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    右美托咪定對癲癇大鼠海馬神經(jīng)元凋亡及BDNF/TrκB信號通路的影響

    2023-10-30 12:39:38范翠翠
    關(guān)鍵詞:海馬癲癇

    趙 莉, 范翠翠

    癲癇是一種腦功能障礙的慢性綜合征,神經(jīng)元突發(fā)性異常放電是其主要原因[1]。在癲癇發(fā)作過程中,機體神經(jīng)化學(xué)和生理學(xué)功能異常,可造成腦水腫、心律失常、體溫失調(diào)、電解質(zhì)和葡萄糖的紊亂、橫紋肌溶解綜合征以及認(rèn)知功能受損等,甚至猝死[2]。神經(jīng)元凋亡是癲癇發(fā)作后大腦損傷的重要形式[3]。因此,防治癲癇發(fā)作后神經(jīng)元凋亡具有重要意義。研究顯示,腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)以及介導(dǎo)其生物學(xué)效應(yīng)的受體-酪氨酸激酶受體B(TrκB)與多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病的發(fā)生發(fā)展都有關(guān)[4]。研究顯示,激活BDNF/TrκB信號通路可以改善阿爾茨海默病大鼠的記憶障礙[5]。作為一種α2-腎上腺素受體激動劑,右美托咪定具有抗交感、鎮(zhèn)靜及鎮(zhèn)痛等作用[6]。右美托咪定對腦血管病也具有治療效果,楊永紅等[7]研究發(fā)現(xiàn),右美托咪定在改善腦缺血再灌注大鼠神經(jīng)損傷方面療效顯著。但其在抗癲癇方面的作用以及機制尚不清楚。本研究擬基于BDNF/TrκB信號通路,探討右美托咪定對癲癇發(fā)作后海馬神經(jīng)元凋亡的影響及其作用機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 動物 SPF 級別雄性SD 大鼠,8~10 周齡,體質(zhì)量244~274 g,購自南京偉沃生物科技有限公司,生產(chǎn)許可證號:SCXK(蘇)2021-0012,大鼠飼養(yǎng)于溫度為(21~24)℃,相對濕度為(57~62)%,12 h光暗循環(huán)的環(huán)境中,本研究經(jīng)復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院吳淞醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)(批準(zhǔn)編號:JCLS-2022-11-02)。

    1.1.2 主要藥物與試劑 鹽酸右美托咪定注射液、氯化鋰、腫瘤壞死因子(TNF-α)、白介素(IL-6)ELISA 試劑盒、鹽酸匹羅卡品、BCA 試劑盒(批號分別 為 DS29050、DS14681、DS58930、DS23582、DS28442、DS53821)均購自江西中洪博元生物技術(shù)有限公司;BDNF/TrκB 通路激活劑(LM22B-10,純度>99%)、TUNEL 凋亡檢測試劑盒、硫酸阿托品、ECL試劑、蛋白裂解液(批號分別為BS25011、BS49142、BS52855、BS27589、BS59202)均購自杭州鉑賽生物科技有限公司;鼠源β-微管蛋白Ⅲ(Tuj1)一抗、羊抗鼠二抗、兔源BDNF、TrκB、B 細(xì)胞淋巴瘤-2 相關(guān)X 蛋白(Bax)、B 細(xì)胞淋巴瘤-2(Bcl-2)、β-actin、羊抗兔二抗(批號分別為KJ10940、KJ52015、KJ58292、KJ25829、KJ57193、KJ53820、KJ25810、KJ41847)均購自江蘇凱基生物技術(shù)有限公司。

    1.1.3 主要儀器 LW3000T 型顯微鏡、SpectraMax M2 型酶標(biāo)儀、Quantum CX5 型凝膠成像儀均購自武漢天德生物科技有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 癲癇模型的建立及分組給藥 構(gòu)建癲癇大鼠模型[8,9]:大鼠腹腔注射127 mg/kg 的氯化鋰溶液,24 h后腹腔注射1 mg/kg的硫酸阿托品,30 min后注射30 mg/kg 的鹽酸匹羅卡品。根據(jù)Racine 分級進(jìn)行癲癇發(fā)作評定[10],Ⅰ:嘴和面部抽動;Ⅱ:肌陣攣性運動,但無直立;Ⅲ:肌陣攣,伴直立;Ⅳ:全身陣攣性直立;Ⅴ:全身強直陣攣,姿勢控制喪失(摔倒)。造模成功的標(biāo)準(zhǔn)是達(dá)Racine 分級Ⅳ以上,并持續(xù)15 min以上[8]。將造模成功的36只大鼠隨機分為模型組、右美托咪定組(50 μg/kg)[11]、右美托咪定+LM22B-10 組(50 μg/kg+5 mg/kg)[12],每組12 只。另取12 只健康大鼠按照上述造模方法注射等量生理鹽水作為對照組。

