張小方 范春霞 高述民
摘要從細(xì)胞學(xué)和分子生物學(xué)的角度,介紹了植物胚囊母細(xì)胞在減數(shù)分裂過程中的異常情況,及其對(duì)雌蕊育性的影響。
關(guān)鍵詞胚囊母細(xì)胞;減數(shù)分裂;雌蕊敗育
中圖分類號(hào)Q944.45文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼A文章編號(hào) 1007-5739(2009)01-0274-02
減數(shù)分裂是一個(gè)復(fù)雜的動(dòng)態(tài)過程,涉及到很多分子和細(xì)胞學(xué)事件,如DNA和染色體復(fù)制,染色體配對(duì)、聯(lián)會(huì)和重組、分離,以及胞質(zhì)分裂[1]。胚囊母細(xì)胞(embryo sac mother cell,EMC)減數(shù)分裂能否順利完成,關(guān)系到功能大孢子的正常形成、胚珠的雌配子體發(fā)育以及胚囊和胚的形成。而雌蕊敗育原因最常見的就是胚囊母細(xì)胞減數(shù)分裂不正常,同源染色體不能正常配對(duì)[2]。由于胚囊母細(xì)胞包裹在層層珠心細(xì)胞中,外面又有珠被和子房璧等組織,觀察研究比較困難。而花粉母細(xì)胞容易獲取且數(shù)量較多,研究操作簡(jiǎn)單快速。所以與雄性花粉母細(xì)胞相比,對(duì)雌性胚囊母細(xì)胞減數(shù)分裂的研究較少。然而,隨著細(xì)胞生物學(xué)和分子生物學(xué)等各種研究手段的提高,人們對(duì)胚囊母細(xì)胞減數(shù)分裂過程中染色體數(shù)目與結(jié)構(gòu)變異的細(xì)胞學(xué)研究,甚至減數(shù)分裂異常的分子生物學(xué)研究也有了一定的進(jìn)展。
1EMC減數(shù)分裂發(fā)生異常的時(shí)期
減數(shù)分裂一經(jīng)啟動(dòng),細(xì)胞中的DNA復(fù)制1次卻進(jìn)行連續(xù)2次分裂,分別為減數(shù)分裂期Ⅰ和減數(shù)分裂期Ⅱ,這2個(gè)時(shí)期又分別包括前期、中期、后期和末期。而在這幾個(gè)時(shí)期中,不同育性相關(guān)基因的異常都有可能導(dǎo)致減數(shù)分裂進(jìn)程受阻。Siddiqi I等[3]對(duì)擬南芥雌性不育的dyad突變體研究發(fā)現(xiàn),該突變體大部分胚珠能形成胚囊母細(xì)胞,但在減數(shù)分裂Ⅰ期未被阻斷。SYNAPSIS 1/DETERMINATE INFERTILE 1(SYN1[DIFI])基因突變使得減數(shù)分裂Ⅰ期和Ⅱ期的染色體分離出現(xiàn)異常,最終導(dǎo)致雌性不育[4]。而玉米減數(shù)分裂elongate1突變體發(fā)育缺陷發(fā)生在減數(shù)分裂II期[5]。最近在擬南芥AtKIN14a/atkin14a AtKIN14b/atkin14b突變體中發(fā)現(xiàn),胚囊母細(xì)胞減數(shù)分裂Ⅰ中期的染色體定位發(fā)生異常,隨后分裂Ⅰ后期染色體分離也發(fā)生異常[6]。
2EMC減數(shù)分裂異常相關(guān)的基因及突變體
利用現(xiàn)代各種生物技術(shù)手段已誘變獲得一些減數(shù)分裂異常突變體,另外通過篩選cDNA等方法也已分離出一些減數(shù)分裂異常相關(guān)基因。如利用T-DNA插入誘變技術(shù),并結(jié)合細(xì)胞遺傳學(xué)研究表明AtDMC1基因?qū)M南芥減數(shù)分裂至關(guān)重要,該基因缺失突變體在雌雄蕊減數(shù)分裂過程中,染色體行為嚴(yán)重錯(cuò)亂導(dǎo)致雌雄性不育[7]。再如利用內(nèi)源反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子Tos17插入誘導(dǎo)產(chǎn)生的水稻pair1突變體,表現(xiàn)出減數(shù)分裂專一性缺陷,最終導(dǎo)致次雌雄性配子體不育。水稻PAIR1基因編碼一種492kD蛋白,在減數(shù)分裂過程中對(duì)同源染色體配對(duì)起基本的作用[8]。最近,人們又從擬南芥AtKIN14b cDNA文庫(kù)中獲得基因特異性探針,進(jìn)行RNA熒光原位雜交,結(jié)果發(fā)現(xiàn)AtKIN14b在減數(shù)分裂細(xì)胞中表達(dá)增強(qiáng)[6],表明編碼該蛋白的基因是減數(shù)分裂過程所必需的。
