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    不同核黃素濃度與可見光光照強(qiáng)度對血漿中大腸桿菌的影響*

    2024-03-14 06:55:58劉鴻莫琴馬榮鈉賈堯伍曉菲王迅
    臨床輸血與檢驗(yàn) 2024年1期
    關(guān)鍵詞:血漿效果

    劉鴻 莫琴 馬榮鈉 賈堯 伍曉菲 王迅

    上海市血液中心,上海 200051

    血液和血液成分的輸血傳播細(xì)菌感染(transfusion-transmitted bacterial infection,TTBI)和膿毒性輸血反應(yīng)(septic transfusion reactions,STRs)是感染性輸血疾病的主要原因[1]。雖然血漿由于其凍存的環(huán)境并不利于細(xì)菌生長,因此被認(rèn)為存在細(xì)菌污染的風(fēng)險(xiǎn)較小,然而血漿在制備和處理的過程中仍可能被細(xì)菌污染,如有研究發(fā)現(xiàn)在水浴箱中凍融后的血漿被檢出受到銅綠假單胞菌(P. aeruginosa)的污染[2-3],此外,F(xiàn)DA也曾在2016年報(bào)告過一起治療性血漿置換(單采血漿)被凝固酶陰性葡萄球菌(coagulase-negative staphylococci)污染導(dǎo)致受血者死亡的案例,因此受細(xì)菌污染的血漿仍可能成為受血者感染的載體[4]。

    目前應(yīng)對血液和血液成分細(xì)菌污染風(fēng)險(xiǎn)的措施包括但不限于手臂消毒、初血分離、細(xì)菌培養(yǎng)、快速檢測、病原體滅活技術(shù)的應(yīng)用等[1]。其中,病原體滅活技術(shù)(pathogen reduction technology,PRT)如核黃素光化學(xué)病原體滅活系統(tǒng)經(jīng)驗(yàn)證可滅活包括血漿和血小板中的多種輸血傳播病毒、致病菌和寄生蟲[5,6];采用病原體滅活技術(shù)不僅可以彌補(bǔ)血站現(xiàn)有檢測方法的缺陷,如潛在假陰性,檢測靈敏度低等問題,其也為應(yīng)對一系列已知和未知的新發(fā)病原體提供了一種積極主動的預(yù)防策略[7],這對提高血液安全和維持安全可靠的血液供應(yīng)都有著重要的意義。然而,我國目前尚無自主知識產(chǎn)權(quán)的針對血液成分細(xì)菌污染的病原體滅活技術(shù),而國外商品化的病原體滅活系統(tǒng)成本高昂。因此,開發(fā)具有自主知識產(chǎn)權(quán)的血液成分病原體滅活系統(tǒng)就顯得尤為重要。而本研究嘗試以420 nm可見光為光源,以血液中常見的污染細(xì)菌大腸桿菌作為指示菌,血漿作為介質(zhì)載體,對不同核黃素濃度與可見光光照強(qiáng)度對血漿中大腸桿菌的影響進(jìn)行探討,以明確兩者與處理效果間存在的量效關(guān)系,從而為未來建立更完善的實(shí)驗(yàn)條件和有效性的評估提供更多數(shù)據(jù)支撐。

    材料與方法

    1 標(biāo)本來源

    隨機(jī)抽取分裝的谷氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)檢測不合格的新鮮冰凍血漿作為實(shí)驗(yàn)樣本,本研究涉及的所有樣本均來自本血站的無償獻(xiàn)血者。本研究獲本中心倫理審批(編號:SBC-IRB-2022-24)。

