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    腫瘤相關巨噬細胞通過激活IGF-1R信號通路誘導三陰性乳腺癌細胞對白蛋白紫杉醇耐藥的研究

    2023-11-07 05:43:30劉淑娟劉夢瑩蘇烏云竇佳王薇
    天津藥學 2023年5期
    關鍵詞:耐藥水平

    劉淑娟,劉夢瑩,蘇烏云,竇佳,王薇△

    三陰性乳腺癌(triple-negative breast cancer,TNBC)是一種生長迅速的侵襲性乳腺癌,化療是TNBC的最主要的治療手段[1]。白蛋白紫杉醇(Nabpaclitaxel,Nab-PTX)是一種無溶劑的紫杉醇新劑型[2],已成為TNBC 治療的一線用藥,其療效及安全性均優(yōu)于普通紫杉醇制劑[3]。但隨著治療的進行,對Nab-PTX 耐藥的問題也逐步凸顯。尋找逆轉(zhuǎn)TNBC 耐藥的新靶點和治療方法是目前研究的熱點與難點。腫瘤相關巨噬細胞(tumor-associated macrophage,TAM)是腫瘤微環(huán)境中一類重要的免疫細胞,多呈現(xiàn)M2表型特征[4]。研究證實TAM在乳腺癌中占基質(zhì)細胞的50%~80%[5],與TNBC 耐藥有關[6],但TAM 介導的TNBC 耐藥的分子機制尚未完全明確。胰島素樣生長因子1 受體(insulin-like growth factor 1,IGF-1R)是一種酪氨酸蛋白激酶受體[7],IGF-1R 抑制劑可逆轉(zhuǎn)腫瘤細胞耐藥性,提高療效[8-9]。TAM 可否通過激活IGF-1R 促進TNBC 細胞對Nab-PTX 耐藥性尚不清楚。本研究建立M2型巨噬細胞模擬TAM,將TNBC細胞與M2型巨噬細胞共培養(yǎng),探討TAM 是否通過激活IGF-1R 信號通路促進TNBC 細胞對Nab-PTX 耐藥,為耐藥患者尋找新的治療靶點。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑及儀器 TNBC細胞系MDA-MB-231、單核細胞系THP-1均購自廣州萊德聯(lián)康生物科技有限公司;胎牛血清(FBS)、RPMI-1640 培養(yǎng)基、青鏈霉素均購自美國Hyclone公司;RNA 提取試劑盒購自美國Qiagen 公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒及RT-PCR試劑盒購自美國Invitrogen公司;Transwell小室購自美國Corning 公司;CCK-8 細胞增殖檢測試劑盒及細胞凋亡檢測試劑盒購自美國Keygen 公司;APC 標記鼠抗人CD14及其同型抗體、PE標記的鼠抗人CD206及其同型抗體、IGF-1R、p-IGF-1R、細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,ERK)、p-ERK、蛋白激酶B(AKT)、p-AKT 和GAPDH一抗及山羊抗鼠IgG二抗均購自英國Abcam公司;佛波酯(PMA)購自美國MCE公司;白細胞介素(IL)-4、IL-13購自美國RD公司;IGF-1R抑制劑Linsitinib購自維百奧(北京)生物科技有限公司;白蛋白結合型紫杉醇購自中國石藥集團歐意藥業(yè)有限公司。酶標儀購自賽默飛世爾(上海)儀器有限公司;電泳儀購自北京百晶生物技術有限公司;流式細胞儀購自美國BD Biosciences 公司;實時熒光定量PCR(qPCR)儀購自美國ABI 公司;倒置光學顯微鏡購自日本Olympus公司。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng) MDA-MB-231、THP-1 細胞均接種于含100 U/mL青霉素、100 mg/L鏈霉素和10%FBS的RPMI-1640基礎培養(yǎng)基,置于含5% CO2、37 ℃的濕化培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)。

