桂蘭蘭 綜述 謝紅浪 審校
膿毒癥是由細(xì)菌、病毒或真菌感染引起的全身性炎癥反應(yīng)綜合征(SIRS)。全世界每年約有1 800萬(wàn)膿毒癥患者,常合并低血壓(休克)、單一或多臟器衰竭,死亡率達(dá) 25%~70%[1,2]。急性腎損傷(AKI)是膿毒癥最常見的嚴(yán)重并發(fā)癥之一,是膿毒癥患者死亡率增加的獨(dú)立危險(xiǎn)因素[3]。傳統(tǒng)觀點(diǎn)認(rèn)為,腎血流量(RBF)減少是膿毒癥性AKI的主要機(jī)制,主要依賴液體復(fù)蘇及血管活性藥物治療,但臨床療效不佳[4]。事實(shí)上,RBF在膿毒癥早期可能會(huì)減少,但復(fù)蘇后因存在高動(dòng)力循環(huán),RBF正常甚至增加,在腎臟灌注充足情況下依然存在AKI[5]。因此,AKI發(fā)病機(jī)制遠(yuǎn)比腎臟低灌注復(fù)雜,細(xì)胞凋亡、腎小球及管周微循環(huán)障礙、氧化應(yīng)激、線粒體功能障礙和炎癥反應(yīng)等多種因素都參與膿毒癥性AKI的發(fā)生。
Toll樣受體(TLRs)存在于固有性免疫系統(tǒng)和適應(yīng)性免疫系統(tǒng)細(xì)胞表面,提供病原體和生物相互作用界面。TLR4是識(shí)別革蘭陰性菌胞壁成分脂多糖(LPS)的主要受體,參與炎癥反應(yīng)。近期研究證實(shí),阻斷TRL4信號(hào)通路可抑制炎癥介質(zhì)表達(dá),提高膿毒癥患者生存率。本文就TLR4信號(hào)通路在膿毒癥性AKI的發(fā)病機(jī)制和治療前景作一簡(jiǎn)述。
凝血-炎癥網(wǎng)絡(luò)在膿毒癥病理生理機(jī)制中具有重要意義(圖1)[6],炎癥反應(yīng)是AKI直接發(fā)病機(jī)制之一。膿毒癥過(guò)程可分為炎癥反應(yīng)和代償性抗炎反應(yīng)兩個(gè)階段。最初表現(xiàn)為明顯炎癥反應(yīng),產(chǎn)生大量前炎癥因子如腫瘤壞死因子α(TNF-α)、白細(xì)胞介素1(IL-1)等,進(jìn)一步作用于巨噬細(xì)胞或樹突狀細(xì)胞,刺激下游細(xì)胞因子IL-6、IL-8生成,引起組織損傷;在初始爆發(fā)性炎癥反應(yīng)后,逐漸誘發(fā)抗炎反應(yīng),如產(chǎn)生抗炎癥因子IL-10、出現(xiàn)抗原提呈無(wú)效、T淋巴細(xì)胞低反應(yīng)性、T輔助淋巴細(xì)胞1(Th1)增生降低,使患者處于免疫麻痹狀態(tài)進(jìn)而繼發(fā)感染或?qū)χ委煾深A(yù)無(wú)效[7]。
TNF-α和IL-1是膿毒癥時(shí)誘發(fā)AKI的主要因子,對(duì)宿主作用廣泛。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),注射LPS后豬腎小球內(nèi)皮細(xì)胞和系膜細(xì)胞TNF-α表達(dá)增加,腎皮質(zhì)動(dòng)脈血管內(nèi)皮細(xì)胞IL-1β表達(dá)增加[8]。TNF-α受體缺失的小鼠,在注射LPS后腎小管上皮細(xì)胞凋亡及腎組織中性粒細(xì)胞浸潤(rùn)明顯減輕,從而避免LPS介導(dǎo)的AKI發(fā)生[9]。Knotek等[10]予野生型鼠腹腔注射可溶性TNF-α受體p55,1h后再注射LPS,預(yù)處理組腎小球?yàn)V過(guò)率下降幅度低于對(duì)照組(30%vs 70%),即中和TNF-α可保護(hù)LPS誘導(dǎo)的野生鼠腎功能損傷。TNF-α及IL-1導(dǎo)致AKI發(fā)生的機(jī)制包括誘導(dǎo)細(xì)胞因子釋放,放大炎癥級(jí)聯(lián)反應(yīng);表達(dá)組織因子促進(jìn)局部血栓形成;誘導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞凋亡;增加活性氧產(chǎn)生導(dǎo)致局部氧化應(yīng)激等[11,12]。
