常相娜, 陳雪峰, 蘇 瑤
(陜西科技大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院, 陜西 西安 710021)
我國是蘋果生產(chǎn)大國,蘋果汁出口量巨大[1],每年產(chǎn)生數(shù)百萬噸蘋果汁加工副產(chǎn)品--蘋果渣(Apple pomace,AP)[2].盡管AP富含黃酮、多酚、多糖等活性成分[3],但局限于利用方法有限,大多數(shù)AP依然作為廢物丟棄,未得到充分有效利用,造成資源浪費(fèi)與環(huán)境污染[4].因此,探討高附加值利用AP及其活性成分有著顯著的社會價(jià)值和潛在的經(jīng)濟(jì)效益.多糖在植物中廣泛的存在,發(fā)揮支撐組織或儲存營養(yǎng)的功能.近年來,由于植物多糖具有多種生物活性,如抗氧化[5,6]、抗炎[7,8]、抗癌[9]及免疫調(diào)節(jié)[9]等作用,且具有安全無毒的特性[10],故受到越來越多的關(guān)注,已逐步開發(fā)應(yīng)用在醫(yī)藥、保健食品等行業(yè).正因如此,作為AP中主要活性成分之一的蘋果渣多糖(Polysaccharide from apple pomace,PAP)受到了研究人員的關(guān)注.Sun等[11]先將AP預(yù)壓處理后,分離獲得的PAP進(jìn)行研究,表明PAP具有良好的抗氧化活性;Li等[12]研究證實(shí)PAP至少部分通過調(diào)節(jié)腸道菌群失調(diào)和Wnt通路阻止了ICR小鼠發(fā)生結(jié)腸炎相關(guān)的大腸癌;Chen等[13]研究發(fā)現(xiàn)PAP可以成功地改善與肥胖相關(guān)的肝代謝紊亂;Wang等[14]研究表明PAP可顯著緩解與營養(yǎng)不良相關(guān)的腸道通透性和慢性炎癥.上述研究表明PAP具有抗氧化、抗腫瘤、改善肝功能及營養(yǎng)不良等多種生物活性.
酶解法提取多糖具有條件溫和、雜質(zhì)易于去除、產(chǎn)率高等優(yōu)點(diǎn)[15],是提取果渣多糖的常用方法之一.已有研究表明不同的提取方法對多糖收率、結(jié)構(gòu)與活性都會產(chǎn)生影響[16,17],而關(guān)于酶解蘋果渣中的多糖與非酶解蘋果渣多糖在結(jié)構(gòu)與活性上的差異尚未見相關(guān)報(bào)道.本文采用實(shí)驗(yàn)室前期研究獲得的復(fù)合酶酶解蘋果渣優(yōu)化工藝,進(jìn)行蘋果渣多糖提取,所得酶解蘋果渣多糖(Polysaccharides from enzymatic Apple Pomace,PEAP)對比非酶解處理PAP,分析理化特性及結(jié)構(gòu)變化、評價(jià)抗氧化活性,探討結(jié)構(gòu)與抗氧化活性之間的關(guān)系.
蘋果渣(40目),陜西省海升果業(yè)發(fā)展股份有限公司;葡萄糖、果糖、阿拉伯糖、巖藻糖、半乳糖、甘露糖、核糖、木糖、葡萄糖醛酸、甘露糖醛酸,上述單糖標(biāo)準(zhǔn)品購于西格瑪奧德里奇公司;氫氧化鈉(色譜純)、醋酸鈉(色譜純)購于于西格瑪奧德里奇公司;三氟乙酸(色譜純)、甲醇(色譜純)購于德國CNW科技公司;牛血清蛋白(標(biāo)準(zhǔn)品)購于上海阿拉丁生化科技股份有限公司;其他均為國產(chǎn)分析純試劑.
ICS5000離子色譜,Thermo Fisher Scientific有限公司;ELEOS System凝膠色譜儀,Wyatt有限公司; VECTOR-22傅里葉紅外光譜分析儀,德國Bruker公司;SPI3800N原子力顯微鏡,日本精工儀器公司;FD-ID-50冷凍干燥器,上海比朗儀器制造有限公司;Varioskan flash多功能酶標(biāo)儀,美國賽默飛世爾科技有限公司;CT15RT臺式冷凍離心機(jī),青島科易儀器有限公司.
