丁治國 何 蓓 陳曉珩 汪唐順 高 翔 李乃卿
1.北京中醫(yī)藥大學(xué)東直門醫(yī)院,北京 100700;2.北京中醫(yī)藥大學(xué)第三附屬醫(yī)院,北京 100029
血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)是特異性血管內(nèi)皮細(xì)胞有絲分裂素,與受體結(jié)合后促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞分裂、增殖、遷移,加速形成新生血管。研究表明,VEGF及其受體在肝癌癌組織中較正常肝組織呈過表達(dá),并與肝癌的生長、轉(zhuǎn)移、復(fù)發(fā)及治療密切相關(guān)[1-3]。因此,VEGF已成為目前腫瘤抗血管治療的熱點(diǎn)。筆者前期研究發(fā)現(xiàn)課題組原研藥物參芪扶正注射液可顯著抑制人肝癌細(xì)胞MHCC97L的生長、侵襲能力,并能下調(diào)VEGF基因表達(dá)。為進(jìn)一步明確VEGF基因“沉默”時藥物作用的變化,本研究構(gòu)建了能轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生VEGF shRNA的質(zhì)粒,進(jìn)而構(gòu)建并包裝產(chǎn)生高滴度的慢病毒RNAi載體,并實(shí)現(xiàn)其在人肝癌細(xì)胞MHCC97L中表達(dá),抑制MHCC97L細(xì)胞中VEGF基因的表達(dá),為進(jìn)一步深入研究VEGF基因與參芪扶正注射液藥物效果的關(guān)系奠定基礎(chǔ)。
Platimum HIFI Taq Polymerase高保真擴(kuò)增酶、Trizol Reagent、5×First-Strand buffer、0.1 mol/L dTT、SYBR Green I、Rnase out、oligo dT/Random primer/特異性引物、10×PCR Buffer、Mg2+(50 mmol/L)、Platinum Taq DNA Polymerase、100 mmol/L
dNTPs(購自美國Invitrogen公司);T載體、plenti6.3MIR載體、293細(xì)胞、DH5α感受態(tài)細(xì)胞、ddwater(購自上海諾百生物科技有限公司);T4 Ligase(購自加拿大NEB公司);DMEM培養(yǎng)基(購自美國HYCLONE公司);FBS(購自法國biowest公司);24孔和6孔細(xì)胞培養(yǎng)板(購自美國Corning公司);熒光顯微鏡(購自日本Olympus公司),熒光定量PCR儀(購自美國Bio Rad公司)。
1.2.1 載體的構(gòu)建和鑒定 針對人類VEGF基因mRNA序列(NCBI GenBank,基因編號:AF022375),利用 invitrogen 公司BLOCK IT RNAi DESIGNER工具設(shè)計干擾序列如下,200-F:TGCTGTGAAGATGTACTCGATCTCATGTTTTGGCCACTGACTGACATGAGATCGTACATCTTCA;200-R:TGCTGTGAAGATG TACTCGATCTCATGTTTTGGCCACTGACTGACATGAGATCGTACATCTTCA; Negative-F:TGCTGAAATGTACTGCGCGTGGAGACGTTTTGGCCACTGACTGACGTCTCCACGCAGTACATTT;Negative-R:CCTGAAATGTACTGCGTGGAGACGTCAGTCAGTGGCCAAAACGTCTCCACGCGCAGTACATTTC。將 2對 oligo(包括陰性對照鏈)退火成雙鏈。然后連接線性化的plenti6.3-MIR載體,構(gòu)建2個miRNA慢病毒載體質(zhì)粒,并轉(zhuǎn)化至感受態(tài)細(xì)胞DH5α。挑選陽性克隆,用載體通用引物進(jìn)行菌落PCR篩選。篩選得到的陽性克隆進(jìn)行測序,以驗證重組克隆中插入片段序列是否與設(shè)計的oligo序列一致。
1.2.2 RNAi慢病毒的包裝 取對數(shù)生長期細(xì)胞293T細(xì)胞,按照每個10 cm的培養(yǎng)皿6×106個細(xì)胞數(shù)接種于培養(yǎng)皿中。轉(zhuǎn)染前2 h將細(xì)胞培養(yǎng)基更換為Opti-MEM培養(yǎng)液;取9 μg Packaging Mix和 3 μg慢病毒表達(dá)質(zhì)粒加入 1.5 mL Opti-MEM(經(jīng) 37℃預(yù)熱)中混勻;取 36 μL lipofectamine2000 加入1.5 mL Opti-MEM中混勻;混合質(zhì)粒溶液和lipofectamine 2000稀釋液,置室溫20 min;將3 mL質(zhì)粒脂質(zhì)體復(fù)合物加入到細(xì)胞培養(yǎng)皿中混勻,置37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱中孵育6 h后,更換完全培養(yǎng)液DMEM+10%FBS;48 h后收集細(xì)胞培養(yǎng)上清,3 000 r/min離心10 min,去除細(xì)胞和碎片,并用0.45 μm的濾器過濾;將病毒原液在50 000 g下超速離心2 h,去除上清,重懸于200 μL DMEM培養(yǎng)液中,分裝小管,放置于-80℃下備用。
