特基拉芽胞桿菌KXF 6501對獼猴桃灰霉病的防控效果及誘導(dǎo)果實(shí)抗性研究

李繞勇，董奎奎，楊 闊，施秀梅，王梅琳，鄧 佳,3，王 芳,2*

（1.西南林業(yè)大學(xué)林學(xué)院，昆明 650224；2.西南林業(yè)大學(xué)/西南地區(qū)生物多樣性保育國家林業(yè)和草原局重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，昆明 650224；3.西南林業(yè)大學(xué)/西南山地森林資源保育與利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，昆明 650224）

獼猴桃ActinidiachinensisPlanch.是獼猴桃科Actinidiaceae 獼猴桃屬Actinidia的多年生落葉植物[1]，果實(shí)營養(yǎng)豐富，富含維生素和多種礦質(zhì)元素及氨基酸，風(fēng)味較好且與大部分水果相比，Vc 含量高，是天然營養(yǎng)物質(zhì)元素來源之一[2-4]。中國是世界獼猴桃生產(chǎn)大國之一，然而，由于采后獼猴桃發(fā)生的軟腐病、青霉病、炭疽病及灰霉病等病害造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失[5]，其中由灰霉菌潛伏侵染而導(dǎo)致的腐爛造成的危害最為嚴(yán)重，腐爛率高達(dá)30%[6,7]。目前，對于獼猴桃采后貯藏保鮮技術(shù)仍以化學(xué)保鮮為主，但化學(xué)藥劑長期使用引起果蔬采后病害病原菌產(chǎn)生抗藥性，進(jìn)而降低其防腐效果；另一方面產(chǎn)生的大量農(nóng)藥殘留會引起食品安全和環(huán)境污染等問題[8,9]。因此，尋求安全高效的貯藏保鮮技術(shù)對果蔬的采后保鮮和人體健康有著重要的意義。拮抗微生物的生物防治技術(shù)以其高效、無農(nóng)藥殘留且易降解等特點(diǎn)，逐漸成為當(dāng)前水果保鮮領(lǐng)域中的研究熱點(diǎn)[10,11]

已有研究表明，特基拉芽胞桿菌Bacillustequilensis對多種植物病原菌具有廣譜抗性。特基拉芽胞桿菌通過產(chǎn)生生物表面活性劑或脂肽等多種不同的抗菌物質(zhì)來抑制植物病原菌的生長，而且還能誘導(dǎo)植物產(chǎn)生抗性[12,13]。郗良卿等[14]研究發(fā)現(xiàn)特基拉芽胞桿菌X-16 發(fā)酵液和發(fā)酵上清液對甜櫻桃褐腐病菌具有較好抑制效果，抑制率分別達(dá)到71.93%和67.14%。特基拉芽胞桿菌XT1-4 菌株對引起馬鈴薯黃萎病的大麗輪枝菌Verticilliumdlboatrum和黑白輪枝菌Verticilliumdahliae，防治效果均達(dá)到了 60%以上[15]。特基拉芽胞桿菌D5-8 對煙草寄生疫霉的保護(hù)防效達(dá)60%以上，治療防效達(dá)50%以上[13]。此外，特基拉芽胞桿菌7PJ-16菌株培養(yǎng)96 h 的發(fā)酵濾液對核盤菌Sclerotiniasclerotiorum、桑葚核地杖菌Scleromitrulashiraiana、紋枯病菌Thanatephoruscucumeris等10 種常見供試植物病原菌具有不同程度的抑制作用[16]。芽胞桿菌不僅可以抑制植物病原菌生長，還可以通過誘導(dǎo)植物自身抗性而增強(qiáng)植物的抗病能力[17]。其中，誘導(dǎo)植物產(chǎn)生抗性反應(yīng)在生理生化方面主要是通過調(diào)控植物次生代謝產(chǎn)物及相關(guān)酶的催化活動來實(shí)現(xiàn)[18,19]。如地衣芽胞桿菌POT1 能誘導(dǎo)馬鈴薯酚類、黃酮類和花青素的合成增強(qiáng)自身抗病能力[20]。特基拉芽胞桿菌JN-369 誘導(dǎo)提高了水稻的超氧化物歧化酶（SOD）、過氧化物酶（POD）和過氧化氫酶（CAT）等抗病防御酶活性，從而抵抗水稻稻瘟病的侵染[21]。復(fù)合接種特基拉芽胞桿菌PKDN31 和地衣芽胞桿菌PKDL10 可以通過增加防御酶，如β-1,3 葡聚糖酶（GLU）、多酚氧化酶（PPO）、過氧化物酶（POD）、苯丙氨酸解氨酶（PAL）、幾丁質(zhì)酶（CHI）和總酚的積累誘導(dǎo)番茄對尖孢鐮刀菌的系統(tǒng)抗性[22]。本研究以前期分離自草莓果實(shí)表面對灰霉菌有較好抑菌效果的特基拉芽胞桿菌KXF 6501 作為供試菌株，通過體外平板對峙及獼猴桃果實(shí)接種試驗(yàn)研究了其不同培養(yǎng)時(shí)間發(fā)酵液對獼猴桃灰霉病的控制作用，在此基礎(chǔ)上探究了其發(fā)酵液處理對獼猴桃果實(shí)的誘導(dǎo)抗病機(jī)制及果實(shí)品質(zhì)的影響，以期為闡釋特基拉芽胞桿菌抑制獼猴桃采后灰霉病的作用機(jī)制提供理論支撐。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

