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    基于胰腺PI3K/AKT/BMAL1通路探討針刺對(duì)2型糖尿病大鼠血糖晝夜節(jié)律的影響*

    2023-01-31 11:57:10王栩張?jiān)?/span>劉漢東李潔趙文清周瓊陽張智龍
    天津中醫(yī)藥 2023年1期
    關(guān)鍵詞:生物鐘節(jié)律胰島

    王栩,張?jiān)?,劉漢東,李潔,趙文清,周瓊陽,張智龍

    (1.天津市中醫(yī)藥研究院附屬醫(yī)院針灸科,天津 300120;2.天津市紅橋醫(yī)院中醫(yī)科,天津 300131;3.天津中醫(yī)藥大學(xué)研究生院,天津 301617)

    糖尿病嚴(yán)重威脅著人類的健康,根據(jù)2019年國(guó)際糖尿病聯(lián)盟發(fā)布的數(shù)據(jù)顯示,至2045年將有1.472億人患有糖尿病[1]。在2020年美國(guó)糖尿病學(xué)會(huì)頒布糖尿病醫(yī)學(xué)診療標(biāo)準(zhǔn)中,新增了對(duì)2型糖尿?。═2DM)患者應(yīng)用動(dòng)態(tài)血糖譜報(bào)告評(píng)估血糖管理的推薦[2],由此說明血糖晝夜節(jié)律的調(diào)節(jié)對(duì)T2DM的治療具有重要意義。血糖晝夜節(jié)律受胰島生物鐘節(jié)律的影響。目前,改善血糖晝夜節(jié)律的西藥主要包括胰高血糖素樣肽-1受體激動(dòng)劑、磺脲類等,但上述藥物存在諸多不良反應(yīng),如低血糖、胃腸道反應(yīng)、皮疹等,影響藥物的長(zhǎng)期應(yīng)用。血糖晝夜節(jié)律失衡而引起的持續(xù)高血糖可引起多種急慢性并發(fā)癥,嚴(yán)重影響了患者的生活質(zhì)量。

    研究認(rèn)為,腦和肌肉芳香烴受體核轉(zhuǎn)位蛋白1(BMAL1)可調(diào)節(jié)胰島生物鐘的節(jié)律性,維持血糖晝夜節(jié)律[3]。其上游受磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)通路的調(diào)控,PI3K可磷酸化下游絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶(AKT)的蘇氨酸 308位點(diǎn)(pAkt T308)而激活A(yù)KT[4]。而AKT又可進(jìn)一步激活BMAL1,從而調(diào)節(jié)血糖晝夜節(jié)律[5]。同時(shí),針灸對(duì)T2DM具有治療作用,1項(xiàng)系統(tǒng)評(píng)價(jià)表明單純針刺和針刺配合降糖藥均可降低T2DM患者空腹及餐后2 h血糖、糖化血紅蛋白,且療效優(yōu)于假針刺及單純使用降糖藥[6]。筆者前期的臨床及機(jī)制研究顯示,調(diào)理脾胃針法可有效降低血糖;改善PI3K通路上下游關(guān)鍵蛋白表達(dá)及胰島結(jié)構(gòu)[7-9],但對(duì)PI3K/AKT/BMAL1介導(dǎo)針刺調(diào)節(jié)血糖晝夜節(jié)律的作用尚不明確。故本研究以高脂高糖結(jié)合小劑量腹腔注射鏈脲佐菌素(STZ)的T2DM大鼠為針刺效應(yīng)平臺(tái),重點(diǎn)研究調(diào)理脾胃針法調(diào)節(jié)血糖晝夜節(jié)律失衡的作用機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 選擇SPF級(jí)雄性Sprague-Dawley大鼠36只,體質(zhì)量(120±20)g,5周齡。購自斯貝福(北京)生物技術(shù)有限公司,動(dòng)物許可證編號(hào):SCXK(京)2019-0010。動(dòng)物飼養(yǎng)于天津市中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院放射醫(yī)學(xué)研究所,研究方案獲研究所倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(No.IRM-DWLL-2020132),實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的處置符合2006年發(fā)布的《關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的指導(dǎo)性意見》。

