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    機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式下濃香型白酒釀造環(huán)境微生物群落結(jié)構(gòu)對(duì)比分析

    2023-03-07 13:29:16符長(zhǎng)彪明紅梅張宿義李德林張程杜向軍馬世源馬浩
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2023年4期
    關(guān)鍵詞:類群釀造酵母

    符長(zhǎng)彪,明紅梅*,張宿義,李德林,張程,杜向軍,馬世源,馬浩

    1(四川輕化工大學(xué) 生物工程學(xué)院,四川 宜賓,644000)2(瀘州老窖股份有限公司,四川 瀘州,646000)

    濃香型白酒以己酸乙酯、乙酸乙酯、乳酸乙酯、丁酸乙酯為主體香,具有“窖香濃郁、甘冽清爽、飲后尤香、回味悠長(zhǎng)”的風(fēng)格特征,這與濃香型白酒采用“泥窖固態(tài)發(fā)酵,續(xù)糟配料,混蒸混燒”的獨(dú)特釀造工藝有關(guān)。濃香型白酒釀造是一個(gè)開(kāi)放式、多菌共同發(fā)酵的過(guò)程。參與釀造的微生物主要來(lái)源于環(huán)境、大曲、窖泥和酒醅等[1]。劉宇等[2]從濃香型白酒釀造環(huán)境中分離篩選了3株酵母,分別為發(fā)酵畢赤酵母、漢斯德巴氏酵母、卡斯特瑙氏酵母,通過(guò)純培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)發(fā)酵畢赤酵母具有高產(chǎn)乙酸乙酯的特點(diǎn)??梢?jiàn),釀造環(huán)境中的微生物與濃香型白酒風(fēng)格的形成密切相關(guān)。

    近年來(lái),業(yè)內(nèi)學(xué)者針對(duì)白酒釀造環(huán)境微生物進(jìn)行了相關(guān)研究,如,黎瑤依等[3]對(duì)茅臺(tái)鎮(zhèn)醬香型白酒釀造環(huán)境中真菌菌群多樣性進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)不同輪次釀造環(huán)境樣品中真菌組成相似度較高,但其各輪次標(biāo)志性真菌屬存在差異。隨著傳統(tǒng)白酒釀造機(jī)械化的發(fā)展,圍繞機(jī)械化釀造白酒的研究逐漸增多。王歡等[4]對(duì)醬香型白酒機(jī)械化釀造不同輪次堆積發(fā)酵細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)多樣性分析發(fā)現(xiàn),芽孢桿菌屬(Bacillus)、乳酸桿菌屬(Lactobacillus)和鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)在不同輪次堆積發(fā)酵核心微生物菌群中具有重要的生物學(xué)調(diào)控作用。目前,環(huán)境微生物的研究,主要聚焦在探索釀造時(shí)空環(huán)境微生物群落結(jié)構(gòu)的特征,少有文獻(xiàn)報(bào)道釀造車間不同釀造區(qū)域中環(huán)境微生物群落結(jié)構(gòu)變化。隨著機(jī)械化釀造設(shè)備在白酒行業(yè)的應(yīng)用和逐步推廣,機(jī)械化釀造方式下環(huán)境微生物的分布特征及其與傳統(tǒng)釀造方式下環(huán)境微生物的相似相異性等,將成為研究的熱點(diǎn)。

    本次研究以機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式下釀造車間環(huán)境區(qū)域微生物為研究對(duì)象,采用高通量測(cè)序技術(shù)結(jié)合數(shù)學(xué)軟件統(tǒng)計(jì)分析,對(duì)比兩種方式下環(huán)境微生物群落結(jié)構(gòu)差異性,以期發(fā)現(xiàn)釀造車間不同環(huán)境區(qū)域微生物群落結(jié)構(gòu)的特征,進(jìn)一步探明機(jī)械化釀造方式對(duì)環(huán)境微生物的影響,從環(huán)境微生物的角度為白酒釀造機(jī)理提供理論依據(jù),從而提升白酒品質(zhì),促進(jìn)白酒產(chǎn)業(yè)轉(zhuǎn)型升級(jí)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 樣品及采集方法

    環(huán)境樣本,采集自四川某白酒企業(yè)機(jī)械化釀造方式、傳統(tǒng)釀造方式的釀造車間環(huán)境區(qū)域的灰塵。機(jī)械化白酒釀造車間的拌料、上甑、打量水,機(jī)械設(shè)備完成,傳統(tǒng)白酒釀造車間對(duì)應(yīng)環(huán)節(jié),人工操作。樣品采集后立即裝袋密封,24 h內(nèi)運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室分析,采集樣品均在-80 ℃密封保存、備用。

