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    環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)快速檢測(cè)豬細(xì)小病毒的試驗(yàn)

    2011-08-07 10:10:04黃書(shū)林李佳禾張躍偉陳會(huì)玲吳文學(xué)
    中國(guó)獸醫(yī)雜志 2011年10期
    關(guān)鍵詞:細(xì)小基因組質(zhì)粒

    黃書(shū)林,付 萍,李佳禾,張躍偉,蔣 菲,張 侃,陳會(huì)玲,吳文學(xué)

    (1.中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,北京 海淀 100193;2.中國(guó)牧工商(集團(tuán))總公司中牧研究院,北京 豐臺(tái) 100070)

    豬細(xì)小病毒病是由豬細(xì)小病毒(PPV)感染引起母豬繁殖障礙的重要病原體之一,主要引起母豬發(fā)生流產(chǎn)、死胎、畸形胎、木乃伊胎及不孕等。近年來(lái),豬細(xì)小病毒病有上升的趨勢(shì),并且該病常常與豬圓環(huán)病毒2型、豬繁殖與呼吸綜合征病毒,偽狂犬病病毒等發(fā)生混合感染,給養(yǎng)豬業(yè)造成巨大的損失[1-2]。

    環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)作為一種新興的核酸擴(kuò)增技術(shù)[3],具有高特異性、高敏感性、快速、簡(jiǎn)便等優(yōu)點(diǎn)[4-6]。本試驗(yàn)針對(duì)豬細(xì)小病毒NS-1基因設(shè)計(jì)引物,建立了豬細(xì)小病毒LAMP檢測(cè)方法。

    1 材料與方法

    1.1 毒株及病料來(lái)源 豬細(xì)小病毒7909株、NADL-2株,購(gòu)自中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所;豬繁殖與呼吸綜合征病毒標(biāo)準(zhǔn)株(VR-2332)、豬偽狂犬病病毒Bartha-K61株、豬瘟病毒(C株)、弓形蟲(chóng)(RH株)的核酸樣品,由本實(shí)驗(yàn)室制備保存。疑似PPV感染流產(chǎn)胎兒組織病料采自北京周邊地區(qū)、山東濰坊等地規(guī)?;i場(chǎng)。

    1.2 方法

    1.2.1 核酸DNA的提取 采用基因組DNA提取試劑盒(TransGen)提取PPV 7909株、NADL-2株的細(xì)胞培養(yǎng)物和組織樣本DNA,于-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.2 LAMP引物的設(shè)計(jì) 在GenBank下載了NS-1基因全長(zhǎng)序列,利用生物學(xué)軟件DNAStar的MegAlign軟件進(jìn)行同源性比對(duì)分析,選取NS-1基因同源性高即保守區(qū)域,使用在線(xiàn)LAMP引物設(shè)計(jì)軟件設(shè)計(jì)并篩選出PPV特異的6條引物(表1及圖1)。

    表1 所設(shè)計(jì)的引物

    圖1 豬細(xì)小病毒LAMP各引物的名稱(chēng)與順序和各引物在基因組中對(duì)應(yīng)的位置

    1.2.3 LAMP反應(yīng)的建立 參照日本榮研株式會(huì)社生產(chǎn)LAMP試劑盒,優(yōu)化后的25μL反應(yīng)體系為:4μL Tris-HCl(125mmol/L),2μL MgSO4(100mmol/L),2μL KCl(125mmol/L),2μL(NH4)2SO4(125mmol/L),0.4μL Betaine(50 mol/L),0.025μL 0.2%Tween 20,dNTPs(100 mmol/L)各0.3μL,12UBst DNA 聚合酶(New England Biolabs),此外,體系中引物 FIP(40 mmol/L)、BIP(40mmol/L)、F3(5mmol/L)、B3(5 mmol/L)、LF(20mmol/L)、LB(20mmol/L)各1 μL,2μL模板DNA,加雙蒸水至25μL。

