林大彪,楊 斌
(長春大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,吉林 長春 130022)
胰蛋白酶抑制因子(KTI)是大豆及其副產(chǎn)物中主要抗?fàn)I養(yǎng)因子,在各品種大豆中的平均含量約為17.7 mg/g(程慧等,2020),該物質(zhì)能與糜蛋白酶和胰蛋白酶結(jié)合形成復(fù)合物,使兩種消化酶失活(周天驕等,2015)。在經(jīng)濟(jì)動(dòng)物養(yǎng)殖中,大豆與豆粕中KTI過高會(huì)導(dǎo)致飼料中蛋白消化利用率顯著下降,破壞營養(yǎng)物質(zhì)的氮平衡,引起動(dòng)物腹瀉,進(jìn)而抑制動(dòng)物生長(姜雷,2019)。同時(shí),過量食用KTI濃度高的食物會(huì)導(dǎo)致動(dòng)物胰腺細(xì)胞腫大,增加體內(nèi)自由基產(chǎn)生使胰腺分泌功能紊亂(劉勇杰,2017),嚴(yán)重時(shí)會(huì)導(dǎo)致胰腺細(xì)胞產(chǎn)生強(qiáng)烈的氧化應(yīng)激,對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生不可逆損傷(李德發(fā),2019;趙琳琳等,2018)。“玉米-豆粕”型日糧是我國單胃動(dòng)物養(yǎng)殖中應(yīng)用最為廣泛的日糧類型,在反芻動(dòng)物養(yǎng)殖中大豆及其副產(chǎn)物是精料組成的重要原料之一,在飼用抗生素禁止使用且氧化鋅在日糧中用量減少的背景下,由KTI引起的動(dòng)物腹瀉是降低動(dòng)物生產(chǎn)性的主要原因之一。因此,本文以大豆為研究材料,使用微生物制劑對(duì)大豆粉進(jìn)行發(fā)酵處理,觀察其對(duì)大豆發(fā)酵物中KTI含量的影響,通過篩選最優(yōu)發(fā)酵工藝,對(duì)大豆類產(chǎn)品在動(dòng)物飼料生產(chǎn)與養(yǎng)殖中的深入應(yīng)用提出新的見解。
1.1 主要研究材料 大豆購自中糧集團(tuán)有限公司,經(jīng)過粉碎機(jī)粉碎后過40目篩,低溫冷風(fēng)烘干,陰涼干燥區(qū)域儲(chǔ)存,測定大豆中KTI含量,剩余樣品待后續(xù)試驗(yàn)使用。微生物制劑主要組成為乳酸菌、酵母菌及枯草芽孢桿菌,購自益加益生物工程科技有限公司,具體微生物含量見表1。
表1 微生物制劑中的微生物含量
1.2 主要試劑與儀器
1.2.1 主要試驗(yàn)儀器 雙錐回轉(zhuǎn)真空干燥機(jī)(SZG型,常州市旭宇環(huán)保工程科技有限公司),發(fā)酵裝置(YD-GA-0.25L型,上海有道生工),粉碎機(jī)(40目篩片),勻漿機(jī)(FSH-2A,常州金壇良友儀器有限公司),漩渦混合器(UMV-1,北京優(yōu)晟聯(lián)合科技有限有限公司),具塞離心管(濟(jì)南新美康生物技術(shù)有限公司),電子稱(LS30-08MT型,浙江良石智能技術(shù)有限公司),分析天平(上?;ǔ睂?shí)業(yè)有限公司),微孔板酶標(biāo)儀(JC-1086A,青島聚創(chuàng)環(huán)集團(tuán)有限公司)等。
1.2.2 主要檢測試劑KTI檢測試劑盒(上海酶聯(lián)生物科技有限公司),KTI標(biāo)準(zhǔn)品(CAS號(hào):9035-81-8),GB/T 6682規(guī)定的二級(jí)水。
1.3 KTI檢測方法 大豆與大豆發(fā)酵產(chǎn)物中胰蛋白酶抑制因子的檢測方法參考國家市場監(jiān)督管理總局與國家標(biāo)準(zhǔn)化管理委員會(huì)制定的《GB/T 40368-2021植物代謝產(chǎn)物胰蛋白酶抑制因子測定 酶聯(lián)免疫吸附法》。主要步驟如下:(1)樣品前處理:精確稱取1.00 g左右大豆粉或者大豆發(fā)酵物,置于15 mL具塞離心管中,按照試劑盒要求配制提取物液并對(duì)其進(jìn)行稀釋。(2)測定:樣品經(jīng)過處理,樣品液KTI與微孔板中KTI抗體結(jié)合,清洗為結(jié)合的其他成分,再次與KTI抗體結(jié)合,加入酶標(biāo)底物,在酶標(biāo)儀中使用450 nm波長進(jìn)行吸光度值測定,以便計(jì)算KTI含量。