1.1.1 果實(shí) “紅陽獼猴桃”購于昆明市金馬寺批發(fā)市場。選取無損傷、質(zhì)量在100～120 g、無病蟲害、成熟度一致的果實(shí)。

1.1.2 試驗(yàn)菌株 特基拉芽胞桿菌B.tequilensisKXF 6501，分離自健康草莓果實(shí)表面，后保存于西南林業(yè)大學(xué)生物多樣性保育國家林業(yè)和草原局重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室。將其活化后，利用NA（牛肉膏3 g，蛋白胨10 g，NaCl 5 g）液體培養(yǎng)基于28 ℃、120 r/min 振蕩培養(yǎng)。

灰霉菌B.cinerea（BC），引起灰霉病，為本實(shí)驗(yàn)室前期從貯藏藍(lán)莓發(fā)病果實(shí)分離獲得，且可以侵染獼猴桃果實(shí)致病的菌株，將其用PDA（土豆200 g，蔗糖20 g，瓊脂粉15 g）培養(yǎng)基，置于25 ℃條件下進(jìn)行培養(yǎng)5 d，待病原菌產(chǎn)孢后用無菌水配成104CFU/mL 的孢子懸浮液備用。

1.2 KXF 6501 生長曲線的測定

將活化后的芽胞桿菌KXF 6501，接種到NA 液體培養(yǎng)基于28 ℃、120 r/min 振蕩培養(yǎng)24 h 后，調(diào)整濃度為1×107CFU/mL，取100 μL 至盛有250 mL NA 液體培養(yǎng)基的錐形瓶中搖勻，在28 ℃、120 r/min的條件下進(jìn)行培養(yǎng)，分別于第2、4、6、12、24、48、72、96、120 和144 h 取樣，采用平板菌落計(jì)數(shù)法測定其活菌菌落數(shù)，以菌落數(shù)的對數(shù)值為縱坐標(biāo)，培養(yǎng)時(shí)間為橫坐標(biāo)，繪制菌株KXF 6501 生長曲線圖，試驗(yàn)重復(fù)2 次。

1.3 KXF 6501 發(fā)酵液對灰霉菌的抑菌能力測定

根據(jù)芽胞桿菌KXF 6501 生長曲線，選取進(jìn)入穩(wěn)定生長期前期和末期的發(fā)酵液（該時(shí)期發(fā)酵液較穩(wěn)定），即24 和96 h 的發(fā)酵液，采用平板對峙法[13]測定KXF 6501 培養(yǎng)時(shí)間發(fā)酵液的抑菌活性。25 ℃條件下培養(yǎng)灰霉菌5 d 后，用直徑5 mm 的打孔器取菌落邊緣的菌絲塊備用。在PDA 培養(yǎng)基中央接種灰霉菌菌絲塊，然后在距離培養(yǎng)皿中央3 cm 處的4 個(gè)無菌濾紙片上分別接種發(fā)酵液5 μL（濃度為1×107CFU/mL），以無菌水處理作為對照，置于培養(yǎng)箱中，25 ℃培養(yǎng)至對照組病原菌長滿整個(gè)培養(yǎng)皿，用十字交叉法測量病原菌的直徑，每個(gè)處理3 個(gè)重復(fù)。抑菌率（%）=（對照組病菌直徑—處理組病菌直徑）/對照組病菌直徑×100。