    2 試劑與儀器

    核黃素(美國Sigma-Aldrich公司,批號:60K0021);大腸桿菌(ATCC 25922)(Culti-Loops,美國Thermo Scientific公司,批號:348289,美國KwikStik公司,批號:335-557-21);LB肉湯培養(yǎng)基(上海生工生物公司,批號:I113KA3288);瓊脂粉(上海生工生物公司,批號:I701BA0001); 一次性大腸桿菌培養(yǎng)皿(上海生工生物公司,批號:I505LA2421);Costar 12孔細(xì)胞培養(yǎng)板(美國Corning公司,批號:26421043);一次性PVC血袋(上海輸血技術(shù)公司,批號:181229);塑料透光擴(kuò)散板(京棣工品公司);0.22 μm無菌濾器(冰島Millipore公司,批號:R0NB16650);15 mL無菌離心管(美國Corning公司,批號:26421043);10 mL無菌注射器(上海康德萊公司,批號:K20210103);一次性涂布棒(美國Biologix公司,批號:MO002890B1203);420 nm病原體滅活箱改裝自上海輸血技術(shù)公司,含商業(yè)性420 nm LED燈珠);紫外輻照儀計(jì)(北京師范大學(xué)光電儀器廠);孵育箱(日本松下公司);生物安全柜(蘇州賽默飛世爾公司);離心機(jī)(德國Eppendorf公司)。

    3 方法

    3.1 透光率測量

    使用420 nm輻照儀檢測病原體滅活箱中LED燈珠的輻照強(qiáng)度,隨后將測試材料置于LED燈珠中央,使用420 nm 輻照儀貼于測試材料正對LED燈珠的位置檢測透光后的輻照強(qiáng)度,每個(gè)材料檢測各3次,通過計(jì)算材料透光后的平均輻照強(qiáng)度與LED燈珠自身的平均輻照強(qiáng)度百分比比值得出透光率。

    3.2 核黃素儲存液制備

    精確稱量9.41 mg核黃素溶于25 mL0.9%生理鹽水中,并用無菌濾器過濾,配制成1M的核黃素儲存液,儲存瓶使用錫箔紙包裹,置于4℃冰箱保存。

    3.3 大腸桿菌培養(yǎng)

    將大腸桿菌(ATCC 25922)原菌接種于LB固體培養(yǎng)基,置于培養(yǎng)箱37℃培養(yǎng)24 h,培養(yǎng)后挑取完整的單菌落接種于液體LB培養(yǎng)基中37℃振蕩過夜培養(yǎng)。培養(yǎng)結(jié)束后離心菌液并用生理鹽水重懸,取少量菌懸液培養(yǎng)以確定原始菌液濃度不低于107CFU/mL。

    3.4 實(shí)驗(yàn)分組與光照處理

    按照處理方式將實(shí)驗(yàn)分為三大類:第一類為只添加菌液但不做任何處理的對照組,第二類為只添加菌液并接受光照處理的光照組,第三類為添加菌液與核黃素并接受光照處理的實(shí)驗(yàn)組。其中實(shí)驗(yàn)組根據(jù)核黃素濃度又可細(xì)分為4個(gè)小組,即50、100、150和300 μM的核黃素濃度組,加上對照組和光照組共6組,每組樣本數(shù)為1人份。光照處理前,從光照組和各核黃素濃度組的血漿混懸液中取1 mL樣本加入12孔板并置于病原體滅活箱中分別接受420 nm可見光的光照處理,每輪光照的光照強(qiáng)度分別為50 mW/cm2、75 mW/cm2和100 mW/cm2,光照時(shí)間為55分鐘(分別在25、35、45和55分鐘取樣檢測)。

    3.5 處理后大腸桿菌的檢測

    從各組樣品中取0.1 mL加入0.9%生理鹽水進(jìn)行梯度稀釋,稀釋至10-6,每個(gè)梯度取100 μL稀釋菌液涂布在LB平板上,并置于37℃孵育箱培養(yǎng)過夜后菌落計(jì)數(shù)。所有實(shí)驗(yàn)均重復(fù)5次(n=6)。

    3.6 評估光照強(qiáng)度對大腸桿菌處理效果的影響

    根據(jù)在各核黃素濃度下,不同光照強(qiáng)度對大腸桿菌在各時(shí)間段中的下降情況建立時(shí)間-效果曲線,評估光照強(qiáng)度與大腸桿菌處理效果的相關(guān)性。

