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    超聲輔助谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶對(duì)肌原纖維蛋白結(jié)構(gòu)及凝膠性能的調(diào)控

    2023-09-19 02:45:10鄧文輝韓馨蕊王偉馬文慶馬文慧曹云剛
    食品研究與開發(fā) 2023年18期
    關(guān)鍵詞:溶解度質(zhì)構(gòu)損失率

    鄧文輝,韓馨蕊,王偉,馬文慶,馬文慧,曹云剛*

    (1.陜西理工大學(xué) 體育學(xué)院,陜西 漢中 723000;2.陜西科技大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 西安 710021;3.臨沂金鑼文瑞食品有限公司,山東 臨沂 276036)

    肉及肉制品含有豐富的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)[1],深受大眾喜愛(ài),也是運(yùn)動(dòng)員補(bǔ)充體能和蛋白質(zhì)的重要膳食來(lái)源。肌原纖維蛋白(myofibrillar protein,MP)占整個(gè)肌肉蛋白含量的55%~60%,決定肉制品加熱過(guò)程中三維凝膠網(wǎng)絡(luò)的形成,對(duì)肉制品品質(zhì)起關(guān)鍵作用。肉蛋白的結(jié)構(gòu)和凝膠性能受到肉制品加工工藝和食品添加劑等多方面的影響,最終體現(xiàn)在肉制品持水性、質(zhì)構(gòu)和風(fēng)味等方面的差異。為了提高肉制品的品質(zhì),選擇合適的添加劑或技術(shù)來(lái)改善肉蛋白的加工性能是目前研究的熱點(diǎn)。

    谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶(glutamine transaminase,TG)是用來(lái)改善蛋白凝膠性能的新型食品加工酶。它能催化蛋白中賴氨酸殘基的ε-氨基與谷氨酰胺殘基的γ-酰胺基之間進(jìn)行酰胺基轉(zhuǎn)移反應(yīng),形成ε-(γ-谷酰胺)-賴氨酸的異型肽鍵,從而提高蛋白質(zhì)的凝膠性能、改善產(chǎn)品的質(zhì)構(gòu)。Chanarat 等[2]研究發(fā)現(xiàn)添加TG 可以提高魚糜的凝膠強(qiáng)度;Cao 等[3]研究發(fā)現(xiàn)添加TG 促進(jìn)了豬肉MP 的α-螺旋向β-折疊的轉(zhuǎn)變,提高了MP 凝膠的強(qiáng)度;Fang 等[4]研究發(fā)現(xiàn),添加TG 可以提高鰱魚魚糜凝膠的強(qiáng)度。

    超聲技術(shù)通常被用來(lái)改變食品組分結(jié)構(gòu)和功能性,被認(rèn)為是一種綠色、高效、低成本、操作簡(jiǎn)單的食品加工技術(shù)。超聲產(chǎn)生的機(jī)械效應(yīng)和空化效應(yīng)可以改變蛋白質(zhì)的功能特性[5],一般可以用來(lái)直接修飾蛋白分子,從而改善蛋白的功能特性[6],因此在食品加工中的應(yīng)用備受關(guān)注。Zhang 等[7]發(fā)現(xiàn)超聲處理雞胸肉MP,降低了其粒徑以及巰基含量,提高了MP 凝膠的持水性;張崟等[8]研究發(fā)現(xiàn)超聲處理提高了羅非魚魚糜的凝膠質(zhì)構(gòu)特性;Wang 等[9]研究發(fā)現(xiàn)超聲處理能提高雞胸肉MP 的溶解度以及表面疏水性;李穎暢等[10]研究表明,超聲有利于海鱸魚凝膠微觀結(jié)構(gòu)的形成,顯著降低了熱誘導(dǎo)凝膠的蒸煮損失。