1.2.3 孔稀釋法測定病毒滴度 測定前1 d,對293T細(xì)胞進(jìn)行傳代,96孔板上每孔加入約8 000個細(xì)胞,體積100 μL。將病毒儲存液按梯度稀釋(每50微升中含慢病毒液1×10-3~1×10-8mL),吸去96孔板中原先的培養(yǎng)基,然后在每孔中加入50 μL慢病毒稀釋用培養(yǎng)基,混勻各管慢病毒稀釋液,再各取50 μL慢病毒稀釋液加入到每孔細(xì)胞中,每個稀釋度3個重復(fù)。繼續(xù)放入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。48 h后,每孔加入100 μL新鮮培養(yǎng)液。5~6 d后觀察熒光表達(dá),正常情況下,熒光細(xì)胞數(shù)隨稀釋倍數(shù)增加而相應(yīng)減少,計數(shù)最大稀釋倍數(shù)孔中的帶有熒光的細(xì)胞個數(shù),病毒滴度(TU/mL)=(熒光細(xì)胞個數(shù)×轉(zhuǎn)染時細(xì)胞數(shù)/100×每孔加入病毒稀釋液體積)×1/稀釋濃度。
1.2.4 熒光定量PCR檢測VEGF表達(dá) 以MOI值100浸染人肝癌MHCC97L細(xì)胞48 h后收集細(xì)胞。按Trizol裂解液說明書進(jìn)行細(xì)胞RNA的抽提;按照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄:取 1 μg RNA,用 oligodt18 引物,42℃ 60 min,70℃ 5 min進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄。VEGF上游引物 5’-ACTGCCATCCAATCGA GACCC-3’,下游引物 5’-TGAGGTTTGATCCGCATAATC-3’。內(nèi)對照β-Actin上游引物5’-ACTCTTCCAGCCTTCCTTCC-3’,下游引物5’-GTACTTGCGCTCAGGAGGAG-3’。按實(shí)時PCR試劑盒說明配制反應(yīng)體系,反應(yīng)置于熒光定量PCR儀中,設(shè)定程序:預(yù)變性 95℃ 120 s;95℃ 10 s,60℃ 30 s,70℃ 45 s,40個循環(huán);熒光信號實(shí)時檢測。以MHCC97-空白組細(xì)胞為對照,采用 2-△△CT(CT 代表循環(huán)閾值)法計算相對定量。
測序結(jié)果證實(shí)oligo已正確連接入plenti6.3-MIR,序列與預(yù)期序列完全一致(圖1)。
圖1 oligo連接plenti6.3-MIR測序(部分)
plenti6.3-MIG-200轉(zhuǎn)染實(shí)驗24 h后,在熒光顯微鏡下(×100)同一視野的熒光和可見光照片對比,可見大部分細(xì)胞發(fā)出熒光(圖2),說明轉(zhuǎn)染成功。
圖2 在熒光顯微鏡下觀察RNAi慢病毒的包裝(×100)
根據(jù)熒光顯微鏡和普通顯微鏡(×100)下同時觀察plenti6.3-MIG-200病毒感染293T細(xì)胞,在熒光顯微鏡下,在加入10-8mL病毒原液的孔中觀察到表達(dá)綠色熒光的細(xì)胞分別為37、25和 35 個, 則病毒的滴度為:[(37+25+35)TU/3]/1×10-8mL=3.23×109TU/mL。
RNAi慢病毒對人肝癌MHCC97L細(xì)胞的浸染率大于90%(圖3),熒光定量PCR數(shù)據(jù)結(jié)果顯示:MHCC97-200組RNAi慢病毒對VEGF基因的干擾效率達(dá)到72.2%(表1)。
圖3 在熒光顯微鏡下觀察plenti6.3-mir-200浸染48 h后效果
表1 熒光定量PCR檢測RNAi慢病毒對VEGF基因的干擾效率
RNAi是一種轉(zhuǎn)錄后基因沉默現(xiàn)象,具有序列特異性的特點(diǎn),shRNA可被切割為小干擾性RNA(small interfering RNAs,siRNA),大小一般為21~23個核苷酸,以siRNA作為引導(dǎo)序列,與其具有完全互補(bǔ)序列的同源mRNA,具有特異性抑制目的基因表達(dá)的功能,并且新產(chǎn)生的siRNA可形成沉默復(fù)合物,繼續(xù)對mRNA降解,從而產(chǎn)生級聯(lián)放大效應(yīng)[4-5]。由于RNAi技術(shù)抑制目的基因表達(dá)的效果確切,并且具有穿透性高和級聯(lián)式放大效應(yīng)等特點(diǎn),因而在基因功能研究中具有很好的應(yīng)用前景[6]。
慢病毒載體是一種新的病毒載體系統(tǒng),是在HIV-Ⅰ病毒的改造基礎(chǔ)上形成的,其能夠高效率地向動物或人的細(xì)胞系中導(dǎo)入目的基因,慢病毒載體具有明顯的優(yōu)點(diǎn),其介導(dǎo)的目的基因可完全整合到宿主細(xì)胞的基因組中,發(fā)揮基因表達(dá)或沉默作用持續(xù)并且穩(wěn)定,并且不隨著細(xì)胞的傳代而減弱,從而實(shí)現(xiàn)目的基因的長期表達(dá)[7],這一點(diǎn)與目前常見的腺病毒載體、腺相關(guān)病毒載體和傳統(tǒng)逆轉(zhuǎn)錄病毒載體相比具有顯著優(yōu)勢。當(dāng)慢病毒載體用于RNAi研究時,不但可以高效抑制目的基因的表達(dá),同時還可以充分發(fā)揮其作為病毒載體的自身優(yōu)勢,是基因功能研究中的有力工具[8-10]。