    建模結(jié)束后,右美托咪定組根據(jù)參考文獻(xiàn)[11]給予大鼠50 μg/kg 右美托咪定腹腔注射(將右美托咪定和生理鹽水混溶成濃度為5 μg/ml的溶液,注射體積10 ml/kg);右美托咪定+LM22B-10 組大鼠給予50 μg/kg 右美托咪定腹腔注射和5 mg/kg LM22B-10側(cè)腦室注射[12](將右美托咪定、LM22B-10 分別和生理鹽水混溶成濃度分別為5 μg/ml、0.5 mg/ml 的溶液,注射體積10 ml/kg);對照組和模型組大鼠腹腔注射等體積生理鹽水。各組每天注射1次,連續(xù)1周。

    1.2.2 大鼠癲癇發(fā)作頻率和持續(xù)時間觀察給藥結(jié)束24 h后,于上午9:00~12:00,下午3:00~6:00,記錄大鼠癲癇發(fā)作頻率和持續(xù)時間。

    1.2.3 TUNEL染色觀察大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡情況 行為學(xué)觀察結(jié)束后,處死大鼠,收集海馬CA1區(qū)處腦組織,分為兩部分,一部分置于-70 ℃冰箱保存,另一部分用4%多聚甲醛固定,制作石蠟切片,厚度為4 μm。取部分切片,脫蠟、復(fù)水,蛋白酶K工作液進(jìn)行細(xì)胞通透操作,加入TUNEL 試劑常溫避光孵育1 h,含HRP 的抗熒光素抗體室溫避光孵育0.5 h,DAB 試劑顯色7 min,每一步驟間用PBS 漂洗3次(每次5 min),細(xì)胞核采用蘇木素復(fù)染,顯微鏡下觀察。每張切片隨機選取5 個視野,記錄視野內(nèi)棕褐色的陽性染色細(xì)胞數(shù),即為凋亡細(xì)胞數(shù),計算平均值。

    1.2.4 免疫熒光染色檢測大鼠海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1 陽性細(xì)胞情況 取1.2.3 中石蠟切片,脫蠟洗滌后,進(jìn)行抗原修復(fù),室溫封閉1 h,加入稀釋好的鼠源Tuj1(1∶1 500)一抗,4 ℃孵育過夜,加入羊抗鼠二抗(1∶2 500),室溫孵育2 h,對細(xì)胞核進(jìn)行DAPI染色后,熒光顯微鏡下觀察,紅色熒光即為Tuj1陽性細(xì)胞。用Image J處理圖像,結(jié)果以Tuj1陽性細(xì)胞數(shù)目/mm2表示。

    1.2.5 大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中TNF-α、IL-6水平的測定 取1.2.3中海馬CA1區(qū)腦組織,研磨勻漿,4 ℃下11 200 r/min 離心15 min,取上清,ELISA法檢測上清液中TNF-α、IL-6水平。

    1.2.6 大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB、Bax、Bcl-2 的蛋白表達(dá)水平的測定 取1.2.3 中大鼠海馬CA1區(qū)腦組織,研磨勻漿,蛋白裂解液裂解,定量總蛋白濃度,取蛋白樣品85 μg,電泳分離,轉(zhuǎn)膜,用5%的脫脂奶粉室溫下孵育1.5 h。加入稀釋好的兔源BDNF(1∶1 200)、TrκB(1∶1 450)、Bax(1∶1 500)、Bcl-2(1∶1 500)、β-actin(1∶2 000)一抗,4 ℃孵育過夜,加入羊抗兔二抗(1∶2 400),室溫下孵育2 h,ECL 試劑顯影,以β-actin 為內(nèi)參,Image J軟件分析定量各組蛋白的灰度值。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)分析

    使用SPSS 26.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,計量資料以-x±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較行SNK-q檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 右美托咪定對癲癇大鼠癲癇行為的影響 與對照組相比,模型組大鼠癲癇發(fā)作頻率、持續(xù)時間顯著升高(P<0.05);與模型組相比,右美托咪定組、右美托咪定+LM22B-10 組大鼠癲癇發(fā)作頻率、持續(xù)時間顯著降低(P<0.05);與右美托咪定組相比,右美托咪定+LM22B-10 組大鼠癲癇發(fā)作頻率、持續(xù)時間顯著升高(P<0.05)(見表1)。