    1.2.2 M2型巨噬細胞的誘導建立 取對數(shù)生長期的THP-1細胞,離心收集細胞,先用PMA(185 μg/L)刺激THP-1 細胞48 h,誘導THP-1 細胞分化成M0 型巨噬細胞,再加入IL-4(20 μg/L)和IL-13(20 μg/L)處理48 h,誘導細胞向M2 型巨噬細胞極化[10]。

    1.2.3 流式細胞術鑒定細胞表面標記分子CD14、CD206 的表達 將誘導后的細胞消化、重懸于PBS 中,調(diào)整細胞密度約為1×106個/mL。室溫孵育15 min,加入CD14抗體(20 μL)和CD206抗體(20 μL),對照組加入等體積的同型對照抗體,室溫避光孵育30 min,離心、洗滌細胞,再用PBS 重懸細胞,迅速移至流式細胞儀上機檢測。

    1.2.4 qPCR 檢測巨噬細胞IL-10、趨化因子配體2(CCL2)mRNA的表達 采用Trizol法提取不同誘導條件下巨噬細胞的總RNA,使用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,按說明書進行擴增,引物序列由廣州萊德聯(lián)康生物科技有限公司合成。IL-10:上游5'-CTTCAGCAGAGTGAAGACTT-3',下游5'-GGAT CATCTCAGACAAGGCT-3',產(chǎn)物大小122 bp;CCL2:上游5'-CCAGATGCAATCAATGCCCC-3',下游5'-GGGACACTTGCT GCTGGTGA-3',產(chǎn)物大小108 bp;內(nèi)參GAPDH:上游5'-GCTCATTTGCAGGGGGGAG-3',下游5'-GTTGGTGGTGCAG GAGGCA-3',產(chǎn)物大小138 bp。反應條件:95 ℃預變性120 s;95 ℃變性15 s,60 ℃退火32 s,共40個循環(huán)。各組實驗重復3次,采用2-ΔΔCt方法分析mRNA相對表達量。

    1.2.5 M2型巨噬細胞與MDA-MB-231細胞共培養(yǎng)體系的建立及分組 將5×105個MDA-MB-231細胞接種至24孔板,細胞貼壁后,將0.4 μm 的Transwell 小室移入24 孔板中,并將THP-1誘導生成的1×105個M2型巨噬細胞接種于小室上層,共培養(yǎng)48 h,收集下層MDA-MB-231 細胞,用于后續(xù)實驗[11]。對照組:MDA-MB-231 細胞及空白小室;Nab-PTX組:MDA-MB-231 細胞、空白小室及0.5 nmol/L Nab-PTX;TAM 組:MDA-MB-231 細胞、含M2 型巨噬細胞的小室;TAM+Nab-PTX 組:MDA-MB-231 細胞、含M2 型巨噬細胞的小室及0.5 nmol/L Nab-PTX;IGF-1R 抑制劑組:MDA-MB-231 細胞、含M2 型巨噬細胞的小室、0.5 nmol/L Nab-PTX 及4 nmol/L IGF-1R抑制劑Linsitinib。

    1.2.6 CCK-8 法檢測MDA-MB-231 細胞的增殖 稀釋各組細胞,以1×104個/孔的密度接種到96 孔板,待細胞貼壁生長后加入Nab-PTX或IGF-1R抑制劑,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,每組接種5 個復孔。加10 μL CCK-8(1∶10)至待測孔中,孵育4 h,酶標儀讀板,測定490 nm 處的光密度(OD)值,代表細胞增殖水平。

    1.2.7 流式細胞術檢測MDA-MB-231 細胞凋亡 收集待測細胞,消化、重懸,加入1.25 μL Annexin V-FITC 和10 μL PI溶液,室溫避光反應15 min。離心,棄上清,緩沖液重懸細胞。流式細胞儀檢測分析細胞凋亡率。

