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    地榆微波滅菌的研究探討

    2011-07-25 06:37:24王彩英
    亞太傳統(tǒng)醫(yī)藥 2011年12期
    關(guān)鍵詞:膽鹽試液瓊脂

    王彩英

    (溧陽市人民醫(yī)院,江蘇 溧陽 213300)

    本品為薔薇科植物地榆Sanguisorba officinalis L.或長葉地榆Sanguisorba officinalis L.var.longifolia(Bert)Yu et Li的干燥根,前者主產(chǎn)南北各地,后者習(xí)稱“綿地榆”[1],主產(chǎn)于安徽、浙江、江蘇、江西等地。始載于《神農(nóng)本草經(jīng)》,被列為中品。其性微寒,味苦、酸、澀,歸肝、大腸經(jīng),具有涼血止血、解毒斂瘡的功效,用于便血痔血、水火燙傷、血痢崩漏、癰腫瘡毒等癥。地榆根中含有多種苷類及酚酸類化合物,而鞣質(zhì)為地榆止血的主要成分。近年來,有關(guān)地榆皂苷及黃酮類成分的研究漸多,亦發(fā)現(xiàn)了一些新的藥理作用,如抗氧化、抗癌、增強(qiáng)免疫等,這些都有助于開辟地榆的臨床新用途。地榆在試管內(nèi)對(duì)金黃色葡萄球菌、乙型溶血性鏈球菌、肺炎球菌、腦膜炎球菌以及白喉、痢疾、大腸、傷寒、副傷寒、綠膿、人型結(jié)核等桿菌都有抑制作用,對(duì)某些致病真菌也有不同程度的抑制作用[2]。本文旨在通過薄膜過濾法[3],消除地榆抗菌成分對(duì)微波滅菌效果的結(jié)果觀察,結(jié)合姚遠(yuǎn)[4]、應(yīng)月青[5]、梁霞[6]等人的文獻(xiàn)綜述,論證微波滅菌對(duì)于醫(yī)院制劑原材料滅菌的可行性,并通過多次實(shí)驗(yàn)尋求最佳滅菌效果所需要的各項(xiàng)條件。

    1 試藥與樣品

    1.1 藥材

    地榆:購于溧陽市醫(yī)藥公司,產(chǎn)品批號(hào):2010080,安徽海鑫中藥飲片有限公司出品。

    1.2 儀器

    微波滅菌機(jī):WG-5,5000W (山東省青州市精誠醫(yī)藥裝備制造有限公司);300g搖擺式高速萬能粉粹機(jī):DFY-300,1000W(溫嶺市林大機(jī)械有限公司);馬頭牌JYT-5架盤藥物天平(上海光正醫(yī)療儀器有限公司);電熱恒溫干燥箱:G2X-DH·400-BS-Ⅱ,800W (上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠);電熱恒溫培養(yǎng)箱:HH·BII·420-BY-Ⅱ,400W (上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠);霉菌培養(yǎng)箱:MJ-160B-Ⅱ,200W(上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠);立式滅菌機(jī):LMQ·C51L,1200W(山東新華器械醫(yī)療股份有限公司);菌落計(jì)數(shù)器:XK97-A(姜堰市新康醫(yī)療器械有限公司)。

    1.3 試液、稀釋劑以及培養(yǎng)基

    pH7.0無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液;營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基;玫瑰紅鈉瓊脂培養(yǎng)基;酵母浸出粉胨葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基;膽鹽乳糖增菌液;膽鹽乳糖發(fā)酵培養(yǎng)基;MUG培養(yǎng)基;營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基;改良馬丁培養(yǎng)基;改良馬丁瓊脂斜面培養(yǎng)基。

    1.5 實(shí)驗(yàn)用菌株

    大腸埃希菌 (Escherichia coli):[CMCC(B)44102];金黃色葡萄球菌(StapHylococcus aureus):[CMCC(B)26003];枯草芽孢桿菌 (Bacillus subtilis):[CMCC(B)63501];白色念珠菌(Candida albicans):[CMCC(F)98001];黑曲霉(Aspergillus niger):[CMCC(F)98003]。