    按照釀造車間內(nèi)的環(huán)境區(qū)域進(jìn)行劃分,具體環(huán)境區(qū)域劃分及樣本情況:濃香型白酒釀造車間內(nèi)四周墻面區(qū)域,因與各釀造環(huán)節(jié)相距較遠(yuǎn),作為非釀造區(qū)域的代表,樣本編碼:機(jī)械墻面區(qū)域樣品:JFN,傳統(tǒng)墻面區(qū)域樣品:CFN,拌料、蒸餾及堆糟環(huán)節(jié)周圍的環(huán)境代表釀造非核心區(qū)域,樣本編碼:機(jī)械上甑區(qū)域樣品:JHF,傳統(tǒng)上甑區(qū)域樣品:CHF;攤晾和入窖環(huán)節(jié)周圍的環(huán)境代表釀造核心區(qū)域,樣本編碼:機(jī)械攤晾區(qū)域樣品:JHN_T,傳統(tǒng)攤晾區(qū)域樣品:CHN_T,機(jī)械窖池區(qū)域樣品:JHN_J,傳統(tǒng)窖池區(qū)域樣品:CHN_J。

    1.1.2 試劑

    FastDNA?Spin Kit For Soil,美國(guó)MPbio;PBS、引物合成,生工生物工程(上海)股份有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    PX124ZH/E型電子分析天平,奧豪斯儀器(常州)有限公司;JE1201型電子天平,上海浦春計(jì)量?jī)x器有限公司;YX-24HPD型手提式蒸汽滅菌鍋,江陰濱江醫(yī)療設(shè)備;Vortex-2型旋渦混勻儀,上海滬析實(shí)業(yè)有限公司;SW-CJ-IFD型潔凈工作臺(tái),蘇州市金凈凈化設(shè)備科技有限公司;DW-HL678型超低溫冷凍儲(chǔ)存箱,中科美菱低溫科技股份有限公司;MiSeq測(cè)序儀,美國(guó)Illumina公司。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1 樣品總DNA提取

    提取步驟參見(jiàn)FastDNA?Spin Kit For Soil的操作說(shuō)明。

    1.3.2 PCR擴(kuò)增

    PCR引物:真菌引物使用ITS1F/ITS2R(5′-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3′/5′-GCTGCGTTCTTC-ATCGATGC-3′),細(xì)菌16S rRNA基因引物使用338F/806R(5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3′/5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3′)。

    PCR擴(kuò)增程序:95 ℃預(yù)變性 3 min,27次循環(huán)(95 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸45 s),然后72 ℃穩(wěn)定延伸10 min,最后在10 ℃下直到反應(yīng)停止。

    PCR反應(yīng)體系:細(xì)菌:4 μL 5×FastPfu緩沖液,2 μL dNTPs(2.5 mmol/L),0.8 μL上游引物(5 μmol/L),0.8 μL下游引物(5 μmol/L),0.4 μL FastPfuDNA聚合酶,0.2 μL牛血清蛋白,10 ng模板DNA,ddH2O補(bǔ)足至20 μL。真菌:2 μL 10×FastPfu緩沖液,2 μL dNTPs(2.5 mmol/L),0.8 μL上游引物(5 μmol/L),0.8 μL下游引物(5 μmol/L),0.2 μL rTaq聚合酶,0.2 μL牛血清蛋白,10 ng模板DNA,ddH2O補(bǔ)足至20 μL。

    1.3.3 Illumina MiSeq測(cè)序

    利用Illumina公司的MiSeq PE300平臺(tái)對(duì)細(xì)菌和真菌序列進(jìn)行測(cè)序分析,上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司。

    1.4 數(shù)據(jù)與圖像處理

    采用WPS 2021和IBM SPSS 26進(jìn)行數(shù)據(jù)計(jì)算與分析。基于Illumina MiSeq測(cè)序平臺(tái)繪制群落結(jié)構(gòu)柱形圖、微生物熱圖、Venn圖等。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同釀造方式下釀造車間的環(huán)境微生物多樣性分析

    本研究利用Illumina MiSeq測(cè)序技術(shù)平臺(tái)對(duì)在不同釀造方式下釀造車間6組環(huán)境樣本的微生物(真菌、細(xì)菌)在OTU水平上進(jìn)行多樣性指數(shù)分析,結(jié)果如表1所示。

    表1 不同釀造方式下釀造車間的環(huán)境微生物α多樣性指數(shù)

    由表1可知,從各個(gè)區(qū)域微生物類群來(lái)看,細(xì)菌的Shannon值、Chao1值和ACE值均高于真菌,說(shuō)明各個(gè)區(qū)域中細(xì)菌類群比真菌類群更加豐富,原因可能是細(xì)菌類群的存活條件相較于真菌類群來(lái)說(shuō),它具有更好的抗逆性、適應(yīng)性等[5]。從機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式相同區(qū)域?qū)Ρ葋?lái)看,除了Shannon指數(shù)的部分?jǐn)?shù)據(jù)規(guī)律有所區(qū)別外,真菌、細(xì)菌的Shannon值、Chao1值和ACE值均是傳統(tǒng)高于機(jī)械化,說(shuō)明從整體上來(lái)看傳統(tǒng)釀造區(qū)域的微生物種類更加豐富且分布較為均勻。從3組機(jī)械化釀造方式下不同區(qū)域的樣本來(lái)看,真菌的Shannon值在釀造核心區(qū)最高,說(shuō)明機(jī)械化釀造方式真菌種類在釀造核心區(qū)更豐富,原因可能是釀造核心區(qū)的攤晾環(huán)節(jié)會(huì)添加富含真菌的大曲,大曲微生物與環(huán)境微生物相互影響[6]。