    1.2.8 qPCR 檢測MDA-MB-231 細胞多藥耐藥蛋白(MDR)1和胱天蛋白酶(Caspase)-3 mRNA 表達 采用Trizol 法提取各組細胞中總RNA,使用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,按說明書進行擴增,引物序列由廣州萊德聯(lián)康生物科技有限公司合成。MDR1:上游5'-GCTTAACACCCGACTTACAG-3',下游5'-CAACCACGTGTAAATCCTACT-3',產(chǎn)物大小126 bp;Caspase-3:上游5'-ATGATCTTACACGTGAAGAA-3',下游5'-CTTCACCATGGCTCAGAAGC-3',產(chǎn)物大小105 bp;內(nèi)參GAPDH:上游5'-GCTCATTTGCAGGGGGGAG-3',下游5'-GTTGGTGGTGCAGGAGGCA-3',產(chǎn)物大小138 bp。反應條件:95 ℃預變性120 s;95 ℃變性15 s,60 ℃退火32 s,共40個循環(huán)。各組實驗重復3次,采用2-ΔΔCt方法對mRNA相對表達量進行分析。

    1.2.9 Western blot 檢測MDA-MB-231 細胞IGF-1R 信號通路關鍵蛋白表達 各組分別取2×106個細胞,用SDS 裂解液提取細胞總蛋白,BCA法檢測蛋白濃度。配置10%分離膠和5%濃縮膠,取30 μg 蛋白進行10%SDS-PAGE 電泳后轉(zhuǎn)至PVDF 膜,封閉后,加p-IGF-1R、IGF-1R、p-ERK、ERK、p-AKT、AKT(1∶1 000)和GAPDH(1∶5 000)一抗,4 ℃過夜。洗滌后加入辣根過氧化物酶標記二抗37 ℃孵育1 h,洗膜后用增強化學發(fā)光(ECL)熒光試劑顯影。GAPDH設為內(nèi)參,使用Image J 軟件對Western 印跡進行灰度值分析,計算每組蛋白相對表達量,測量重復3次。

    1.3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 25.0 軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料以表示。2 組間比較采用獨立樣本t檢驗,多組間比較用單因素方差分析,使用Tukey-q法進行組間多重比較。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    2 結果

    2.1 TAM的鑒定

    2.1.1 巨噬細胞表面標志物表達特征 流式細胞儀分析顯示,THP-1 細胞經(jīng)過PMA 刺激后分化成為M0 巨噬細胞,其表面分子CD14 陽性表達率為(6.97±0.31)% ,CD206 的陽性表達率為(5.64±0.50)%;繼續(xù)給予IL-4和IL-13刺激后,誘導分化生成的M2 型巨噬細胞CD14 陽性表達率為(59.89±1.01)%,CD206 陽性表達率為(62.7±1.97)%,符合M2型巨噬細胞的特征,見圖1。

    Fig.1 The characteristics of cell surface markers CD14 and CD206 in TAM圖1 TAM表面標志物CD14、CD206的表達特征

    2.1.2 不同誘導條件下巨噬細胞IL-10 mRNA 及CCL2 mRNA 表達水平 qPCR 結果顯示,M2型巨噬細胞內(nèi)IL-10 mRNA 水平與M0 型巨噬細胞相比明顯升高(3.47±0.15vs. 1.00±0.02,n=6,t=28.270,P<0.01);M2 型巨噬細胞內(nèi)CCL2 mRNA 水平與M0 型巨噬細胞相比明顯升高(6.38±0.19vs.0.91±0.18,n=6,t=35.960,P<0.01)。

    2.2 TAM對Nab-PTX干預MDA-MB-231細胞增殖的影響 CCK-8 結果顯示,與對照組和TAM 組相比,Nab-PTX 組24、48 和72 h 細胞增殖水平下降(P<0.01);與Nab-PTX 組相比,TAM+Nab-PTX 組24、48和72 h細胞增殖水平升高(P<0.01),見表1。

    Tab.1 Comparison of proliferation of MDA-MB-231 cells at different time points between four groups表1 4組MDA-MB-231細胞不同時間點增殖情況比較(n=3,OD490,)

    Tab.1 Comparison of proliferation of MDA-MB-231 cells at different time points between four groups表1 4組MDA-MB-231細胞不同時間點增殖情況比較(n=3,OD490,)