動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,通過(guò)調(diào)控TLR4信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路調(diào)節(jié)炎癥免疫反應(yīng),影響膿毒癥的發(fā)展[13]。因此,對(duì)TLR4的研究越來(lái)越受到國(guó)內(nèi)外學(xué)者的重視,研究阻斷或抑制TLR4信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的藥物也是目前研究熱點(diǎn)。
圖1 簡(jiǎn)化的膿毒癥病理生理過(guò)程[6]
TLRs是一類模式識(shí)別受體家族,通過(guò)介導(dǎo)細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)導(dǎo)致炎癥因子的釋放,從而在識(shí)別病原微生物、啟動(dòng)炎癥應(yīng)答中起重要作用。TLR4是TLRs家族成員之一,是識(shí)別革蘭陰性菌細(xì)胞外壁LPS成分的主要受體。在LPS誘導(dǎo)的AKI中發(fā)揮重要作用,通過(guò)阻斷TLR4信號(hào)通路可帶來(lái)膿毒癥AKI治療新手段(圖2)[14]。
圖2 TLR4 信號(hào)通路[14]
TLR4結(jié)構(gòu) TLR4屬于Ⅰ型跨膜蛋白,由胞外區(qū)、跨膜區(qū)和胞內(nèi)區(qū)三個(gè)部分組成。胞外區(qū)由24個(gè)亮氨酸重復(fù)(LRR)序列組成,整個(gè)LRR結(jié)構(gòu)域呈馬蹄形。胞內(nèi)區(qū)則存在一段序列保守區(qū),含有大約200個(gè)氨基酸殘基,由Toll同源結(jié)構(gòu)域和分子羧基端長(zhǎng)短不同的短尾肽(0~22個(gè)氨基酸)組成。該序列與IL-1受體胞內(nèi)區(qū)保守序列具有高度的同源性,稱為Toll樣受體/IL-1同源結(jié)構(gòu)域(TIR)。
TLR4信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)胞外部分 TLR4主要識(shí)別LPS及具有類脂A結(jié)構(gòu)的衍生物。首先內(nèi)毒素結(jié)合蛋白(LBP)將LPS從細(xì)菌外膜上轉(zhuǎn)移下來(lái),并與其脂質(zhì)A結(jié)合,形成LPS-LBP復(fù)合物。然后將復(fù)合物中的LPS傳遞給膜結(jié)合CD14(mCD14),再由mCD14將LPS傳遞給TLR4。在髓樣分化蛋白2(MD-2)的協(xié)同作用下,LPS激活TLR4并觸發(fā)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)。
髓樣分化蛋白88(MyD88)依賴性信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑 TLR4與配體結(jié)合后促使其本身二聚體化,并使胞內(nèi)區(qū)的TIR區(qū)域構(gòu)象發(fā)生變化。MyD88羧基端與TIR區(qū)域結(jié)合,氨基端的死亡片段可與IL-1相關(guān)蛋白激酶(IRAK)結(jié)合,導(dǎo)致IRAK發(fā)生自身磷酸化。磷酸化的IRAK與胞質(zhì)內(nèi)的TNF受體相關(guān)因子6(TRAF6)結(jié)合,介導(dǎo)兩種不同的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路。一條通路通過(guò)激活轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子活化激酶1(TAK1)提高核因子抑制蛋白(IκB)激酶復(fù)合物活性(IKK),作用于IκB使之磷酸化、泛素化最終被降解從而活化核因子 κB(NF-κB)。NF-κB 轉(zhuǎn)運(yùn)到胞核其活性二聚體可啟動(dòng) TNF-α、IL-6、IL-8和IL-12p40等炎癥介質(zhì)釋放。另一通路則通過(guò)激活絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)家族,包括cjun氨基末端激酶、p38和細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶,最終活化轉(zhuǎn)錄激活蛋白1(AP-1),而AP-1有刺激細(xì)胞增生、轉(zhuǎn)化和死亡的作用。