    1.2 主要試劑及儀器 STZ(S0130,Sigma公司),大鼠胰島素(INS)酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)Kit(CSB-E05070r,武漢華美生物公司),PI3K、AKT、p-AKT、BMAL1 抗 體(ab183957,ab233755,ab38449,ab273648,英國(guó)Abcam公司),二抗(北京博奧森生物技術(shù)有限公司),ECLplus超敏發(fā)光液(PE0010,北京索萊寶公司),TUNEL試劑盒(Roche公司);中研太和針灸針(0.3 mm×13 mm),血糖儀及試紙(越佳型至新,雅培公司),酶標(biāo)儀(美國(guó)Bio-Tek公司),凝膠成像系統(tǒng)(美國(guó)Bio-Rad公司),脫水機(jī)及包埋機(jī)(武漢俊杰電子有限公司),病理切片機(jī)(上海徠卡儀器有限公司),熒光顯微鏡(OLYMPUS公司)。

    1.3 模型建立 將大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,采用高脂高糖飼料喂養(yǎng)2個(gè)月(高脂高糖飼料配方:蔗糖20%、豬油10%、蛋黃粉5%、膽固醇1%、豬膽汁酸鈉0.1%、普通飼料63.9%)。后將造模大鼠禁食12 h,并按體質(zhì)量一次性快速腹腔注射STZ溶液(以 0.1 mol枸櫞酸鹽緩沖液配制,pH=4.6),并按注射體積10 mL/kg,注射劑量25 mg/kg,STZ濃度2.5 mg/mL注射,30 min內(nèi)使用完。于注射完成72 h后采用尾靜脈取血方式,使用血糖儀測(cè)量血糖,以連續(xù)5 d隨機(jī)血糖>16.7 mmol/L為T2DM造模成功[10]。動(dòng)物成模后均予以普通飼料喂養(yǎng)。

    1.4 動(dòng)物分組及干預(yù)方法 采用隨機(jī)數(shù)字表法將36只大鼠隨機(jī)分為空白組10只與造模組26只,造模組按照上述造模方法造模,最終死亡6只,并將剩余的20只大鼠隨機(jī)分為針刺組10只,模型組10只。針刺組取穴為:曲池、合谷、血海、足三里、豐隆、陰陵泉、地機(jī)、三陰交、太沖(以上穴位均取雙側(cè)),中脘,具體穴位定位參照李忠仁主編的《實(shí)驗(yàn)針灸學(xué)》[11]。具體操作:首先將大鼠置于自制大鼠針刺服中[8],以減少躁動(dòng)。身著大鼠針刺服后,大鼠躁動(dòng)基本消失,可同時(shí)多針刺、久留針,并可多只同時(shí)針刺操作,具有針刺可行性。而后穴位與針具常規(guī)消毒,選用中研太和0.3 mm×13 mm針灸針進(jìn)行針刺,并于 23:30、05:30、11:30、17:30 進(jìn)行針刺,每次留針30 min,每日治療1次,每周治療5次,共治療4周??瞻捉M及模型組不予干預(yù)。

    1.5 檢測(cè)指標(biāo)

    1.5.1 一般情況 對(duì)造模前后大鼠的精神狀態(tài)、毛色、進(jìn)食量、飲水量、尿量、便質(zhì)進(jìn)行觀察。

    1.5.2 4時(shí)相即時(shí)血糖檢測(cè) 于干預(yù)前及針刺4周后,將各組大鼠禁食12 h,自由飲水。分別于0、6、12、18時(shí)采用尾靜脈取血法,用血糖儀測(cè)量即時(shí)血糖。

    1.5.3 平均血糖的標(biāo)準(zhǔn)差(SDBG)和最大血糖波動(dòng)幅度(LAGE)檢測(cè) SDBG:先計(jì)算4時(shí)相血糖平均值,再將4時(shí)相血糖值與平均值之差的平方和除以6,最后將值開方。LAGE:最高血糖值與最低血糖值之差。

    1.5.4 空腹血清胰島素(Fins)含量 于干預(yù)前及針刺4周后,將各組大鼠禁食12 h,自由飲水。于18時(shí)血糖檢測(cè)完畢后,采用眼眶靜脈取血法,取3 mL血液,然后將血液低溫離心,取上清液,采用ELISA檢測(cè)Fins。