(3)平行試驗(yàn):對(duì)同一標(biāo)準(zhǔn)溶液和樣品溶液進(jìn)行6次平行試驗(yàn)以保證測定結(jié)果準(zhǔn)確性。(4)空白實(shí)驗(yàn):不稱取樣品,按照上述步驟進(jìn)行操作,以進(jìn)行校準(zhǔn)。(5)陽性質(zhì)控:根據(jù)大豆或大豆發(fā)酵物KTI含量,選擇合適的質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn),確保試驗(yàn)結(jié)果準(zhǔn)確性。(6)根據(jù)上述步驟所得標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量濃度與吸光度變化關(guān)系繪制標(biāo)準(zhǔn)工作曲線。(7)根據(jù)試劑盒說明,將吸光度值帶入標(biāo)準(zhǔn)工作曲線,計(jì)算樣品液質(zhì)量濃度(ρ)。(8)樣品中KTI的含量計(jì)算公式如下:
式中:W為KTI含量,g/mg;ρ為KTI的質(zhì)量濃度,ng/mL;V為樣品液體積,mL;a為在處理過程中樣品液稀釋倍數(shù);m樣品的精確稱樣量,g。
1.4 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
1.4.1 單因素試驗(yàn) 在本研究中,主要考察微生物制劑添加量、發(fā)酵溫度、料水比對(duì)大豆發(fā)酵產(chǎn)物KTI含量的影響。初始發(fā)酵工藝參數(shù)設(shè)定為:按照1 kg大豆粉加入0.2 g微生物制劑的添加量將微生物制劑與大豆粉混勻,料水比控制為1.0:0.8,發(fā)酵溫度為30℃,然后根據(jù)復(fù)合微生物制劑廠家提供的使用說明,將發(fā)酵時(shí)間固定為3 d并置于陰涼、避光條件下。發(fā)酵完畢,將大豆發(fā)酵物取出,低溫烘干后測定KTI含量。
依據(jù)初始發(fā)酵工藝參數(shù),按照單因素輪換法,保持料水比為1.0:0.8、發(fā)酵溫度30℃,依次考察1 kg大豆中分別加入0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 g微生物制劑對(duì)大豆發(fā)酵物中KTI含量的影響;然后,保持微生物制劑接種量為0.2 g/kg、發(fā)酵溫度為30℃,依次考察料水比為1.0:0.7、1.0:0.8、1.0:0.9、1.0:1.0、1.0:1.1對(duì)大豆發(fā)酵物KTI含量的影響;最后,保持微生物制劑接種量為0.2 g/kg、料水比為1.0:0.8,依次考察發(fā)酵溫度25、30、35、40、45℃對(duì)大豆發(fā)酵物中KTI含量的影響。通過單因素輪換法獲得,3種因素的最優(yōu)參數(shù)所處范圍,然后進(jìn)行下一步正交試驗(yàn)。
1.4.2 正交試驗(yàn) 根據(jù)單因素試驗(yàn)KTI檢測結(jié)果,篩選各項(xiàng)參數(shù)對(duì)KTI影響的最優(yōu)范圍,進(jìn)行正交試驗(yàn),以KTI含量最低為優(yōu)化目標(biāo)獲得最佳工藝參數(shù)。單因素試驗(yàn)與正交試驗(yàn)均重復(fù)測定3次,取平均值。
1.4.3 方法學(xué)考察與驗(yàn)證 根據(jù)正交試驗(yàn)所得最佳工藝參數(shù),進(jìn)行6次平行試驗(yàn)確定大豆發(fā)酵物中KTI含量及其穩(wěn)定性,同時(shí)對(duì)比大豆與大豆發(fā)酵物中其他抗?fàn)I養(yǎng)因子(大豆球蛋白、β-伴大豆球蛋白)含量。大豆球蛋白與β-伴大豆球蛋白使用酶聯(lián)免疫吸附法測定,檢測試劑盒購自上海酶聯(lián)生物科技有限公司。
1.5統(tǒng)計(jì)與分析 所有試驗(yàn)數(shù)據(jù)使用Excel軟件進(jìn)行初步整理,再通過SPSS 2021軟件進(jìn)行正交試驗(yàn)設(shè)計(jì),并對(duì)正交試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行方差分析和極差分析。使用t檢驗(yàn)統(tǒng)計(jì)大豆與大豆發(fā)酵物中抗?fàn)I養(yǎng)因子含量顯著性,試驗(yàn)數(shù)據(jù)以“平均值”或“平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤”形式表示。