MyD88非依賴性信號(hào)途徑 主要通過(guò)Toll樣受體相關(guān)的干擾活化子(TRIF)相關(guān)接頭蛋白分子(TRAM)引起NF-κB遲發(fā)激活和干擾素調(diào)節(jié)因子3(IRF-3)激活?;罨疘RF-3誘導(dǎo)包括β干擾素在內(nèi)的一系列基因的轉(zhuǎn)錄,如可誘導(dǎo)干擾素誘導(dǎo)蛋白10、糖皮質(zhì)激素衰減反應(yīng)基因16、干擾素調(diào)節(jié)基因1表達(dá)和樹突狀細(xì)胞的成熟。
TLR4信號(hào)通路與膿毒癥炎癥因子調(diào)控 LPS與巨噬細(xì)胞或樹突狀細(xì)胞表面TLR4結(jié)合后,通過(guò)MyD88依賴性或非依賴性反應(yīng)通路激活NF-κB。NF-κB進(jìn)入胞核調(diào)控產(chǎn)生一系列前炎癥介質(zhì)如TNF-α、IL-1,繼而產(chǎn)生大量繼發(fā)性炎癥介質(zhì)如IL-6、IL-8;同時(shí)調(diào)控CD80、CD86等輔助刺激因子表達(dá),在輔助刺激因子幫助下,初始T細(xì)胞分化為Th1和Th2誘導(dǎo)體液免疫和細(xì)胞免疫[15]。TLR4胞內(nèi)信號(hào)通路產(chǎn)生的炎癥介質(zhì)可進(jìn)一步激活NF-κB,形成正反饋的級(jí)聯(lián)放大效應(yīng),產(chǎn)生過(guò)度的炎癥反應(yīng),嚴(yán)重時(shí)產(chǎn)生SIRS,最終導(dǎo)致膿毒癥及多臟器功能障礙綜合征。
TLR4不僅表達(dá)于固有免疫細(xì)胞(如單核細(xì)胞、中性粒細(xì)胞及樹突狀細(xì)胞)表面,也在腎臟遠(yuǎn)曲和近曲小管上皮細(xì)胞、包曼囊上皮細(xì)胞及腎血管內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)[16]。大量研究顯示TLR4在膿毒癥發(fā)病中的重要性,但TLR4與膿毒癥性AKI的相關(guān)研究卻不多。盲腸結(jié)扎穿孔可誘發(fā)多種微生物感染而導(dǎo)致膿毒癥發(fā)生,在該動(dòng)物模型中研究發(fā)現(xiàn)TLR4在近曲小管及遠(yuǎn)曲小管上皮細(xì)胞、腎小球、腎血管表達(dá)顯著增加[17]。C3H/HeJ小鼠由于 TLR4基因第3個(gè)外顯子發(fā)生了點(diǎn)突變,導(dǎo)致其編碼的蛋白質(zhì)多肽鏈第712位組氨酸由脯氨酸代替,從而改變了TLR4信號(hào)通路。注射0.25mg LPS后24h監(jiān)測(cè)血尿素氮水平,未發(fā)現(xiàn) C3H/HeJ小鼠有 AKI征象,在注射LPS 2h后C3H/HeJ小鼠外周血也未檢出TNF-α,且腎組織中性粒細(xì)胞浸潤(rùn)及腎臟細(xì)胞凋亡更罕見[18]。
以上研究支持TLR4參與膿毒癥性AKI的發(fā)生,而TLR4在腎臟細(xì)胞及腎外細(xì)胞均有表達(dá),El-Achkar等[19]認(rèn)為內(nèi)毒素通過(guò)兩種途徑造成腎小管上皮細(xì)胞及腎血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷。除了與固有免疫細(xì)胞TLR4結(jié)合后釋放系統(tǒng)性炎癥因子間接作用于腎臟引起損傷,還可作用于腎小管上皮細(xì)胞及內(nèi)皮細(xì)胞TLR4,引起局部炎癥反應(yīng)和氧化應(yīng)激,直接造成腎臟損傷。Cunningham等[18]認(rèn)為腎外 TLR4在內(nèi)毒素誘導(dǎo)腎臟損傷中起主要作用,而腎臟TLR4僅在LPS誘導(dǎo)的TNF-α介導(dǎo)的腎小管及血管細(xì)胞凋亡發(fā)揮較小的作用。該研究將C3H/HeJ小鼠腎臟交叉移植給野生型小鼠后,小鼠血尿素氮水平升高明顯,而將野生型小鼠腎臟移植給C3H/HeJ小鼠后,小鼠雖然出現(xiàn)血尿素氮水平升高,但較升高幅度明顯低于前者,可抵抗LPS誘導(dǎo)腎臟損傷。