    1.5.5 胰腺熒光TUNEL染色 于針刺4周后,眼眶靜脈取血完畢后,將各組大鼠處死,分離胰腺并于冰生理鹽水中洗去血液至液體澄清。固定后將石蠟切片脫蠟,滴加破膜工作液覆蓋組織,孵育漂洗后,滴加配制好的TUNEL混合液覆蓋組織,37℃恒溫箱孵育2 h,而后進(jìn)行DAPI復(fù)染細(xì)胞核,再用抗熒光淬滅封片劑封片,最后于熒光顯微鏡下觀察并采集圖像。采用凋亡細(xì)胞數(shù)/胰島總細(xì)胞核數(shù)×100%,計(jì)算凋亡指數(shù)(AI),取平均值。

    1.5.6 蛋白質(zhì)印跡法(Western blot)檢測(cè)PI3K、AKT、p-AKT、BMAL1蛋白表達(dá) 取胰腺組織加入裂解液研磨,離心后取上清液,采用BCA法測(cè)定蛋白質(zhì)濃度,根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果調(diào)整各個(gè)蛋白的上樣量,上樣后進(jìn)行電泳、轉(zhuǎn)膜,并將膜置于封閉液中封閉2 h,后配置合適比例的一抗封閉液(PI3K、AKT、BMAL1稀釋比例 1∶1 000;p-AKT 稀釋比例 1∶800),于 4 ℃孵育過夜后再加二抗封閉液室溫孵育,滴入ECL plus超敏發(fā)光液,并采用凝膠成像系統(tǒng)分析灰度值。

    1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 選取SPSS 24軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間計(jì)量資料比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD法,組內(nèi)前后比較采用配對(duì)t檢驗(yàn)。重復(fù)測(cè)量資料比較采用重復(fù)測(cè)量方差分析,P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 一般情況 造模前大鼠精神狀態(tài)反應(yīng)敏捷,行動(dòng)迅速,毛發(fā)光澤,便質(zhì)成型;造模后精神萎靡,反應(yīng)遲鈍,瞇眼少動(dòng),縮肩拱背,體型消瘦,毛發(fā)蓬松,毛色暗黃,食量倍增,頻繁飲水,尿量增加,大便溏稀。干預(yù)結(jié)束后,針刺組大鼠精神狀態(tài)良好,反應(yīng)敏捷,體質(zhì)量增加明顯,毛發(fā)順澤,食飲水及尿量如常,便質(zhì)基本成形。

    2.2 4 時(shí)相血糖值 如表1所示,干預(yù)前與空白組比較,模型組與針刺組各時(shí)相即時(shí)血糖顯著升高(P<0.01),但針刺組與模型組相比無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。干預(yù)后,針刺組較模型組各時(shí)相即時(shí)血糖顯著下降(P<0.01),但兩組各時(shí)相即時(shí)血糖均顯著高于空白組(P<0.01)。模型組血糖與干預(yù)前相比無顯著變化(P>0.05),而針刺組血糖顯著下降(P<0.01)。

    表1 各組大鼠干預(yù)前后0、6、12、18時(shí)即時(shí)血糖比較(±s)Tab.1 Comparison of 0,6,12,18 hours of glucose levels in rats of each group before and after intervention(±s)mmol/L

    表1 各組大鼠干預(yù)前后0、6、12、18時(shí)即時(shí)血糖比較(±s)Tab.1 Comparison of 0,6,12,18 hours of glucose levels in rats of each group before and after intervention(±s)mmol/L

    注:同一時(shí)相與空白組比較,**P<0.01;同一時(shí)相與模型組比較,##P<0.01;同一組別與干預(yù)前比較,▲▲P<0.01。

    組別 動(dòng)物數(shù) 0時(shí)血糖 6時(shí)血糖 12時(shí)血糖 18時(shí)血糖干預(yù)前 干預(yù)后 干預(yù)前 干預(yù)后 干預(yù)前 干預(yù)后 干預(yù)前 干預(yù)后空白組 10 6.1±0.72 6.1±0.84 6.2±0.65 6.1±0.73 5.5±0.71 5.5±0.63 5.3±0.66 5.1±0.74模型組 10 22.5±0.92** 22.4±1.14** 20.3±1.36** 21.2±1.43** 18.5±1.52** 19.1±1.62** 21.3±1.21**22.0±1.32**針刺組 10 22.6±1.23** 9.0±0.93**##▲▲ 19.5±1.52** 9.4±0.75**##▲▲ 18.8±1.08** 8.5±0.54**##▲▲ 21.5±2.76** 7.7±0.62**##▲▲