    2.2 不同釀造方式下釀造車間的環(huán)境微生物群落結(jié)構(gòu)分析

    為了進(jìn)一步分析在機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式下釀造車間各個(gè)區(qū)域的環(huán)境微生物群落結(jié)構(gòu),利用Illumina MiSeq測(cè)序技術(shù)平臺(tái)得到在屬水平上的微生物群落結(jié)構(gòu)情況。在屬水平上,由于相對(duì)豐度<0.01的物種較多,因此本研究將樣品中相對(duì)豐度<0.01的物種歸為一類(others)以及其他物種(相對(duì)豐度≥0.01)分成為不同的類,繪制群落結(jié)構(gòu)柱形圖,結(jié)果見(jiàn)圖1。

    a-真菌;b-細(xì)菌

    采用高通量測(cè)序技術(shù)從不同釀造方式下濃香型白酒釀造車間的6組環(huán)境樣本中共檢測(cè)到8個(gè)真菌門,28個(gè)真菌綱,65個(gè)真菌目,159個(gè)真菌科,331個(gè)真菌屬;31個(gè)細(xì)菌門,82個(gè)細(xì)菌綱,222個(gè)細(xì)菌目,411個(gè)細(xì)菌科,982個(gè)細(xì)菌屬。

    由圖1-a可知,從機(jī)械化釀造方式不同區(qū)域3組樣本來(lái)看,在JFN區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前2種的是枝孢菌屬(Cladosporium)、未分類-畸形球菌科(unclassified_f__Teratosphaeriaceae),其相對(duì)豐度占比總和為95.09%;在JHF區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前2種的是枝孢菌屬、節(jié)擔(dān)菌屬(Wallemia),其相對(duì)豐度占比總和為79.40%;而在JHN區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前6種的是未分類-畸形球菌科、枝孢菌屬、新葫蘆科菌屬(Neocucurbitaria)、絲孢酵母屬(Trichosporon)、曲霉屬(Aspergillus)、節(jié)擔(dān)菌屬,其相對(duì)豐度占比總和為57.00%。這些真菌屬的相對(duì)豐度均>5%,為各區(qū)域的優(yōu)勢(shì)菌屬。從構(gòu)成百分比來(lái)看,JFN、JHF、JHN區(qū)域樣本中真菌類群所占構(gòu)成比例之間均有一定差異。從傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域3組樣本來(lái)看,在CFN區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前2種的是曲霉屬、未分類-畸形球菌科,其相對(duì)豐度占比總和為88.25%;在CHF區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前4種的是絲核菌屬(Rhizoctonia)、曲霉屬、未分類-葫蘆科(unclassified_f__Cucurbitariaceae)、枝孢菌屬,其相對(duì)豐度占比總和為53.48%;而在CHN區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前6種的是未分類-子囊菌門(unclassified_p__Ascomycota)、柯達(dá)酵母屬(Kodamaea)、節(jié)擔(dān)菌屬、曲霉屬、絲孢酵母屬、未分類-雙足菌科(unclassified_f__Dipodascaceae),其相對(duì)豐度占比總和為72.85%。這些真菌屬的相對(duì)豐度均>5%,為各區(qū)域的優(yōu)勢(shì)菌屬。從構(gòu)成百分比來(lái)看,CFN、CHF、CHN區(qū)域樣本中所占構(gòu)成比例之間均有一定差異。經(jīng)分析發(fā)現(xiàn),兩種釀造方式下釀造車間環(huán)境區(qū)域共有的優(yōu)勢(shì)菌屬僅有枝孢菌屬、未分類-畸形球菌科、節(jié)擔(dān)菌屬、曲霉屬、絲孢酵母屬,但相同環(huán)境區(qū)域真菌類群構(gòu)成具有較大差異。因此,兩種釀造方式下各環(huán)境區(qū)域真菌群落結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)不同的構(gòu)成特征,而且各區(qū)域真菌類群構(gòu)成占比具有較為明顯的變化,其主要原因可能是真菌類群之間相互競(jìng)爭(zhēng)、協(xié)同,以及各區(qū)域營(yíng)養(yǎng)條件、環(huán)境因素的不同,造成微生物類群此消彼長(zhǎng),從而改變各環(huán)境區(qū)域真菌群落結(jié)構(gòu)。