    目前,利用TG 改善肌原纖維蛋白凝膠性能已經(jīng)成為研究熱點(diǎn),但關(guān)于超聲輔助TG 對(duì)肌原纖維蛋白凝膠特性的影響研究鮮有報(bào)道。因此本研究以豬肉MP 為研究對(duì)象,探究超聲輔助TG 對(duì)豬肌原纖維蛋白凝膠特性的影響,并探討其內(nèi)在作用機(jī)制,以期為促進(jìn)TG 和超聲技術(shù)在肉蛋白凝膠食品加工中的合理應(yīng)用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    豬背最長(zhǎng)肌:市售,置于冰盒運(yùn)回陜西科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院實(shí)驗(yàn)室,剔除可見(jiàn)脂肪及結(jié)締組織后,分裝為每袋約100 g,于-18 ℃冷凍儲(chǔ)藏備用。

    谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶:北京索萊寶科技有限公司;二硫蘇糖醇(dithiothreitol,DTT)、丙烯酰胺-甲叉雙丙烯酰胺30%溶液(29∶1,體積比)、過(guò)硫酸銨、三羥甲基氨基甲烷、甘氨酸、溴酚藍(lán):生工生物工程(上海)股份有限公司;牛血清蛋白、戊二醛、乙醇、叔丁醇:天津市天力化學(xué)試劑有限公司。所用試劑均為分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    立式冷凍離心機(jī)(HR/T20M):湖南赫西儀器裝備有限公司;超聲波細(xì)胞破碎儀(SCIENTZ-IID):寧波新芝生物科技股份有限公司;數(shù)顯pH 計(jì)(PHS-25):上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;分光測(cè)色計(jì)(CM-5):柯尼卡美能達(dá)(中國(guó))投資有限公司;紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)(UV2900):上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司;物性測(cè)試儀(TA. Plus):英國(guó)Stable Micro System 公司;流變儀(Haake mars 60):美國(guó)賽默飛世爾科技公司;圓二色光譜儀(Chirascan-plus 101):英國(guó)Applied Photophysics 公司;激光粒度分析儀(Mastersizer 2000):英國(guó)馬爾文儀器公司;掃描電鏡(FEI Q45+EDAX Octane Prime):美國(guó)FEI 公司;熒光光譜儀(Spectrofluorometer FS5):英國(guó)愛(ài)丁堡公司。

    1.3 方法

    1.3.1 肌原纖維蛋白的提取

    參照Cao 等[11]的方法提取肌原纖維蛋白。將真空包裝的里脊肉于4 ℃解凍,切成小條后稱質(zhì)量,置于組織搗碎機(jī)并加入4 倍體積的僵直液[含0.1 mol/L NaCl、10 mmol/L 磷酸氫二鈉、2 mmol/L MgCl2、1 mmol/L 乙二醇雙(2-氨基乙基)四乙酸,pH7.0],勻漿攪拌1 min 后,離心15 min(4 ℃、2 000×g)棄上清液,所得沉淀再次加入4 倍體積的僵直液,重復(fù)上述步驟3 次。此時(shí)所得沉淀加入4 倍體積的0.1 mol/L NaCl 溶液,勻漿攪拌后4 層紗布過(guò)濾,調(diào)節(jié)pH6.2 后離心15 min(4 ℃、2 000×g),所得沉淀即為MP。采用雙縮脲法測(cè)定蛋白濃度。

    1.3.2 肌原纖維蛋白的處理

    用25 mmol/L 磷酸鹽緩沖液(含0.6 mol/L NaCl,pH6.2,4 ℃) 將MP 蛋白膏樣品稀釋為30 mg/mL,并調(diào)節(jié)稀釋后MP 分散液中NaCl 的終濃度為0.6 mol/L。在冰水浴中,對(duì)MP 分散液分別進(jìn)行超聲、TG 及超聲輔助TG 處理,設(shè)置A、B、C、D、E 5 個(gè)試驗(yàn)組,分別為超聲100 W(20 s)、超聲100 W(1 min)、TG、超聲100 W(20 s)+TG、超聲100 W(1 min)+TG,同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照。