    反應(yīng)通過(guò)LA-200實(shí)時(shí)濁度儀(Teramecs,Japan)進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)。反應(yīng)產(chǎn)物若經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳呈現(xiàn)典型“梯形”條帶,則判定為陽(yáng)性。置于LA-200實(shí)時(shí)濁度儀(日本)中63℃恒溫反應(yīng),可實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)反應(yīng)液的濁度變化。以反應(yīng)液濁度達(dá)到0.1判為陽(yáng)性。反應(yīng)45min結(jié)束,以檢量曲線(xiàn)的形式展示反應(yīng)結(jié)果。同時(shí),反應(yīng)產(chǎn)物還通過(guò)2%葡萄糖瓊脂凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)。

    1.2.4 PCR反應(yīng) 以豬細(xì)小病毒NS-1基因(Gen-Bank登錄號(hào):NC-001718)為靶序列設(shè)計(jì)PCR引物。上游引物:5′-TAGGATGCGAGGAAAGAC-3′,下游引物:5′-GGAGTTAAGTGCAGGTTG-3′,擴(kuò)增產(chǎn)物大小為400bp。25μL PCR反應(yīng)體系,包括12.5μL 2xTaq PCR SuperMix(TransGen),上下游引物(25μmol/L)各0.6μL,2μL模板DNA,加雙蒸水至25μL。反應(yīng)條件為94℃預(yù)變性5min,之后94℃變性45s,54℃退火30s,72℃延伸45s,共35個(gè)循環(huán),最后72℃延伸10min。通過(guò)1%瓊脂糖凝膠電泳分析反應(yīng)產(chǎn)物。

    1.2.5 LAMP與PCR的敏感性 本試驗(yàn)針對(duì)LAMP和PCR檢測(cè)的共同擴(kuò)增區(qū)域序列構(gòu)建重組質(zhì)粒。以豬細(xì)小病毒NADL-2株DNA為模板,使用上述1.2.4中的PCR方法進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng)。PCR反應(yīng)產(chǎn)物(400bp)連接于pEASY-T1Cloning Vector載體(TransGen),構(gòu)建含有目標(biāo)片段的重組質(zhì)粒,經(jīng)分光光度計(jì)法測(cè)定并計(jì)算質(zhì)粒的拷貝數(shù)濃度,進(jìn)行10倍連續(xù)倍比稀釋?zhuān)官|(zhì)粒在反應(yīng)體系中的分布為106~100個(gè)拷貝/25μL,取一定量質(zhì)粒,分別進(jìn)行LAMP和PCR檢測(cè)。

    1.2.6 LAMP與PCR特異性 將豬繁殖與呼吸綜合征病毒標(biāo)準(zhǔn)株(VR-2332)、豬偽狂犬病病毒Bartha-K61株、豬瘟病毒(豬瘟兔化弱毒株,C株)和弓形蟲(chóng)(RH株)作為模板,分別進(jìn)行LAMP和PCR方法的特異性檢測(cè)。

    1.2.7 熒光指示劑的應(yīng)用[4]將反應(yīng)體系中加入含有0.625mmol/L鈣黃綠素和 Mn2+3.75mmol/L的熒光指示劑2μL。將105.0TCID50/100μL的PPV 7909株細(xì)胞病毒液提取全基因組DNA作為模板,經(jīng)63℃恒溫反應(yīng)45min,反應(yīng)結(jié)束后觀察溶液顏色變化。

    1.2.8 臨床樣本檢測(cè) 采集疑似病例的流產(chǎn)胎兒組織149份,-20℃保存。稱(chēng)取適量組織樣本按w/v為1∶1加入0.9%氯化鈉溶液,經(jīng)研磨后,提取組織樣本全基因組DNA。用已建立的LAMP和PCR方法檢測(cè),比較兩種方法的陽(yáng)性檢出率。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 LAMP和PCR的敏感性 設(shè)定反應(yīng)產(chǎn)物濁度值超過(guò)0.1時(shí),即作為陽(yáng)性判定。敏感性試驗(yàn)顯示,LAMP方法能在60min內(nèi)檢測(cè)出10個(gè)拷貝質(zhì)粒(圖2A),PCR方法僅能檢測(cè)到103拷貝質(zhì)粒(圖2B)。表明建立的LAMP方法的檢測(cè)極限高于PCR方法100倍。