    3.7 評估核黃素濃度對大腸桿菌處理效果的影響

    根據(jù)在各光照強(qiáng)度下,不同核黃素濃度對大腸桿菌各時(shí)間段中的下降情況建立時(shí)間-效果曲線,評估核黃素濃度與大腸桿菌處理效果的相關(guān)性。

    4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    采用GraphPad Prism 7軟件統(tǒng)計(jì)結(jié)果,數(shù)據(jù)以菌落數(shù)的平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。實(shí)驗(yàn)組與光照組中各核黃素濃度與光照強(qiáng)度對細(xì)菌處理效果是否存在顯著差異采用單因素方差分析,各因素與處理效果間的關(guān)系用Pearsons相關(guān)分析。P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1 420 nm可見光的基本參數(shù)和對不同材料的透光情況

    病原體滅活設(shè)備的光源經(jīng)過專業(yè)設(shè)計(jì)和光譜檢測,經(jīng)驗(yàn)證,該光源在420 nm處有一個(gè)明顯的吸收峰,因此符合實(shí)驗(yàn)的要求[8]。實(shí)驗(yàn)前對420 nm可見光對不同材料的透光情況進(jìn)行評估后發(fā)現(xiàn)(表1),培養(yǎng)皿和12孔板對420 nm可見光的透過率超過95%,因此以12孔板作為血漿光照處理的儲存容器,血漿在12孔板中的液層厚度保持在約5 mm,照射期間勻速振蕩,確保獲得均勻光照。

    表1 420 nm可見光透光率情況

    2 不同光照強(qiáng)度下各核黃素濃度對血漿中大腸桿菌的處理效果

    血漿中的大腸桿菌在接受不同強(qiáng)度光照處理55 min后,各核黃素濃度下血漿中的大腸桿菌濃度均出現(xiàn)了不同程度的下降,下降梯度分別為1.7~3.5 log(50 mW/cm2),2.8~≥4.4 log(75 mW/cm2),4.0~≥4.7 log(100 mW/cm2),其中300 μM的核黃素濃度在各光照強(qiáng)度下都顯示出至少>3 log的處理效果(圖1)??傮w來看,不同光照強(qiáng)度之間對大腸桿菌的處理效果存在顯著性差異(F=16.39,P<0.000 1),其中在50,100和150 μM核黃素濃度下,高強(qiáng)度的光照(100 mW/cm2)對大腸桿菌的處理效果要顯著高于低強(qiáng)度的光照(50 mW/cm2)(P<0.05)。而不同的核黃素濃度組之間對大腸桿菌處理效果也存在顯著性差異(F=4.06,P=0.004 9),其中,在低強(qiáng)度光照下(50 mW/cm2),300 μM核黃素濃度對大腸桿菌的處理效果要顯著高于50 μM核黃素濃度(P<0.05)(圖1)。

    圖1 血漿中各核黃素濃度的大腸桿菌在接受不同光照強(qiáng)度光照處理55 min后的下降情況比較(n=6)

    3 不同光照強(qiáng)度隨時(shí)間變化對大腸桿菌的影響

    通過對上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析后發(fā)現(xiàn),各組中接受光照處理的大腸桿菌下降梯度都隨著光照時(shí)間的增加而升高,而在各核黃素濃度處理下,不同的光照強(qiáng)度對大腸桿菌的影響也各不相同。高強(qiáng)度的光照(100 mW/cm2)與低強(qiáng)度光照(50 mW/cm2)相比,大腸桿菌的梯度下降更快,兩者在150 μM核黃素濃度處理光照35 min時(shí)對大腸桿菌的處理效果最大差異可達(dá)2.72 log(圖2)。

    圖2 各核黃素濃度下不同光照強(qiáng)度在各時(shí)間段對大腸桿菌的影響

    相關(guān)性分析顯示在各核黃素濃度下,光照強(qiáng)度與血漿中的大腸桿菌處理效果間呈較強(qiáng)的正相關(guān)(r2=0.45~1.00)(P=0.003 1~0.53)(圖3)。