瑞沙托維(TAK-242) TAK-242化學(xué)名稱(6R)-6-[(2-氯-4-氟苯基)胺]磺?;?1-環(huán)己烷-1-羧酸乙酯,分子式 C15H17CIFNO4S,分子量361.82。TAK-242是小分子TLR4信號(hào)通路抑制劑,可直接與TLR4胞內(nèi)結(jié)構(gòu)域TIR半胱氨酸(Cys)747結(jié)合,抑制TIR與其接頭蛋白如Toll/IL-1受體銜接蛋白(TIRAP/Mal)、TRAM結(jié)合,從而阻斷TIRAP介導(dǎo)的NF-κB及TRAM 介導(dǎo)的NF-κB、干擾素等激活,最終抑制 NO、TNF-α、IL-6等多種細(xì)胞因子產(chǎn)生[20-22]。
Fenhammar等[23]通過(guò)隨機(jī)對(duì)照研究,首次探討了TAK-242對(duì)膿毒癥時(shí)腎功能的保護(hù)作用。因人類的TLR4與羊相似,故該作者選擇20只成年特克塞爾雜交羊?yàn)閷?shí)驗(yàn)動(dòng)物,通過(guò)24h持續(xù)注射LPS[3μg/(kg·h)]誘導(dǎo)膿毒癥模型。實(shí)驗(yàn)組首先靜脈推注2mg/kg TAK-242,后續(xù) 4mg/(kg·d)維持。結(jié)果發(fā)現(xiàn),注射LPS后動(dòng)物出現(xiàn)低血壓,心動(dòng)過(guò)速,心臟指數(shù)下降,同時(shí)出現(xiàn)尿量及肌酐清除率下降,血肌酐、尿素氮、乳酸鹽水平升高。與對(duì)照組相比,TAK-242顯著改善血壓,尿量和肌酐清除率,同時(shí)血肌酐、尿素氮、乳酸鹽水平及尿NAG水平顯著下降。該研究表明在出現(xiàn)AKI前使用TAK-242可減輕LPS誘導(dǎo)的羊腎臟損傷。同時(shí)提出需更進(jìn)一步研究TLR4激活后導(dǎo)致AKI的完整機(jī)制,及TLR4抑制劑是否能逆轉(zhuǎn)已經(jīng)存在的AKI,阻斷TLR4信號(hào)是否能有效保護(hù)細(xì)菌感染導(dǎo)致的AKI。
在Ⅰ期臨床試驗(yàn)中,健康受試者注射TAK-242可抑制TNF-α、IL-1和IL-6產(chǎn)生,伴發(fā)輕度溶血及高鐵血紅蛋白血癥,但無(wú)臨床意義[24]。近期 Rice等[25]進(jìn)行了隨機(jī)雙盲安慰劑對(duì)照試驗(yàn),其目的在于確定TAK-242降低細(xì)胞因子的最佳給藥方案,評(píng)估藥物療效及安全性。共納入93個(gè)重癥監(jiān)護(hù)中心274例嚴(yán)重膿毒癥、休克或呼吸衰竭患者,分為安慰劑組、低劑量 TAK-242 組[1.2mg/(kg·d)]、高劑量TAK-242組[2.4mg/(kg·d)]。遺憾的是,該研究發(fā)現(xiàn)無(wú)論低劑量組還是高劑量組均未抑制IL-6水平;28d全因死亡率高劑量組低于安慰劑組(17.4%vs 24.2%;P=0.26),但低劑量組與安慰劑組類似(22.0%vs 24.2%;P=0.73)。該研究結(jié)果表明TAK-242治療耐受性良好,但未能顯著提高生存率。由于研究第一階段觀察到IL-6水平無(wú)明顯下降即停止納入患者,研究對(duì)象數(shù)量相對(duì)較少,因此TAK-242能否改善人類的生存率尚無(wú)明確結(jié)論。未來(lái)需要大樣本、前瞻、隨機(jī)臨床試驗(yàn)確定TAK-242是否確實(shí)能提高膿毒性休克和呼吸衰竭患者的死亡率[25]。