    2 實(shí)驗(yàn)方法

    2.1 微波滅菌

    在無菌條件下,取地榆飲片6份,3份用純化水噴淋至微濕,另3份不經(jīng)噴淋直接置于干燥板上滅菌,在同樣的環(huán)境下微波滅菌,做三組平行試驗(yàn)。取地榆飲片2份,一份打粉后置于微波滅菌機(jī)中滅菌10min,一份原片置于微波滅菌機(jī)中滅菌12min。分別多點(diǎn)取樣,留用觀察。在無菌環(huán)境下,先用純化水將所需實(shí)驗(yàn)用地榆飲片淋濕,使其達(dá)到一定含水量,以保證最佳滅菌效果[7]。將噴淋的地榆飲片均勻鋪于微波滅菌板上,厚度約0.5cm。調(diào)節(jié)微波滅菌機(jī)滅菌波段,我們選擇PP01機(jī)組,使用微波滅菌機(jī)總功率的1/3,滅菌溫度控制在75℃~85℃,分別滅菌7、8、9、10、11、12、13、14、15、16min。

    2.2 供試品制備

    將滅菌后的地榆飲片置于300g搖擺式高速萬能粉粹機(jī)中粉碎成細(xì)粉。取樣品適量,放于無菌一次性培養(yǎng)皿中備用。

    2.3 無菌檢查方法驗(yàn)證

    2.3.1 試驗(yàn)菌種及菌液制備

    取各菌濃培養(yǎng)液,按1mL→9mL pH7.0無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液的10倍稀釋法,制成含菌50~100cfu/mL的供試菌液。

    2.3.2 薄膜過濾法驗(yàn)證

    ①試驗(yàn)組:將規(guī)定量的地榆供試品按薄膜過濾法過濾,沖洗,在最后一次沖洗液中加入小于100cfu的試驗(yàn)菌,過濾,取出濾膜接種至改良馬丁培養(yǎng)基中;②對(duì)照組:另取一裝有同體積培養(yǎng)基的容器,加入等量試驗(yàn)菌,作為對(duì)照。按規(guī)定培養(yǎng)3~5d,各試驗(yàn)菌同法操作。

    結(jié)果判斷:使用薄膜過濾法的供試品容器中的試驗(yàn)菌生長良好,則供試品地榆粉末的該檢驗(yàn)量在該檢驗(yàn)條件下無抑菌作用或其抑菌作用可以忽略不計(jì),照此檢查法和檢查條件進(jìn)行供試品的無菌檢查。故宜采用薄膜過濾法檢查微生物限度。

    2.3.3 菌落計(jì)數(shù)的驗(yàn)證

    ①試驗(yàn)組:薄膜過濾法計(jì)數(shù):取規(guī)定量試驗(yàn)可能用的最低稀釋級(jí)供試液,過濾,沖洗,在最后一次的沖洗液中加入50~100cfu試驗(yàn)菌,過濾,取出濾膜,菌面朝上貼在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基或者玫瑰紅鈉瓊脂培養(yǎng)基或酵母浸出粉胨葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基平板上置相應(yīng)的溫度培養(yǎng)相應(yīng)的時(shí)間。②菌液組:分別測(cè)定所加的試驗(yàn)菌數(shù),菌—>平皿;③供試品對(duì)照組:取規(guī)定量供試液,按菌落計(jì)數(shù)方法測(cè)定供試品的細(xì)菌、霉菌和酵母菌數(shù)(即供試品的本底菌數(shù));④稀釋劑對(duì)照組:用相應(yīng)的稀釋液替代供試品,加入試驗(yàn)菌,使最終菌濃度為每1mL供試液含50~100cfu,按試驗(yàn)組的供試液制備方法和菌落計(jì)數(shù)方法測(cè)定其菌數(shù)。

    回收率計(jì)算:①試驗(yàn)組:(試驗(yàn)組-供試品組)/菌液組×100%

    ②稀釋劑組:稀釋劑組/菌液組×100%

    表1 薄膜過濾法菌回收率

    結(jié)果判斷:在3次獨(dú)立的平行試驗(yàn)中,稀釋劑對(duì)照組的菌回收率和試驗(yàn)組的菌回收率均不低于70%,說明薄膜過濾法計(jì)數(shù)可行。