    圖3 各核黃素濃度下不同光照強(qiáng)度與大腸桿菌處理效果間的關(guān)系

    4 不同核黃素濃度隨時(shí)間變化對大腸桿菌的影響

    在特定光照強(qiáng)度下,不同核黃素濃度對大腸桿菌的處理效果也隨著光照時(shí)間的增加而增加,其中高濃度核黃素(300 μM)較低濃度核黃素(50 μM)對大腸桿菌有更好的處理效果,其在75 mW/cm2光照45分鐘時(shí)兩者對大腸桿菌處理效果上的差異可達(dá)2.22 log(圖4)。

    圖4 各光照強(qiáng)度下不同核黃素濃度在各時(shí)間段對大腸桿菌的影響

    相關(guān)性分析顯示在50 mW/cm2和75 mW/cm2的光照強(qiáng)度下,核黃素濃度與血漿中的大腸桿菌處理效果間呈正相關(guān)(r2=0.84和0.66,P=0.084和0.19),而在100 mW/cm2高光照強(qiáng)度下,兩者則無明顯相關(guān)性(r2=0.01,P=0.87)(圖5)。

    圖5 不同光照強(qiáng)度下核黃素濃度與大腸桿菌處理效果間的關(guān)系

    討 論

    核黃素是一種多環(huán)平面結(jié)構(gòu)的芳香族化合物,其有四個(gè)吸收峰,其中三個(gè)在紫外光波段,1個(gè)在可見光波段。當(dāng)核黃素在符合其吸收峰的范圍內(nèi)受到光照能最大程度上激發(fā)其光化學(xué)反應(yīng),并通過反應(yīng)中所產(chǎn)生的電子轉(zhuǎn)移和氧化作用對病原體的核酸造成不可逆的損傷,從而阻止其復(fù)制和轉(zhuǎn)錄,達(dá)到滅活病原體的目的[10-11]。而紫外光因其良好的病原體滅活特性和熟知度而被廣泛應(yīng)用,如國外已投入應(yīng)用的Mirasol病原體滅活系統(tǒng)主要依賴核黃素結(jié)合廣譜紫外光(265~370 nm)對病原體進(jìn)行滅活。然而由于紫外光攜帶更高的光子能量,其在對病原體產(chǎn)生更強(qiáng)殺傷的同時(shí)也會對血液成分的功能和質(zhì)量產(chǎn)生負(fù)面影響[12-13]。此外,紫外光對塑料制品和碳?xì)浠衔镅b置的破壞也是不可忽略的問題之一[14-15]。因此,考慮使用可見光作為另一種替代光源或許可以在一定程度上彌補(bǔ)紫外光在這些方面所存在的短板。以420 nm可見光為例,其同樣處在核黃素的吸收峰之中,在被光照激活后有著和紫外光相似的光化學(xué)反應(yīng)和光照產(chǎn)物[16];其在病原體滅活方面也有著不俗的表現(xiàn),已有研究證實(shí)可見光可有效滅活鼠白血病病毒(MLV),HBV,大腸桿菌,金黃色葡萄球菌等病原體[17-20];另外可見光本身發(fā)射的能量較小,有助于減小對血液成分的影響[21]。因此,這些優(yōu)勢和實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)為本研究的開展提供了理論支持。