依立托侖四鈉(E5564)E5564化學(xué)名稱3-O-癸基-2-脫氧-6-O-[2-脫氧-3-O-[(3R)-3-甲氧基癸基]-6-O-甲基-2-[(11Z)-1-氧代-11-十八烯基]氨基-4-O-磷?;?β-D-吡喃葡萄糖]-2-[(1,3-二氧代十四烷基)氨基]-α-D-吡喃葡萄糖 1-(二氫磷酸),分子式:C66H122N2O19P2.4Na,分子量1 401.59。LPS 由脂質(zhì)A、核心多糖和O抗原三部分組成,其中脂質(zhì)A為主要毒性成分,結(jié)構(gòu)保守。E5564是人工合成類球紅桿菌LPS脂質(zhì)A結(jié)構(gòu)類似物,直接與MD-2的疏水口袋結(jié)合,與脂質(zhì)A競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合同一位點(diǎn),從而防止TLR4二聚體形成和細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)[26,27]。
研究表明TLR4參與并介導(dǎo)腎臟缺血再灌注損傷(RIRI)過(guò)程[28]。Liu等[29]建立 SD 大鼠 RIRI模型予E5564治療,而對(duì)照組給予生理鹽水治療,觀察各組的腎功能情況、腎組織光鏡病理,并測(cè)定檢測(cè)腎組織炎癥因子趨化因子的表達(dá)。結(jié)果E5564可有效地抑制中多種炎癥因子(TNF-α、IL-1β、IL-6)的表達(dá),減輕腎組織的損傷程度。與RIRI類似,TLR4參與膿毒癥條件下AKI的炎癥反應(yīng),因此E5564同樣可以減輕膿毒癥腎臟損傷。
體外實(shí)驗(yàn)證實(shí),E5564可抑制LPS刺激的人類、小鼠、大鼠、豚鼠來(lái)源的單核巨噬細(xì)胞等,多種細(xì)胞產(chǎn)生 IL-1β、TNF-α、IL-6 和 IL-8等細(xì)胞因子[30]。
Ⅰ期臨床試驗(yàn)已證實(shí)E5564的安全性和耐受性[31]。一項(xiàng)前瞻隨機(jī)雙盲安慰劑對(duì)照的多中心,劑量增加的Ⅱ期臨床試驗(yàn),觀察E5564是否降低嚴(yán)重膿毒癥患者28d死亡率。共納入300例患者,分安慰劑組,低劑量組(45mg,2次/d,共6d),高劑量組(105mg,2次/d,共6d)。三組膿毒癥患者合并急性腎損傷比率分別為 21.9%,17.5%,20.2%。研究發(fā)現(xiàn)在APACHEⅡ評(píng)分高的危重患者高劑量治療組死亡率低于安慰劑組(33.3%vs 56.3%,P=0.105),表明E5564具有較好耐受性,在嚴(yán)重膿毒癥患者及預(yù)測(cè)高死亡率患者,高劑量E5564可降低死亡率[32]。一項(xiàng)關(guān)于國(guó)際性多中心嚴(yán)重膿毒癥患者靜脈注射105mg E5564的臨床Ⅲ期研究已經(jīng)結(jié)束,其結(jié)果及相關(guān)數(shù)據(jù)正在進(jìn)一步統(tǒng)計(jì)分析中(NCT00334828)。
小結(jié):TLR4在膿毒癥性AKI中發(fā)揮了重要的致病作用,TLR4信號(hào)通路可成為膿毒癥性AKI治療的新靶點(diǎn)。目前TLR4阻斷劑治療膿毒癥已經(jīng)進(jìn)入Ⅲ期臨床試驗(yàn),但是這些研究并未顯著改善患者的生存率,尚有待進(jìn)一步擴(kuò)大樣本以證實(shí)其用法和臨床療效。
1 Marshall JC,Vincent JL,Guyatt G,et al.Outcome measures for clinical research in sepsis:a report of the 2nd Cambridge Colloquium of the International Sepsis Forum.Crit Care Med,2005,33(8):1708-1716.
2 Russell JA.Management of sepsis.N Engl J Med,2006,355(16):1699-1713.
3 Uchino S,Kellum JA,Bellomo R,et al.Acute renal failure in critically ill patients:a multinational,multicenter study.JAMA,2005,294(7):813-818.