1.3.1 酶解蘋果渣多糖的制備
工藝流程:蘋果渣→預(yù)處理→酶解→滅酶→過濾→濃縮→除蛋白→醇沉→抽濾→干燥→樣品
操作要點(diǎn):將4倍體積的蒸餾水加入除雜粉碎后AP中,常溫下攪拌30 min,過濾后所得濾渣用溫水沖洗兩遍,60 ℃干燥后過40目篩.稱預(yù)處理后原料AP 10.0 g,按料液比1∶20(g/mL)加入pH值為5.1的緩沖鹽溶液,添加復(fù)合酶(纖維素酶20 U/g;果膠酶80 U/g),置于44 ℃下,經(jīng)2 h溶脹后于轉(zhuǎn)速為100 r/min的恒溫振蕩水浴中5.5 h,然后樣品通過90 ℃水浴進(jìn)行10 min滅酶.然后過濾取上清液,將其濃縮至原體積的1/2,經(jīng)反復(fù)凍融三次除蛋白后,緩緩加入4倍體積的95%乙醇,攪勻,4 ℃靜置24 h進(jìn)行醇沉.離心得沉淀,用適量水溶解后透析48 h,后凍干得PEAP.同時(shí)設(shè)有不加酶、其他操作一致的對照實(shí)驗(yàn)組,得PAP.收率由公式(1)計(jì)算:
(1)
1.3.2 總多糖含量和總蛋白含量測定
總多糖含量采用苯酚-硫酸法測定;總蛋白含量采用考馬斯亮藍(lán)法測定.
1.3.3 傅里葉-紅外(FT-IR)光譜分析
稱取多糖樣品1 mg,按1∶150的比例將多糖樣品與溴化鉀共研混勻后壓制成片,掃描波長在4 000 cm-1~400 cm-1區(qū)間范圍內(nèi)的紅外譜圖.
1.3.4 分子量測定
采用凝膠色譜分析多糖樣品的分子量分布.將PAP與PEAP制成1 mg/mL樣品,過0.22 μm水膜,待測.色譜條件如下:色譜柱:串聯(lián)Shodex-OHpak SB-806HQ和SB-803HQ(300×8 mm,6 μm);流動(dòng)相:200 mg/L NaN3水溶液;流速:1 mL/min;柱溫:40 ℃;進(jìn)樣量:500 μL.
1.3.5 單糖組成分析
精確稱量多糖樣品5 mg(±0.05 mg)置于色譜瓶中,加入配置好的三氟乙酸溶液,121 ℃加熱2 h.通氮?dú)猓蹈?加入甲醇清洗,再吹干,重復(fù)甲醇清洗2~3次.加入無菌水溶解,轉(zhuǎn)入色譜瓶待測.采用高效陰離子交換色譜分析PAP與PEAP的單糖組成.色譜條件如下:色譜柱為DionexTMCarboPacTMPA200 (Thermo Fisher Scientific);檢測器:電化學(xué)檢測器/脈沖安培檢測器;流動(dòng)相:A相為超純H2O、B相為100 mM NaOH、C相為100 mM NaOH/200 mM NaAC;流速:0.5 mL/min;進(jìn)樣量:5 μL.
1.3.6 原子力顯微鏡(AFM)觀察
將待測樣品溶解在去離子水中配制成10 μg/mL溶液,并在室溫下輕輕攪拌4 h.將測試樣品滴在云母載體表面,室溫常壓下干燥.采用原子力顯微鏡儀器在常溫常壓下、標(biāo)準(zhǔn)氮化硅針尖接觸模式拍攝AFM圖像.
1.3.7 體外抗氧化活性
(1)羥基自由基(·OH)清除活性
采用改進(jìn)的Fenton反應(yīng)評價(jià)PAP與PEAP的·OH清除率[18],準(zhǔn)確吸取不同濃度樣品溶液1.0 mL、4.5 mmol/L FeSO4 1 mL、4.5 mmol/L 水楊酸-乙醇1 mL,混勻后加4.4 mmol/L H2O21 mL啟動(dòng)Fenton反應(yīng),以維生素C(vitamin C,Vc)為對照,37 ℃水浴30 min 后8 000 r/min 離心3 min,于510 nm下測定吸光度.·OH清除率由公式(2)計(jì)算:
(2)
式(2)中:As為樣品吸光值,As0為樣品本底吸光值,A0為空白對照吸光值.
(2)超氧陰離子(O2-·)清除能力
以Vc為對照,通過鄰苯三酚自氧化法測定O2-·清除能力.準(zhǔn)確吸取pH 7.3、0.1 mol/L Tris-HCl 緩沖液2.0 mL,0.1 mL不同濃度PAP與PEAP樣品(對照為0.1 mL蒸餾水),上述溶液混勻,25 ℃水浴20 min,立即加入預(yù)熱的25 ℃ 60 mmol/L鄰苯三酚 0.1 mL(采用10 mmol/L HCl 配制,空白對照為10 mmol/L HCl),快速搖勻,319 nm下每隔30 s測定吸光度,計(jì)算線性范圍內(nèi)每分鐘吸光度的增加值,然后計(jì)算清除率.O2-·清除率由公式 (3)計(jì)算:
(3)
式(3)中:ΔA0為鄰苯三酚自氧化速率,ΔA為加入樣品后鄰苯三酚的自氧化速率.
