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    巖藻黃素對小鼠非酒精性脂肪性肝病的修復(fù)作用

    2024-03-10 13:12:34任祥雨鄭佳文田笑笑曹洪杰李航婷唐云平楊最素
    食品科學(xué) 2024年3期
    關(guān)鍵詞:巖藻黃素脂質(zhì)

    任祥雨,鄭佳文,田笑笑,曹洪杰,李航婷,唐云平,楊最素

    (浙江海洋大學(xué)食品與藥學(xué)學(xué)院,浙江省海洋生物醫(yī)用制品重點工程技術(shù)研究中心,浙江 舟山 316022)

    非酒精性脂肪性肝?。╪on-alcoholic fatty liver disease,NAFLD)是一種與酒精無關(guān)的、以彌漫性肝細(xì)胞大泡性脂肪變性為主要特征的一類臨床病理綜合征。NAFLD可從脂肪變性發(fā)展為非酒精性脂肪性肝炎、纖維化、肝硬化,容易發(fā)展為癌癥,是目前最常見的慢性肝臟疾病[1]。NAFLD的全球患病率為25%,NAFLD已成為全球關(guān)注的公共健康問題,患者會同時出現(xiàn)2型糖尿病、高血脂、高血壓和心腦血管疾病等并發(fā)癥[2]。目前,臨床上缺乏針對NAFLD的特效藥物。盡管NAFLD發(fā)病機(jī)制尚未完全明晰,但肝脂質(zhì)聚積所致的氧化應(yīng)激、炎性應(yīng)激等是導(dǎo)致疾病發(fā)生發(fā)展的重要機(jī)制[3]。研究顯示,高脂飲食是導(dǎo)致NAFLD的形成與發(fā)生的重要因素[4]。NAFLD患者通常會出現(xiàn)體脂和肝質(zhì)量的增加、血脂水平變化以及肝脂肪病變,并伴隨著炎癥的發(fā)生。因此對于NAFLD的預(yù)防和治療仍然強調(diào)健康的生活方式和降低體質(zhì)量的重要性。

    已有的研究表明,從海洋褐藻中提取的非VA類胡蘿卜素——巖藻黃素是一種呈橙紅色的粉末狀物質(zhì),其分子式為C42H58O6,密度為1.09 g/cm3,熔點為166~168 ℃。其不溶于水,易溶于有機(jī)溶劑,穩(wěn)定性較差,但具有強大的抗氧化、減輕炎癥等生理活性,且分子質(zhì)量很小,很容易被生物體吸收[5]。本實驗室前期研究發(fā)現(xiàn),巖藻黃素對小鼠急性酒精性肝損傷具有保護(hù)作用,其機(jī)制是激活核轉(zhuǎn)錄因子紅系2相關(guān)因子2(nuclear factor-erythroid 2-related factor 2,Nrf2)介導(dǎo)的抗氧化防御和抑制由Toll樣受體(Toll-like receptor,TLR)介導(dǎo)的炎癥機(jī)制相關(guān)[6]。此外,還發(fā)現(xiàn)巖藻黃素可以改善體外NAFLD細(xì)胞模型中的脂質(zhì)沉積,降低炎癥因子白細(xì)胞介素(interleukin,IL)-1β、IL-6和腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)的釋放,通過抑制TLR4信號通路的關(guān)鍵蛋白并通過過氧化物酶體增殖物激活受體α(peroxisome proliferators-activated receptors α,PPARα)途徑改善Chang liver細(xì)胞脂質(zhì)代謝平衡而發(fā)揮作用[7]。然而巖藻黃素對高脂飼料誘導(dǎo)C57BL/6J小鼠建立的NAFLD模型是否具有修復(fù)作用目前報道不多。本實驗通過給予8 周高脂飼料喂養(yǎng)小鼠,建立小鼠非酒精性脂肪性肝病的動物模型后,從體內(nèi)途徑通過檢測小鼠生理、生化指標(biāo)的變化,肝臟中主要抗氧化酶和炎癥因子的水平、降脂抗炎信號傳導(dǎo)途徑相關(guān)蛋白表達(dá)的變化,來探究巖藻黃素對高脂飲食誘導(dǎo)的小鼠NAFLD的修復(fù)作用機(jī)制,為開發(fā)海洋來源的天然抗氧化劑在慢性肝病中的防治作用提供實驗依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 動物、材料與試劑