    **P<0.01;a 與對照組比較,b 與Nab-PTX 組比較,P<0.05。表3、4同。

    組別對照組Nab-PTX組TAM組TAM+Nab-PTX組F 24 h 0.470±0.002 0.440±0.002a 0.510±0.002b 0.460±0.002b 716.879**48 h 0.630±0.001 0.540±0.004a 0.720±0.001b 0.610±0.003b 2 090.309**72 h 0.770±0.004 0.620±0.003a 0.930±0.006b 0.760±0.006b 2 276.647**

    2.3 TAM對Nab-PTX干預MDA-MB-231細胞凋亡的影響 流式細胞術檢測顯示,對照組、Nab-PTX組、TAM 組和TAM+Nab-PTX 組細胞凋亡率(%)分別為5.81±0.10、20.21±2.54、2.06±0.91和12.68±0.51,組間比較差異有統(tǒng)計學意義(n=3,F(xiàn)=79.338,P<0.01)。與對照組相比,Nab-PTX組細胞凋亡率升高(P<0.01);與Nab-PTX 組相比,TAM+Nab-PTX 組細胞凋亡率降低(P<0.01),見圖2。

    Fig.2 Effects of TAM on apoptosis of MDA-MB-231 cells induced by Nab-PTX圖2 TAM對Nab-PTX干預MDA-MB-231細胞凋亡的影響

    2.4 IGF-1R 抑制劑對TAM 誘導的MDA-MB-231細胞耐藥的影響 CCK-8 結果顯示,與TAM+Nab-PTX 組相比,IGF-1R 抑制劑組24、48 和72 h 細胞增殖水平均降低(P<0.01),見表2。流式細胞實驗結果顯示,與TAM+Nab-PTX 組相比,IGF-1R 抑制劑組MDA-MB-231 細胞凋亡率(%)增高(23.09±0.86vs.12.71±0.62,n=3,t=16.893,P<0.01),見圖3。

    Tab.2 Comparison of proliferation of MDA-MB-231 cells at different time points between two groups表2 2組MDA-MB-231細胞不同時間點增殖情況比較(n=3,OD490,)

    Tab.2 Comparison of proliferation of MDA-MB-231 cells at different time points between two groups表2 2組MDA-MB-231細胞不同時間點增殖情況比較(n=3,OD490,)

    **P<0.01。

    組別TAM+Nab-PTX組IGF-1R抑制劑組t 24 h 0.460±0.002 0.420±0.001 19.290**48 h 0.610±0.003 0.500±0.003 42.832**72 h 0.760±0.006 0.560±0.003 45.987**

    Fig.3 Effects of IGF-1R inhibitors on apoptosis of MDA-MB-231 cells co-cultured with TAM圖3 IGF-1R抑制劑對TAM共培養(yǎng)MDA-MB-231細胞凋亡的影響

    2.5 TAM 對Nab-PTX 干預MDA-MB-231 細胞中MDR1 和Caspase-3 mRNA 的表達影響 qPCR 結果顯示,與對照組相比,Nab-PTX 組MDA-MB-231 細胞內(nèi)MDR1 mRNA 水平降低,Caspase-3 mRNA 水平升高(P<0.01);與Nab-PTX組相比,TAM+Nab-PTX組MDR1 mRNA 水平升高,Caspase-3 mRNA 水平降低(P<0.05),見表3。

    Tab.3 Comparison of MDR1 mRNA and Caspase-3 mRNA expression between four groups of MDA-MB-231 cells表3 4組MDA-MB-231細胞MDR1和Caspase-3 mRNA表達的比較(n=3,)

    Tab.3 Comparison of MDR1 mRNA and Caspase-3 mRNA expression between four groups of MDA-MB-231 cells表3 4組MDA-MB-231細胞MDR1和Caspase-3 mRNA表達的比較(n=3,)

    **P<0.01。

    組別對照組Nab-PTX組TAM組TAM+Nab-PTX組F MDR1 1.00±0.03 0.29±0.01a 1.72±0.61 0.83±0.03b 934.279**Caspase-3 1.00±0.02 2.03±0.04a 0.58±0.40 1.20±0.02b 21.360**