    2.3.4 控制菌檢查方法驗(yàn)證

    程序:(預(yù)增菌培養(yǎng))增菌培養(yǎng)→分離培養(yǎng)→純培養(yǎng)→革蘭染色鏡檢、生化反應(yīng)。①試驗(yàn)組:取規(guī)定量供試液及10~100cfu試驗(yàn)菌加入增菌培養(yǎng)基中,依相應(yīng)控制菌檢查法進(jìn)行檢查。當(dāng)采用薄膜過濾法時(shí),取規(guī)定量供試液,過濾,沖洗,試驗(yàn)菌應(yīng)加在最后一次沖洗液中,過濾后,注入培養(yǎng)基或取出濾膜接入增菌培養(yǎng)基中;②陰性菌對(duì)照組:供試液+陰性菌,同試驗(yàn)組——驗(yàn)證該控制菌檢查方法的專屬性[10];③陰性對(duì)照菌株:金黃色葡萄球菌——驗(yàn)證大腸埃希菌、大腸菌群、沙門菌;大腸埃希菌——驗(yàn)證金黃色葡萄球菌、銅綠假單孢菌、梭菌檢查。

    2.4 微生物限度檢查法

    2.4.1 實(shí)驗(yàn)用培養(yǎng)基以及器材消毒滅菌

    將配制好的pH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液、營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基、玫瑰紅鈉瓊脂培養(yǎng)基、膽鹽乳糖增菌液、膽鹽乳糖發(fā)酵培養(yǎng)基、PYD培養(yǎng)基、MUG培養(yǎng)基分別放于相應(yīng)錐形瓶或試管中,瓶口或管口用滅菌塞子塞好,并用布扎好,于立式滅菌機(jī)中121℃消毒滅菌1h。玻璃培養(yǎng)皿罐裝于帶蓋不銹鋼桶,置于恒溫干燥箱中160℃滅菌120min。

    2.4.2 供試品溶液配制

    精密稱取滅菌后的地榆10g至200mL錐形瓶,加pH 7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液至100mL,配成1:10供試液。

    2.4.3 細(xì)菌、霉菌和酵母菌計(jì)數(shù)

    (1)10倍遞增稀釋試驗(yàn)組。用一次性無菌注射器吸取1:10供試液1mL,均勻經(jīng)濾膜濾過,再用不少于100mL pH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液溶液沖洗濾膜,用鑷子將濾膜取出,菌面朝上貼于無菌雙碟底部。另取1mL供試液,注入9mLpH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液,配成1:100稀釋級(jí)供試液,同法制備四個(gè)碟子。再取1:100稀釋級(jí)供試液1mL配成1:1000稀釋級(jí),同法再制備四個(gè)碟子。每一稀釋級(jí)每種培養(yǎng)基至少注2個(gè)平皿。

    (2)陰性對(duì)照。待各級(jí)稀釋液注皿完畢后,用1支1mL針管吸取稀釋劑(pH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液)各1mL,分別注入四個(gè)平皿中。其中兩個(gè)作細(xì)菌陰性對(duì)照,兩個(gè)作霉菌、酵母菌數(shù)陰性對(duì)照。另外準(zhǔn)備兩個(gè)無菌空平皿作培養(yǎng)基空白。

    (3)傾注培養(yǎng)基。將預(yù)先配制好的細(xì)菌計(jì)數(shù)用的營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基;霉菌、酵母菌計(jì)數(shù)用的玫瑰紅鈉瓊脂培養(yǎng)基和YPD瓊脂培養(yǎng)基熔化,冷卻至約45℃時(shí),傾注上述各個(gè)平皿約15mL,以順時(shí)針或逆時(shí)針方向快速旋轉(zhuǎn)平皿,使供試液或稀釋液與培養(yǎng)基混勻,蓋上陶瓦蓋,置操作平臺(tái)上待凝。