(3)1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH·)清除活性
DPPH·是一種穩(wěn)定的自由基化合物,在517 nm處具有最大吸收.它廣泛用于測定抗氧化劑清除自由基的能力.參照Zhao等[19]方法并加以改進(jìn).準(zhǔn)確吸取不同濃度PAP與PEAP樣品溶液1.0 mL,加入0.03 mg/mL DPPH 溶液4.5 mL,搖勻,37 ℃水浴30 min后,在517 nm 下測定吸光值.以Vc為對照.DPPH·清除率由公式(4)計(jì)算:
(4)
式(4)中:As為樣品吸光值,As0為樣品本底吸光值,A0為空白對照吸光值.
(4)ABTS+·自由基清除能力
取配制ABTS+·工作液,使其在734 nm下測定的吸光值保持在0.7±0.02.取80 μL不同濃度的PAP與PEAP溶液和4 mL ABTS+·工作液,震蕩混勻,在30 ℃水浴中反應(yīng)15 min,在734 nm下測吸光值A(chǔ)s.以Vc為陽性對照[20].ABTS+清除率由公式(5)計(jì)算:
(5)
式(5)中:As為樣品吸光值,As0為樣品本底吸光值,A0為空白對照吸光值.
樣品均平行測定3次,結(jié)果采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,使用SPSS22.0軟件進(jìn)行獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析.p<0.05為有顯著性差異,p<0.01為有極顯著性差異.
多糖的收率及含量組成結(jié)果如表1所示.PEAP的收率為16.17%,顯著高于PAP的收率(p<0.01).這是因?yàn)樵趶?fù)合酶中纖維素酶作用于細(xì)胞壁上的主要成分纖維素,使果渣結(jié)構(gòu)組織變得較疏松,親水性相對好些的果膠能夠更充分的與復(fù)合酶中果膠酶接觸并溶出,所以經(jīng)復(fù)合酶酶解后AP的多糖收率顯著提高.已有研究表明,復(fù)合酶處理后的刺梨果渣[15]和紅棗渣[21]中多糖的提取率同樣都有明顯提升.PEAP中總多糖含量為70.90%較PAP高4.47%,而兩者的總蛋白含量接近,PEAP為4.05%、PAP為3.90%,沒有顯著性差異.
表1 多糖收率及含量組成分析
PAP與PEAP的紅外特征吸收光譜如圖1所示.PAP的光譜吸收帶與PEAP基本一致.這與單糖分析一致的結(jié)果吻合.紅外譜圖的差異主要體現(xiàn)在官能團(tuán)的透射強(qiáng)度上,產(chǎn)生原因?yàn)椴煌瑔翁穷愋秃坎煌?最為典型的是在1 600 cm-1處的峰是酯羰基(COOR)和羧酸根離子拉伸振動(dòng)帶(COO-)[22],反應(yīng)的是多糖中的糖醛酸的含量,PEAP的透射率遠(yuǎn)高于PAP的透射率,說明PEAP中糖醛酸含量高于PAP中的糖醛酸含量.這點(diǎn)與單糖分析結(jié)果一致.PEAP與PAP紅外光譜峰的具體歸屬如下:在3 600~3 200 cm-1波數(shù)范圍內(nèi)的寬峰是O-H的拉伸振動(dòng),紅外光譜中約3 442.78 cm-1(PAP)和3 440.85 cm-1(PEAP)的譜帶強(qiáng)度是由于多糖的羥基伸縮振動(dòng)所致,而且它們的譜帶范圍很寬[23].2 941.31 cm-1(PAP)和2 939.38 cm-1(PEAP)是由C-H拉伸振動(dòng)引起的[24].1 600 cm-1處的峰是酯羰基(COOR)和羧酸根離子拉伸振動(dòng)帶(COO-).波數(shù)范圍1 419~1 200 cm-1的峰是由C-H的彎曲振動(dòng)引起的,1 150 cm-1、1 100 cm-1和1 020 cm-1的峰是半乳糖醛酸在多糖中的主要吸收區(qū)[25].PAP和PEAP分別在1143.74 cm-1、1 097.45 cm-1和1 020.3 cm-1和1 145.67 cm-1、1 101.3 cm-1和1 018.37 cm-1處出現(xiàn)強(qiáng)峰,表明PAP和PEAP富含醛酸.上述分析進(jìn)一步證實(shí)PAP和PEAP是富含糖醛酸的酸性多糖,這與單糖數(shù)據(jù)一致.