    1.3.3 圓二色譜分析

    不同處理MP 二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化采用圓二色光譜儀進(jìn)行分析,用25 mmol/L 磷酸鹽緩沖液(含0.6 mol/L NaCl,pH6.2)將蛋白溶液稀釋至0.2 mg/mL,參數(shù)設(shè)置:掃描頻率120 nm/min、掃描范圍200~260 nm,并扣除溶劑和空倉(cāng)背景,使用CDNN 軟件計(jì)算蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)含量[3]。

    1.3.4 內(nèi)源性色氨酸熒光分析

    采用馬文慧等[12]的方法,測(cè)定蛋白內(nèi)源性熒光,使用25 mmol/L 磷酸鹽緩沖液(含0.6 mol/L NaCl,pH6.2)將MP 樣品稀釋為0.4 mg/mL,設(shè)置激發(fā)波長(zhǎng)為283 nm,發(fā)射光譜290~400 nm,激發(fā)和發(fā)射狹縫寬度均為1.5 nm,并在相同條件下對(duì)樣品緩沖液進(jìn)行掃描,從樣品光譜中扣除緩沖液背景。

    1.3.5 粒度分析

    采用Mastersizer 2000 激光粒度分析儀測(cè)定MP 樣品的平均粒徑,將MP 樣品溶液(2 mg/mL)分散于800 mL蒸餾水中,當(dāng)樣品的遮光度達(dá)到相應(yīng)的范圍(10%~15%)時(shí)測(cè)量蛋白的粒徑大小。設(shè)置MP 顆粒折射率為1.570,分散劑折射率為1.330,吸收指數(shù)為0.001。

    1.3.6 溶解度測(cè)定

    參照Cao 等[13]的方法,使用25 mmol/L 磷酸鹽緩沖液(含0.6 mol/L NaCl,pH6.2)將MP 樣品稀釋至2 mg/mL,離心15 min(5 000×g、4 ℃),雙縮脲法測(cè)定上清液中蛋白濃度。按公式(1)計(jì)算溶解度。

    式中:S 為蛋白溶解度,%;S1為上清液中的蛋白含量,mg/mL;S2為原蛋白液中的蛋白含量,mg/mL。

    1.3.7 十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳

    參考曹云剛等[14]的方法并進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整,不同處理的MP(2 mg/mL)交聯(lián)和聚集分別在還原和非還原條件下采用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE) 分析,濃縮膠和分離膠濃度分別選用4%和12%,每孔上樣量為25 μL。凝膠用染色液(含1 mg/mL 考馬斯亮藍(lán)、50%甲醇和6.8%冰乙酸) 染色1 h,隨后用脫色液(含5%甲醇和7.5%冰乙酸)脫色,染色脫色后拍照并對(duì)電泳條帶進(jìn)行分析。

    1.3.8 流變行為表征

    參照Li 等[15]的方法,在振蕩溫度連續(xù)掃描模式下,將MP 樣品(30 mg/mL)離心1 min(1 000×g、4 ℃)以去除氣泡,均勻涂布于平板上,轉(zhuǎn)子下壓至間隙為1 mm,為防止加熱過(guò)程中水分蒸發(fā),用硅油密封。參數(shù)設(shè)置:平衡時(shí)間3 min,以1 ℃/min 的升溫速率,由20 ℃加熱至80 ℃,設(shè)置振蕩頻率0.1 Hz,最大應(yīng)變2%,以彈性模量G′和黏性模量G″為評(píng)價(jià)指標(biāo)進(jìn)行分析。

    1.3.9 凝膠制備及性能測(cè)定

    稱取約5 g 經(jīng)離心(1 000×g、1 min、4 ℃)脫氣后的MP 溶膠(30 mg/mL)于制膠小瓶中,用木塞蓋住,置于水浴鍋中以1 ℃/min 的升溫速率從20 ℃加熱至75 ℃保溫10 min 后,立刻置于冰水混合物中冷卻30 min 得到MP 凝膠,隨后放入4 °C 冰箱冷藏12 h 待用。

