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    H9N2亞型禽流感病毒在MDCK細胞中增殖最佳條件研究*

    2011-05-31 06:55:22史愛華張建偉姜北宇章振華景小冬
    動物醫(yī)學進展 2011年11期
    關(guān)鍵詞:細胞培養(yǎng)滴度單層

    史愛華,張建偉,沈 佳,姜北宇,章振華,李 林,景小冬

    (北京市農(nóng)林科學院畜牧獸醫(yī)研究所,北京 100097)

    禽流感病毒(Avian influenza virus,AIV)是嚴重危害家禽和野禽的一種烈性傳染性病原,其中H9N2亞型低致病力禽流感(LPAI)病毒雖致病力較低,但依然是威脅我國養(yǎng)禽業(yè)的最重要疫病之一[1]。姜北宇等[2]對禽流感 H9亞型流行毒株進行了交叉保護試驗。近幾年來H9N2亞型禽流感在免疫雞群中時有發(fā)生[3],嚴重制約著我國養(yǎng)禽業(yè)的發(fā)展。葉柱德等[4]對H9N2禽流感疫苗的研究進行了綜述。常規(guī)的禽流感疫苗生產(chǎn)過程中,雞胚是禽流感病毒最為常用的一種培養(yǎng)基質(zhì),但用雞胚尿囊液制備抗原過程中禽流感病毒易引起抗原性變異;大規(guī)模生產(chǎn)時還存在雞胚數(shù)量不足和潛在外源病毒污染的問題[5]。以哺乳動物細胞為基質(zhì)制備疫苗具有無外源因子污染、易于規(guī)?;a(chǎn)、可以較好的維持病毒抗原穩(wěn)定等優(yōu)點。許多學者[6-10]利用 MDCK細胞制備人流感疫苗做了大量研究,制備的疫苗可產(chǎn)生與雞胚苗同樣的免疫效果。在利用生物反應器進行病毒增殖時,不同病毒株、病毒接種劑量均非常重要,而且無法進行病毒接種后的預吸附過程。本研究通過對不同病毒株、不同接種劑量以及病毒與細胞的吸附處理分別進行篩選和優(yōu)化,以期獲得H9N2亞型禽流感病毒在MDCK細胞中增殖的最佳條件,為將來利用傳代細胞系在生物反應器中大規(guī)模制備禽流感疫苗提供技術(shù)支持。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 毒株 禽流感病毒H9N2亞型地方分離毒株:A/Chicken/Hebei/WD/98(H9N2)株 (簡 稱WD98株),由北京市農(nóng)林科學院畜牧獸醫(yī)研究所免疫預防研究室1998年從河北省望都分離;A/Chicken/Henan/QX/04(H9N2)株(簡稱 HN04株),由河南農(nóng)業(yè)大學王澤霖教授惠贈;A/Chicken/Hebei/ZD/04(H9N2)株(簡稱ZD04株),由北京市農(nóng)林科學院畜牧獸醫(yī)研究所免疫預防研究室2004年從河北省正定分離。

    1.1.2 細胞 MDCK細胞購自中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,在北京市農(nóng)林科學院畜牧獸醫(yī)研究所免疫預防研究室傳代培養(yǎng)至77代。

    1.1.3 細胞培養(yǎng)液 生長液為含100mL/L胎牛血清和100單位/mL青霉素-鏈霉素的DMEM;維持液為含10μg/mL胰蛋白酶的DMEM。

    1.1.4 雞紅細胞懸液 10mL/L雞紅細胞懸液由北京市農(nóng)林科學院畜牧獸醫(yī)研究所免疫預防研究室采集成年公雞血液制備。

    1.1.5 主要試劑 DMEM培養(yǎng)基為 HyClone公司產(chǎn)品;胰酶為DIFCO公司產(chǎn)品;胎牛血清為GIB-CO公司產(chǎn)品;細胞培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)板為COSTAR公司產(chǎn)品。