    (4)培養(yǎng)。細(xì)菌計(jì)數(shù)平板倒置于32℃電熱恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48h。霉菌、酵母菌計(jì)數(shù)平板倒置于25℃、相對(duì)濕度75%霉菌培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72h。

    (5)菌落計(jì)數(shù)。將培養(yǎng)好的平皿放置于菌落計(jì)數(shù)器上或從平板背面直接以肉眼點(diǎn)計(jì),以透射光襯以暗色背景,仔細(xì)觀察。盡量不漏計(jì)細(xì)小的瓊脂層內(nèi)及平皿邊緣生長的菌落。并注意與地榆供試品粉末顆粒、培養(yǎng)基沉淀物、氣泡的鑒別。必要時(shí),用放大鏡或低倍顯微鏡直接觀察。菌落極小不易辨認(rèn)的延長培養(yǎng)時(shí)間到5d。

    2.4.4 控制菌檢查——大腸埃希菌

    (1)薄膜過濾法。用一次性無菌注射器吸取供試液10mL,注入稀釋劑100mL中,搖勻,以無菌操作加入裝有直徑45mm,孔徑0.45μm微孔濾膜的薄膜過濾器中,過濾,用稀釋劑沖洗濾膜,不少于100mL,用鑷子取出濾膜,加入預(yù)先配制好的100mL膽鹽乳糖增菌液培養(yǎng)基中。另一份100mL膽鹽乳糖(BL)培養(yǎng)基中加入等量稀釋劑作陰性對(duì)照。培養(yǎng)18~24h,必要時(shí)延長到48h。取上述培養(yǎng)物0.2mL,接種至含5mLMUG培養(yǎng)基的試管內(nèi),培養(yǎng),于5、24h在366nm紫外光下觀察,同時(shí)用未接種的MUG培養(yǎng)基作本底對(duì)照。觀察后,沿培養(yǎng)基的管壁加入數(shù)滴靛基質(zhì)試液。液面呈玫瑰紅色,為靛基質(zhì)陽性;呈試劑本色,為靛基質(zhì)陰性。本底對(duì)照的MUG和靛基質(zhì)應(yīng)為陰性。如MUG陽性,靛基質(zhì)陽性,判斷檢出大腸埃希菌;如MUG陰性、靛基質(zhì)陰性,判供試品未檢出大腸埃希菌。如呈現(xiàn)MUG陽性、靛基質(zhì)陰性或MUG陰性、靛基質(zhì)陽性時(shí),應(yīng)將上述供試品BL增菌培養(yǎng)液輕輕搖動(dòng),以接種環(huán)沾取1~2環(huán)培養(yǎng)液劃線于EMB或麥康凱瓊脂培養(yǎng)基平板上,培養(yǎng)18~24h。若平板上無菌落生長、或生長菌落與菌落形態(tài)特征不符,判供試品未檢出大腸埃希菌。

    (2)結(jié)果及結(jié)論。在紫外光下管內(nèi)培養(yǎng)物不呈現(xiàn)熒光,MUG陰性。加入靛基質(zhì)試液后,液面呈試劑本色,為靛基質(zhì)陰性。判斷地榆粉末供試品中未檢出大腸埃希菌[8]。

    2.4.5 大腸菌群

    (1)增菌培養(yǎng)。取不少于10mL膽鹽乳糖發(fā)酵培養(yǎng)基管3支,加入1:10供試液1mL(含供試品0.1g);1:100稀釋的供試液1mL(含供試品0.01g)和1:1000稀釋的供試液1mL(含供試品0.001g)。取2支膽鹽乳糖發(fā)酵培養(yǎng)基10mL管,一支加入稀釋劑1mL作為陰性對(duì)照,一支不加作為培養(yǎng)基空白對(duì)照。均培養(yǎng)18~24h,觀察結(jié)果。加供試液的膽鹽乳糖發(fā)酵培養(yǎng)基管中無菌生長或有菌生長但不產(chǎn)酸產(chǎn)氣,則判斷該管未檢出大腸菌群,若膽鹽乳糖發(fā)酵管產(chǎn)酸產(chǎn)氣,應(yīng)進(jìn)一步分離培養(yǎng)。