    1.3.9.1 蒸煮損失率測(cè)定

    將上述制備的MP 凝膠從4 ℃冰箱取出平衡2 h后,進(jìn)行蒸煮損失率的測(cè)定,將蛋白凝膠與制膠小瓶的瓶壁輕輕分離,在濾紙上倒置20 min,待蒸煮汁液流盡后,稱質(zhì)量。按公式(2)計(jì)算蒸煮損失率。

    式中:L 為蒸煮損失率,%;Wsol為蒸煮前溶膠的質(zhì)量,g;Wgel為蒸煮后凝膠的質(zhì)量,g。

    1.3.9.2 凝膠白度測(cè)定

    MP 凝膠的色差采用分光測(cè)色計(jì)測(cè)定,儀器經(jīng)自檢及零點(diǎn)、白板校正后,測(cè)定各組凝膠樣品的L*、a*、b*(其中L* 表示亮度值、a* 表示紅度值、b* 表示黃度值)[16]。按公式(3)計(jì)算凝膠白度(W)。

    1.3.9.3 凝膠質(zhì)構(gòu)測(cè)定

    采用質(zhì)構(gòu)分析法(texture profile analysis,TPA)[17],將MP 凝膠置于質(zhì)構(gòu)儀平板上進(jìn)行質(zhì)構(gòu)的測(cè)定。參數(shù)設(shè)置:觸發(fā)力10 g,測(cè)前、測(cè)中、測(cè)后速度均為2 mm/s,下壓百分比30%,兩次下壓時(shí)間間隔5 s,探頭型號(hào)P/75。

    1.3.10 凝膠微觀結(jié)構(gòu)表征

    將蛋白凝膠用刀片切成方形小塊(約5 mm×5 mm×1 mm),用含2.5%戊二醛的磷酸鹽緩沖液(0.1 mol/L,pH7.4)固定MP 凝膠結(jié)構(gòu)4 h 后,用0.1 mol/L 的磷酸鹽緩沖液(pH7.4)清洗3 次,然后通過(guò)不同濃度的乙醇溶液(50%、70%、90%、95%、100%)進(jìn)行梯度脫水,每次30 min,用叔丁醇置換3 次,每次30 min,最后樣品經(jīng)冷凍干燥后噴金,采用掃描電鏡對(duì)各組凝膠樣品進(jìn)行微觀結(jié)構(gòu)表征。設(shè)置掃描電鏡加速電壓:15 kV,放大倍數(shù):10 000 倍[18]。

    1.4 數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計(jì)分析

    所有試驗(yàn)均進(jìn)行3 次重復(fù),每次重復(fù)均設(shè)置3 個(gè)平行組別。采用Statistix 9 軟件(P<0.05)進(jìn)行顯著性分析和方差分析,采用Sigmaplot 12.5 軟件進(jìn)行繪圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同處理對(duì)MP 結(jié)構(gòu)的影響

    圓二色光譜(circular dichroism,CD)通常用于檢測(cè)蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化[19],不同處理MP 的CD 圖譜如圖1Ⅰ所示。內(nèi)源性熒光光譜通常用來(lái)反映蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)的變化,主要是基于色氨酸(Trp)殘基對(duì)于其周圍微環(huán)境的極性極其敏感。不同處理MP 的內(nèi)源性熒光光譜如圖1Ⅱ所示。

    圖1 不同處理對(duì)MP 二級(jí)結(jié)構(gòu)和三級(jí)結(jié)構(gòu)的影響Fig.1 Effects of different treatments on secondary and tertiary structures of MP