    2.6 TAM 對Nab-PTX 干預MDA-MB-231 細胞中IGF-1R 信號通路關鍵蛋白表達影響 Western blot結果顯示,與對照組比較,Nab-PTX組p-IGF-1R、p-AKT及p-ERK均降低,TAM組p-IGF-1R、p-AKT及p-ERK 均升高(P<0.01);與Nab-PTX 組比較,TAM+Nab-PTX 組中p-IGF-1R、p-AKT 及p-ERK 均升高(P<0.01),見表4、圖4。

    Tab.4 Comparison of protein expression levels of p-IGF-1R,p-AKT and p-ERK between MDA-MB-231 cells of each group表4 各組MDA-MB-231細胞內(nèi)p-IGF-1R、p-AKT、p-ERK蛋白表達水平比較 (n=6,)

    Tab.4 Comparison of protein expression levels of p-IGF-1R,p-AKT and p-ERK between MDA-MB-231 cells of each group表4 各組MDA-MB-231細胞內(nèi)p-IGF-1R、p-AKT、p-ERK蛋白表達水平比較 (n=6,)

    **P<0.01。

    組別對照組Nab-PTX組TAM組TAM+Nab-PTX組F p-IGF-1R/IGF-1R 1.030±0.001 0.400±0.002a 1.300±0.004ab 0.980±0.008b 17 108.381**p-AKT/AKT 0.780±0.001 0.460±0.003a 0.960±0.002ab 0.740±0.004b 13 656.675**p-ERK/ERK 0.980±0.007 0.570±0.002a 1.320±0.002ab 0.770±0.013b 5 499.251**

    Fig.4 The protein expression levels of IGF-1R,p-IGF-1R,AKT,p-AKT,ERK and p-ERK in each group圖4 Western blot檢測各組MDA-MB-231細胞內(nèi)IGF-1R、p-IGF-1R、AKT、p-AKT、ERK、p-ERK蛋白表達

    2.7 IGF-1R 抑制劑對MDA-MB-231 細胞MDR1 mRNA 和Caspase-3 mRNA 的表達的影響 IGF-1R抑制劑組MDA-MB-231 細胞內(nèi)MDR1 mRNA 水平(0.39±0.02)與TAM+Nab-PTX 組(1.00±0.04)相比降低(n=3,t=23.625,P<0.01),IGF-1R 抑制劑組Caspase-3 mRNA水平(3.05±0.08)與TAM+Nab-PTX組(1.00±0.03)相比升高(n=3,t=31.973,P<0.01)。

    2.8 IGF-1R 抑制劑對MDA-MB-231 細胞IGF-1R信號通路關鍵蛋白的表達影響 與TAM+Nab-PTX組相比,IGF-1R 抑制劑組MDA-MB-231 細胞內(nèi)p-IGF-1R、p-AKT、p-ERK 的表達明顯降低(P<0.01),見表5、圖5。

    Tab.5 Comparison of p-IGF-1R,p-AKT and p-ERK rations between the two groups of cells表5 2組細胞內(nèi)p-IGF-1R、p-AKT、p-ERK比較(n=6,)

    Tab.5 Comparison of p-IGF-1R,p-AKT and p-ERK rations between the two groups of cells表5 2組細胞內(nèi)p-IGF-1R、p-AKT、p-ERK比較(n=6,)

    **P<0.01。

    組別TAM+Nab-PTX組IGF-1R抑制劑組t p-IGF-1R/IGF-1R 1.280±0.014 0.500±0.009 77.249**p-AKT/AKT 1.120±0.020 0.450±0.002 57.151**p-ERK/ERK 0.860±0.006 0.420±0.001 119.965**

    Fig.5 Western blot assay of the TAM+Nab-PTX group and the IGF-1R inhibitor group圖5 TAM+Nab-PTX組和IGF-1R抑制劑組蛋白表達印跡圖