    雄性C57BL/6J小鼠52 只(4 周齡,體質(zhì)量為16~18 g),購自浙江省實驗動物中心(生產(chǎn)許可證號:SCXK 2014-0001)。實驗小鼠均在本校SPF級動物房(SYXK(浙)2014-0013)中飼養(yǎng),飼養(yǎng)條件為24~26 ℃、60%相對濕度、12 h光/暗循環(huán)控制條件,自由進(jìn)食進(jìn)水(全營養(yǎng)滅菌飼料,去離子水),適應(yīng)性飼養(yǎng)1 周后對所有小鼠進(jìn)行稱質(zhì)量并分組開始實驗。

    60%高脂實驗鼠糧(D12492)蘇州雙獅實驗動物飼料科技有限公司;巖藻黃素(70%)山東潔晶集團(tuán)股份有限公司;脂聯(lián)素、瘦素試劑盒 武漢伊萊瑞特生物科技股份有限公司;低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)、高密度脂蛋白膽固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDL-C)、游離脂肪酸(free fatty acid,F(xiàn)FA)、脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)和糖原染色(periodic acidschiff stain,PAS)試劑盒 南京建成生物工程研究所;蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,H&E)染色試劑盒上海碧云天生物技術(shù)有限公司;DAB免疫組織化學(xué)試劑盒博士德生物工程有限公司;BCA蛋白濃度測定試劑盒、三羥甲基氨基甲烷、ECL Plus超敏發(fā)光液、20×TBS、牛血清白蛋白V 北京索萊寶科技有限公司;甲醇、吐溫80 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;甘氨酸上海麥克林生化科技股份有限公司;十二烷基硫酸鈉GEN-VIEW科技有限公司;NAD(P)H-醌氧化還原酶1(NAD(P)H quinone oxidoreductase 1,NQO1)、血紅素氧合酶1(heme oxygenase-1,HO-1)、甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)、Kelch樣環(huán)氧氯丙烷相關(guān)蛋白1(Kelch-like epichlorohydrin-associated protein-1,Keap-1)、Nrf2、谷氨酸-半胱氨酸連接酶(glutamatecysteine ligase modifier,GCLM)、5’-單磷酸腺苷活化蛋白激酶(adenosine 5’-monophosphate-activated protein kinase,AMPK)、磷酸化乙酰輔酶A羧化酶(p-acetyl-CoA carboxylase,p-ACC)、肉堿脂酰轉(zhuǎn)移酶1(carnitine acyl transferase 1,CPT-1)、固醇調(diào)節(jié)元件結(jié)合蛋白-1c(sterol regulatory element binding protein-1c,SREBP-1c)、PPARα、磷酸化5’-單磷酸腺苷活化蛋白激酶(p-adenosine 5’-monophosphate-activated protein kinase,p-AMPK)、乙酰輔酶A羧化酶(acetyl-CoA carboxylase,ACC)、脂肪酸合酶(fatty acid synthase,F(xiàn)AS)武漢三鷹生物科技有限公司;TLR4、髓樣分化因子88(myeloid differentiation factor 88,MyD88)、磷酸化人核因子κB抑制蛋白α(p-nuclear factor κB inhibitory protein α,p-IκBα)、磷酸化核因子κB(p-nuclear factor kappa-B,p-NF-κB)蛋白 上海碧云天生物科技有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    CX31型光學(xué)顯微鏡 日本OLYMPUS公司;RM2135型切片機(jī)、HI1210型攤片機(jī)、H1220型烤片機(jī)德國Leica公司;SpectraMax型酶標(biāo)儀、Mini sub cell型電泳系統(tǒng) 美國Bio-Rad公司;BSA124S型電子天平德國Satorius AG公司;CF16RX II型高速低溫離心機(jī)日本日立公司;Fluor Chem FC3型化學(xué)發(fā)光成像分析系統(tǒng)美國ProteinSimple公司。