1.4 KXF 6501 發(fā)酵液對獼猴桃抗灰霉病的效果測定

對果實(shí)進(jìn)行處理，處理方法參照馬電通等[23]的操作方法，略作修改，即將獼猴桃果實(shí)用75%酒精表面消毒后用蒸餾水清洗，自然晾干后分成3 組，在每個(gè)果實(shí)水平赤道的對稱位置用已消毒的打孔釘打2 個(gè)孔（直徑4 mm，深5 mm），待傷口晾干后，分別加入15 μL 如下溶液： ① KXF 6501 24 h 發(fā)酵液（濃度為1×107CFU/mL）；② KXF 6501 96 h 發(fā)酵液（濃度為1×107CFU/mL）；接種2 h 后，分別向每個(gè)孔中加入15 μL 1×104CFU/mL 灰霉菌孢子懸液，以僅接種灰霉菌孢子懸浮液的果實(shí)作為對照，完成接種后置于塑料盒中室溫放置保存（22 ℃，80%～90%相對濕度）。于處理后的第1 d 開始，每天觀察其發(fā)病情況，并統(tǒng)計(jì)發(fā)病率及病斑直徑，每個(gè)處理分別為10 個(gè)果實(shí)，3 個(gè)重復(fù)，共90 個(gè)果實(shí)。

發(fā)病率（%）=果實(shí)發(fā)病孔數(shù)/果實(shí)接種總孔數(shù)×100。

果實(shí)病斑直徑（cm）：采用十字交叉法測量果實(shí)的病斑大小。

1.5 KXF 6501 誘導(dǎo)獼猴桃果實(shí)抗性生理變化

將獼猴桃果實(shí)用75%酒精表面消毒后用蒸餾水清洗，自然晾干分為兩組，每組15 個(gè)果實(shí)，分別在無菌水、KXF 6501 24 h 發(fā)酵液中浸泡3 min 后自然晾干，放置于塑料盒中，室溫條件下保存（22 ℃、80%～90%相對濕度），于處理后第0、7、14、21、28 d 每組隨機(jī)取3 個(gè)獼猴桃果實(shí)樣品，標(biāo)記后，在-80 ℃條件下進(jìn)行保存，用于測定相關(guān)抗性物質(zhì)含量及抗性防御酶活性。

抗性物質(zhì)的測定：總酚、類黃酮和花青素的測定參照曹建康等[24]的方法，取0.5 g 果實(shí)組織于研缽（高溫滅菌、-20 ℃冷凍）中，加入少量預(yù)冷的1% HCl-CH3OH 溶液，研磨，后轉(zhuǎn)移到刻度試管后定容至20 mL，于4 ℃避光提取20 min，過濾后取濾液分別于280、325、530、600 nm 處測定濾液吸光度，總酚、類黃酮和花青素的測定結(jié)果以吸光度值表示，單位分別為OD280/g FW、OD325/g FW、OD（530-600）/g FW。

抗性防御酶活性測定：苯丙氨酸解氨酶（phenylalanine ammonia lyase，PAL）、多酚氧化酶（(polyphenol oxidase，PPO）、幾丁質(zhì)酶（chitinase，CHI）、β-1,3-葡聚糖酶（β-1,3-glucanase，GLU）利用蘇州研犀生物有限公司的試劑盒進(jìn)行測定，取0.1 g 獼猴桃果實(shí)組織加入提取液在冰上研磨至勻漿，提取粗酶液，按照試劑盒步驟加入試劑后測定并計(jì)算上述酶活，單位為U/g FW。