4 Bellomo R,Chapman M,F(xiàn)infer S,et al.Low-dose dopamine in patients with early renal dysfunction:a placebo-controlled randomised trial.Australian and New Zealand Intensive Care Society(ANZICS)Clinical Trials Group.Lancet,2000,356(9248):2139-2143.
5 BougléA,Duranteau J.Pathophysiology of sepsis-induced acute kidney injury:the role of global renal blood flow and renal vascular resistance.Contrib Nephrol,2011,174:89-97.
6 Doi K,Leelahavanichkul A,Yuen PS,et al.Animal models of sepsis and sepsis-induced kidney injury.J Clin Invest,2009,119(10):2868-2878.
7 Hotchkiss RS,Karl IE.The pathophysiology and treatment of sepsis.N Engl JMed,2003,348(2):138-150.
8 Granfeldt A,Ebdrup L,T?nnesen E,et al.Renal cytokine profile in an endotoxemic porcine model.Acta Anaesthesiol Scand,2008,52(5):614-620.
9 Cunningham PN,Dyanov HM,Park P,et al.Acute renal failure in endotoxemia is caused by TNF acting directly on TNF receptor-1 in kidney.J Immunol,2002,168(11):5817-5823.
10 Knotek M,Rogachev B,Wang W,et al.Endotoxemic renal failure in mice:Role of tumor necrosis factor independent of inducible nitric oxide synthase.Kidney Int,2001,59(6):2243-2249.
11 Thijs A,Thijs LG.Pathogenesis of renal failure in sepsis.Kidney Int Suppl,1998,66:S34-37.
12 Messmer UK,Briner VA,Pfeilschifter J.Tumor necrosis factor-alpha and lipopolysaccharide induce apoptotic cell death in bovine glomerular endothelial cells.Kidney Int,1999,55(6):2322-2337.
13 Tsujimoto H,Ono S,Efron PA,et al.Role of Toll-like receptors in the development of sepsis.Shock,2008,29(3):315-321.
14 Barochia A,Solomon S,Cui X,et al.Eritoran tetrasodium(E5564)treatment for sepsis:review of preclinical and clinical studies.Expert Opin Drug Metab Toxicol,2011,7(4):479-494.
15 Akira S,Takeda K,Kaisho T.Toll-like receptors:critical proteins linking innate and acquired immunity.Nat Immunol,2001,2(8):675-680.