    表1 各組大鼠癲癇發(fā)作頻率、持續(xù)時間的比較(±s,n=12)

    表1 各組大鼠癲癇發(fā)作頻率、持續(xù)時間的比較(±s,n=12)

    與對照組相比aP<0.05;與模型組相比bP<0.05;與右美托咪定組相比cP<0.05。

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    2.2 右美托咪定對癲癇大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡和海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1 陽性細(xì)胞的影響與對照組相比,模型組大鼠海馬神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)目顯著升高,海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1 陽性細(xì)胞數(shù)目顯著降低(P<0.05);與模型組相比,右美托咪定組、右美托咪定+LM22B-10 組大鼠海馬神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)目顯著降低,海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1 陽性細(xì)胞數(shù)目顯著升高(P<0.05);與右美托咪定組相比,右美托咪定+LM22B-10 組大鼠海馬神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)目顯著升高,海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1 陽性細(xì)胞數(shù)目顯著降低(P<0.05)(見表2、圖1、圖2)。

    圖1 各組大鼠海馬神經(jīng)元TUNEL染色圖(400×)

    表2 各組大鼠海馬神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)目和海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1陽性細(xì)胞數(shù)目的比較(±s,n=12)

    表2 各組大鼠海馬神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)目和海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1陽性細(xì)胞數(shù)目的比較(±s,n=12)

    與對照組相比aP<0.05;與模型組相比bP<0.05;與右美托咪定組相比cP<0.05。

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    2.3 右美托咪定對癲癇大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中TNF-α、IL-6 水平的影響 與對照組相比,模型組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中TNF-α、IL-6 水平顯著升高(P<0.05);與模型組相比,右美托咪定組、右美托咪定+LM22B-10 組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中TNF-α、IL-6 水平顯著降低(P<0.05);與右美托咪定組相比,右美托咪定+LM22B-10 組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中TNF-α、IL-6 水平顯著升高(P<0.05)(見表3)。

    表3 各組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中TNF-α、IL-6 水平的比較(±s,n=12,pg/mg)

    表3 各組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中TNF-α、IL-6 水平的比較(±s,n=12,pg/mg)

    注:與對照組相比aP<0.05;與模型組相比bP<0.05;與右美托咪定組相比cP<0.05。

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    2.4 右美托咪定對癲癇大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB、Bax、Bcl-2 蛋白表達(dá)水平的影響 與對照組相比,模型組海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB、Bax 蛋白表達(dá)水平顯著升高(P<0.05),Bcl-2蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.05);與模型組相比,右美托咪定組、右美托咪定+LM22B-10 組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB、Bax蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.05),Bcl-2 蛋白表達(dá)水平顯著升高(P<0.05);與右美托咪定組相比,右美托咪定+LM22B-10 組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB、Bax 蛋白表達(dá)水平顯著升高(P<0.05),Bcl-2 蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.05)(見圖3、表4)。

    圖3 各組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB、Bax、Bcl-2 蛋白印跡圖

    表4 各組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB、Bax、Bcl-2蛋白表達(dá)水平的比較(±s,n=12)

    表4 各組大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB、Bax、Bcl-2蛋白表達(dá)水平的比較(±s,n=12)

    注:與對照組相比aP<0.05;與模型組相比bP<0.05;與右美托咪定組相比cP<0.05。

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    3 討 論

    海馬神經(jīng)元凋亡是癲癇持續(xù)狀態(tài)后神經(jīng)細(xì)胞丟失的重要形式[13]。研究顯示,癲癇發(fā)作后還伴隨著神經(jīng)炎癥反應(yīng),會引起腦組織細(xì)胞神經(jīng)炎性損傷[14]。本研究構(gòu)建癲癇大鼠模型,其病理學(xué)表現(xiàn)類似于顳葉癲癇,其行為表現(xiàn)遵循Racine標(biāo)準(zhǔn)。同時,模型組大鼠癲癇發(fā)作頻率、持續(xù)時間、海馬神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)目、海馬CA1區(qū)腦組織TNF-α、IL-6 水平較對照組顯著升高,表明癲癇大鼠神經(jīng)元凋亡情況加重,存活神經(jīng)元減少,同時伴隨炎癥反應(yīng)。