另一方面,隨著顯微技術(shù)的發(fā)展以及染色方法的改進(jìn),對(duì)減數(shù)分裂過程中的各種事件觀察研究也更精確了。利用熒光和投射電子顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn),atrad51c-1突變體中聯(lián)會(huì)異常且同源染色體列隊(duì)發(fā)生改變,說明擬南芥正常的減數(shù)分裂過程中,染色體聯(lián)會(huì)和雙鏈斷裂修復(fù)需要AtRAD51C基因[9]。玉米elongate1突變體不能形成正常單倍體胚囊而產(chǎn)生功能二倍體,利用共聚焦顯微鏡結(jié)合靜態(tài)細(xì)胞分析技術(shù)研究發(fā)現(xiàn),該突變體產(chǎn)生異常二倍體胚囊是因減數(shù)分裂II期缺陷導(dǎo)致的。ELONGATE1基因不僅具有控制染色體濃縮的功能,還是胚囊母細(xì)胞進(jìn)入減數(shù)分裂II期所必需的[5]。
水稻MEL1基因只在生殖細(xì)胞中特異表達(dá),可以調(diào)節(jié)減數(shù)分裂和分裂前的生殖細(xì)胞、染色體的調(diào)節(jié)機(jī)制,以及減數(shù)分裂異常過程中可能發(fā)生的小RNA介導(dǎo)的基因沉默[10]。擬南芥AtMND1基因缺失會(huì)導(dǎo)致雌雄蕊減數(shù)分裂過程中染色體斷裂和錯(cuò)誤分離。RNA原位雜交顯示該基因在性母細(xì)胞中特異表達(dá),通過對(duì)雙鏈斷裂進(jìn)行修復(fù)在減數(shù)分裂過程中發(fā)揮作用[11,12]。玉米MEI基因影響減數(shù)分裂很多方面,包括減數(shù)分裂的啟動(dòng)、減數(shù)分裂的控制和同源染色體配對(duì)等[13]。目前,對(duì)MEL1基因缺失導(dǎo)致的減數(shù)分裂異常主要集中在mel1突變體的異?;ǚ勰讣?xì)胞上[10],而胚囊母細(xì)胞的基因缺陷導(dǎo)致的雌性不育研究很少。
3EMC減數(shù)分裂異常相關(guān)的特異蛋白質(zhì)
3.1影響染色體行為的特異蛋白質(zhì)
基因編碼蛋白的時(shí)空表達(dá)是研究減數(shù)分裂行為的重要部分。Mob蛋白在酵母染色體分離和細(xì)胞板的形成過程中起到重要作用。Citterio S等[14]從苜蓿中克隆出2種Mob1類基因后,設(shè)計(jì)了MsMob1轉(zhuǎn)錄物特異反義SP6-RNA探針,并制備MsMob 1蛋白多克隆抗體。通過原位mRNA定位和蛋白免疫定位證明MsMob1類似基因在突變型胚珠中減數(shù)分裂異常的胚囊母細(xì)胞中表達(dá)。真核生物中,Spo11蛋白調(diào)控DNA雙鏈斷裂,從而啟動(dòng)減數(shù)分裂重組。擬南芥中含有3種Spo11同源蛋白(AtSPO11-1,AtSPO11-2 和 AtSPO11-3),其中前兩者參與減數(shù)分裂重組,而AtSPO11-3涉及DNA復(fù)制。AtsPo11-2突變體表現(xiàn)出明顯減數(shù)分裂異常,在分裂Ⅰ期發(fā)生聯(lián)會(huì)紊亂[15]。突變體XWI1的胚囊母細(xì)胞在減數(shù)分裂前進(jìn)行了多余的有絲分裂,且細(xì)胞器的極性分布消失,推測(cè)該基因編碼的特異蛋白SWI1可能是通過抑制有絲分裂而激活胚囊母細(xì)胞的減數(shù)分裂[16]。
3.2與紡錘體微管有關(guān)的特異蛋白質(zhì)
除了染色體行為異常外,減數(shù)分裂受阻還表現(xiàn)在紡錘體微管上的變化。擬南芥AtKIN14a和AtKIN14b基因編碼2種高度相似的驅(qū)動(dòng)蛋白[17],2種基因共同協(xié)作控制植物的生殖發(fā)育,在配子體發(fā)育和雌蕊減數(shù)分裂過程中發(fā)揮類似的功能,只是AtKIN14a基因編碼蛋白在雄蕊減數(shù)分裂過程中發(fā)揮更多作用[6]。驅(qū)動(dòng)蛋白-14家族蛋白行使大量細(xì)胞學(xué)功能,包括適當(dāng)集合和定位到紡錘體微管上[18]。該類蛋白家族中有一類驅(qū)動(dòng)蛋白-5參與確保紡錘體正確組裝和其完整性[19,20]。通過免疫定位顯微技術(shù),在缺乏編碼該類蛋白基因的突變體中發(fā)現(xiàn)中期Ⅰ的紡錘體具多極現(xiàn)象,組裝發(fā)生缺陷。而到了后期Ⅰ時(shí),紡錘體結(jié)構(gòu)變得不對(duì)稱,失去完整性[6]。
4結(jié)語(yǔ)
減數(shù)分裂是植物有性生殖過程中一種特殊的有絲分裂,直接影響著植物的育性。胚囊母細(xì)胞減數(shù)分裂異常導(dǎo)致的雌蕊敗育是雌性不育的主要原因。研究影響胚囊母細(xì)胞減數(shù)分裂的因子,可為植物雌性不育在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)及園藝植物等方面的應(yīng)用提供重要的理論依據(jù)。
5參考文獻(xiàn)
[1] CAI X,AU S S.Meiosis-driven genome variation in plants[J].Curr Ge-nomics,2007,8(3):151-161.