    1.3 方法

    1.3.1 動物分組

    實驗動物分組情況如圖1所示,適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周后,隨機(jī)挑選14 只小鼠喂養(yǎng)普通飼料(Con組),其余38 只小鼠均給予高脂飼料進(jìn)行自由進(jìn)食,8 周后,從Con組和高脂飼料(high fat diet,HFD)組中各挑選小鼠2 只,進(jìn)行血清生化指標(biāo)檢測和肝臟組織學(xué)觀察,發(fā)現(xiàn)高脂飼料組中血清生化指標(biāo)(谷草轉(zhuǎn)氨酶(aspartate aminotransferase,AST)、谷丙轉(zhuǎn)氨酶(alanine aminotransferase,ALT)等)明顯高于Con組,且伴有肝細(xì)胞中的空泡樣脂肪沉著,表明NAFLD小鼠模型建立成功。然后將喂養(yǎng)高脂飼料的小鼠隨機(jī)分為3 組(每組12 只)進(jìn)行灌胃治療,每日1 次,連續(xù)6 周:1)普通飼料+生理鹽水(HFD組);2)普通飼料+20 mg/kgmb巖藻黃素(Fx-20組);3)普通飼料+40 mg/kgmb巖藻黃素(Fx-40組)。每周記錄小鼠的體質(zhì)量。第14周結(jié)束時小鼠禁食12 h后全部處死。肝臟、脂肪解剖離體后立即稱質(zhì)量并進(jìn)行觀察拍照,所有組織和血清按實驗所需要保存?zhèn)溆谩?/p>

    圖1 小鼠分組和實驗方法Fig.1 Grouping and treatments of mice

    1.3.2 小鼠Lee’s指數(shù)的計算

    根據(jù)小鼠的體質(zhì)量與體長,計算Lee’s指數(shù)。其計算公式為:

    1.3.3 小鼠血清生化指標(biāo)的測定

    小鼠眼球取血,4 ℃、10000 r/min離心5 min取血清。血清樣本收集后于-80 ℃儲存,谷草轉(zhuǎn)氨酶(aspartate aminotransferase,AST)、谷丙轉(zhuǎn)氨酶(alanine aminotransferase,ALT)活力,總膽固醇(total cholesterol,TC)、甘油三酯(triglyceride,TG)、LDL-C、HDL-C、游離脂肪酸(free fatty acid,F(xiàn)FA)脂聯(lián)素和瘦素含量按試劑盒說明書進(jìn)行測定。

    1.3.4 小鼠肝臟中炎癥因子和抗氧化指標(biāo)的測定

    稱取一定質(zhì)量的肝臟,用生理鹽水均質(zhì)處理制成10%的勻漿液,混合液以4000 r/min離心10 min后,取上清液,依照試劑盒操作說明對肝臟中炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α以及抗氧化指標(biāo)MDA、SOD、谷胱甘肽(glutathione,GSH-Px)、CAT含量進(jìn)行測定。

    1.3.5 小鼠組織切片和形態(tài)學(xué)分析

    1)H&E染色和PAS:小鼠肝臟、脂肪組織取出后,切成1 cm2大小立即放入4%中性甲醛固定液中固定,經(jīng)脫水、包埋、制片,按說明書染色后,在光學(xué)顯微鏡下觀察并拍照。

    2)油紅O染色:小鼠肝組織取出后經(jīng)常規(guī)方法進(jìn)行冰凍切片,按試劑盒說明進(jìn)行油紅O染色,光學(xué)顯微鏡下觀察并拍照。

    3)透射電鏡觀察:小鼠肝組織取出后,切成0.5 cm2大小立即放入2.5%戊二醛固定液中固定,委托浙江大學(xué)電鏡中心進(jìn)行透射電鏡觀察。

    1.3.6 蛋白免疫印跡法檢測小鼠肝臟中相關(guān)蛋白的表達(dá)情況

    提取肝臟中蛋白:液氮中研磨肝組織,加入預(yù)先配制含有蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液并充分混勻,4 ℃條件下10000 r/min離心10 min,取上清液,BCA法測定各個樣品的蛋白濃度,加入適量的5×蛋白上樣緩沖液并在95 ℃金屬浴條件下10 min致蛋白質(zhì)變性,封口后于-20 ℃保存。蛋白免疫印跡法參考Ren Xiangyu等[8]方法進(jìn)行。