    由圖1-b可知,從機(jī)械化釀造方式不同區(qū)域3組樣本來(lái)看,在JFN區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前4種的是風(fēng)疹菌屬(Rubellimicrobium)、奇異球菌屬(Deinococcus)、norank_f_norank_o_Chloroplast、葡萄球菌屬(Staphylococcus);在JHF區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前2種的是考克氏菌屬(Kocuria)、砷球菌屬(Arsenicicoccus);而在JHN區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排3種的是考克氏菌屬、短桿菌屬(Brachybacterium)、棒狀桿菌屬(Corynebacterium)。這些細(xì)菌屬的相對(duì)豐度均>5%,為各區(qū)域的優(yōu)勢(shì)菌屬。從構(gòu)成百分比來(lái)看,考克氏菌屬、棒狀桿菌屬、芽孢桿菌屬等共有21種細(xì)菌屬分別在JFN、JHF、JHN區(qū)域樣本中構(gòu)成占比總和均在50%~60%,說(shuō)明機(jī)械化釀造方式不同區(qū)域細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)具有很大的相似性。從傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域3組樣本來(lái)看,在CFN區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前3種的是芽孢桿菌屬、Methylobacterium-Methylorubrum、嗜熱放線菌屬(Thermoactinomyces);在CHF區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前5種的是norank_f_JG30-KF-CM45、Nakamurella、Micropruina、unclassified_f__Nocardiaceae、Microlunatus;而在CHN區(qū)域樣本中相對(duì)豐度排前3種的是魏斯氏菌屬(Weissella)、棒狀桿菌屬、乳酸桿菌屬。這些細(xì)菌屬的相對(duì)豐度均>5%,為各區(qū)域的優(yōu)勢(shì)菌屬。從構(gòu)成百分比來(lái)看,魏斯氏菌屬、乳酸桿菌屬、棒狀桿菌屬等共有22種細(xì)菌屬分別在CFN、CHF、CHN區(qū)域樣本中構(gòu)成占比總和均在50%~60%,說(shuō)明傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)具有很大的相似性。經(jīng)分析發(fā)現(xiàn),兩種釀造方式下釀造車間環(huán)境區(qū)域共有的優(yōu)勢(shì)菌屬只有棒狀桿菌屬。因此,兩種釀造方式下各環(huán)境區(qū)域細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)相似的構(gòu)成特征,說(shuō)明機(jī)械釀造方式和傳統(tǒng)釀造方式的各環(huán)境區(qū)域的細(xì)菌類群具有較好的穩(wěn)定性,與細(xì)菌類群的抗逆性、適應(yīng)性較強(qiáng)有關(guān);而兩種釀造方式相同環(huán)境區(qū)域細(xì)菌類群構(gòu)成具有較大差異,除與真菌類群一樣,受到微生物相互作用、營(yíng)養(yǎng)及環(huán)境條件的影響以外,還可能與傳統(tǒng)釀造車間是開(kāi)放式環(huán)境,各區(qū)域細(xì)菌類群受糟醅和大曲微生物影響較大[7]。

    2.3 不同釀造方式下釀造車間的環(huán)境微生物群落變化分析

    為了深入分析機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式環(huán)境微生物群落的變化,進(jìn)一步將釀造車間非釀造區(qū)、釀造非核心區(qū)及釀造核心區(qū)(攤晾、窖池區(qū)域)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。利用Illumina MiSeq測(cè)序技術(shù)平臺(tái)得到在屬水平上豐度前30的微生物群落Heatmap圖,如圖2所示,圖中顏色越接近紅色表示相對(duì)豐度越高,顏色越接近綠色表示相對(duì)豐度越低。

