組示意圖
以質(zhì)粒pEB-Vip3Aa39和pET28a-Vip3Aa11為模板,應(yīng)用引物VIP3AA39-5、VIP3AA39-3和VIP3AA11-5、VIP3AA11-3擴(kuò)增到帶有部分attB1位點(diǎn)的vip3Aa39的目的產(chǎn)物和帶有部分attB2位點(diǎn)的vip3Aa11的目的產(chǎn)物,結(jié)果見圖2中1、2、3、4泳道。將PCR產(chǎn)物用PCR純化試劑盒純化后,結(jié)果見圖2中6、7泳道。
圖2 vip3Aa39和vip3Aa11的第一步PCR擴(kuò)增及純化檢測(cè)
以第一次PCR反應(yīng)產(chǎn)物為模板,進(jìn)行第二次PCR,結(jié)果(圖3)顯示,應(yīng)用設(shè)計(jì)引物attB1和VIP3AA39-3成功得到帶有attB1全位點(diǎn)的vip3Aa39目的產(chǎn)物(圖3中1、2泳道),命名為attB1-vip3Aa39;應(yīng)用設(shè)計(jì)引物VIP3AA11-5和attB2成功得到帶有attB2全位點(diǎn)的vip3Aa11目的產(chǎn)物(圖3中3、4泳道),命名為vip3Aa11-attB2。
圖3 vip3Aa39和vip3Aa11的第二步PCR擴(kuò)增檢測(cè)
應(yīng)用NanoDrop ND-1000核酸蛋白定量檢測(cè)儀,對(duì)純化后的PCR產(chǎn)物及提取的pDONR221質(zhì)粒進(jìn)行定量:attB1-vip3Aa39濃度為189.6 ng/L,vip3Aa11-attB2濃度為193.2 ng/L,pDONR221濃度為76 ng/L,結(jié)果顯示,濃度能夠達(dá)到Gateway BP重組試劑盒的要求。
將初步鑒定的42個(gè)重組質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序。將測(cè)序結(jié)果用NCBI網(wǎng)站上的BLAST、Informax 2003 Vector NTI Suite 9、DNAMAN等軟件分析,獲得22個(gè)氨基酸序列不同的重組突變體,從而確定重組文庫。
對(duì)Vip3Aa39、Vip3Aa11和22個(gè)突變體氨基酸序列差別位點(diǎn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),結(jié)果(圖4)顯示,有的突變體與Vip3Aa39的序列N端區(qū)別很大,有的與Vip3Aa11序列的C端差別很多,但都與Vip3Aa39和Vip3Aa11的氨基酸序列不同,并且這些突變體在Vip3Aa39和Vip3Aa11的39個(gè)氨基酸差異位點(diǎn)上都有體現(xiàn)。說明重組位點(diǎn)覆蓋了兩個(gè)材料基因的全部差異位點(diǎn),并且重組位點(diǎn)的數(shù)目有一個(gè)由逐漸遞增到遞減的趨勢(shì),為之后研究材料基因的功能特異位點(diǎn)奠定了很好的基礎(chǔ)。同時(shí)將22個(gè)突變體氨基酸序列到NCBI網(wǎng)站進(jìn)行蛋白序列比對(duì),得到的每個(gè)突變體都是新序列。
將得到的22個(gè)突變體氨基酸序列和vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列應(yīng)用Vector NTI軟件進(jìn)行聚類分析,可看出各個(gè)突變體與vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列的遠(yuǎn)近關(guān)系,結(jié)果(圖5)顯示,距離vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列較遠(yuǎn)的突變體,其氨基酸序列與vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列的差別較大,例如M1、M20、M21和M22,共4個(gè)突變較大的突變體,占總突變體的18%;反之,突變體的氨基酸序列與vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列的差別較小,例如M2和M12等。
圖4 氨基酸突變位點(diǎn)統(tǒng)計(jì)分析
圖5 Vip3A突變體氨基酸序列聚類圖
目前國際上的同源重組方法主要包括DNA shuffling[9]、StEP[10]、RACHITT[11]、RETT[12]、NExT[13]、Golden Gate Shuffling[14]。這 6 種方法中,有的存在酶的消化條件難于控制,有的存在片段延伸時(shí)間難于控制等問題,步驟繁瑣,都制約了重組的成功率。本研究采用Gateway技術(shù)及同源重組酶,步驟簡(jiǎn)單,只需一步重組反應(yīng),且反應(yīng)條件易于控制,在25℃條件下就可進(jìn)行重組,成功率高。利用Gateway技術(shù),擺脫了傳統(tǒng)載體構(gòu)建中酶切連接的局限性。Gateway入門載體兩端的接頭不同,能夠很好地解決目的基因連入的方向問題,未成功重組的載體由于仍然具有致死基因ccdB,而使普通大腸桿菌無法生長(zhǎng)從而減少了假陽性的菌株,為后期的篩選工作節(jié)省了時(shí)間。
現(xiàn)在,人們主要應(yīng)用Gateway技術(shù)的BP、LP反應(yīng)來構(gòu)建表達(dá)載體,例如2011年,徐品三等[15]應(yīng)用Gateway技術(shù)快速構(gòu)建百合雙價(jià)抗病毒RNAi表達(dá)載體;闕文忠等[16]利用Gateway技術(shù)快速地構(gòu)建同時(shí)表達(dá)NK4蛋白和綠色熒光的重組腺病毒;李明等[17]采用Gateway克隆技術(shù)構(gòu)建了小麥TaWRKY46-1基因可誘導(dǎo)型超量表達(dá)載體;本研究利用同源重組酶對(duì)兩個(gè)2.3 kb的全長(zhǎng)基因進(jìn)行同源隨機(jī)重組,然后再通過由Invitrogen公司開發(fā)的Gateway[5]技術(shù)將不同的同源重組片段克隆到其供體載體上,構(gòu)建突變體文庫。利用此方法進(jìn)行的同源隨機(jī)重組,重組位點(diǎn)能夠覆蓋全部材料基因,重組材料及條件易于控制,操作簡(jiǎn)單;同時(shí)利用Gateway技術(shù)的BP重組反應(yīng)將重組片段克隆到供體載體上,省去了普通克隆時(shí)的酶切連接鑒定的繁瑣步驟,可直接將片段克隆到載體上,極大地提高克隆效率。