    由圖1Ⅰ可知,空白組的CD 圖譜在222 nm 處出現(xiàn)1 個(gè)負(fù)峰,說(shuō)明MP 的α-螺旋含量較多,這是由于肌球蛋白尾部富含螺旋結(jié)構(gòu)。與空白組相比,在超聲功率為100 W 時(shí),隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng),由于超聲作用促使α-螺旋逐步解開,導(dǎo)致其含量降低。Li 等[20]研究發(fā)現(xiàn),雞胸肉MP 的α-螺旋含量隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng)而下降,與本研究結(jié)果一致。添加TG 使得MP 的α-螺旋含量顯著降低,這與TG 誘導(dǎo)的蛋白共價(jià)交聯(lián)形成ε-(γ-谷氨酰胺基) 有關(guān)。超聲輔助TG 處理使得MP 的α-螺旋的含量均明顯上升,這可能是由于超聲處理引起蛋白結(jié)構(gòu)的展開,促進(jìn)了TG 催化的蛋白分子內(nèi)和分子間共價(jià)交聯(lián),引起蛋白質(zhì)構(gòu)象復(fù)折疊。

    由圖1Ⅱ可知,與空白組相比,經(jīng)超聲處理后,MP的內(nèi)源性熒光強(qiáng)度明顯下降,并且熒光強(qiáng)度隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng)進(jìn)一步下降,這可能是由于超聲的空化和機(jī)械效應(yīng)使得色氨酸殘基更易暴露于極性微環(huán)境中,引起內(nèi)源熒光強(qiáng)度下降[21]。與空白組相比,TG 處理使得MP 的內(nèi)源性熒光強(qiáng)度均明顯上升。這與Cao 等[3]添加TG 使得氧化條件下豬MP 的熒光強(qiáng)度下降結(jié)果不一致,這可能與蛋白的初始狀態(tài)(氧化或非氧化)等條件有關(guān)。與單獨(dú)使用TG 處理相比,超聲輔助TG 處理使MP 內(nèi)源性熒光強(qiáng)度更高,這說(shuō)明超聲輔助TG 使得蛋白結(jié)構(gòu)發(fā)生了重排,蛋白復(fù)折疊使得色氨酸殘基處于更加疏水的微環(huán)境中。

    2.2 不同處理對(duì)MP 平均粒徑及溶解度的影響

    不同處理對(duì)MP 表面積平均粒徑d(3,2)和體積平均粒徑d(4,3)的影響見(jiàn)圖2Ⅰ。溶解度通常是用來(lái)衡量蛋白質(zhì)變性和聚集的方法之一,也是蛋白質(zhì)最基本的物理性質(zhì)。不同處理對(duì)MP 溶解度的影響見(jiàn)圖2Ⅱ。

    由圖2Ⅰ可知,與空白組相比,MP 經(jīng)過(guò)超聲處理20 s后,d(3,2)和d(4,3)分別下降至46.1 μm 和81.3 μm,主要是由于短時(shí)超聲破壞了蛋白聚集體中的非共價(jià)鍵,導(dǎo)致蛋白解聚、平均粒徑減小[22]。但超聲時(shí)間延長(zhǎng)至1 min 后,d(3,2)和d(4,3)又增大至54.2 μm 和101.3 μm,與空白組MP 的平均粒徑相當(dāng),這是因?yàn)殡S著超聲時(shí)間的延長(zhǎng),蛋白分子間疏水相互作用及共價(jià)相互作用增強(qiáng),蛋白質(zhì)又重新發(fā)生了聚集。與空白組相比,TG 單獨(dú)處理使MP 的粒徑增加至59.0 μm 和137.0 μm,可能歸因于TG 催化蛋白分子內(nèi)及分子間共價(jià)交聯(lián)引起蛋白質(zhì)構(gòu)象發(fā)生變化(圖1),導(dǎo)致聚合物的形成、粒徑增加[23]。超聲輔助TG 處理后MP 的d(3,2)和d(4,3)均顯著下降,這可能是由于超聲輔助使得TG 催化位點(diǎn)增多,蛋白分子內(nèi)及分子間交聯(lián)程度增加,蛋白質(zhì)顆粒更加緊實(shí)、粒度變小。

