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    miR-140-3p 靶向AGT5 調控鼻咽癌細胞增殖、侵襲、遷移及自噬研究

    2024-01-30 13:58:54王忠巧司峰志
    生物醫(yī)學工程與臨床 2023年6期
    關鍵詞:質粒靶向蛋白

    王忠巧,高 妍,司峰志

    鼻咽癌(nasopharyngeal carcinoma,NPC)是頭頸部常見惡性腫瘤之一,進展快,復發(fā)率高,很多患者初次就診時已經出現(xiàn)遠處轉移。因此,探索NPC 進展分子機制、 尋找新的治療靶點迫在眉睫。 微小RNA(microRNA,miRNA)是一類22nt 的非編碼RNA,參與調控癌細胞的惡性生物學進程。 研究顯示,miR-140-3p 在多種腫瘤組織中差異表達, 參與調控細胞增殖、侵襲并促進細胞凋亡的作用[1~3]。Zou X 等[4]研究發(fā)現(xiàn),miR-140-3p 在NPC 患者血漿中低表達,對NPC 具有一定的診斷價值。然而miR-140-3p 對NPC的作用及分子機制尚不明確。自噬是細胞的一種程序性死亡,參與腫瘤的發(fā)生發(fā)展、藥物抵抗等[5]。 抑制自噬可促進NPC 細胞的增殖、轉移,如Zhu Q 等[6]研究發(fā)現(xiàn),上調miR-106a-5p 可抑制NPC 細胞自噬產生,進而促進細胞增殖、侵襲及遷移。但也有文獻報道,抑制自噬可增強NPC 細胞的放化療敏感性[7]。目前多項研究發(fā)現(xiàn),miRNA 參與了腫瘤細胞自噬的調控[8,9]。 筆者所在課題組前期通過生物信息學網站分析發(fā)現(xiàn),miR-140-3p 與自噬相關基因5 (autophagy related genes 5,AGT5)存在核苷酸結合位點,而AGT5 在自噬發(fā)生中扮演著重要角色,因此推測miR-140-3p 可能通過靶向AGT5 調控細胞自噬影響NPC 進展。 基于此, 筆者主要探討了miR-140-3p 對NPC 細胞惡性生物學行為、自噬的影響及其與AGT5 的靶向調控關系,希望為NPC 的防治提供新的靶點。

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料

    1.1.1 實驗細胞

    人NPC 細胞——CNE2 細胞、 人鼻黏膜上皮細胞——HNEpC 細胞(北納生物,中國)。

    1.1.2 主要試劑

    達氏修正伊氏培養(yǎng)液 (Dulbecco’s modified Eagle’s medium,DMEM)(安徽白鯊生物科技有限公司,中國);胎牛血清、0.25%胰蛋白酶(百克賽斯生物科技有限公司,中國);lipofectamine 8000(上海碧云天生物有限公司,中國);TRizol(Invitrogen,美國);引物序列、過表達(overexpression,OE)-AGT5 質粒、OEAGT5 空載體、miR-140-3p 模擬物(mimic)質粒、miR-140-3p 抑制劑(inhibitor)質粒、miR-140-3p mimic 空載體及miR-140-3p inhibitor 空載體、 野生型(wild type,WT)-AGT5 載體、突變型(mutant,MUT)-AGT5載體(北京博爾邁生物技術有限公司,中國);CCK-8(cell counting kit-8)檢測試劑盒(上海生物,中國);CCK-8 試劑盒(杭州赫貝科技有限公司,中國);雙螢光素酶報告基因檢測試劑盒(武漢科謹生物科技有限公司,中國);兔抗人β-actin、微管關聯(lián)蛋白輕鏈3Ⅰ(microtubule-associated protein 1 light,LC3Ⅰ)、 微管關聯(lián)蛋白輕鏈3Ⅱ (microtubule-associated protein 3 light,LC3Ⅱ)、AGT5、自噬關鍵分子酵母Atg6 同系物1(ATG6 autophagy related 6 homolog,Beclin1)、p62、聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction,PCR)試劑盒(上海碧云天生物有限公司,中國)。

    1.1.3 主要儀器

    酶標儀 (美谷分子, 中國);NANOdrop 2000 儀(Bio-rad 公司,美國);十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)凝膠電泳器械(上海懋康生物科技有限公司,中國);天能VE-586 曝光機(上海天能科技有限公司, 中國);ABI 7900 PCR 儀(ABI公司, 美國);ARM200F 原子級分辨率透射電子顯微鏡(電子株式會社,日本)。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng)、轉染及分組