    3 討論

    Nab-PTX 是治療TNBC 的常用藥物之一,但易產(chǎn)生化療耐藥。目前研究聚焦于腫瘤微環(huán)境中各類細胞在耐藥中的作用。在復雜的腫瘤微環(huán)境中,巨噬細胞可以被募集到腫瘤區(qū)域,并被極化為M1 或M2 型,然而TAM 主要表現(xiàn)出M2 樣極化狀態(tài)[12],具有免疫抑制作用,同時細胞內(nèi)表達相對較高的IL-10、CCL2 水平[5,13]。研究發(fā)現(xiàn),TAM 在體外和體內(nèi)都能通過激活NF-κB信號減弱藥物對TNBC細胞的殺傷作用,減少腫瘤細胞的凋亡[14]。本研究結果顯示,與Nab-PTX 組相比,TAM+Nab-PTX 組細胞增殖率升高、凋亡率下降,與上述研究[14]結果相似,說明TAM 可降低MDA-MB-231 細胞對Nab-PTX 敏感性,具有保護腫瘤細胞的作用。因此,尋找TAM 保護腫瘤細胞的機制對逆轉(zhuǎn)TNBC耐藥至關重要。

    MDR1 可將進入細胞內(nèi)的藥物泵出細胞外,降低藥物在細胞內(nèi)的生物利用度,進而引發(fā)細胞耐藥[15]。本研究中,與Nab-PTX 組相比,TAM+Nab-PTX組MDA-MB-231細胞內(nèi)MDR1 mRNA表達量均升高,凋亡相關因子Caspase-3 mRNA 表達均降低,提示TAM 可能通過MDR1 降低藥物在細胞內(nèi)的生物利用度和抑制細胞凋亡級聯(lián)反應,進而降低MDA-MB-231 細胞對Nab-PTX 的化療敏感性。IGF-1R 作為IGF 系統(tǒng)中重要的受體,與IGF1 和IGF2 結合后,觸發(fā)其酪氨酸激酶結構域的轉(zhuǎn)磷酸化,激活下游的AKT和ERK通路,誘導細胞增殖、抑制細胞凋亡[16]。Ireland等[17]對浸潤性乳腺癌患者的活檢組織進行免疫組織化學染色,結果顯示,M2 型巨噬細胞包圍的腫瘤細胞中p-IGF-R 水平增加,51例TNBC 患者中有45 例(88.2%)表現(xiàn)出IGF-1R 激活。Davison 等[18]發(fā)現(xiàn)IGF-1 通過激活AKT 和ERK通路增強體外TNBC細胞的增殖,IGF-1R/胰島素受體(IR)酪氨酸激酶抑制劑可改善TNBC 細胞耐藥。Liu等[19]發(fā)現(xiàn),AKT和ERK通路參與MDR1表達的調(diào)控,AKT 及ERK 阻斷劑能抑制TNBC 細胞內(nèi)MDR1 mRNA 的上調(diào)。本研究中TAM 組和TAM+Nab-PTX組MDA-MB-231 細胞中的IGF-1R 及下游ERK 和AKT信號通路被激活,提示TAM可能通過激活IGF-1R及下游AKT和ERK信號通路提高MDR1的表達,下調(diào)Caspase-3 表達,降低MDA-MB-231 細胞對Nab-PTX 的化療敏感性。本研究還發(fā)現(xiàn)IGF-1R 抑制劑可以提高Nab-PTX 對TAM 共培養(yǎng)MDA-MB-231細胞的殺傷作用,為進一步評估IGF-1R 抑制劑聯(lián)合Nab-PTX治療TNBC提供了理論依據(jù)。

    綜上所述,TAM 可引起TNBC 細胞對Nab-PTX耐藥,其機制可能與TAM 激活腫瘤細胞內(nèi)IGF-1R及下游AKT和ERK信號通路有關,提示靶向TAM或阻斷腫瘤細胞中的IGF-1R 是一種有潛力的耐藥治療策略。該結論未在動物體內(nèi)進行驗證,是否還有其他信號通路參與,需后續(xù)深入研究。

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