    由圖2Ⅱ可知,與空白組相比,超聲處理明顯降低了MP 的溶解度(P<0.05),并且隨著超聲時(shí)間延長(zhǎng)MP溶解度逐漸下降。孫攀[21]研究發(fā)現(xiàn)超聲處理導(dǎo)致金槍魚MP 溶解度下降,并且隨著超聲時(shí)間延長(zhǎng)溶解度進(jìn)一步下降。這可能是由于超聲處理的空化和機(jī)械效應(yīng)使蛋白質(zhì)發(fā)生了一定程度的變性。與本研究結(jié)果一致。與空白組相比,單獨(dú)添加TG 使得MP 的溶解度下降了12.40%,這是由于TG 催化蛋白分子間或分子內(nèi)發(fā)生交聯(lián)形成了不溶的大分子物質(zhì)。不同時(shí)長(zhǎng)超聲輔助TG 處理使得MP 的溶解度下降至70.19% 和60.75%,側(cè)面反映了蛋白之間的交聯(lián)與聚集。

    2.3 不同處理對(duì)MP 交聯(lián)聚集行為的影響

    蛋白之間發(fā)生的交聯(lián)、聚集及降解情況可以通過(guò)SDS-PAGE 電泳圖來(lái)觀察[24]。不同處理MP 的SDS-PAGE圖譜如圖3 所示。

    圖3 不同處理對(duì)MP 的SDS-PAGE 的圖譜的影響Fig.3 Effects of different treatments on SDS-PAGE spectra of MP

    從圖3 中可以看出兩條明顯的條帶,分別是肌球蛋白重鏈(myosin heavy chain,MHC)(200 kDa)和肌動(dòng)蛋白(43 kDa),這說(shuō)明肌原纖維蛋白的主要成分為肌球蛋白和肌動(dòng)蛋白。由圖3Ⅰ可知,在非還原條件下,與空白組相比,超聲使得濃縮膠頂部的聚合物增多,肌球蛋白重鏈(MHC)和肌動(dòng)蛋白(Actin)條帶明顯減弱,這與超聲使MP 的溶解度降低結(jié)果相一致(圖2Ⅱ)。由圖3Ⅱ可知,在還原條件下,MHC 和肌動(dòng)蛋白條帶基本復(fù)原,濃縮膠頂部的聚合物幾乎完全消失;說(shuō)明超聲引起的蛋白聚集主要是通過(guò)二硫鍵交聯(lián)引起的。相似地,Li 等[25]也發(fā)現(xiàn)超聲使金槍魚MP 的肌球蛋白重鏈(MHC)條帶明顯減少,這可能是由于超聲處理會(huì)造成部分肌原纖維蛋白變性,蛋白分子之間發(fā)生聚集或者交聯(lián)[26]。與空白組相比,在非還原條件下,TG 處理及超聲輔助TG 處理組中MHC 和肌動(dòng)蛋白條帶顯著變淺;且在還原條件下變淺的條帶不能完全恢復(fù),這是由于TG 催化蛋白形成了ε-(γ-谷酰胺)-賴氨酸的異型肽鍵。超聲1 min 輔助TG 處理組中MHC 和肌動(dòng)蛋白的條帶最淺,說(shuō)明超聲輔助處理促進(jìn)了TG 催化蛋白之間異肽鍵的形成。

    2.4 不同處理對(duì)MP 流變行為的影響

    利用溫度掃描來(lái)反映MP 在熱誘導(dǎo)凝膠形成過(guò)程中流變性能(彈性和黏性)的變化情況,通常用彈性模量G′和黏性模量G″來(lái)表示[27]。不同處理對(duì)MP 流變性能的影響見(jiàn)圖4。

    圖4 不同處理對(duì)MP 流變性能的影響Fig.4 Effects of different treatments on rheological properties of MP