1.6 KXF 6501 發(fā)酵液處理對果實(shí)品質(zhì)的影響

果實(shí)處理及取樣時(shí)間同方法1.2.4，測定果實(shí)品質(zhì)相關(guān)指標(biāo)，失重率用稱質(zhì)量法[24]測定，單位為%；可溶性固形物含量（SSC）采用手持式折光儀日本（AT-AGO 公司）直接測定，單位為%；可滴定酸含量（TA）采用NaOH 滴定法[24]測定，以質(zhì)量分?jǐn)?shù)（%）表示；抗壞血酸采用 2,6-二氯酚靛酚滴定法[24]進(jìn)行測定，以質(zhì)量分?jǐn)?shù)（%）表示；還原糖含量采用3,5-二硝基水楊酸法測定[24]，以質(zhì)量分?jǐn)?shù)（%）表示，以上果實(shí)營養(yǎng)品質(zhì)測定均參考曹建康等[24]的方法進(jìn)行測定。

1.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

使用Excel 2016 軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理，采用SPSS 22.0 軟件進(jìn)行單因素方差分析、獨(dú)立樣本T 檢驗(yàn)及Duncan 多重比較分析，當(dāng)P＜0.05 時(shí)為顯著性差異，利用Origin 2019 軟件進(jìn)行制圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 KXF 6501 生長曲線的測定

芽胞桿菌KXF 6501 的生長符合微生物的生長規(guī)律，其2～24 h 為對數(shù)生長期，24～96 h 為穩(wěn)定生長期，96～144 h 為衰亡生長期，24 h 進(jìn)入穩(wěn)定期后，其菌體數(shù)量達(dá)到108CFU/mL（圖1）。

圖1 芽胞桿菌KXF 6501 生長曲線Fig.1 Growth curve of B.tequilensis KXF 6501

2.2 KXF 6501 發(fā)酵液對灰霉菌的抑菌能力測定

KXF 6501 不同培養(yǎng)時(shí)間的發(fā)酵液均能抑制灰霉菌的生長，且其抑菌率均隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長而增加，但24 h 發(fā)酵液的抑菌率在整個(gè)培養(yǎng)周期均高于96 h 的發(fā)酵液（圖2，3），且在培養(yǎng)前期（第2 d，第3 d）達(dá)到顯著水平；第5 d 時(shí)，24 與96 h 發(fā)酵液對灰霉菌的抑菌率分別為75.96%和73.72%（圖3）。

圖2 KXF 6501 24 與96 h 發(fā)酵液對灰霉菌的抑制效果Fig.2 Inhibition effect of KXF 6501 24 and 96 h fermentation broth on gray mold

圖3 KXF 6501 24 h 與96 h 發(fā)酵液對灰霉菌的抑菌率Fig.3 Inhibition rate of KXF 6501 24 h and 96 h fermentation broth on gray mold

2.3 KXF 6501 發(fā)酵液對獼猴桃抗灰霉病的效果測定

如表1 和圖4 所示，KXF 6501 24 h 發(fā)酵液與96 h 發(fā)酵液在獼猴桃果實(shí)上，對灰霉病均有不同程度的抑制作用。24 h 發(fā)酵液處理4 d 后的發(fā)病率為65.00%，低于96 h 發(fā)酵液的發(fā)病率70.00%，二者均顯著低于對照處理（P＜0.05）。隨著貯藏時(shí)間的延長，24 h 發(fā)酵液和96 h 發(fā)酵液對獼猴桃果實(shí)病斑直徑的擴(kuò)大均有不同程度的抑制作用。貯藏7～11 d，24 h 發(fā)酵液處理的獼猴桃果實(shí)灰霉病病斑直徑顯著（P＜0.05）低于對照組，但96 h 發(fā)酵液處理的果實(shí)病斑直徑與對照組無顯著差異。

表1 KXF 6501 發(fā)酵液對采后獼猴桃灰霉病的抑制效果Table 1 Inhibition effect of KXF 6501 fermentation broth on gray mold of postharvest kiwifruit

圖4 KXF 6501 發(fā)酵液處理第7 d 時(shí)對采后獼猴桃灰霉病的抑制效果Fig.4 Inhibition effect of KXF 6501 fermentation broth on grey mold of postharvest kiwifruit on day 7