    CNE2、HNEpC 細胞使用含有10%胎牛血清、0.1%青霉素/鏈霉素的DMEM 進行培養(yǎng)。 培養(yǎng)條件:37 ℃、體積分數(shù)5%CO2,每隔2 d 更換新鮮培養(yǎng)液。取傳代3 次對數(shù)生長期的CNE2 細胞接種到6 孔板,細胞鋪滿50%板面積時使用lipofectamine 8000 將不同質粒轉染細胞分為如下各組:miR-140-3p 組(轉染miR-140-3p mimic 質粒),si-miR-140-3p 組(轉染miR-140-3p inhibitor 質粒),miR-空白對照(negative control,NC)組 (轉染miR-140-3p mimic 空載體),NC 組 (轉染miR-140-3p inhibitor 空載體),si-miR-140-3p+OE組(轉染miR-140-3p inhibitor 質粒、OE-AGT5 空載體),si-miR-140-3p + AGT5 組 (轉染miR-140-3p inhibitor 質粒、OE-AGT5 質粒)。 繼續(xù)培養(yǎng)48 h 后進行后續(xù)實驗。

    1.2.2 CCK-8 測定細胞活力

    制備單細胞懸液,按照8000/孔(每孔100 μL)的密度接種在96 孔板上, 并在體積分數(shù)5 % CO2、37 ℃的培養(yǎng)箱中進行孵育處理, 分別在24、48、72 h更換新鮮培養(yǎng)液,加入10 μL CCK-8 溶液,培養(yǎng)箱孵育3 h。孵育結束后采用酶標儀在450 nm 處讀取各處理組細胞的光密度(optical density,OD)。 每組實驗獨立重復3 次。

    1.2.3 Tanswell 實驗測定細胞侵襲、遷移能力

    對于侵襲實驗, 首先用無血清培養(yǎng)液配置基質膠,向Tanswell 小室的上室中加入60 μL 基質膠,放入培養(yǎng)箱中凝固,下室中加入10%胎牛血清,然后制備單細胞懸液;按照1×104個細胞接種到上室,培養(yǎng)48 h后去除培養(yǎng)液,棉簽拭去上室未穿的細胞,上室穿過去的細胞用4%多聚甲醛溶液固定10 min,0.1 %結晶紫染色,光學顯微鏡下拍照、計數(shù)。 對于遷移實驗,上室中不加入基質膠,其他步驟參考侵襲實驗。

    1.2.4 免疫熒光檢測自噬

    制備單細胞懸液,按照1×104/孔(每孔200 μL)的密度接種在6 孔板, 并在體積分數(shù)5%CO2、37 ℃培養(yǎng)箱中進行孵育處理24 h, 然后每孔加入1 μL Ad-mRFP-GFP-LC3B,繼續(xù)培養(yǎng)12 h 后激光共聚焦采集圖像。

    1.2.5 實時定量聚合酶鏈式反應

    實時定量聚合酶鏈式反應(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR) 檢測miR-140-3p 和AGT5 mRNA 的表達。

    使用TRizol 從各組細胞中提取總RNA, 測定濃度、純度。 根據試劑盒說明書逆轉錄成cDNA,然后PCR。 體系:cDNA 2 μL, 上下游引物各0.2 μL,2 ×Tip Green qPCR Sper Mix 5 μL, 焦碳酸二乙酯(diethypyrocarbonate,DEPC)水2.6 μL。條件:95 ℃2 min,95 ℃15 s,60 ℃15 s,共40 個循環(huán),構建溶解曲線。2-△△Ct法表示基因相對含量。內參選擇甘油醛3-磷酸脫氫酶 (glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)、U6。

    引物序列:AGT5,forward 5′-AGGCCTATGTGTTCACCTGC-3′,reverse 5′-CACATCTTGGCGCGAAAGTC-3′;miR-140-3p,forward 5′-GACCCAGTTCAAGTAATTCAG-3′,reverse CGAGCCAAGTAATGGAGAA-3′;GAPDH,forward 5′-TATAAATTGAGCCCGCAGCC-3′,reverse 5′-TACGACCAAATCCGTTGACTC-3′;U6,forward 5′-CTCGCTTCGGCAGCACA-3′;reverse 5′-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3′。