    2.3 SDBG與LAGE值 如表2所示,干預(yù)前與空白組比較,模型組與針刺組SDBG與LAGE顯著升高(P<0.01),但針刺組與模型組相比無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。干預(yù)后,針刺組較模型組SDBG與LAGE顯著下降(P<0.01),但兩組 SDBG 與 LAGE 均顯著高于空白組(P<0.01)。模型組 SDBG 與 LAGE 與干預(yù)前相比無顯著變化(P>0.05),而針刺組 SDBG 與LAGE 顯著下降(P<0.01)。

    表2 各組大鼠干預(yù)前后SDBG與LAGE值比較(±s)Tab.2 Comparison of SDBG and LAGE levels in rats of each group before and after intervention(±s)mmol/L

    表2 各組大鼠干預(yù)前后SDBG與LAGE值比較(±s)Tab.2 Comparison of SDBG and LAGE levels in rats of each group before and after intervention(±s)mmol/L

    注:與空白組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01;與干預(yù)前比較,▲▲P<0.01。

    組別 動(dòng)物數(shù) SDBG LAGE干預(yù)前 干預(yù)后 干預(yù)前 干預(yù)后空白組 10 0.6±0.48 0.6±0.36 1.7±1.03 1.7±1.11模型組 10 4.2±0.78**4.3±0.85** 7.0±1.93**7.1±2.09**針刺組 10 4.1±0.63**2.8±0.57**##▲▲ 7.1±2.03**4.8±2.13**##▲▲

    2.4 Fins含量 由表3可知,干預(yù)前與空白組比較,模型組與針刺組 Fins含量顯著降低(P<0.01),但針刺組與模型組相比無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。干預(yù)后針刺組較模型組Fins含量顯著升高(P<0.01),但兩組Fins含量均顯著低于空白組(P<0.01)。模型組 Fins含量與干預(yù)前相比無顯著變化(P>0.05),而針刺組 Fins含量顯著升高(P<0.01)。

    表3 各組大鼠干預(yù)前后Fins的比較(±s)Tab.3 Comparison of Fins levels in rats of each group before and after intervention(±s) μU/L

    表3 各組大鼠干預(yù)前后Fins的比較(±s)Tab.3 Comparison of Fins levels in rats of each group before and after intervention(±s) μU/L

    注:與空白組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01;與干預(yù)前比較,▲▲P<0.01。

    組別 動(dòng)物數(shù) Fins干預(yù)前 干預(yù)后空白組 10 72.91±7.62 69.51±3.36模型組 10 36.45±1.58** 37.43±1.65**針刺組 10 35.25±4.76** 54.91±2.38**##▲▲

    2.5 胰腺熒光TUNEL染色及AI值 由圖1、表4可知,鏡下空白組胰島未見明顯凋亡,僅有極少量散在綠色著色的凋亡細(xì)胞。而模型組可見大量凋亡細(xì)胞,AI值則明顯高于空白組(P<0.01)。經(jīng)針刺后,針刺組凋亡情況明顯改善,可見夾雜少量凋亡細(xì)胞,AI值較模型組明顯下降(P<0.01)。

    圖1 各組胰腺熒光TUNEL染色(×200)Fig.1 Fluorescence TUNEL staining of pancreas of each group(×200)

    表4 干預(yù)后各組大鼠胰腺細(xì)胞凋亡率的比較(±s)Tab.4 Comparison of lslet cell apoptosis rate in rats of each group of after intervention(±s)%

    表4 干預(yù)后各組大鼠胰腺細(xì)胞凋亡率的比較(±s)Tab.4 Comparison of lslet cell apoptosis rate in rats of each group of after intervention(±s)%