    1.3.7 免疫組織化學(xué)法觀察小鼠肝臟中p-AMPK、p-ACC、FAS的表達(dá)

    小鼠肝臟切片至5 μm厚,脫蠟至水,EDTA高溫高壓進(jìn)行修復(fù)抗原,3% H2O2封閉內(nèi)源性過氧化物酶10 min,37 ℃、5% BSA封閉30 min,一抗4 ℃孵育過夜,二抗孵育30 min,滴加DAB顯色,鏡下控制時間,蘇木素染核2 min,脫水、透明、中性樹膠封片后在光學(xué)顯微鏡下觀察各蛋白的表達(dá)情況并拍照,隨后用ImageJ軟件對各蛋白表達(dá)量進(jìn)行半定量分析。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

    2 結(jié)果與分析

    2.1 巖藻黃素對小鼠體質(zhì)量和肝臟指數(shù)的影響

    如圖2所示,飼喂高脂飼料的小鼠出現(xiàn)明顯的體質(zhì)量上升和豎毛現(xiàn)象。第9周開始用巖藻黃素干預(yù)后,小鼠體質(zhì)量開始下降,特別是Fx-40組的小鼠體質(zhì)量接近于Con組。此外,和Con組相比,HFD組小鼠的肝臟指數(shù)和Lee’s指數(shù)也顯著上升(P<0.01),而巖藻黃素組逆轉(zhuǎn)了這一現(xiàn)象,F(xiàn)x-40組小鼠的肝臟指數(shù)和Lee’s指數(shù)與Con組相比無顯著差異(P>0.05)。說明巖藻黃素對抑制高脂飲食引起的體質(zhì)量和肝質(zhì)量增加效果明顯。

    圖2 巖藻黃素對NAFLD小鼠體質(zhì)量、肝臟指數(shù)的影響Fig.2 Effect of fucoxanthin on body mass and liver index in NAFLD mice

    2.2 巖藻黃素對小鼠脂肪質(zhì)量的影響

    相較于皮下脂肪,內(nèi)臟脂肪的顯著增加更能直觀地反映出小鼠存在代謝紊亂、肥胖等健康問題。如圖3所示,HFD誘導(dǎo)后小鼠體內(nèi)附睪和腎周脂肪明顯增多,與HFD組相比,用巖藻黃素干預(yù)的小鼠脂肪質(zhì)量顯著減少(P<0.01)。同時,對各組的附睪脂肪進(jìn)行H&E染色,結(jié)果顯示,與Con組相比,HFD組小鼠附睪脂肪細(xì)胞明顯增大,而經(jīng)巖藻黃素處理后小鼠的附睪脂肪細(xì)胞明顯減小。

    圖3 巖藻黃素對NAFLD小鼠脂肪質(zhì)量的影響Fig.3 Effect of fucoxanthin on fat mass in NAFLD mice

    2.3 巖藻黃素對小鼠血清ALT和AST活力的影響

    血清ALT、AST的檢測結(jié)果如圖4所示,對比Con組,HFD組的ALT和AST活力出現(xiàn)了異常升高。而與HFD組相比,巖藻黃素給藥組小鼠血清中的ALT和AST活力均顯著降低(P<0.01)。

    圖4 巖藻黃素對NAFLD小鼠血清ALT(A)和AST(B)水平的影響Fig.4 Effect of fucoxanthin on the serum levels of ALT (A) and AST (B)in NAFLD mice

    2.4 巖藻黃素對小鼠血脂水平的影響

    小鼠血清中脂質(zhì)代謝參數(shù)TG、TC、LDL-C、HDL-C和FFA的含量如表1所示。相較于Con組,HFD組小鼠血清中TG、TC、LDL-C和FFA含量均顯著升高(P<0.01),而HDL-C則顯著性下降(P<0.01)。與此同時,巖藻黃素組中小鼠的TG、TC、LDL-C和FFA含量相較于HFD組則顯著下降(P<0.01),并且基本恢復(fù)到正常水平,而HDL-C含量明顯升高。