    a-真菌;b-細(xì)菌

    由圖2-a可知,在真菌屬水平上,從機(jī)械化釀造方式不同區(qū)域來(lái)看,JHN_T區(qū)域中有17種相對(duì)豐度>1%的微生物,但在JFN、JHF及JHN_J區(qū)域中分別對(duì)應(yīng)有2、7、9種相對(duì)豐度>1%的微生物。JHN_T區(qū)域中相對(duì)豐度較高的真菌屬分別有新葫蘆科菌屬、嗜熱子囊菌屬(Thermoascus)、德巴利氏酵母屬(Debaryomyces)、嗜熱真菌屬(Thermomyces)等。嗜熱子囊菌屬在JFN、JHF、JHN_T、JHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度分別為0.004 2%、0.008 5%、6.00%、0.17%,該菌屬是大曲和酒醅中的優(yōu)勢(shì)微生物,能夠產(chǎn)蛋白酶、淀粉酶等多種酶類,對(duì)白酒產(chǎn)香具有促進(jìn)作用[8]。可以認(rèn)為,機(jī)械化釀造方式攤晾區(qū)域真菌類群種類較多且豐度較高,原因可能是機(jī)械化釀造車間處于半開(kāi)放式的環(huán)境,攤晾區(qū)域的環(huán)境微生物受到大曲微生物的影響較大。經(jīng)分析發(fā)現(xiàn),還有一些微生物在窖池區(qū)域中的相對(duì)豐度最高,如節(jié)擔(dān)菌屬、絲孢酵母屬、曲霉屬、Apiotrichum等。絲孢酵母屬在JFN、JHF、JHN_T、JHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度分別為0.002 1%、0.39%、6.90%、12.38%,該菌屬能夠代謝產(chǎn)生多元醇,使白酒具備醇甜味[9]。曲霉屬在JFN、JHF、JHN_T、JHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度分別為0.27%、1.38%、3.64%、12.65%,該菌屬是大曲和糟醅中的重要微生物,并能夠在酒醅發(fā)酵中代謝產(chǎn)生白酒呈香呈味的重要風(fēng)味物質(zhì)或者風(fēng)味前體物質(zhì)[10]。除此之外,枝孢菌屬在JFN、JHF區(qū)域中相對(duì)豐度均較高,分別為80.19%、72.20%,而在JHN_T、JHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度分別為20.60%、0.53%。有研究發(fā)現(xiàn)[11],枝孢菌屬在自然界中廣泛存在,尤其是墻面區(qū)域最容易富集,對(duì)于白酒釀造的影響,還有待進(jìn)一步研究。從傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域來(lái)看,CFN區(qū)域中只有5種相對(duì)豐度>1%的微生物,但在CHF、CHN_T、CHN_J區(qū)域中分別對(duì)應(yīng)有15、13、13種相對(duì)豐度>1%的微生物。CHF、CHN_T、CHN_J 3個(gè)區(qū)域中相對(duì)豐度較高的真菌屬有絲孢酵母屬、嗜熱子囊屬、假絲酵母屬(Candia)等共13種,這些真菌屬在JHN_T區(qū)域中也有檢測(cè)到。其中,絲孢酵母屬在CHF、CHN_T、CHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度分別為4.22%、2.71%、8.18%,但在CFN區(qū)域中相對(duì)豐度為0.12%??逻_(dá)酵母屬在CFN、CHF、CHN_T、CHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度分別為0.002 1%、0.021%、37.49%、0.15%,該菌屬是一類能夠?qū)ι锇愤M(jìn)行降解的菌株[12],在機(jī)械化釀造方式下各區(qū)域的相對(duì)豐度均<1%??梢哉J(rèn)為,傳統(tǒng)釀造方式的釀造核心區(qū)、非核心區(qū)域的真菌類群相對(duì)豐度均較高,原因可能是傳統(tǒng)釀造車間處于開(kāi)放式的環(huán)境,大曲、糟醅微生物與環(huán)境微生物相互影響,且該區(qū)域環(huán)境條件、營(yíng)養(yǎng)狀況適于真菌類群的生長(zhǎng)和繁殖。

    由圖2-b可知,在細(xì)菌屬水平上,從機(jī)械化釀造方式不同區(qū)域來(lái)看,JFN、JHF、JHN_T、JHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度>1%的微生物均衡分布,分別對(duì)應(yīng)有12、13、15、15種細(xì)菌屬。JFN、JHF、JHN_T、JHN_J 4個(gè)區(qū)域中至少有兩個(gè)區(qū)域相對(duì)豐度均較高的細(xì)菌屬有考克氏菌屬、短桿菌屬、Knoellia、魏斯氏菌屬等共15種。其中,Knoellia在JFN、JHF、JHN_T、JHN_J區(qū)域中的相對(duì)豐度均較高,分別為1.25%、1.62%、4.87%、1.96%??梢哉J(rèn)為,細(xì)菌類群因耐受性、適應(yīng)性更強(qiáng),在機(jī)械化釀造方式的車間環(huán)境區(qū)域內(nèi)較為穩(wěn)定。魏斯氏菌屬在JFN、JHF、JHN_T、JHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度分別為0.19%、1.24%、0.22%、1.53%,該屬能夠代謝產(chǎn)乳酸、乙酸等有機(jī)酸類物質(zhì),并有助于乳酸乙酯的生成和酒體風(fēng)味的形成[13]。除此之外,棒狀桿菌屬只在JHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度最高為10.44%,而在JFN、JHF、JHN_T區(qū)域中的相對(duì)豐度分別為0.78%、0.17%、0.13%,該菌屬可通過(guò)糖酵解途徑,利用二羥酸脫水酶、轉(zhuǎn)氨酶等酶的作用形成L-異亮氨酸,進(jìn)一步代謝產(chǎn)生酒體中的風(fēng)味物質(zhì)[14]。乳酸桿菌屬只在JHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度最高為3.77%,而在JFN、JHF、JHN_T區(qū)域中的相對(duì)豐度分別為0.47%、0.30%、0.39%,該菌屬是酒醅中的優(yōu)勢(shì)菌屬,主要代謝產(chǎn)生乳酸,在發(fā)酵體系中經(jīng)生化反應(yīng)合成多種呈香呈味物質(zhì),如乳酸乙酯[15]。從傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域來(lái)看,CFN、CHF、CHN_T、CHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度>1%的微生物分布較為均衡,在CFN、CHF、CHN_T、CHN_J區(qū)域中分別對(duì)應(yīng)有10、13、12、12種相對(duì)豐度>1%細(xì)菌屬,主要集中在CHF、CHN_T兩個(gè)區(qū)域。CFN、CHF、CHN_T、CHN_J 4個(gè)區(qū)域中相對(duì)豐度較高的細(xì)菌屬有考克氏菌屬、Microbacterium、雙魚(yú)屬(Piscicoccus)、魏斯氏菌屬等共12種??伎耸暇鷮僭贑HF、CHN_T區(qū)域中的相對(duì)豐度均較高,分別為1.76%、3.24%,但在CFN、CHN_J區(qū)域中的相對(duì)豐度分別為0.36%、0.75%,該菌屬具有較強(qiáng)的產(chǎn)酸能力,并且利于合成白酒中乙酸乙酯等關(guān)鍵香氣物質(zhì)[16]。因此,傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域細(xì)菌類群在CHF、CHN_T兩個(gè)區(qū)域相對(duì)豐度較高,其原因主要是受糟醅、大曲細(xì)菌類群的影響及其微生物之間相互作用。經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),芽孢桿菌屬在CFN、CHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度均較高,分別為30.87%、1.18%,而在CHF、CHN_T區(qū)域中相對(duì)豐度分別為0.21%、0.72%,該菌屬具有很好的耐熱性質(zhì),是一類能夠代謝產(chǎn)生吡嗪類化合物菌株,而吡嗪類化合物是白酒中具有重要作用的風(fēng)味物質(zhì)。高溫放線菌屬只在CFN區(qū)域中相對(duì)豐度最高為4.95%,而在CHF、CHN_T、CHN_J區(qū)域中相對(duì)豐度分別為0.007%、0.55%、0.07%,該菌屬是大曲中重要的核心功能細(xì)菌微生物,有較強(qiáng)的耐高溫特性,具有產(chǎn)高溫淀粉酶、蛋白酶等能力[17]。