    2.2 LAMP與PCR的特異性 利用2株豬細(xì)小病毒和其他4株病原來(lái)檢測(cè)LAMP和PCR方法的特異性。結(jié)果顯示,兩種方法能特異性擴(kuò)增豬細(xì)小病毒兩種毒株,而其他病原均無(wú)特異性擴(kuò)增(圖3)。表明兩種方法都有很好的特異性。

    2.3 熒光指示劑的應(yīng)用 顯色試驗(yàn)結(jié)果表明,在反應(yīng)體系中加入含有鈣黃綠素與Mn2+的作為熒光指示劑,陽(yáng)性樣品由棕黃色變?yōu)榱辆G色,反應(yīng)前后顏色變化及陰陽(yáng)性對(duì)比明顯,說(shuō)明該熒光指示劑可用于判定LAMP反應(yīng)結(jié)果(圖4)。

    圖4 熒光指示劑在LAMP的可視化應(yīng)用

    2.4 臨床樣本的檢測(cè) 用LAMP和PCR方法檢測(cè)149份流產(chǎn)胎兒組織樣本DNA。結(jié)果(表2)表明,LAMP方法陽(yáng)性檢出率22.1%(33/149),高于PCR方法的陽(yáng)性檢出率18.1%(27/149)。

    表2 臨床檢測(cè)結(jié)果(n=149)

    3 討論

    目前已有常規(guī)PCR、多重PCR、Real-time PCR和Nest-PCR等方法檢測(cè)細(xì)小病毒,且多選擇高度保守的NS-1基因作為檢測(cè)的靶基因[7-8]。在本文中,我們同樣選取了該基因上的保守區(qū)域設(shè)計(jì)了數(shù)套引物,并通過(guò)陰性和陽(yáng)性篩選,獲得1套高效、特異LAMP引物,建立了最佳反應(yīng)體系。

    試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),該方法能在63℃的恒溫反應(yīng)45min即可判定結(jié)果。敏感性試驗(yàn)表明,LAMP方法最低能檢出10個(gè)拷貝數(shù)的PPV基因組,相當(dāng)于0.1 TCID50/100μL,比常規(guī)PCR方法高100倍,與先前報(bào)道的該病原的LAMP方法靈敏度相當(dāng)[8-9]。對(duì)多種病原基因組進(jìn)行檢測(cè),無(wú)交叉反應(yīng),顯示良好的特異性。此外,通過(guò)對(duì)149份臨床樣本檢測(cè),結(jié)果證明,LAMP的陽(yáng)性檢出率(22.1%)要高于PCR方法(18.1%),也進(jìn)一步證明了LAMP具有更高的靈敏度。因此,可確定本試驗(yàn)建立的LAMP方法適用于PPV檢測(cè)的高敏感性和特異性的方法。

    為了避免氣溶膠造成假陽(yáng)性的問(wèn)題,我們通過(guò)在反應(yīng)前體系中加入鈣黃綠素,反應(yīng)結(jié)束后肉眼觀察其顏色變化即可快速判定結(jié)果,這使得LAMP方法在臨床檢驗(yàn)上具有廣闊的應(yīng)用前景,為早期診斷、防制和凈化提供了一種新方法。

    [1]Woodbine K A,Medley G F,Slevin J,et al.Spatiotemporal patterns and risks of herd breakdowns in pigs with postweaning multisystemicwasting syndrome[J].Vet Rec,2007,160:751-762.

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    [4]張躍偉,李旭妮,郭盼盼,等.熒光顯色在環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(LAMP)檢測(cè)豬繁殖與呼吸綜合征病毒的應(yīng)用[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2010,18(3):508-513.

    [5]李佳禾,李一婧,付萍,等.豬胸膜肺炎放線(xiàn)桿菌環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)方法的建立與應(yīng)用[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2009,17(6):948-953.

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