    表1 巖藻黃素對NAFLD小鼠血脂水平的影響Table 1 Effect of fucoxanthin on blood lipid levels in NAFLD micemmol/L

    2.5 巖藻黃素對小鼠血清脂聯(lián)素和瘦素水平的影響

    如圖5所示,HFD誘導(dǎo)使小鼠血清中脂聯(lián)素水平下降,瘦素水平上升。而與HFD組相比,巖藻黃素可降低血清中瘦素水平,并增加脂聯(lián)素的分泌。

    圖5 巖藻黃素對NAFLD小鼠血清脂聯(lián)素(A)和瘦素(B)水平的影響Fig.5 Effect of fucoxanthin on the serum levels of adiponectin (A) and leptin (B) in NAFLD mice

    2.6 巖藻黃素對小鼠肝臟組織學(xué)結(jié)構(gòu)的影響

    各組小鼠解剖后,取出肝臟用生理鹽水清洗后觀察其形態(tài)的變化。如圖6所示,可見Con組小鼠肝臟體積較小,呈鮮艷的暗紅色,相比之下,HFD組肝臟體積變大,顏色偏黃無光澤,經(jīng)巖藻黃素處理后肝臟的體積減小,顏色與正常相近呈暗紅色。

    圖6 巖藻黃素對NAFLD小鼠肝臟組織形態(tài)學(xué)的影響Fig.6 Effect of fucoxanthin on morphological characteristics of liver tissue in NAFLD mice

    H&E染色結(jié)果顯示,Con組小鼠的肝索呈放射狀排列在中央靜脈周圍、肝細(xì)胞胞質(zhì)內(nèi)少見脂肪滴。而HFD組的肝索排列紊亂,細(xì)胞質(zhì)出現(xiàn)大量空泡樣變性。經(jīng)巖藻黃素處理后肝組織修復(fù)較好,肝索排列整齊,細(xì)胞質(zhì)中空泡較少。

    油紅O染色陽性部位呈紅色顆粒,從圖6可以看出,HFD組肝組織較Con組出現(xiàn)大量的脂質(zhì)沉積,細(xì)胞內(nèi)可見不同大小的脂滴。而巖藻黃素組切片顯示細(xì)胞內(nèi)脂滴分布明顯減少。

    PAS陽性部位為細(xì)胞質(zhì)內(nèi)出現(xiàn)的紫紅色區(qū)域,從圖中可見,HFD組細(xì)胞內(nèi)與細(xì)胞間糖原染色明顯增多,糖原顆粒明顯。巖藻黃素組的糖原陽性區(qū)域明顯減少。

    2.7 巖藻黃素對小鼠肝臟超微結(jié)構(gòu)的影響

    如圖7所示,Con組小鼠肝臟細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞器豐富,核膜清晰;HFD組小鼠肝臟中出現(xiàn)大量大小不一、電子密度低的白色圓形脂滴,同時細(xì)胞器結(jié)構(gòu)模糊,粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)減少,滑面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腫脹,核膜不清晰。經(jīng)巖藻黃素干預(yù)后,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的數(shù)量增多,脂滴數(shù)量明顯減少,線粒體明顯增多。

    圖7 巖藻黃素對NAFLD小鼠肝臟超微結(jié)構(gòu)的影響Fig.7 Effect of fucoxanthin on ultrastructure of liver tissue in NAFLD mice

    2.8 巖藻黃素對小鼠肝臟脂質(zhì)過氧化的影響

    如圖8所示,MDA是細(xì)胞膜脂質(zhì)過氧化的標(biāo)志性產(chǎn)物,與Con組相比,HFD組MDA含量顯著增高(P<0.01),而相較于HFD組,巖藻黃素組小鼠肝臟中MDA的含量明顯降低。肝臟中SOD、GSH-Px和CAT是體內(nèi)固有抗氧化防御系統(tǒng)的標(biāo)志物,與Con組相比,HFD組中SOD、GSH-Px和CAT的活性顯著下降(P<0.01),而巖藻黃素干預(yù)可以逆轉(zhuǎn)由HFD引起的小鼠肝臟中抗氧化酶活力的下降,使其呈劑量依賴性增加。