[2] 胡青,高述民,李鳳蘭.植物雌性不育的研究進(jìn)展[J].北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2004,26(1):87-91.
[3] SIDDIQI I,GANESH G,GROSSNIKLAUS U,et al.The dyad gene is required for grogression through female meiosis in Arabidopsis[J].Devel-opment,2000,127(1):197-207.
[4] BAI X,PEIRSON B N,DONG F,et al.Makaroff CA:Isolation and characterization of SYN1,a RAD21-like gene essential for meiosis in Arabidopsis[J].Plant Cell,1999(11):417-430.
[5] PHILIPPA J,BARREIIL U G.Confocal microscopy of whole ovules for analysis of reproductive development:the elongate1 mutant affects meiosis II[J].The Plant Journal,2005,43(2):309-320.
[6] LI QUAN,RONG XIAO,WUXING LI.Functional divergence of the duplicated AtKIN14a and AtKIN14b genes:critical roles in Arabidopsis meiosis and gametophyte development[J].The Plant Journal,2008(53):1013-1026.
[7] FLORENCE COUTEAU,F(xiàn)RANCOIS BELZILE,CHRISTINE HO-RLOW.Random Chromosome Segregation without Meiotic Arrest in Both Male and Female Meiocytes of a dmc1 Mutant of Arabidopsis[J].The Plant Cell,1999(11):1623-1634.
[8] KEN-LCHI NONOMURA,MUTSUKO NAKANO,TOSHIYUKI FUKUDA,et al.The Novel Gene HOMOLOGOUS PAIRING AB-ERRATIONIN RICE MEIOSIS1 of Rice Encodes a Putative Coiled-Coil Protein Required for Homologous Chromosome Pairing in Meiosis[J].The Plant Cell,2004(16):1008-1020.
[9] WUXING LI,XIAOHUI YANG,ZHENGUO LIN,et al.The At-RAD51C Gene Is Required for Normal Meiotic Chromosome Synapsis and Double-Stranded Break Repair in Arabidopsis[J].Plant Physiology,2005(138):965-976.
[10] NONOMURA K,MOROHOSHI A,NAKANO M,et al.A germ cell specific gene of the ARGONAUTE family is essential for the progression of premeiotic mitosis and meiosis during sporogenesis in rice[J].Plant Cell,2007,19(8):2583-2594.
[11] PANOLI AP,RAVI M,SEBASTIAN J,et al.AtMND1 is required for homologous pairing during meiosis in Arabidopsis[J].BMC Mol Biol,2006(7):24.
[12] DOMENICHINI S,RAYNAUD C,NI D A,et al.Atmnd1-delta1 is sensitive to gamma-irradiation and defective in meiotic DNA repair[J].DNA Repair(Amst),2006,5(4):455-464.
[13] GOLUBOVSKAYA I N,AVALINKA N,SHERIDAN W F.Effects of several meiotic mutants on female meiosis in maize[J].Dev Genet,1992(13):411-424.
[14] CITTERIO S,ALBERTINI E,VAROTTO S.Alfalfa Mob 1-like genes are expressed in reproductive organs during meiosis and gametogenesis[J].Plant Mol Biol,2005,58(6):789-807.
[15] STACEY N J,KUROMORI T,AZUMI Y.Arabidopsis SPO11-2 functions with SPO11-1 in meiotic recombination[J].Plant J,2006,48(2):206-216.
[16] MERCIER R,VEZON D,BULLIER E,et al.SWITCH1(SWL1):a noverl protein required for the establishment of sister chromatid cohesion and for bivalent formation at meiosis[J].Genes,2001(15):1859-1871.
[17] AMBROSE J C,CYR R.The kinesin ATK5 functions in early spindle assembly in Arabidopsis[J].Plant Cell,2007(19):226-236.
[18] GADDE S,HEALD R.Mechanisms and molecules of the mitotic spindle[J].Curr.Biol,2004(14):797-805.
[19] AMBROSE J C,LI W,MARCUS A,et al.A minusend-directed kinesin with plus-end tracking protein activity is involved in spindle morphogenesis[J].Mol.Biol.Cell,2005(16):1584-1592.
[20] BANNIGAN A,SCHEIBLE W R,LUKOWITZ W,et al.A conserved role for kinesin-5 in plant mitosis[J].Cell Sci,2007(120):2819-2827.