    1.2.6 Western blot

    檢測AGT5、LC3Ⅰ、LC3Ⅱ、Beclin1 和p62 蛋白表達。

    將各處理組細胞裂解物通過二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA)法進行總蛋白定量,按照1 ∶4 的比例向上清液中加入5× 蛋白上樣緩沖液,并于沸水中加熱變性10 min。 取50 μg 蛋白進行SDS-PAGE電泳進行蛋白分離,采用濕轉法將分離的蛋白轉至聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜上,用5%脫脂牛奶于室溫下封閉2 h 后,分別加入AGT5(1 ∶1000)、LC3Ⅰ(1 ∶1000)、LC3Ⅱ(1 ∶1000)、Beclin1(1 ∶1000)及p62(1 ∶1000)一抗,在4 ℃條件下?lián)u床孵育過夜。 用Tris 鹽緩沖溶液-吐溫 (Tris-buffered saline Tween,TBST)溶液清洗3 次,每次5 min,以辣根酶標記的二抗(1 ∶1000)室溫孵育1 h,以TBST 溶液清洗3 次,每次5 min。最后均勻滴加增強型化學發(fā)光(enhanced chemiluminescence,ECL)溶液后于凝膠成像儀進行曝光拍照。 采用ImageJ 軟件測定條帶灰度值,以目標蛋白與內參β-actin 的比值作為其相對表達量。 以上實驗重復3 次。

    1.2.7 在線網站預測miR-140-3p 與AGT5 的靶向關系

    使用TargetScan 在線網站(http://www.targetscan.org/)預測miR-140-3p 與AGT5 的靶向關系。

    1.2.8 雙熒光素酶報告

    在轉染前24 h,將CNE2 細胞以每孔1×104/mL細胞接種在24 孔板中。 將miR-NC 或miR-140-3p mimics 分別與WT-AGT5、MUT-AGT5 載體共轉染到CNE2 細胞中。 使用雙熒光素酶報告分析系統(tǒng)在轉染后24 h 進行熒光素酶分析。 螢火蟲螢光素酶活性被標準化為每個反應的海腎螢光素酶活性。

    1.3 統(tǒng)計學方法

    使用Graphpad Prism 軟件8.0(Graphpad Software Inc.,美國)進行統(tǒng)計分析。 其中計量資料以均值±標準差表示。 兩組及多組間比較分別采用Student t 檢驗、方差分析。 P <0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。

    2 結果

    2.1 CNE2、HNEpC 細胞AGT5 蛋白及其mRNA、

    miR-140-3p 表達水平比較

    CNE2 細胞miR-140-3p、AGT5 蛋白及其mRNA表達水平低于HNEpC 細胞(P <0.01)。 見圖1、表1。

    表1 CNE2、HNEpC 細胞AGT5 及miR-140-3p 表達水平Tab.1 Expression levels of AGT5 and miR-140-3p in CNE2 and HNEpC cells

    圖1 Western blot 檢測AGT5 蛋白表達電脈圖Fig. 1 Electrophoretograms of AGT5 protein expression detected by Western blot

    2.2 4 組CNE2 細胞增殖、侵襲及遷移比較

    miR-140-3p 組CNE2 細胞48 h、72 h 細胞增殖、侵襲、遷移數(shù)低于miR-NC 組(P <0.01)。si-miR-140-3p 組CNE2 細胞48 h、72 h 細胞增殖、侵襲、遷移數(shù)高于NC 組(P <0.01)。 見圖2 和表2、3。 說明上調miR-140-3p 可抑制細胞的增殖、侵襲及遷移能力。

    表3 miR-140-3p 對4 組CNE2 細胞侵襲、遷移影響的比較Tab.3 Comparison effect of miR-140-3p on invasion and migration in 4 groups of CNE2 cell

    圖2 miR-140-3p 對CNE2 細胞增殖、侵襲及遷移的影響Tanswell 實驗光學顯微鏡圖Fig.2 Tanswell experiment optical microscope images of miR-140-3p effect on proliferation,invasion and migration of CNE2 cells

    2.3 4 組CNE2 細胞自噬蛋白表達比較

    miR-140-3p 組CNE2 細胞LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、Beclin1 蛋白水平, 黃色熒光強度高于miR-NC 組,p62蛋白水平低于miR-NC 組(P <0.01);si-miR-140-3p組細胞LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、Beclin1 蛋白水平,黃色熒光強度低于NC 組,p62 蛋白水平高于NC 組 (P <0.01)。見圖3、4 和表4。 說明miR-140-3p 可促進細胞自噬的發(fā)生。

    表4 4 組細胞自噬相關蛋白表達水平比較Tab.4 Comparison expression levels of autophagy-related protein in 4 groups

    圖3 Western blot 檢測4 組CNE2 細胞自噬蛋白表達的電泳圖Fig. 3 Electrophoretograms of autophagy-related protein expression in 4 groups of CNE2 cell detected by Western blot