2.4 特基拉芽胞桿菌KXF 6501 誘導(dǎo)獼猴桃果實(shí)抗性生理變化

2.4.1 果實(shí)抗性物質(zhì)含量變化 從圖5 可以看出，貯藏過程中，對照組果實(shí)總酚、類黃酮和花青素的含量變化趨勢相似，呈緩慢上升，于第21 d 達(dá)到峰值，之后略有下降。KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理后，果實(shí)總酚、類黃酮、花青素的含量迅速上升，于第7 d 達(dá)到峰值，顯著高于對照組，其含量分別為2.38 OD280/g、1.26 OD325/g、0.20 OD（530－600）/g，是對照組的1.96、4.07 和5.29 倍，之后迅速下降至最低值（第14 d），隨后持續(xù)上升。

圖5 KXF 6501 發(fā)酵液處理對采后獼猴桃果實(shí)總酚（A）、類黃酮（B）、花青素（C）含量的影響Fig.5 Effect of KXF 6501 fermentation broth on the content of total phenols (A), flavonoids (B) and anthocyanins (C) in postharvest kiwifruit

2.4.2 果實(shí)抗病酶活性變化 如圖6A 所示，在整個(gè)貯藏期間，PAL 的活性呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢，處理組酶活性在貯藏前7 d 呈上升趨勢，在第7 d 時(shí)酶活性達(dá)到最大，為95.04 U/g，是對照組的2.40 倍，且其活性于7～21 d 高于對照組，在7～14 d 達(dá)到顯著（P＜0.05）水平，之后呈波動下降趨勢。

圖6 KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理對采后獼猴桃PAL（A）、PPO（B）、CHI（C）、GLU（D）活性的影響Fig.6 Effect of KXF 6501 24 h fermentation broth on the activities of PAL (A), PPO (B), CHI (C) and GLU (D) in postharvest kiwifruit

由圖6B 可知，在整個(gè)貯藏期間，處理組和對照組的PPO 活性呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢，下降幅度小于對照組，且僅在貯藏第28 d 時(shí)，處理組酶活是對照組的3.35 倍，為116.58 U/g，顯著（P＜0.05）高于對照組。

如圖6C 所示，在整個(gè)貯藏期間，CHI 活性在前期的變化不大，然后呈上升后下降的趨勢，處理酶活性在第7 d 急劇上升，在第14 d 達(dá)到峰值，活性為8.41 U/g，與對照相比，酶活性增加了1.15 倍，顯著（P＜0.05）高于對照組。

如圖6D 所示，在整個(gè)貯藏期間，處理組GLU 活性總體變化趨勢呈先上升后下降然后逐漸回升的趨勢，且GLU 酶活性于第14 和28 d 顯著（P＜0.05）高于對照組，活性分別為163.88 和240.19 U/g，分別是對照組的1.57 和2.03 倍。

2.5 KXF 6501 發(fā)酵液處理對果實(shí)品質(zhì)的影響

隨著貯藏時(shí)間的延長，獼猴桃果實(shí)的失重率逐漸升高，KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理組果實(shí)失重相對較慢，顯著（P＜0.05）低于對照組（圖7）；獼猴桃果實(shí)在貯藏28 d 時(shí)，KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理組果實(shí)可溶性固形物含量為15.13%，顯著低于對照組；處理組和對照組的可滴定酸和抗壞血酸含量無顯著差異。表明KXF 6501 發(fā)酵液處理有效延緩果實(shí)失水，保持果實(shí)營養(yǎng)品質(zhì)（表3）。

表3 KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理對采后獼猴桃果實(shí)品質(zhì)的影響Table 3 Effect of KXF 6501 24 h fermentation broth on fruit quality of postharvest kiwifruit

圖7 KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理對采后獼猴桃失重率的影響Fig.7 Effect of KXF 6501 24 h fermentation broth on weight loss of postharvest kiwifruit

3 討論

近年來，越來越多的芽胞桿菌作為生防因子應(yīng)用于果蔬采后病害防治研究中，如解淀粉芽胞桿菌、枯草芽胞桿菌、地衣芽胞桿菌和特基拉芽胞桿菌等[8,25]。趙煥蘭等[26]利用貝萊斯芽胞桿菌A4 發(fā)酵液浸泡櫻桃番茄后，果實(shí)貯藏期間的腐爛率降低，表明該菌的發(fā)酵液處理可以提高櫻桃番茄采后保鮮。本研究發(fā)現(xiàn)芽胞桿菌KXF 6501 24 和96 h 發(fā)酵液對灰霉病菌的菌絲生長菌具有較強(qiáng)的抑制作用，同時(shí)也能很好的控制獼猴桃果實(shí)灰霉病的發(fā)生，其中以24 h 的發(fā)酵液效果更佳，這可能是24 h發(fā)酵液的中的菌體處于對數(shù)期前期活力較強(qiáng)，相對于灰霉菌更具有空間和營養(yǎng)競爭優(yōu)勢，能夠有效抑制灰霉病的入侵和繁殖。但KXF 6501 24 和96 h 發(fā)酵液中的抑菌活性成分是否存在差異，有待后續(xù)進(jìn)一步深入研究。