筆者前期研究發(fā)現(xiàn)課題組的原研藥物——參芪扶正注射液,可顯著抑制人肝癌細(xì)胞MHCC97L的生長、侵襲能力,并能下調(diào)VEGF基因表達(dá),為進(jìn)一步明確VEGF基因是否是藥物發(fā)揮抑瘤作用的關(guān)鍵,需要在體內(nèi)外實(shí)驗中實(shí)現(xiàn)VEGF基因在人肝癌細(xì)胞MHCC97L中“沉默”,以便在VEGF基因沉默狀態(tài)下進(jìn)一步研究藥物抑瘤作用的變化。本研究成功構(gòu)建了能轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生VEGF shRNA的質(zhì)粒,進(jìn)而構(gòu)建并包裝產(chǎn)生高滴度的慢病毒RNAi載體,并有效整合至人肝癌MHCC97L細(xì)胞中,顯著抑制了MHCC97L細(xì)胞中VEGF基因的表達(dá),抑制率達(dá)72.2%,這將為今后從體內(nèi)、體外系統(tǒng)研究VEGF沉默對參芪扶正注射液抑瘤作用變化的影響提供可靠的技術(shù)平臺。
[1]Suzuki H,Seto K,Shinoda Y,et al.Paracrine upregulation of VEGF receptor mRNA in endothelial cells by hypoxia-exposed HepG2 cells[J].Am J Physiol,1999,276(1 Pt 1):92-97.
[2]Zhou S,Tan C,Dai Z,et al.Tacrolimus Enhances the invasion potential of hepatocellular carcinoma cells and promotes lymphatic metastasis in a rat model of hepatocellular carcinoma:involvement of vascular endothelial growth factor-C [J].Transplantation Proceedings,2011,43(7):2747-2754.
[3]Inoue K,Torimura T,Nakamura T,et al.Vandetanib,an inhibitor of VEGF receptor-2 and EGF receptor,suppresses tumor development and improves prognosis of liver cancer in mice[J].Clin Cancer Res,2012,18(14):3924-3933.
[4]Hammond SM,Bernstein E,Beach D,et al.An RNA-directed nuclease mediates post-transcriptional gene silencing in Drosophila cells[J].Nature,2000,404(6775):293-296.
[5]Brummelkamp TR,Bernards R,Agami R.A system for stable expression of short interfering RNAs in mammalian cells[J].Science,2002,296(5567):550-553.
[6]Pushparaj PN,Aarthi JJ,Manikandan J,et al.siRNA,miRNA,and shRNA:in vivo applications[J].J Dent Res,2008,87(11):992-1003.
[7]Heilbronn R,Weger S.Viral vectors for gene transfer:current status of gene therapeutics[J].Handb Exp Pharmacol,2010,(197):143-170.
[8]Leite LH,Sharma NM,Bafna S,et al.Construction and validation of lentiviral vector carrying rat neuronal nitric oxide synthase in vitro and in vivo[J].J Neurosci Methods,2012,211(1):77-83.
[9]Liu X,Tang Z,Zhang Y,et al.Lentivirally overexpressed T-bet regulates T-helper cell lineage commitment in chronic hepatitis B patients[J].Mol Med Report,2012,6(2):361-366.
[10]Chang SH,Chung YS,Hwang SK.Lentiviral vector-mediated shRNA against AIMP2-DX2 suppresses lung cancer cell growth through blocking glucose uptake[J].Mol Cells,2012,33(6):553-562.