本研究運(yùn)用Gateway重組酶通過對(duì)Vip3A類兩個(gè)基因的隨機(jī)重組獲得了22個(gè)突變體,經(jīng)氨基酸序列比對(duì),差異較大的序列,說明突變位點(diǎn)較多,這可能會(huì)改變?cè)心康幕虻墓δ?;差異較小的序列,為今后定向研究材料基因的功能區(qū)域提供了研究對(duì)象?;谶@些突變體在氨基酸序列上呈現(xiàn)的差異,我們將對(duì)這些突變體基因在大腸桿菌中進(jìn)行重組表達(dá),然后對(duì)每個(gè)突變體重組蛋白進(jìn)行提取,并將其對(duì)鱗翅目昆蟲如甜菜夜蛾、小菜蛾、小地老虎等進(jìn)行生物活性測(cè)定,以期找到殺蟲特異性強(qiáng),殺蟲譜廣的殺蟲蛋白。為研究Vip3A蛋白的特異性相關(guān)區(qū)域或氨基酸定位奠定基礎(chǔ),具有重要的理論意義和實(shí)用價(jià)值。
應(yīng)用Gateway技術(shù)中的BP反應(yīng)對(duì)殺蟲譜存在特異性的vip3Aa39和vip3Aa11基因進(jìn)行同源重組突變,構(gòu)建重組文庫。獲得42個(gè)基因型不同的重組質(zhì)粒,其中有22個(gè)蛋白序列不同的突變體。
[1] Estruch JJ, Warren GW, Mullins MA, et al. Vip3A, a novelBacillus thuringiensisvegetative insecticidal protein with a wide spectrum of activities against lepidopteran insects [J]. Proc Natl Acad Sci,1996, 93(11):5389-5394.
[2] 鐘萬芳, 方繼朝, 郭慧芳, 等.廣譜高效Bt菌株的篩選及其殺蟲蛋白基因的克隆[J].華南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2005, 26(4):40-42.
[3] 申建茹, 侯名語, 郭魏.蘇云金芽孢桿菌vip3A基因的鑒定、克隆及活性分析[J].微生物學(xué)報(bào), 2009, 49(1):110-116.
[4] 張秀艷, 何國慶.蛋白質(zhì)突變體基因庫構(gòu)建方法的研究進(jìn)展[J].中國生物工程雜志, 2006, 26(10):52-58.
[5] Hartley JL, Temple GF, Brasch MA. DNA cloning usingin vitrositespecific recombination [J]. Genome Research, 2000, 10:1788-1795.
[6] 何曉明, 束長(zhǎng)龍, 劉曉壘, 等.蘇云金芽胞桿菌新型vip3Aa基因克隆、表達(dá)及活性分析 [J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2011, 19 (5):932-937.
[7] 劉榮梅, 張杰, 高繼國, 宋福平.蘇云金芽孢桿菌營(yíng)養(yǎng)期殺蟲蛋白基因vip3A的研究[J].高技術(shù)通訊, 2004, 9:39-42.
[8] Suzuki Y, Kagawa N, Fujino T, et al. A novel high-throughput(HTP)cloning strategy for site-directed designed chimeragenesis and mutation using the Gateway cloning system [J]. Nucleic Acids Res,2005, 33(12):e109.
[9] Stemmer WPC. Rapid evolution of a proteinin vitroby DNA shuffling[J]. Nature, 1994, 370(6488):389-391.
[10] Zhao H, Giver L, Shao Z, et al. Molecular evolution by staggered extension process(StEP)in vitrorecombination [J]. Nature Biotechnology, 1998, 16(3):258-261.
[11] Coco WM, Levinson WE, Crist MJ, et al. DNA shuffling method for generating highly recombined genes and evolved enzymes [J].Nature Biotechnology, 2001, 19(4):354-359.
[12] Sen S, Venkata Dasu V, Mandal B. Developments in directed evolution for improving enzyme functions [J]. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2007, 143(3):212-223.
[13] Müller KM, Stebel SC, Knall S, et al. Nucleotide exchange and excision technology(NExT)DNA shuffling:a robust method for DNA fragmentation and directed evolution [J]. Nucleic Acids Research, 2005, 33(13):e117.
[14] Engler C, Gruetzner R, Kandzia R, Marillonnet S. Golden gate shuffling:a one-pot DNA shuffling method based on type IIs restriction enzymes[J]. PLoS One, 2009, 4(5):e5553.
[15] 徐品三, 白建芳, 劉紀(jì)文, 李煥改. Gateway 技術(shù)快速構(gòu)建百合雙價(jià)抗病毒 RNAi 表達(dá)載體[J].中國農(nóng)學(xué)通報(bào), 2011(4):144-147.
[16] 闕文忠, 陳君敏.利用Gateway技術(shù)構(gòu)建重組腺病毒pAd-NK4[J].中國藥理學(xué)通報(bào), 2011, 4:462-467.
[17] 李明, 丁博, 牛有雄, 等.小麥TaWRKY46-1基因克隆及建立在Gateway技術(shù)上的可誘導(dǎo)表達(dá)載體的構(gòu)建 [J].華北農(nóng)學(xué)報(bào), 2011, 2:17-22.