當(dāng)植物受到生防菌誘導(dǎo)或病原體侵染時(shí)，會啟動與抗病相關(guān)的防御機(jī)制來抵抗病原菌的影響[27,28]。PAL、PPO、SOD 和POD 是植物體內(nèi)與抵制病原微生物侵染相關(guān)的重要酶，酶活性升高是誘導(dǎo)抗性產(chǎn)生的重要指標(biāo)之一[18]。PAL 是與苯丙烷代謝相關(guān)的途徑中的第一種酶，它參與抗病物質(zhì)的生物合成，如酚類物質(zhì)和木質(zhì)素等[29]。植物在受到生防因子誘導(dǎo)后，其體內(nèi)PAL 活性上升及相應(yīng)抗性物質(zhì)含量會增加。本研究發(fā)現(xiàn)特基拉芽胞桿菌KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理組的PAL 酶活性高于對照處理且先于對照組達(dá)到峰值，總酚、類黃酮和花青素的峰值到達(dá)時(shí)間也得到進(jìn)一步提前。陳劉軍等[30]研究發(fā)現(xiàn)蠟質(zhì)芽胞桿菌AR156也能通過誘導(dǎo)水稻體內(nèi)的PAL 酶活力提高，來增強(qiáng)植物本身的抗病能力，這與本研究結(jié)果相一致。PPO可以催化產(chǎn)生木質(zhì)素和酚類氧化產(chǎn)物來構(gòu)成保護(hù)性屏障，抵御病原體的入侵，同時(shí)還可以催化酚類物質(zhì)氧化形成高毒性的醌類物質(zhì)，直接作用于病原菌[31]。本研究中，KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理誘導(dǎo)獼猴桃果實(shí)中的PPO 酶活性升高，在14 d 后高于對照組，之后減緩酶活性下降，有效提高了果實(shí)的抗病性。CHI 和GLU 可水解病原菌細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)的幾丁質(zhì)和葡聚糖，破壞其細(xì)胞壁來消滅病原菌，同時(shí)二者常共同作用，協(xié)同表達(dá)來增強(qiáng)植物的抗病性[32-34]。本研究結(jié)果表明，KXF 6501 24 h 發(fā)酵液處理顯著提高獼猴桃果實(shí)體內(nèi)CHI 和GLU 酶活性，增強(qiáng)其抵抗灰霉病的能力。柴慶凱等[35]報(bào)道，施用解淀粉芽胞桿菌LJ02 可以誘導(dǎo)黃瓜CHI 和GLU 酶活，提高了其抵抗灰霉病侵染的能力。唐文等[18]利用枯草芽胞桿菌Czk1 發(fā)酵液對橡膠樹進(jìn)行處理，發(fā)現(xiàn)其誘導(dǎo)了橡膠樹葉片中CAT、SOD、POD、PAL 和PPO 等防御酶活性提高。因此，酶活性的提高在獼猴桃抵御病原侵染中發(fā)揮了重要作用，是芽胞桿菌KXF 6501 控制獼猴桃采后病害的重要機(jī)制之一。

本研究的結(jié)果表明，特基拉芽胞桿菌KXF 6501 可以很好的控制獼猴桃采后灰霉病，保持果實(shí)品質(zhì)，誘導(dǎo)提高果實(shí)的抗病酶活和抗病物質(zhì)含量，具有開發(fā)為生防制劑的潛力。但后續(xù)還需要進(jìn)一步分析其發(fā)酵液中的抑菌活性物質(zhì)及其生防作用機(jī)制，為其在將來的大規(guī)模生產(chǎn)應(yīng)用和菌劑開發(fā)中發(fā)揮穩(wěn)定防效提供理論基礎(chǔ)和技術(shù)支撐。