    2.4 不同釀造方式下釀造車間的環(huán)境微生物差異性分析

    為了對(duì)比分析機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域的環(huán)境微生物,利用Illumina MiSeq測(cè)序技術(shù)平臺(tái)將各個(gè)區(qū)域的微生物進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析獲得Venn圖。LEfSe統(tǒng)計(jì)方法分析兩種釀造方式釀造核心區(qū)的差異微生物,并結(jié)合Wilcoxon秩和檢驗(yàn)對(duì)環(huán)境區(qū)域的2組樣品的差異微生物相對(duì)豐度進(jìn)行評(píng)價(jià),結(jié)果如圖3、圖4所示。

    a-Venn圖;b-LDA柱形圖;c-兩組比較秩和檢驗(yàn)條形圖

    a-Venn圖;b-LDA柱形圖;c-兩組比較秩和檢驗(yàn)條形圖

    由圖3-a可知,機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域共有真菌屬達(dá)46種,其共有真菌屬在各環(huán)境區(qū)域的真菌屬種類中占比為13.90%。從機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式相同區(qū)域?qū)Ρ葋?lái)看,機(jī)械化釀造方式釀造核心區(qū)具有僅在該區(qū)域檢出Septoria、Cercophora、Funbolia等共25種特有真菌屬,傳統(tǒng)釀造方式釀造核心區(qū)具有Butlerelfia、Paraboeremia、Corynespora等共14種特有真菌屬。機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式核心釀造區(qū)分別檢出的特有微生物均是文獻(xiàn)報(bào)到的釀造環(huán)境中不常見(jiàn)且相對(duì)豐度較低的真菌類群。因此,機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式核心區(qū)域真菌種類具有較大差異,主要原因可能是兩種方式下釀造核心區(qū)域環(huán)境條件及營(yíng)養(yǎng)狀況存在差異,以及與微生物之間的相互作用有關(guān)。由圖3-b、圖3-c可知,機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式釀造核心區(qū)兩組環(huán)境樣品中在真菌屬水平上共檢測(cè)出16種(LDA>3)差異微生物,其中未分類-畸形球菌科、Neodevriesia、未分類-煤炱目(unclassified_o_Capnodiales)、unclassified_o__Hypocreales、unclassified_f__Bionectriaceae共6種差異真菌相對(duì)豐度均是機(jī)械化釀造方式顯著高于傳統(tǒng)釀造方式(P<0.05);假絲酵母屬、威克漢姆酵母屬(Wickerhamomyces)、伊薩酵母屬(Issatchenkia)、石竹菌屬(Baudoinia)、Diutina、Cyberlindnera共6種差異真菌相對(duì)豐度均是傳統(tǒng)釀造方式顯著高于機(jī)械化釀造方式(P<0.05)。這些真菌差異微生物中,除了未分類-畸形球菌科、Stilbocrea、假絲酵母屬、威克漢姆酵母屬外,其余真菌類群相對(duì)豐度均<1%。兩種釀造方式釀造核心區(qū)中共檢測(cè)到多種酵母菌,如假絲酵母屬、威克漢姆酵母屬及伊薩酵母屬等,均為大曲功能微生物[18]。威克漢姆酵母屬在白酒發(fā)酵過(guò)程具有發(fā)酵力和產(chǎn)香能力,其代謝產(chǎn)生的苯乙醇具有玫瑰花香[19]。