    圖4 4 組自噬相關蛋白表達免疫熒光檢測結果比較Fig.4 Comparison results of immunofluorescence detection of autophagy-related protein expression in 4 groups

    2.4 上調AGT5 逆轉miR-140-3p 敲低對CNE2 細胞的影響

    2.4.1 3 組敲低miR-140-3p 后細胞增殖、 侵襲及遷

    移比較

    si-miR-140-3p + OE 組細胞48 h、72 h 細胞增殖、侵襲、遷移細胞數(shù)高于NC 組(P <0.01);si-miR-140-3p+AGT5 組細胞48 h、72 h 細胞增殖、侵襲、遷移細胞數(shù)低于si-miR-140-3p+OE 組(P <0.01)。 見圖5 和表5、6。

    表5 下調AGT5 逆轉miR-140-3p 過表達對3 組CNE2 細胞不同時間細胞增殖的比較Tab.5 Comparison down-regulation of AGT5 reverses miR-140-3p overexpression on proliferation of CNE2 cells at different times in 3 groups

    表6 下調AGT5 逆轉miR-140-3p 過表達對3 組CNE2 細胞侵襲及遷移影響的比較Tab.6 Comparison of down-regulation of AGT5 reversed effect of miR-140-3p overexpression on invasion and migration in 3 groups of CNE2 cell

    圖5 下調AGT5 逆轉miR-140-3p 過表達對3 組CNE2 細胞侵襲及遷移Tanswell 實驗光學顯微鏡圖Fig. 5 Tanswell experiment optical microscope images of down-regulation of AGT5 reversed effect of miR-140-3p overexpression on invasion and migration in 3 groups of CNE2 cell

    2.4.2 3 組miR-140-3p 過表達后細胞自噬比較

    si-miR-140-3p+OE 組細胞LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、Beclin1蛋白水平、黃色熒光強度低于NC 組,p62 蛋白水平高于miR-NC 組(P <0.01);si-miR-140-3p+ AGT5 組細胞LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、Beclin1 蛋白水平、黃色熒光強度高于si-miR-140-3p + OE 組,p62 蛋白水平低于miR-NC 組(P <0.01)。 見圖6、7 和表7。

    表7 3 組細胞自噬相關蛋白表達水平比較Tab.7 Comparison expression levels of autophagy-related proteins in 3 groups

    圖6 Western blot 檢測miR-140-3p 對3 組CNE2 細胞自噬相關蛋白表達電泳圖Fig.6 Electrophoretograms of autophagy-related protein expression of miR-140-3p in 3 groups of CNE2 cell detected by Western blot

    圖7 miR-140-3p 對3 組CNE2 細胞自噬表達影響的免疫熒光圖Fig.7 Immunofluorescence images of miR-140-3p on autophagy expression in 3 groups of CNE2 cells

    2.5 miR-140-3p 與AGT5 的靶向關系

    miR-140-3p 組細胞AGT5 蛋白水平高于miRNC 組(0.95±0.11 vs 0.45±0.07)(P <0.01),si-miR-140-3p 組細胞AGT5 蛋白水平低于NC 組(0.12±0.02 vs 0.46±0.06)(P <0.01)。 TargetScan 在線網站預測發(fā)現(xiàn),miR-140-3p 與AGT5 mRNA 存在結合位點。miR-140-3p+WT-AGT5 組細胞熒光素酶活性高于miR-NC + WT-AGT5 組(1.75 ± 0.06 vs 1.00 ± 0.01)(t = 20.540,P <0.01),miR-140-3p + MUT-AGT5 組細胞熒光素酶活性與miR-NC + MUT-AGT5組比較(1.00±0.02 vs 1.00±0.01),差異無統(tǒng)計學意義(P >0.05)。 見圖8。

    圖8 4 組細胞AGT5 蛋白表達電泳圖和miR-140-3p 與AGT5 的核苷酸結合位點Fig.8 Electrophoretograms of AGT5 protein expression and nucleotide binding sites of miR-140-3p and AGT5 in 4 groups