16 Wolfs TG,Buurman WA,van Schadewijk A,et al.In vivo expression of Toll-like receptor 2 and 4 by renal epithelial cells:IFN-gamma and TNF-alpha mediated up-regulation during inflammation.J Immunol,2002,168(3):1286-1293.
17 El-Achkar TM,Huang X,Plotkin Z,et al.Sepsis induces changes in the expression and distribution of Toll-like receptor 4 in the rat kidney.Am J Physiol Renal Physiol,2006,290(5):F1034-1043.
18 Cunningham PN,Wang Y,Guo R,et al.Role of Toll-like receptor 4 in endotoxin-induced acute renal failure.J Immunol,2004,172(4):2629-2635.
19 El-Achkar TM,Hosein M,Dagher PC.Pathways of renal injury in systemic gram-negative sepsis.Eur JClin Invest,2008,38(Suppl 2):39-44.
20 Takashima K,Matsunaga N,Yoshimatsu M,et al.Analysis of binding site for the novel small-molecule TLR4 signal transduction inhibitor TAK-242 and its therapeutic effect on mouse sepsis model.Br J Pharmacol,2009,157(7):1250-1262.
21 Ii M,Matsunaga N,Hazeki K,et al.A novel cyclohexene derivative,ethyl(6R)-6-[N-(2-Chloro-4-fluorophenyl)sulfamoyl] cyclohex-1-ene-1-carboxylate(TAK-242),selectively inhibits toll-like receptor 4-mediated cytokine production through suppression of intracellular signaling.Mol Pharmacol,2006,69(4):1288-1295.
22 Matsunaga N,Tsuchimori N,Matsumoto T,et al.TAK-242(resatorvid),a small-molecule inhibitor of Toll-like receptor(TLR)4 signaling,binds selectively to TLR4 and interferes with interactions between TLR4 and its adaptor molecules.Mol Pharmacol,2011,79(1):34-41.
23 Fenhammar J,Rundgren M,F(xiàn)orestier J,et al.Toll-like receptor 4 inhibitor TAK-242 attenuates acute kidney injury in endotoxemic sheep.Anesthesiology,2011,114(5):1130-1137.
24 Wittebole X,Castanares-Zapatero D,Laterre PF.Toll-like receptor 4 modulation as a strategy to treat sepsis.Mediators inflamm,2010,2010:568396.
25 Rice TW,Wheeler AP,Bernard GR,et al.A randomized,doubleblind,placebo-controlled trial of TAK-242 for the treatment of severe sepsis.Crit Care Med,2010,38(8):1685-1694.
26 Visintin A,Halmen KA,Latz E,et al.Pharmacological inhibition of endotoxin responses is achieved by targeting the TLR4 coreceptor,MD-2.JImmunol,2005,175(10):6465-6472.
27 Kim HM,Park BS,Kim JI,et al.Crystal structure of the TLR4-MD-2 complex with bound endotoxin antagonist Eritoran.Cell,2007,130(5):906-917.
28 Pulskens WP,Teske GJ,Butter LM,et al.Toll-like receptor-4 coordinates the innate immune response of the kidney to renal ischemia/reperfusion injury.PLoSOne,2008,3(10):e3596.
29 Liu M,Gu M,Xu D,et al.Protective effects of Toll-like receptor 4 inhibitor eritoran on renal ischemia-reperfusion injury.Transplant Proc,2010,42(5):1539-1544.
30 Mullarkey M,Rose JR,Bristol J,et al.Inhibition of endotoxin response by e5564,a novel Toll-like receptor 4-directed endotoxin antagonist.J Pharmacol Exp Ther,2003,304(3):1093-1102.
31 Wong YN,Rossignol D,Rose JR,et al.Safety,pharmacokinetics,and pharmacodynamics of E5564,a lipid A antagonist,during an ascending single-dose clinical study.J Clin Pharmacol,2003,43(7):735-742.
32 Tidswell M,Tillis W,Larosa SP,et al.Phase 2 trial of eritoran tetrasodium(E5564),a toll-like receptor 4 antagonist,in patients with severe sepsis.Crit Care Med,2010,38(1):72-83.