    (2)分離培養(yǎng)。將上述產(chǎn)酸產(chǎn)氣的發(fā)酵管中的培養(yǎng)物,分別劃線接種于曙紅亞甲蘭瓊脂培養(yǎng)基或麥康凱瓊脂培養(yǎng)基的平板上,培養(yǎng)18~24h。若平板上無菌落生長,或生長的菌落與特征不符或?yàn)榉歉裉m陰性無芽孢桿菌,判斷未檢出大腸菌群;若平板上生長有菌落形態(tài)特征菌或者疑似菌落,且為格蘭陰性芽孢桿菌,應(yīng)進(jìn)行確證實(shí)驗(yàn)。

    (3)確證實(shí)驗(yàn)。從上述分離平板上挑出4~5個(gè)疑似菌落,接種于乳糖發(fā)酵管中,培養(yǎng)24~48h。若產(chǎn)酸產(chǎn)氣,判斷膽鹽乳糖發(fā)酵管中檢出大腸菌群,否則判未檢出大腸菌群。

    表2 地榆飲片干片與濕片微波滅菌效果比較

    表3 不同工藝程序?qū)缇Ч挠绊?/p>

    表4 微波滅菌不同時(shí)間效果

    3 結(jié)果與討論

    在實(shí)驗(yàn)過程中,不斷摸索最佳滅菌條件,經(jīng)過多次重復(fù)試驗(yàn),發(fā)現(xiàn)地榆的滅菌溫度控制在75℃~85℃是比較合適的,在此溫度下,比較容易控制時(shí)間,不會(huì)因?yàn)樯郎剡^快導(dǎo)致地榆炭化等問題促使試驗(yàn)失敗。我們采用頻率2450MHz,功率0~3kW 的連續(xù)高功率微波[12],對(duì)干濕狀態(tài)的細(xì)菌進(jìn)行不同強(qiáng)度及時(shí)間的輻照,比較其殺滅率。實(shí)驗(yàn)顯示:不同強(qiáng)度及輻照時(shí)間的微波對(duì)干菌作用后,其溫度無顯著變化,但活菌數(shù)顯著減少;對(duì)濕菌的殺滅效果顯著高于干菌。已有文獻(xiàn)資料顯示含水量對(duì)殺菌效果影響較大,當(dāng)含濕率≤25%時(shí),含濕率越高,殺菌效果越好[11]。所以以后醫(yī)院在制劑原材料滅菌方面,我們推薦用純化水將藥材噴淋后滅菌打粉入藥。

    對(duì)于先滅菌還是先打粉的問題,通過實(shí)驗(yàn),我們發(fā)現(xiàn)先打粉后滅菌的地榆飲片的滅菌效果雖然不錯(cuò),但差異很大,且滅菌溫度不易控制,在滅菌12min后,粉狀地榆多處出現(xiàn)炭化現(xiàn)象。故建議醫(yī)院制劑進(jìn)行原藥材滅菌時(shí),采取先滅菌后打粉的方法。地榆的微波滅菌,隨著滅菌時(shí)間的增長,滅菌效果變化較大,滅菌7min,微生物檢查不合格,8min接近合格,在15min達(dá)到最佳滅菌效果,到達(dá)16min后,地榆飲片在微波滅菌過程中局部出現(xiàn)炭化現(xiàn)象。因此,地榆的最佳滅菌時(shí)間段為9~16min。

    微波是實(shí)現(xiàn)安全、可靠、高效滅菌的一種方法,只要時(shí)間和溫度控制得當(dāng),就能達(dá)到很好的滅菌效果。但微波對(duì)不同藥材和菌種的滅菌,還需通過實(shí)驗(yàn)摸索具體的滅菌條件,對(duì)特殊的使用條件須設(shè)計(jì)相應(yīng)的微波設(shè)備,對(duì)微波滅菌機(jī)理的解釋仍存在很多疑問,這將是該領(lǐng)域今后研發(fā)的一個(gè)重點(diǎn)。

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