    右美托咪定可與不同的α2 受體亞型結(jié)合后產(chǎn)生相應(yīng)的鎮(zhèn)靜、鎮(zhèn)痛、抗焦慮、血壓升高等作用。研究發(fā)現(xiàn),右美托咪定能減輕腦缺血再灌注損傷大鼠神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元損害,改善腦細(xì)胞凋亡,是一種神經(jīng)保護(hù)劑[15],其在臨床治療老年精神病患者無抽搐電休克方面效果顯著[16]。Bax和Bcl-2是凋亡調(diào)控蛋白,Bax 促進(jìn)細(xì)胞凋亡,而Bcl-2 作為抗凋亡蛋白,功能與之相反[17,18]。Tuj1 是一種微管蛋白,也是神經(jīng)元的標(biāo)志物之一,其表達(dá)越高表示神經(jīng)元存活數(shù)越多[19]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),相比于模型組,右美托咪定組大鼠癲癇發(fā)作頻率、持續(xù)時間、海馬神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)目、海馬CA1區(qū)腦組織TNF-α、IL-6 水平、Bax 蛋白表達(dá)水平顯著降低,海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1 陽性細(xì)胞數(shù)目、Bcl-2 蛋白表達(dá)水平顯著升高,提示右美托咪定干預(yù)可以顯著降低癲癇大鼠的發(fā)作頻率和持續(xù)時間以及神經(jīng)元凋亡數(shù)量,增加神經(jīng)元存活數(shù)目,抑制炎癥反應(yīng)。

    BDNF 能影響神經(jīng)元的存活、分化和維持,還在成熟海馬的興奮性和神經(jīng)遞質(zhì)合成方面具有重要調(diào)控作用[20]。作為BDNF 的受體TrκB,與BDNF結(jié)合時,引發(fā)酪氨酸磷酸化,進(jìn)而觸發(fā)一系列級聯(lián)信號轉(zhuǎn)導(dǎo),參與多種生理反應(yīng)[21]。Javaid 等[22]研究報道,癲癇小鼠腦組織中BDNF/TrκB 信號傳導(dǎo)被激活,使得腦組織促炎細(xì)胞因子活性升高,而經(jīng)噻加賓治療后癲癇小鼠腦組織氧化應(yīng)激、BDNF/TrκB信號傳導(dǎo)和促炎細(xì)胞因子活性受到抑制,癲癇癥狀得到顯著改善[23]。除此之外,BDNF/TrκB 信號通路的激活還可引起海馬興奮環(huán)路的建立,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)鈣離子內(nèi)流,增強興奮性突觸后電位[24]。本研究結(jié)果顯示,癲癇大鼠海馬CA1區(qū)腦組織中BDNF、TrκB 蛋白表達(dá)水平顯著升高,而右美托咪定干預(yù)后BDNF、TrκB 蛋白表達(dá)水平顯著降低。在右美托咪定基礎(chǔ)上添加BDNF/TrκB 通路激活劑LM22B-10后,癲癇大鼠發(fā)作頻率、持續(xù)時間以及海馬神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)目、海馬CA1區(qū)腦組織TNF-α、IL-6 水平、BDNF、TrκB、Bax蛋白表達(dá)水平較右美托咪定組顯著升高,海馬CA1區(qū)腦組織Tuj1陽性細(xì)胞數(shù)目、Bcl-2蛋白表達(dá)水平較右美托咪定組顯著降低,提示右美托咪定引起的減弱癲癇大鼠神經(jīng)元細(xì)胞凋亡能力被LM22B-10 抑制,進(jìn)一步提示右美托咪定可能通過阻斷BDNF/TrκB 通路的激活發(fā)揮改善大鼠癲癇發(fā)作、抑制海馬神經(jīng)元凋亡及炎癥反應(yīng)的目的。

    綜上所述,右美托咪定能降低癲癇大鼠的癲癇發(fā)作以及抑制海馬神經(jīng)元的凋亡,減輕大鼠炎癥反應(yīng),其機制可能與抑制BDNF/TrκB 信號通路的激活有關(guān)。但本研究僅探究了右美托咪定通過BDNF/TrκB 信號通路對癲癇大鼠的作用,右美托咪定能否通過其他信號通路發(fā)揮抗癲癇作用,有待后續(xù)研究。

    倫理學(xué)聲明:本研究方案經(jīng)復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院吳淞醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)(批準(zhǔn)編號:JCLS-2022-11-02)。

    利益沖突聲明:所有作者均聲明不存在利益沖突。

    作者貢獻(xiàn)聲明:趙莉負(fù)責(zé)論文設(shè)計、撰寫論文;范翠翠負(fù)責(zé)論文修改并最后定稿。

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