    圖8 巖藻黃素對NAFLD小鼠肝臟脂質(zhì)過氧化的影響Fig.8 Effect of fucoxanthin on lipid peroxidation of liver tissue in NAFLD mice

    2.9 巖藻黃素對小鼠肝臟中炎癥因子水平的影響

    為探究巖藻黃素對HFD誘導(dǎo)小鼠NAFLD炎癥水平的影響,檢測了血清中炎性因子IL-1β、IL-6和TNF-α的質(zhì)量濃度。如圖9所示,相較于Con組,HFD組小鼠肝臟中IL-1β、IL-6和TNF-α質(zhì)量濃度均顯著增加(P<0.01),而與HFD組相比,巖藻黃素組這3 種因子的質(zhì)量濃度均顯著下降(P<0.01)。

    圖9 巖藻黃素對NAFLD小鼠肝臟中炎癥因子質(zhì)量濃度的影響Fig.9 Effect of fucoxanthin on the levels of inflammatory cytokines in liver tissue of NAFLD mice

    2.10 巖藻黃素對AMPK通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響

    如圖10所示,相較于Con組,HFD組小鼠肝臟中p-AMPK、PPARα蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.01),SREBP-1c、FAS蛋白的表達(dá)上升;給予巖藻黃素干預(yù)后p-AMPK和PPARα的蛋白表達(dá)水平顯著上升(P<0.01),SREBP-1c表達(dá)下降,上調(diào)p-ACC、CPT-1蛋白和抑制FAS蛋白的表達(dá)。

    圖10 巖藻黃素對NAFLD小鼠肝臟中AMPK通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響Fig.10 Effect of fucoxanthin on the expression of proteins associated with AMPK signaling pathway in liver tissue of NAFLD mice

    為了進(jìn)一步證實該結(jié)論,采用免疫組織化學(xué)法檢測小鼠肝臟組織中p-AMPK、p-ACC和FAS蛋白的表達(dá),細(xì)胞質(zhì)中出現(xiàn)的棕黃色結(jié)構(gòu)即為陽性部位。如圖11所示,經(jīng)各蛋白的半定量分析結(jié)果可以看出,免疫組織化學(xué)的結(jié)果與蛋白免疫印跡法結(jié)果一致。

    圖11 免疫組織化學(xué)法檢測NAFLD小鼠肝臟中p-AMPK、p-ACC和FAS光學(xué)顯微鏡照片和蛋白表達(dá)情況Fig.11 Immunohistochemical results of optical microscope photo and the protein expression of p-AMPK,p-ACC and FAS in liver tissue of NAFLD mice

    2.11 巖藻黃素對Nrf2通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響

    為進(jìn)一步探討巖藻黃素對NAFLD小鼠氧化應(yīng)激關(guān)鍵調(diào)控蛋白的影響,檢測了Keap/Nrf2通路關(guān)鍵蛋白的表達(dá)。如圖12所示,HFD喂養(yǎng)后可顯著提高小鼠肝臟中Keap-1的水平(P<0.01),同時抑制Nrf2及其下游抗氧化蛋白HO-1、NQO1和GCLM的表達(dá)水平。巖藻黃素給藥組顯著改變了這些蛋白的表達(dá)水平(P<0.01),與Con組的表達(dá)情況一致,說明巖藻黃素可以通過激活Nrf2介導(dǎo)的抗氧化反應(yīng),從而減輕HFD對小鼠肝臟造成的氧化應(yīng)激。

    圖12 巖藻黃素對NAFLD小鼠肝臟中Nrf2通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響Fig.12 Effect of fucoxanthin on the expression of proteins associated with the Nrf2 signaling pathway in liver tissue of NAFLD mice