2.1 大豆原料中KTI含量測定結(jié)果 由表1可知,大豆原料KTI平均含量為16.49 mg/g,并且變異系數(shù)CV值為0.26%,說明本試驗(yàn)中所購的大豆原料KTI指標(biāo)穩(wěn)定、原料一致性較好,可進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
表1 大豆原料中KTI含量 mg/g
2.2 單因素試驗(yàn)結(jié)果與分析
2.2.1 微生物制劑接種量對(duì)KTI含量的影響由圖1可知,隨著微生物制劑接種量的增加,KTI在大豆發(fā)酵物中含量呈先降低而后上升的趨勢。在接種量為0.3 g/kg時(shí),KTI含量最低,為4.23 mg/g。當(dāng)超過0.3 g/kg的接種量時(shí),KTI濃度緩慢上升,以KTI濃度最低為優(yōu)化目標(biāo)可以認(rèn)為最佳微生物制劑接種量為0.2~0.4 g/kg。
圖1 微生物接種量對(duì)大豆發(fā)酵物中KTI含量的影響
2.2.2 料水比對(duì)KTI含量的影響 由圖2可知,隨著料水比下降,發(fā)酵物中KTI含量越低。當(dāng)料水比為1.0:1.0時(shí),KTI含量最低,為3.65 mg/g。此后,發(fā)酵物中KTI含量隨著料水比的下降有一定程度上升,因此根據(jù)結(jié)果可認(rèn)為料水比最佳范圍處于1.0:0.9至1.0:1.1。
圖2 料水比對(duì)大豆發(fā)酵物中KTI含量的影響
2.2.3 發(fā)酵溫度對(duì)KTI含量的影響 由圖3可知,隨著發(fā)酵溫度的上升,大豆發(fā)酵物中KTI含量先遞減然后再大幅度上升,當(dāng)發(fā)酵溫度為35℃時(shí),KTI含量最低,為2.23 mg/g。根據(jù)測定結(jié)果可以認(rèn)為,最佳發(fā)酵溫度為30~40℃。
圖3 發(fā)酵溫度對(duì)大豆發(fā)酵物中KTI含量的影響
2.3 最優(yōu)生產(chǎn)工藝的確定
2.3.1 正交分析結(jié)果 根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,本研究將發(fā)酵時(shí)間固定為3 d,然后以微生物制劑接種量、料水比和發(fā)酵溫度為主要考察因素進(jìn)行正交分析。正交分析各項(xiàng)因素與水平依據(jù)單因素結(jié)果設(shè)定(表2)。
表2 正交試驗(yàn)的因素與水平
使用SPSS軟件生成正交分析表(表3),根據(jù)正交試驗(yàn)表按照指定工藝參數(shù)進(jìn)行發(fā)酵,并對(duì)發(fā)酵物KTI含量進(jìn)行測定。由方差分析結(jié)果可知(表4),料水比對(duì)發(fā)酵物中KTI含量影響顯著(P<0.05),發(fā)酵溫度對(duì)發(fā)酵物中KTI含量影響極顯著(P<0.01)。極差分析表明接種量、料水比、發(fā)酵溫度的R值分別為0.57、0.71、195,R值越大對(duì)KTI含量的影響程度越高,因此可以判定3種因素的重要性排序從高到低依次為發(fā)酵溫度>料水比>微生物接種量。以KTI最低為優(yōu)化目標(biāo),根據(jù)值,可認(rèn)為在發(fā)酵時(shí)間固定為3 d條件下,最佳發(fā)酵參數(shù)為微生物接種量0.3 g/kg、料水比1.0:1.0,發(fā)酵溫度35℃。
表3 正交試驗(yàn)與極差分析結(jié)果
表4 方差分析結(jié)果
2.3.2 最優(yōu)工藝參數(shù)條件下大豆發(fā)酵物KTI含量測定 根據(jù)上述最佳工藝參數(shù),連續(xù)進(jìn)行6次平行試驗(yàn),所得大豆發(fā)酵物中KTI平均含量約為1.3167mg/g,比大豆原料中KTI含量下降約92.01%(表5),并且該工藝參數(shù)下CV值低于5%,說明在該工藝參數(shù)下,可穩(wěn)定地生產(chǎn)KTI含量較低的發(fā)酵大豆用于飼料生產(chǎn)。
表5 大豆發(fā)酵物中KTI含量 mg/g