    1.2 方法

    1.2.1 MDCK細胞復蘇及傳代 自液氮中取出凍存的MDCK細胞,37℃溫水速溶,3 000r/min離心3min,棄上清,用含100mL/L胎牛血清的DMEM懸浮細胞團塊,加入T25培養(yǎng)瓶中,置37℃、體積分數(shù)為5%CO2溫箱培養(yǎng)。經(jīng)48h~72h后MDCK細胞長成單層,棄上清用1mL EDTA-胰蛋白酶清洗細胞表面,然后加入0.5mL胰蛋白酶37℃消化2 min~5min,吹打分散細胞,分裝于細胞培養(yǎng)板或瓶中傳代,置37℃、體積分數(shù)為5% 的CO2溫箱培養(yǎng)。1.2.2 病毒稀釋 取無菌試管5支,每支加入4.5 mL DMEM,第1管加入0.5mL病毒原液混勻,吸取0.5mL稀釋的病毒液加入到第2管混勻,再吸取0.5mL稀釋的病毒液加入到第3管,以此類推至第5管。各試管中病毒液稀釋倍數(shù)分別為101、102、103、104、105。

    1.2.3 病毒吸附試驗 取長成單層MDCK細胞的12孔細胞培養(yǎng)板,棄去生長液,用DMEM沖洗一次,逐孔加入不同稀釋度的病毒懸液,每個稀釋度接種3孔,每孔接種0.2mL。非吸附組接種病毒后每孔立即加入1.8mL含有10μg/mL胰蛋白酶的DMEM維持液;吸附組接種病毒后置37℃溫箱吸附1h,然后每孔加入1.8mL含有10μg/mL胰蛋白酶的維持液。將兩組培養(yǎng)板置37℃、體積分數(shù)為5%CO2細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每隔24h測定細胞上清液中病毒HA滴度,直至細胞脫落。

    1.2.4 紅細胞凝集試驗 分別取病毒接種細胞后24、48、72、96、96h后收獲細胞并凍融1次的細胞培養(yǎng)上清液,采用常規(guī)方法進行紅細胞凝集試驗,即在96孔V型板中加入50μL生理鹽水,與50μL待檢細胞培養(yǎng)上清混勻后進行倍比稀釋,并設陽性、陰性和空白對照孔。每孔中加入50μL 10mL/L雞紅細胞懸液,混勻后靜置室溫15min~20min,觀察記錄結(jié)果。測定結(jié)果取以log2為底的倍數(shù)。

    2 結(jié)果

    2.1HN04株接種MDCK單層后培養(yǎng)液上清的HA滴度

    病毒不論吸附與否,感染后24h病毒滴度均為0,48h后病毒滴度顯著升高,72h達到高峰;病毒稀釋倍數(shù)為103和104時病毒滴度較高。細胞凍融后病毒滴度較凍融前明顯升高(表1)。

    2.2 WD株接種MDCK單層后培養(yǎng)液上清的HA滴度

    WD株在接種后96h的HA滴度達到最高為5.3log2,病毒液經(jīng)103稀釋后吸附組與未吸附組的病毒滴度無顯著差異,而104稀釋接種后吸附組較未吸附組的病毒滴度稍高(表2)。

    2.3 ZD04株接種 MDCK單層后培養(yǎng)液上清的HA滴度

    ZD04株接種MDCK細胞后病毒滴度測定結(jié)果較其他2株明顯較低,最高HA滴度為4log2,提示不同分離株在MDCK細胞中的增值能力存在差異。吸附組與非吸附組的病毒滴度無顯著差異。凍融前后HA滴度也未出現(xiàn)顯著差異。

    表1 H9N2禽流感病毒HN04株接種MDCK后培養(yǎng)液上清的HA滴度(log2)Table 1 HA titer of the supernatant of MDCK cells with inoculation of H9N2avian influenza virus isolate HN04