    由圖4-a可知,機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域共有細(xì)菌屬達(dá)229種,其共有細(xì)菌屬在各環(huán)境區(qū)域的細(xì)菌屬種類中占比為23.32%。從機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式相同區(qū)域?qū)Ρ葋?lái)看,機(jī)械化釀造方式釀造核心區(qū)具有Geovibrio、Tenggerimyces、Tistlia等共62種特有細(xì)菌屬,傳統(tǒng)釀造方式釀造核心區(qū)具有Pelosinus、Anaerococcus、Pricia等共35種特有細(xì)菌。機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式核心釀造區(qū)分別檢出的特有微生物均是文獻(xiàn)報(bào)到的釀造環(huán)境中不常見(jiàn)且相對(duì)豐度較低的細(xì)菌類群。因此,機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式核心區(qū)域細(xì)菌種類具有一定差異,主要原因可能是細(xì)菌類群的環(huán)境應(yīng)答[20]以及與真菌類群的相互作用有關(guān)。由圖4-b、圖4-c可知,機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式釀造核心區(qū)兩組環(huán)境樣品中在細(xì)菌屬水平上共檢測(cè)出25種(LDA>3)差異微生物。其中短桿菌屬、Knoellia、Pseudonocardia、扁菌屬(Planomicrobium)、黃體單胞菌屬(Luteimonas)、谷氨酸桿菌屬(Glutamicibacter)、假單胞菌屬(Pseudomonas)、Kytococcus、球菌屬(Tessaracoccus)共9種差異細(xì)菌相對(duì)豐度均是機(jī)械化釀造方式顯著高于傳統(tǒng)釀造方式(P<0.05)。魏斯氏菌屬、片球菌屬(Pediococcus)、黃桿菌屬(Flavobacterium)、鏈球菌屬(Streptococcus)、TM7a、Sphingomonas、Novosphingoium、Methylobacterium-Methylorubrum及norank_f_norank_o_chloroplast共9種差異細(xì)菌相對(duì)豐度均是傳統(tǒng)釀造方式顯著高于機(jī)械化釀造方式(P<0.05)。兩種釀造方式釀造核心區(qū)細(xì)菌差異微生物中,除了魏斯氏菌屬、短桿菌屬、諾氏菌屬、片球菌屬、假單胞菌屬外,其余細(xì)菌類群相對(duì)豐度均<1%。其中,短桿菌屬等微生物對(duì)白酒釀造具有重要作用,該菌屬產(chǎn)酯化酶、過(guò)氧化氫酶等多種酶類,可以為白酒釀造提供酶類,產(chǎn)生豐富的風(fēng)味物質(zhì)[21]。

    綜上所述,機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式不同區(qū)域共有微生物所占比例是細(xì)菌高于真菌??梢猿醪椒治?,由于機(jī)械化釀造方式對(duì)于環(huán)境因子的改變以及微生物的相互作用等原因,導(dǎo)致了真菌類群在種類和相對(duì)豐度上具有一定差異,而對(duì)于細(xì)菌類群也有一定影響,如枝孢菌屬、風(fēng)疹菌屬、頂孢屬(Acremonium)、副球菌屬(Paracoccus)等微生物,而傳統(tǒng)釀造方式下在連續(xù)的白酒生產(chǎn)過(guò)程中微生物得以不斷馴化和富集,如曲霉屬、魏斯氏菌屬、假絲酵母屬、醋酸桿菌屬(Acetobacter)等微生物。同時(shí)還發(fā)現(xiàn),絲孢酵母屬、嗜熱子囊屬、考克氏菌屬等與白酒釀造相關(guān)的微生物在機(jī)械化釀造方式下得以富集。但是,白酒生產(chǎn)是一個(gè)開(kāi)放、連續(xù)的生產(chǎn)過(guò)程,由于稻殼、糧食的不斷補(bǔ)充,導(dǎo)致車間內(nèi)外的微生物交換,并且因空氣流動(dòng)等原因各環(huán)節(jié)之間微生物又相互影響,而這些微生物的適應(yīng)性較強(qiáng),使得傳統(tǒng)釀造方式下自然富集的微生物難以形成絕對(duì)優(yōu)勢(shì)。因此,連續(xù)的白酒生產(chǎn)過(guò)程有利于釀造功能菌屬的富集,進(jìn)而對(duì)白酒生產(chǎn)產(chǎn)生影響。