    注:與空白組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01。

    組別 動(dòng)物數(shù) AI空白組 10 2.53±0.79模型組 10 87.32±5.31**針刺組 10 40.59±7.28##

    2.6 各組大鼠 PI3K、AKT、p-AKT、BMAL1 蛋白檢測(cè) 由表5、圖2可知,干預(yù)后針刺組各蛋白表達(dá)較模型組顯著升高(P<0.01),但均顯著低于空白組(P<0.01)。

    表5 干預(yù)后各組大鼠PI3K、AKT、p-AKT、BMAL1蛋白相對(duì)表達(dá)量(±s)Tab.5Comparison of PI3K,AKT,p-AKT,BMAL1 levels in rats of each group of after intervention(±s)

    表5 干預(yù)后各組大鼠PI3K、AKT、p-AKT、BMAL1蛋白相對(duì)表達(dá)量(±s)Tab.5Comparison of PI3K,AKT,p-AKT,BMAL1 levels in rats of each group of after intervention(±s)

    注:與空白組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01。

    組別 動(dòng)物數(shù) PI3K AKT p-AKT BMAL1空白組 10 1.02±0.03 0.93±0.04 0.74±0.06 0.81±0.03模型組 10 0.41±0.04** 0.36±0.06** 0.26±0.06** 0.23±0.03**針刺組 10 0.58±0.08**##0.52±0.07**##0.53±0.09**##0.42±0.04**##

    圖2 干預(yù)后各組大鼠PI3K、AKT、p-AKT、BMAL1的蛋白表達(dá)Fig.2 Protein expression of PI3K,AKT,p-AKT and BMAL1 in rats of each group after intervention

    3 討論

    人體的生理、代謝方面存在晝夜節(jié)律性,這種節(jié)律性受體內(nèi)生物鐘控制。人體生物鐘主要由位于視交叉上核的中央生物鐘和外周生物鐘(如胰島、肝臟、肌肉等)組成。中央生物鐘通過神經(jīng)、體液調(diào)控外周生物鐘,但葡萄糖信號(hào)可使外周生物鐘(如胰島)擺脫中央生物鐘控制,而具有相對(duì)自主的生物節(jié)律,其中胰島的自主生物節(jié)律性主要體現(xiàn)在胰島素分泌方面[12]。胰島功能的完整性是胰島素分泌的前提。有資料顯示,T2DM患者胰島分泌的正常節(jié)律消失,胰島素脈沖式的分泌模式紊亂,血糖晝夜節(jié)律失衡[13]。故恢復(fù)胰島功能及正常的“生物鐘效應(yīng)”對(duì)維持T2DM血糖晝夜節(jié)律至關(guān)重要。

    晝夜節(jié)律產(chǎn)生和維持的分子機(jī)制是由BMAL1與生物鐘循環(huán)輸出蛋白(CLOCK)形成異二聚體作為節(jié)律性震蕩的起始,隨后與其他時(shí)鐘基因結(jié)合,形成以約24 h為周期的節(jié)律性表達(dá)振蕩。PI3K/AKT通路是BMAL1的上游通路,有別于生物鐘基因(CLOCK),BMAL1的缺乏會(huì)出現(xiàn)高血糖和葡萄糖刺激下的胰島素分泌紊亂等現(xiàn)象[14]。BMAL1蛋白可與胰島素基因啟動(dòng)子E-box結(jié)合,調(diào)控胰島素的表達(dá),并可促進(jìn)胰島素分泌囊泡的胞吐。敲除BMAL1可影響胰島節(jié)律性胞吐[15]。故PI3K/AKT/BMAL1通路與T2DM血糖晝夜節(jié)律失衡關(guān)系密切。