    表2 WD株接種MDCK后培養(yǎng)液上清的HA滴度((log2)Table 2 HA titer of the supernatant of MDCK cells with inoculation of H9N2avian influenza virus isolate WD

    表3 ZD04株接種MDCK后培養(yǎng)液上清的HA滴度((log2)Table 3 HA titer of the supernatant of MDCK cells with inoculation of H9N2avian influenza virus isolate ZD04

    3 討論

    H9N2亞型禽流感病毒的最佳接種濃度,試驗中選用了3個低致病力的H9N2亞型禽流感病毒株,均以103~104倍稀釋的病毒液接種滴度最高,這種結(jié)果與雞胚培養(yǎng)病毒的接種后的病毒滴度類似,毒力較強的ZD04株經(jīng)過凍融后病毒培養(yǎng)液HA滴度較低為3log2~4log2(1∶8~1∶16),毒力較弱的HN04和WD株的HA滴度為4.3log2~6log2(1∶19.7~1∶64),這可能與病毒的毒力強致使細胞受到損害較快,而不能增殖病毒有關(guān)。李春艷等[11]在利用微載體規(guī)?;囵B(yǎng) MDCK細胞增殖H9N2亞型禽流感病毒的研究中,接毒劑量為MOI=0.025,培養(yǎng)液pH7.4時,H9N2亞型禽流感病毒HA滴度可達到9log2(1∶512),我們認為這與利用微載體培養(yǎng)時細胞密度較高從而使得病毒濃度較高有關(guān),高密度培養(yǎng)可以大大提高病毒的滴度。

    吸附與否對HA影響,劉麗玲等[12]在進行禽流感病毒接種時進行吸附,吸附時間為1h,H9N2亞型病毒的滴度為7log2,楊琴等[13]利用雞胚成纖維細胞、VERO細胞和MDCK細胞對禽流感病毒進行了增殖研究,結(jié)果顯示病毒接種后吸附90min的HA滴度最高,可達到9log2。趙斌秀等[14]研究MDCK細胞接種流感病毒并吸附2h,維持液中含有10μg/mL胰蛋白酶時,上清的HA滴度可達到7 log2。本試驗結(jié)果為3株H9N2亞型病毒株病毒液上清HA最高滴度為6log2,病毒滴度稍低,可能是接種的病毒毒株差異或者是培養(yǎng)條件差異造成。為了將來在生物反應器中更為方便的接種,本研究進行了不吸附試驗,通過試驗證明通過接種前對細胞單層進行洗滌后,再接種流感病毒,不進行吸附與進行吸附都可以使HA達到較高的滴度,二者沒有顯著區(qū)別。

    HA滴度出現(xiàn)的時間,將稀釋的病毒接種長成單層的MDCK細胞,不經(jīng)吸附,加入含有不同胰蛋白酶濃度的MDCK作為維持液,測定接種病毒后不同時間培養(yǎng)液上清中的HA滴度,在72h達到最高值;戚鳳春等[15]報道流感病毒接種 MDCK細胞后HA峰值時間為60h~72h,劉麗玲等[12]報道,將雞胚毒H9N2病毒接種MDCK細胞,吸附1h,維持液胰蛋白酶含量為1‰,72hHA 滴度達到峰值7 log2,以后隨著時間的延長而略有下降,病毒滴度下降可能是病毒致使細胞病變脫落后病毒不能增殖造成。造成HA滴度出現(xiàn)不同的原因可能有以下幾個方面,一是選用的毒株不同,不同毒株對MDCK細胞的致病作用不同;二是本研究采用了MDCK適應2代后的流感病毒,而劉麗玲等使用的是雞胚毒。

    綜上所述,低致病力禽流感病毒可以在MDCK細胞上大量增殖,病毒的最佳接種濃度為103~104倍稀釋病毒。細胞單層經(jīng)過清洗后,接種病毒吸附與不吸附均可以產(chǎn)生良好病變和HA滴度。病毒的最佳收獲時間為72h~96h。

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