    根據(jù)核黃素結(jié)合紫外光實(shí)驗(yàn)方法建立的相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),可能影響血液成分病原體處理效果的因素有包括光照強(qiáng)度、光照時(shí)間、核黃素濃度、細(xì)菌種類和濃度等[22-24],這為本研究的設(shè)計(jì)提供了方法指引。為了更好地了解不同條件對核黃素可見光處理效果的影響,本研究主要對光照強(qiáng)度、光照時(shí)間、核黃素濃度進(jìn)行重點(diǎn)研究,結(jié)果證實(shí)核黃素結(jié)合420 nm可見光對血漿中的大腸桿菌有一定的處理效果,綜合來看,高強(qiáng)度的光照(100 mW/cm2)協(xié)同高濃度的核黃素(150 μM和300 μM)能夠有效降低血漿中大腸桿菌的濃度達(dá)到4 log以上。根據(jù)時(shí)間效果曲線的分析,光照強(qiáng)度對大腸桿菌的處理效果有著重要影響,在同一核黃素濃度處理組中,接受高強(qiáng)度的光照處理在各時(shí)間點(diǎn)相較于低強(qiáng)度光照大腸桿菌梯度下降速度更快,濃度差異更大,而在較高的核黃素處理組中,這種差異更為顯著,最大差異可達(dá)到2 log以上。相關(guān)性分析也證實(shí)光照強(qiáng)度與大腸桿菌的處理效果間存在明顯的正相關(guān),即大腸桿菌的處理效果伴隨著光照強(qiáng)度的增加而增強(qiáng)。另一方面,核黃素濃度對大腸桿菌的處理效果也有一定的影響,不過這種影響范圍較窄,主要體現(xiàn)在高濃度的核黃素處理組(150和300 μM)中,在部分時(shí)間段高濃度與低濃度核黃素對大腸桿菌處理效果上的差異也可達(dá)到2 log以上。進(jìn)一步分析證實(shí)核黃素濃度與大腸桿菌的處理效果也存在一定相關(guān)性,雖然100 mW/cm2的高光照強(qiáng)度中并未體現(xiàn)出這一相關(guān)性,其原因可能是除了核黃素以外,其他物理因素如光照產(chǎn)生的熱量也對大腸桿菌產(chǎn)生了影響。值得注意的是,在一些紫外光協(xié)同核黃素的相關(guān)研究中,50μM以上濃度的核黃素對VSV的影響很小,這與本研究中可見光協(xié)同核黃素的結(jié)果存在矛盾,推測這可能是因?yàn)樽贤夤獾拇┩噶^差,而過量核黃素會阻止紫外線穿透至液體溶液的深層[25],而可見光相較于紫外光有著更強(qiáng)的穿透力,因此能使更高濃度的核黃素發(fā)揮其病原體滅活的作用。

    因此,根據(jù)目前的實(shí)驗(yàn)條件和數(shù)據(jù),高強(qiáng)度光照協(xié)同高濃度核黃素在420 nm可見光的光照處理后可有效降低血漿中的大腸桿菌達(dá)4 log以上,這為今后進(jìn)一步評估和完善病原體滅活方法的有效性,以及開發(fā)具有自主知識產(chǎn)權(quán)的核黃素光化學(xué)病原體滅活技術(shù)提供了一定的理論依據(jù)。該研究也存在一些局限性,首先研究中僅使用大腸桿菌作為實(shí)驗(yàn)菌,尚未評估該方法對多種細(xì)菌的處理效果;其次,目前尚未對血液成分的功能影響進(jìn)行深入研究,根據(jù)周子瑜等人[20]的研究發(fā)現(xiàn),在使用400~500 nm可見光對添加了1 500μM核黃素的含有HBV病毒的紅細(xì)胞進(jìn)行光照處理后能夠顯著降低病毒DNA拷貝數(shù)。同時(shí),也未發(fā)現(xiàn)其對紅細(xì)胞的功能產(chǎn)生顯著影響,而其他相關(guān)研究也顯示,接受405 nm可見光光照(無核黃素)5 h后的血小板雖然出現(xiàn)代謝變化(葡萄糖降低,乳酸增加)和線粒體呼吸功能的降低(基礎(chǔ)呼吸,ATP產(chǎn)量,最大呼吸),不過都處在可接受范圍,且可通過添加抗氧化劑改善血小板的線粒體狀態(tài)[26],這些積極的結(jié)果為后期的功能研究提供了良好的實(shí)踐基礎(chǔ)。最后,其他可能影響大腸桿菌處理效果的因素如細(xì)菌濃度、細(xì)菌種類、液面厚度、光照距離等并未納入本次研究的考量范圍,有必要進(jìn)行進(jìn)一步的深入研究。

    利益沖突所有作者均聲明不存在利益沖突

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