    同時(shí),人體五臟六腑與自然界生物節(jié)律亦有聯(lián)系,如《靈樞·經(jīng)別》云:“余聞人之合于天道也,內(nèi)有五臟,以應(yīng)五音、五色、五時(shí)、五味、五位也;外有六腑,以應(yīng)六律,六律建陰陽諸經(jīng),而合之十二月、十二辰、十二節(jié)、十二經(jīng)水、十二時(shí)、十二經(jīng)脈者,此五臟六腑之所以應(yīng)天道?!倍⒉∫鄷?huì)導(dǎo)致生物節(jié)律性的失常,如《素問·藏氣法時(shí)論》曰:“脾病者,日昳慧,日出甚,下晡靜?!逼渲小叭粘錾酢奔囱悦髌⒉』颊咴诶杳髦畷r(shí)病情嚴(yán)重,而T2DM的“黎明現(xiàn)象”正是發(fā)于此時(shí),這也為生物鐘紊亂從脾論治提供理論依據(jù)。同時(shí),血糖是由水谷精微化生而成,源于脾胃的升降運(yùn)化,故血糖異常亦應(yīng)從脾論治。《素問·遺篇》曰:“脾者,諫議之官,知周出焉。”筆者認(rèn)為脾諫議是監(jiān)督防衛(wèi)之功的體現(xiàn)。血糖晝夜節(jié)律失衡正是由于脾胃受損,脾虛失運(yùn),運(yùn)化失節(jié),諫議失司而引起。因此,提出血糖晝夜節(jié)律失衡應(yīng)從脾論治,調(diào)理脾胃升降運(yùn)化,復(fù)其諫議之職,使運(yùn)化有節(jié)。

    本研究結(jié)果顯示,造模成功后,大鼠顯示出了脾胃升降運(yùn)化失常所引起的一系列癥狀,如精神萎靡,體型消瘦,毛色暗黃,大便溏稀等。在針刺后上述癥狀較前改善。此外,在正常情況下大鼠血糖分別于6、18時(shí)為一晝夜血糖變化的波峰及波谷,并于0、24時(shí)回落至基本水平[16],而T2DM大鼠的血糖則無晝夜波動(dòng)的節(jié)律性,而呈現(xiàn)出異常高水平[17],故采用4時(shí)相即時(shí)血糖以評(píng)價(jià)血糖波動(dòng)的節(jié)律性,但波動(dòng)的節(jié)律性亦不可過度離散,故進(jìn)一步結(jié)合SDBG與LAGE以評(píng)價(jià)其離散程度。研究表明,干預(yù)前由于胰腺的破壞,故胰島素分泌不足,TUNEL染色亦證明胰島細(xì)胞存在大量凋亡。因此,干預(yù)前針刺、模型組Fins含量較空白組下降,各時(shí)相即時(shí)血糖、SDBG、LAGE及AI值較空白組升高,血糖晝夜節(jié)律失衡。隨著針刺的干預(yù),AI值降低,提示胰島修復(fù),而胰島功能的完整性又是胰島素分泌的前提,隨著胰島修復(fù),胰島素節(jié)律性分泌得到改善,針刺組各時(shí)相血糖、SDBG、LAGE趨于正常,且針刺結(jié)束后Fins含量亦接近空白組,血糖晝夜節(jié)律失衡得到糾正。同時(shí),治療前模型組大鼠PI3K/AKT通路各蛋白表達(dá)量降低,信號(hào)下傳障礙,BMAL1表達(dá)量減少,是血糖晝夜節(jié)律失衡的機(jī)制。但隨著針刺的介入,針刺對(duì)PI3K/AKT/BMAL1通路具有良性調(diào)節(jié)作用,可提高 PI3K、AKT、p-AKT、BMAL1 蛋白的表達(dá)量,促進(jìn)針刺信號(hào)的下傳,隨著BMAL1的表達(dá)增加,其可促進(jìn)胰島素生成,改善血糖分泌的節(jié)律性,故使各時(shí)相血糖下降,血糖晝夜節(jié)律得到改善。

    調(diào)理脾胃針法正是用于治療脾胃升降運(yùn)化失常的1種針刺方法,中脘可助運(yùn)化,功善升清降濁;足三里可益脾胃,補(bǔ)臟腑之虛損;陰陵泉可化濕滯,開通水道,上述3個(gè)穴位相配健脾祛濕,調(diào)中焦之升降運(yùn)化。三陰交、地機(jī)、血??苫兄疂狃觯铕錾?,調(diào)和氣血。豐隆可化濕祛痰,和胃降逆。曲池、合谷通降胃腸,蕩滌邪穢。太沖平肝調(diào)肝,防肝木橫克脾土。諸穴合用,使升降有序,健運(yùn)有常,精微得布,臟腑得養(yǎng),諫議之職可復(fù)[18]。

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