    從圖4Ⅰ中可以看出,空白組的G′ 在20~50 ℃隨溫度增加而上升,這是由于溫度增加促使肌球蛋白頭部變性聚合形成較為松散的凝膠;在50~55 ℃時(shí),隨溫度增加G′明顯降低,這是由于肌球蛋白尾部開始解螺旋,從而導(dǎo)致蛋白的流動(dòng)性增強(qiáng),破壞了蛋白質(zhì)的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)[28];在55~75 ℃時(shí),G′隨溫度升高持續(xù)上升,這是由于肌球蛋白尾部交聯(lián)程度增加,凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)增強(qiáng),形成了永久、不可逆的熱誘導(dǎo)凝膠。超聲處理MP的G′在整個(gè)熱誘導(dǎo)成膠過(guò)程中均低于空白組,說(shuō)明超聲處理在一定程度上破壞了MP 的膠凝性能。TG 的引入顯著提高了MP 的G′,這是由于TG 催化蛋白分子內(nèi)與分子間形成非二硫鍵共價(jià)交聯(lián)[29],顯著提高了MP在熱誘導(dǎo)凝膠過(guò)程中的彈性。超聲輔助TG 處理組的G′均高于空白組,但依舊低于單獨(dú)添加TG 組的G′,再次說(shuō)明超聲處理不利于MP 形成熱誘導(dǎo)凝膠。

    由圖4Ⅱ可知,溫度為20~50 ℃時(shí),G″隨著溫度的上升而增加,在50~75 ℃時(shí),G″整體上反而下降。不同處理MP 的G″趨勢(shì)與G′相似,在整個(gè)加熱過(guò)程中彈性模量G′始終高于黏性模量G″,這說(shuō)明彈性成分始終高于黏性成分。超聲輔助TG 處理MP 的G″高于單獨(dú)超聲處理的G″,但低于單獨(dú)TG 處理MP 的G″。

    2.5 不同處理對(duì)MP 凝膠蒸煮損失率和白度的影響

    不同處理對(duì)MP 凝膠蒸煮損失率和白度的影響如圖5 所示。

    圖5 不同處理對(duì)MP 凝膠的蒸煮損失率和凝膠白度的影響Fig.5 Effects of different treatments on cooking loss and gel whiteness of MP gel

    由圖5 可知,與空白組相比,超聲處理使得MP 凝膠的蒸煮損失率減少,并且隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng),蒸煮損失率逐漸下降。冷利萍[30]也發(fā)現(xiàn)超聲處理使金線魚MP 凝膠的蒸煮損失率下降,與本研究結(jié)果一致。原因可能是超聲促進(jìn)了蛋白質(zhì)形成了更加細(xì)膩的三維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),更有利于水分的保持。TG 的引入使得MP 凝膠的蒸煮損失率降低至11.1%,超聲輔助TG 處理組MP 凝膠(D 和E 組)的蒸煮損失率分別降低至9.1%和9.7%,超聲輔助TG 比超聲和TG 分別單獨(dú)使用的效果更好,說(shuō)明超聲輔助TG 在降低MP 凝膠的蒸煮損失率方面有協(xié)同作用。由圖5 可知,超聲輔助TG 處理組的凝膠白度最低,其他處理對(duì)MP 凝膠白度的影響并不明顯。

    2.6 不同處理對(duì)MP 凝膠質(zhì)構(gòu)特性的影響

    硬度、彈性、內(nèi)聚性、膠黏性、咀嚼性和回復(fù)性能夠反映MP 蛋白凝膠的質(zhì)構(gòu)特性。不同處理對(duì)MP 凝膠質(zhì)構(gòu)性能的影響見(jiàn)表1。

    表1 不同處理對(duì)MP 凝膠質(zhì)構(gòu)性能的影響Table 1 Effect of different treatments on texture properties of MP gel