    2.12 巖藻黃素對TLR4通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響

    TLR4信號通路與NAFLD發(fā)展過程密切相關(guān),從圖13可以看出,相較于Con組,HFD組小鼠肝臟中TLR4表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.01),同時啟動下游信號級聯(lián),誘導(dǎo)MyD88、p-IκBα和p-NF-κB (p65)表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.01)。而巖藻黃素有效抑制了這些蛋白的上調(diào),表明巖藻黃素能通過減少TLR4蛋白的表達(dá),繼而抑制其與下游MyD88的結(jié)合,減少炎癥因子的合成及活化,從而達(dá)到抑制炎癥產(chǎn)生、緩解肝臟損傷的目的。

    圖13 巖藻黃素對NAFLD小鼠肝臟中TLR4通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響Fig.13 Effect of fucoxanthin on the expression of proteins associated with the TLR4 signaling pathway in liver tissue of NAFLD mice

    3 討論

    隨著生活方式及飲食習(xí)慣的改變,全球代謝綜合征患病率不斷上升,NAFLD已取代病毒性肝病成為全球第一肝病,對病人的身體造成嚴(yán)重的影響并加重了經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)。然而NAFLD尚無明確的發(fā)病機(jī)制,缺乏有效的防治方法[9]。目前的“多重打擊假說”已取代了“二次打擊”,從最初的脂質(zhì)堆積和單純脂肪變性,逐漸演變?yōu)榫€粒體功能障礙、氧化應(yīng)激、脂肪和細(xì)胞因子改變等,最終導(dǎo)致NAFLD發(fā)展為非酒精脂肪性肝炎[10],因此減脂、抗氧化應(yīng)激、抗炎癥反應(yīng)仍是防治的要點[11-12]。

    本實驗發(fā)現(xiàn),經(jīng)高脂飲食誘導(dǎo)可成功建立NAFLD模型,表現(xiàn)為小鼠體質(zhì)量異常增加,肝臟指數(shù)和Lee’s指數(shù)增加,肝組織結(jié)構(gòu)中出現(xiàn)大量的脂滴堆積,附睪和腎周脂肪的質(zhì)量增加及脂肪細(xì)胞體積增大,肝功能敏感指標(biāo)ALT、AST升高,并伴有血清TG、TC和LDL-C等血脂水平的增高,而給予巖藻黃素后改善了這些異常表現(xiàn),使肝的形態(tài)結(jié)構(gòu)、肝功能敏感指標(biāo)和血脂水平恢復(fù)到正常范圍。同時使用巖藻黃素后減輕了氧化應(yīng)激水平,表現(xiàn)為SOD、GSH-Px和CAT水平的升高,MDA水平的降低;炎癥因子IL-1β、IL-6和TNF-α的質(zhì)量濃度呈現(xiàn)明顯下降,表明巖藻黃素通過抑制脂質(zhì)水平和減輕氧化應(yīng)激改善小鼠NAFLD,這與文獻(xiàn)報道的修復(fù)NAFLD的活性物質(zhì)的機(jī)制[13-14]相似。另有研究表明,肥胖小鼠的脂肪組織可分泌過量的瘦素,并與下丘腦神經(jīng)元上的瘦素受體發(fā)生結(jié)合,從而降低食欲,減輕體質(zhì)量[15]。脂聯(lián)素也是由脂肪細(xì)胞分泌產(chǎn)生,可調(diào)節(jié)血清中的葡萄糖和脂質(zhì)水平,并減少肝臟中的脂質(zhì)積累[16],實驗中給予巖藻黃素改善NAFLD的作用可通過降低血清中瘦素水平、升高脂聯(lián)素的分泌而實現(xiàn)。