    3 討論

    NPC 是耳鼻喉最常見的惡性腫瘤之一, 其在中國的發(fā)病率、死亡率逐漸升高,盡管多種治療方法在一定程度上改善了患者預后,但總體預后不佳。 NPC的進展涉及多種基因調控,異質性高。 因此探索NPC發(fā)生和發(fā)展的分子機制,對于腫瘤的防治、改善患者預后至關重要。

    miRNA 在腫瘤進展中發(fā)揮重要功能, 隨著對miR-140-3p 研究的深入,miR-140-3p 在腫瘤中的作用越來越清楚,如Wang Y 等[10]研究發(fā)現(xiàn),miR-140-3p 過表達可抑制膀胱癌細胞的增殖、 侵襲。 此外,miR-140-3p 在胃癌組織中低表達,上調miR-140-3p可抑制胃癌細胞增殖、侵襲及遷移能力[11]。 然而miR-140-3p 與NPC 生物學行為的關系尚不清楚。 有文獻報道,NPC 患者血漿miR-140-3p 低表達, 診斷NPC的效能良好[12]。 筆者研究結果顯示,NPC 細胞miR-140-3p 表達水平低于正常鼻腔黏膜細胞,提示miR-140-3p 可能參與了NPC 發(fā)生。 為明確miR-140-3p對NPC 細胞的影響, 筆者所在課題組構建了miR-140-3p 過表達、敲低NPC 細胞株,結果顯示,上調miR-140-3p 可抑制NPC 細胞的增殖、侵襲及遷移能力, 反之下調miR-140-3p 可促進鼻咽癌細胞的增殖、侵襲及遷移能力,這與其他腫瘤相關研究結果基本一致。

    自噬是一種保守的分解代謝過程,參與細胞許多生理過程。 自噬發(fā)生過程中,細胞質成分被溶酶體蛋白酶溶解。 此外,自噬有助于去除受損的細胞器和細胞質聚集體,從而緩解細胞應激并維持體內平衡。 最近研究發(fā)現(xiàn), 自噬在NPC 發(fā)生發(fā)展過程中扮演著重要角色,如鄭方靜等[13]研究發(fā)現(xiàn),上調miR-216a 可誘導NPC 細胞自噬的產生,進而抑制細胞增殖、侵襲及血管合成。 也有文獻報道,miR-197-3p 可抑制NPC細胞自噬,進而抑制腫瘤細胞惡性表型,增強放射治療敏感性[14]。 有研究發(fā)現(xiàn),抑制自噬可增強NPC 的化學治療敏感性[15]。 這些研究說明,自噬在NPC 發(fā)生發(fā)展及治療中扮演著重要角色。 鑒于自噬在NPC 中的作用,筆者觀察了miR-140-3p 與NPC 自噬的關系。LC3 是自噬小體上的膜蛋白,在自噬泡形成過程中發(fā)揮重要作用, 自噬形成后,LC3Ⅰ經泛素化修飾形成LC3Ⅱ,被認為是自噬的標記物[16]。 p62 在自噬小體與溶酶體融合后被降解,因此自噬發(fā)生時p62 蛋白水平減少[17]。 Beclin1 可誘導自噬泡的形成,可促進自噬的形成。 筆者研究結果顯示,上調miR-140-3p 可促進LC3Ⅱ、Beclin1 表達,抑制p62 表達,提示miR-140-3p 誘導了腫瘤自噬產生,反之下調miR-140-3p 得到相反的結果。

    ATG5 位于人體染色體6q21 位點, 在自噬小體形成過程中,ATG5 蛋白可與ATG12 形成復合物,錨定于自噬泡膜上,促進自噬體膜的延伸,促進自噬體形成[18]。 大量研究發(fā)現(xiàn),ATG5 與惡性腫瘤進展、化學治療抵抗有關[19,20]。但ATG5 與NPC 的關系尚不清楚,筆者研究結果顯示,NPC 細胞ATG5 蛋白表達水平低于正常鼻腔黏膜細胞, 提示ATG5 可能參與了NPC發(fā)生。 多種miRs 與ATG5 存在靶向調控關系[21,22],既然miR-140-3p 可調控自噬, 因此筆者猜測miR-140-3p 與ATG5 可能存在靶向關系。 筆者研究結果顯示,miR-140-3p 與ATG5 mRNA 存在核苷酸結合位點, 進一步熒光素酶實驗證實兩者存在靶向關系。進一步研究發(fā)現(xiàn), 上調miR-140-3p 可促進NPC 細胞ATG5 蛋白表達,反之下調miR-140-3p 抑制NPC細胞ATG5 蛋白表達。最后回復實驗表明,上調ATG5可逆轉敲低miR-140-3p 對NPC 細胞自噬的抑制作用。 通過以上結果證明miR-140-3p 可通過正性調控ATG5 介導的自噬。

    總之,miR-140-3p 可正性靶向調控ATG5,進而抑制NPC 細胞的增殖、侵襲、遷移及自噬。 miR-140-3p 有望成為NPC 防治的一個靶點。

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