2.3.3 大豆與大豆發(fā)酵物中抗?fàn)I養(yǎng)因子的含量大豆與大豆發(fā)酵物中抗?fàn)I養(yǎng)因子中KTI、大豆球蛋白、β-伴大豆球蛋白含量差異如表6所示。盡管本研究是以KTI含量最低為優(yōu)化目標(biāo),但在最佳發(fā)酵工藝參數(shù)下發(fā)酵物中大豆球蛋白和β-伴大豆球蛋白含量分別比大豆下降81.27%和75.07%。
表6 大豆與大豆發(fā)酵物中抗?fàn)I養(yǎng)因子差異
KTI是大豆中含量較高的抗?fàn)I養(yǎng)因子之一,降低豆類產(chǎn)品中KTI是對(duì)于飼料和食品行業(yè)的重要研究內(nèi)容(Bendre等,2019)。飼糧工業(yè)發(fā)展早期依靠加熱對(duì)豆類原料中KTI進(jìn)行處理,但該方法適用性較差(Ascenzi等,2003),溫度不夠易導(dǎo)致胰蛋白酶抑制因子去除不徹底,溫度過熱易破壞飼料中維生素、氨基酸等營養(yǎng)成分,并且蛋白質(zhì)會(huì)在加熱過程中出現(xiàn)“美拉德反應(yīng)”,導(dǎo)致蛋白消化利用率下降,可能造成幼齡動(dòng)物消化不良進(jìn)而導(dǎo)致腹瀉的出現(xiàn)(包健等,2015)。乳酸菌、酵母菌和枯草芽孢菌等微生物可將KTI作為養(yǎng)分用于自身增殖代謝,因此對(duì)各類原料中的KTI均有降解作用(王小明等,2017),但單一微生物發(fā)酵對(duì)KTI降解的作用有限,如枯草芽孢桿菌對(duì)豆類飼料原料發(fā)酵,其中KTI降解率最高僅為63.12%(梁運(yùn)祥等,2010),目前復(fù)合微生物制劑用于豆類產(chǎn)品發(fā)酵應(yīng)用更為廣泛。研究認(rèn)為微生物在增殖過程中存在競爭關(guān)系,當(dāng)競爭過于劇烈會(huì)降低發(fā)酵效果(馬艷娟,2021;彭翔等,2020;吳金男等,2015),這可能是本研究中微生物制劑接種量提升,而KTI含量先降低而后小幅度升高的原因。水分含量適中是合理發(fā)酵的基礎(chǔ),過高的水分容易使降解KTI必要的物質(zhì)過于分散而導(dǎo)致發(fā)酵效果較差,而水分含量過低容易使空氣進(jìn)入影響微生物增殖(周苗苗等,2015;孫合美等,2014)。而發(fā)酵溫度對(duì)于微生物存活與增殖代謝有重要關(guān)聯(lián)(李春梅等,2022;陳倩倩等,2020;楊曉婷等,2020),微生物在最適溫度下增殖速度最高,對(duì)KTI代謝速率也會(huì)有顯著提升。盡管本研究以降低KTI為目標(biāo)對(duì)發(fā)酵工藝參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,但在后續(xù)的檢測結(jié)果中發(fā)現(xiàn)復(fù)合微生物制劑對(duì)大豆中大豆球蛋白與β-伴大豆球蛋白抗?fàn)I養(yǎng)因子同樣具有降解作用。研究表明,微生物發(fā)酵是有效降解豆類飼料原料中抗?fàn)I養(yǎng)因子的重要途徑之一(李英英等,2022;姚怡莎等,2015),但目前的研究鮮見有微生物發(fā)酵過程中對(duì)抗?fàn)I養(yǎng)因子降解的偏好有明確報(bào)道。盡管在實(shí)際飼料生產(chǎn)中對(duì)大豆進(jìn)行膨化是最為常見的去除抗?fàn)I養(yǎng)因子的手段,但這種方法僅對(duì)熱敏性抗?fàn)I養(yǎng)因子有較好的作用,微生物降解抗?fàn)I養(yǎng)因子的優(yōu)勢在于對(duì)不同類別的抗?fàn)I養(yǎng)因子均具有降解作用,效率遠(yuǎn)高于膨化處理(花蘊(yùn)等,2020)。
本試驗(yàn)結(jié)果表明,復(fù)合微生物制劑在發(fā)酵時(shí)間固定為3 d時(shí),微生物接種量0.3 g/kg,料水比1.0:1.0,發(fā)酵溫度35℃為大豆發(fā)酵的最佳工藝參數(shù),此時(shí)大豆發(fā)酵物中KTI含量最低,為1.3167 mg/g,并且大豆球蛋白和β-伴大豆球蛋白含量顯著下降。因此本研究認(rèn)為通過微生物復(fù)合制劑發(fā)酵大豆可以有效減少大豆中抗?fàn)I養(yǎng)因子的含量,對(duì)提高畜禽生產(chǎn)和飼料消化利用率有重要作用。