    AMPK可通過調(diào)節(jié)脂質(zhì)分解代謝和合成代謝來改善能量代謝的激酶,并調(diào)節(jié)相關(guān)基因和蛋白的表達(dá),因此是代謝疾病的潛在治療靶標(biāo)。AMPK活化可能通過抑制肝臟中的脂肪生成、增加ACC的磷酸化來改善脂肪酸氧化,抑制NAFLD[17]。AMPK信號通路活化可以改善NAFLD小鼠肝臟的脂質(zhì)沉積[18]。在NAFLD中,PPARα的激活可預(yù)防TG的積累,調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)[19];并可通過誘導(dǎo)CPT-1表達(dá)而增加游離脂肪酸氧化[20]。而AMPK是下游ACC、SREBP-1c和FAS的主要激酶調(diào)節(jié)因子[21-22],其中ACC主要存在于合成脂類組織的細(xì)胞質(zhì)中[23];SREBP-1c是一種細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)錄因子,主要被胰島素激活,在脂質(zhì)合成的誘導(dǎo)中起核心作用[24];FAS是脂肪酸從頭合成的關(guān)鍵酶[25],其過表達(dá)會導(dǎo)致大量脂肪酸的合成,SREBP-1c通過刺激FAS來誘導(dǎo)脂肪酸和TG的合成。有研究表明,在糖尿病小鼠模型中巖藻黃素能通過激活A(yù)MPK調(diào)節(jié)糖原生成[26-27]。因此檢測AMPK通路的相關(guān)蛋白可判斷巖藻黃素是否激活該通路影響能量代謝。本實驗結(jié)果表明,在HFD組中,AMPK通路蛋白受到抑制,同時脂質(zhì)合成關(guān)鍵蛋白的表達(dá)增加,而巖藻黃素改變了這一現(xiàn)象:激活A(yù)MPK通路,通過PPARα途徑改善肝臟脂質(zhì)代謝平衡,減少脂質(zhì)的生成,促進(jìn)NAFLD修復(fù)。

    脂質(zhì)積累的衰減和氧化應(yīng)激的抑制將是治療NAFLD的有效方法[28]。Nrf2信號作為關(guān)鍵的細(xì)胞防御系統(tǒng),通過調(diào)節(jié)一系列基因來防止病理性損傷[29]。Nrf2信號還參與負(fù)控制脂質(zhì)積累,不僅通過抑制FFA攝取因子,也可通過激活PPARα信號來調(diào)節(jié)脂肪酸代謝和轉(zhuǎn)運[30]。Nrf2通過參與脂質(zhì)代謝、炎癥和抗氧化反應(yīng)的調(diào)節(jié),在NAFLD的發(fā)展中起關(guān)鍵作用[31]。有報道稱,橘子素通過Nrf2途徑改善高脂肪飲食誘導(dǎo)的NAFLD小鼠的肝脂肪變性和氧化應(yīng)激[32]。本實驗通過檢測Keap/Nrf2介導(dǎo)的抗氧化通路相關(guān)蛋白的表達(dá),發(fā)現(xiàn)巖藻黃素可明顯降低Keap-1的水平,增加Nrf2及其下游抗氧化蛋白HO-1、NQO1和GCLM的表達(dá)水平,因此巖藻黃素通過調(diào)節(jié)肝細(xì)胞抗氧化系統(tǒng)和脂質(zhì)過氧化反應(yīng)而發(fā)揮修復(fù)作用。

    TLR4信號傳導(dǎo)是先天免疫的關(guān)鍵組成部分,與NAFLD的發(fā)病機(jī)制有關(guān),當(dāng)其與特異性配體結(jié)合后,可通過系列的級聯(lián)反應(yīng)激活信號通路下游的炎癥因子,導(dǎo)致肝臟損傷[33]。有研究證明,TLR4、MyD88、p-NF-κB/NF-κB的水平在HFD誘導(dǎo)的NAFLD大鼠肝臟中顯著增加[34],本實驗結(jié)果與此相似,即給予巖藻黃素后,這些相關(guān)的蛋白表達(dá)明顯下降,表明巖藻黃素可通過TLR4/NF-κB途徑介導(dǎo)其在NAFLD修復(fù)中的作用。

    綜上所述,本研究認(rèn)為巖藻黃素對HFD誘導(dǎo)的小鼠NAFLD有一定的修復(fù)作用,通過調(diào)節(jié)脂質(zhì)代謝、抑制氧化應(yīng)激、調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)等多途徑、多靶點起作用,從而對HFD誘導(dǎo)NAFLD的“多重打擊”具有保護(hù)作用,為揭示巖藻黃素修復(fù)NAFLD的機(jī)制提供新的思路。

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