    與空白組相比,經(jīng)過(guò)超聲處理的MP 硬度、膠黏性和咀嚼性均下降,彈性、內(nèi)聚性和回復(fù)性變化并不顯著(P>0.05)。與空白組相比,超聲處理時(shí)間為1 min時(shí),凝膠的硬度、膠黏性和咀嚼性分別降低了21.7%、21.2%和19.3%。可能是超聲的空穴效應(yīng)和機(jī)械效應(yīng)破壞了蛋白分子間的作用力及熱誘導(dǎo)成膠過(guò)程中蛋白質(zhì)分子間的交聯(lián)。與空白組相比,TG 處理組MP 凝膠的膠黏性下降約4.6%,彈性、內(nèi)聚性、咀嚼性和回復(fù)性無(wú)明顯變化,但硬度顯著增加12.7%。這可能是由于凝膠形成過(guò)程中蛋白質(zhì)分子受熱后變性、伸展,為TG 提供了更多的交聯(lián)位點(diǎn),有利于蛋白質(zhì)之間非二硫共價(jià)鍵的形成,同時(shí)埋藏在分子內(nèi)部的疏水性區(qū)域暴露出來(lái),使蛋白質(zhì)之間的疏水相互作用增強(qiáng),有利于蛋白質(zhì)凝膠的硬度升高[31]。Sun 等[31]研究發(fā)現(xiàn)添加TG 可以增強(qiáng)雞肉MP 的凝膠性能,與本研究結(jié)果相似。超聲20 s 輔助TG 使得凝膠硬度明顯增加,但超聲1 min時(shí),超聲輔助TG 處理對(duì)凝膠硬度的影響程度減弱,說(shuō)明適度超聲處理與TG 之間具有協(xié)同作用。

    2.7 不同處理對(duì)MP 凝膠微觀結(jié)構(gòu)的影響

    不同處理對(duì)MP 凝膠微觀結(jié)構(gòu)的影響如圖6所示。

    圖6 不同處理對(duì)MP 凝膠微觀結(jié)構(gòu)的影響Fig.6 Effects of different treatments on microstructure of MP gel

    由圖6 可知,空白組的MP 凝膠微觀結(jié)構(gòu)粗糙,孔徑大且分布不均勻。超聲處理使凝膠微觀結(jié)構(gòu)逐漸均一、有序,結(jié)合圖5 可知,隨著超聲時(shí)間的增加,孔徑逐漸減小,印證了超聲處理可降低MP 熱誘導(dǎo)凝膠的蒸煮損失率。與空白組相比,單獨(dú)添加TG 使得MP 熱誘導(dǎo)凝膠的微觀結(jié)構(gòu)均勻致密,孔徑減小,此時(shí)蒸煮損失率顯著降低(圖5),凝膠強(qiáng)度顯著增大(表1)。相比于單獨(dú)添加TG 及單獨(dú)超聲組,超聲輔助TG 處理組的MP 凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)更加致密、均勻、有序,進(jìn)一步說(shuō)明超聲輔助TG 處理對(duì)MP 凝膠細(xì)膩三維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的形成具有協(xié)同改善作用。

    3 結(jié)論

    不同處理(超聲、TG 及超聲輔助TG)均顯著改變了MP 的構(gòu)象,改善了MP 熱誘導(dǎo)凝膠的蒸煮損失。隨著超聲時(shí)間延長(zhǎng),MP 的α-螺旋含量、內(nèi)源性色氨酸熒光強(qiáng)度和溶解度顯著降低,蛋白交聯(lián)聚集情況加劇,導(dǎo)致彈性模量(G′)及凝膠硬度明顯下降。TG 和超聲輔助TG 處理使MP 的溶解度降低,但凝膠形成能力及持水性明顯提高。超聲輔助TG 處理使MP 的α-螺旋含量明顯增加,在降低MP 凝膠的蒸煮損失率、促進(jìn)MP形成更加致密、均勻、有序的三維凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)方面具有協(xié)同作用。因此,適當(dāng)超聲輔助TG 可以在一定程度上改善蛋白構(gòu)象,提高M(jìn)P 凝膠的質(zhì)構(gòu)特性和持水能力。本研究是在肉蛋白體系中進(jìn)行的,實(shí)際肉體系中超聲輔助TG 對(duì)肉制品品質(zhì)的影響還需進(jìn)一步研究。

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