    3 結(jié)論

    采用高通量測(cè)序技術(shù)對(duì)機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式釀造車間的非釀造區(qū)、釀造非核心區(qū)、釀造核心區(qū)的環(huán)境微生物進(jìn)行檢測(cè)并利用測(cè)序平臺(tái)分析,共檢測(cè)出8個(gè)真菌門、331個(gè)真菌屬;31個(gè)細(xì)菌門、982個(gè)細(xì)菌屬。從微生物多樣性分析結(jié)果來(lái)看,不同釀造方式的釀造車間內(nèi)環(huán)境微生物種類較為豐富但有一定差異,可能與傳統(tǒng)釀造的開(kāi)放式環(huán)境有關(guān);從兩種釀造方式不同區(qū)域的微生物群落構(gòu)成分析,真菌類群構(gòu)成呈現(xiàn)不同的特征,而細(xì)菌類群構(gòu)成呈現(xiàn)相似的特征;兩種釀造方式的相同區(qū)域微生物群落構(gòu)成比較,發(fā)現(xiàn)真菌類群構(gòu)成具有一定差異性,而細(xì)菌群落構(gòu)成具有較大的差異性。通過(guò)對(duì)兩種釀造方式下不同區(qū)域微生物類群的變化情況分析,發(fā)現(xiàn)機(jī)械化釀造車間環(huán)境中真菌類群主要集中在攤晾區(qū)域,而細(xì)菌類群在所有區(qū)域中均衡分布;傳統(tǒng)釀造車間環(huán)境中真菌類群在釀造非核心區(qū)及釀造核心區(qū)(攤晾區(qū)域、窖池區(qū)域)相對(duì)豐度較高,而細(xì)菌類群在所有區(qū)域分布較為均衡,但主要集中在釀造非核心區(qū)、釀造核心區(qū)的攤晾區(qū)域。經(jīng)機(jī)械化與傳統(tǒng)釀造方式環(huán)境微生物的差異分析,發(fā)現(xiàn)兩種釀造方式所有區(qū)域共有46種真菌屬,其中枝孢菌屬、未分類-畸形球菌科、節(jié)擔(dān)菌屬、曲霉屬、絲孢酵母屬為共有優(yōu)勢(shì)微生物;共有229種細(xì)菌屬,其中棒狀桿菌屬為共有優(yōu)勢(shì)微生物。從釀造核心區(qū)差異微生物分析結(jié)果來(lái)看,機(jī)械化釀造方式釀造核心區(qū)具有Septoria、Cercophora、Funbolia等共25種特有真菌屬,且具有Geovibrio、Tenggerimyces、Tistlia等共62種特有細(xì)菌屬;傳統(tǒng)釀造方式釀造核心區(qū)具有Butlerelfia、Paraboeremia、Corynespora等共14種特有真菌屬,且具有Pelosinus、Anaerococcus、Pricia等共35種特有細(xì)菌屬。這些核心釀造區(qū)分別檢出的特有微生物,均是釀造環(huán)境中不常見(jiàn)且相對(duì)豐度較低的微生物類群??梢猿醪椒治?,由于機(jī)械化操作方式對(duì)于環(huán)境因子的改變以及微生物的相互作用等原因,導(dǎo)致了真菌類群在種類和相對(duì)豐度上具有一定差異,而對(duì)于細(xì)菌類群也有一定影響,如枝孢菌屬、風(fēng)疹菌屬、頂孢屬(Acremonium)、副球菌屬(Paracoccus)等微生物,以及與白酒釀造相關(guān)的微生物,如絲孢酵母屬、嗜熱子囊屬、考克氏菌屬等,而傳統(tǒng)釀造方式下在連續(xù)的白酒生產(chǎn)過(guò)程中微生物得以不斷馴化和富集,如曲霉屬、魏斯氏菌屬、假絲酵母屬、醋酸桿菌屬(Acetobacter)等微生物。

    本次研究以機(jī)械化和傳統(tǒng)釀造方式下各環(huán)境區(qū)域采集的灰塵為環(huán)境樣本,未有涉及空氣微生物等環(huán)境樣本的研究。采集的樣本數(shù)量、樣本區(qū)域,還需進(jìn)一步拓展。研究中發(fā)現(xiàn)的一些微生物,如枝孢菌屬、Knoellia、Kytococcus等微生物對(duì)于白酒釀造的影響,有待進(jìn)一步解析。研究中檢測(cè)到的Fusicolla、假單胞菌屬等微生物,在其他香型白酒的釀造環(huán)境中也有發(fā)現(xiàn),這些微生物與白酒酒體風(fēng)格特征形成的關(guān)聯(lián),還有待進(jìn)一步研究。今后,研究中發(fā)現(xiàn)的環(huán)境微生物,特別是差異性菌屬,對(duì)于釀造區(qū)域環(huán)境的應(yīng)答特性、遷移規(guī)律以及對(duì)白酒釀造的影響,還需進(jìn)一步深入分析和跟蹤研究。

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