圖1 PAP與PEAP的FT-IR圖譜
PAP與PEAP分子量分布如表2所示.PAP的主Mw大于50 kda,其中200≥Mw≥50 kDa占PAP的93.9%,而PEAP的主Mw處于50≥Mw≥4 kDa區(qū)間,占EAPP的92.1%.研究表明,PAP的分子量大于PEAP的分子量,這歸因于纖維素酶與果膠酶復(fù)合酶解的作用.現(xiàn)有研究表明多糖分子量與其生物活性密切相關(guān)[26].分子量過大,分子的體積也大,阻礙其進(jìn)入生物體發(fā)揮活性,并且與分子量相關(guān)的特性黏度、溶解性及多糖分子的高級結(jié)構(gòu)的變化都可能影響多糖生物活性;但多糖分子過小時(shí),則可能無法形成有活性的空間結(jié)構(gòu)造成活性降低甚至消失.本研究中PAP與PEAP的分子量有著明顯的變化,可預(yù)見兩者在活性方面表現(xiàn)會不盡相同.
表2 PAP與PEAP的分子量分布
PAP與PEAP中單糖的保留時(shí)間與組成含量如表3所示.其中PEAP主體單糖組成類型與文獻(xiàn)報(bào)道一致[13];但兩者在具體的單糖含量存在差異,推斷是提取方法不同帶來的[27],如巖藻糖(PAP 3.61%,PEAP 0.71%)、鼠李糖(PAP 18.47%,PEAP 7.07%);含量差異最大的為半乳糖醛酸,PEAP的半乳糖醛酸含量為43.50%,較PAP的含量高出20.01%,分析其原因可能與果膠酶降解果膠導(dǎo)致果膠中有更多的半乳糖醛酸結(jié)構(gòu)暴露出來,最終提升了PEAP的半乳糖醛酸含量.現(xiàn)有研究證實(shí)單糖的類型或含量對多糖的活性產(chǎn)生影響[28],特別是糖醛酸結(jié)構(gòu),因其能改變多糖的性質(zhì)和溶解度,故一些富含糖醛酸的多糖表現(xiàn)出較高的活性.PAP與PEAP中糖醛酸含量的顯著差異決定有必要對兩者產(chǎn)生的活性進(jìn)行比較研究.
表3 PAP與PEAP的單糖保留時(shí)間與組成
PAP與PEAP的平面與立體AMF圖像如圖2所示.兩種果渣多糖AMF立體圖形貌都是凹凸不平、不均一,似山峰形狀的不規(guī)則的突起,對應(yīng)到平面圖像中則為球狀、不均一的團(tuán)塊,表明PAP與PEAP分子具有分支結(jié)構(gòu),在10 μg/mL濃度下,這些支鏈型結(jié)構(gòu)緊密地纏繞在一起形成聚集,從而形成圖象中的形貌[29,30].分子聚集可歸因于多糖側(cè)鏈上的羥基可以相互或與水分子形成強(qiáng)大的分子間和分子內(nèi)相互作用[31,32].對比PAP與PEAP的平面與立體AMF圖像,PEAP的圖像中有更多的團(tuán)塊和不規(guī)則突起,說明PEAP較PAP具有更多的支鏈性結(jié)構(gòu).
圖2 PAP與PEAP的平面與立體原子力顯微鏡圖
PAP與PEAP對·OH 、O2-·、DPPH·與ABTS+·自由基清除活性結(jié)果如圖3所示.多糖對上述四類自由基的清除活性均呈現(xiàn)出濃度依賴性,均表現(xiàn)出與濃度變化正相關(guān).對比2.0 mg/mL濃度下,PAP與PEAP對不同類型自由基的清除率,·OH清除率(如圖3(a)所示):PAP為22.78%,PEAP為33.98%,是前者的1.49倍;O2-·清除率(如圖3(b)所示):PAP為23.07%,PEAP為34.16%,是前者的1.48倍;DPPH·清除率(如圖3(c)所示):PAP為34.49%,PEAP為53.99%,是前者的1.57倍;ABTS+清除率(如圖3(d)所示):PAP為23.35%,PEAP為30.68%,是前者的1.31倍.
圖3 PAP與PEAP體外抗氧化性活性比較
由此可知,總體上PEAP相較于PAP具有更強(qiáng)的體外抗氧化活性.已有研究表明,多糖中單糖類型及含量影響多糖的生物活性[28],如醛酸含量被認(rèn)為與抗氧化活性相關(guān)[33].在本研究中,PAP的含量為22.99%,PEAP的半乳糖醛酸含量為43.50%,PEAP的半乳糖醛酸含量高出APP含量20.01%,PEAP相較于PAP具有更強(qiáng)的體外抗氧化活性,呈現(xiàn)出抗氧化活性與糖醛酸含量正相關(guān),與Su等[34]的研究結(jié)果一致.同時(shí),酶解作用使得PEAP比PAP分子量降低、支鏈結(jié)構(gòu)增多,故PEAP結(jié)構(gòu)中還原末端數(shù)量增多,且增加側(cè)鏈基團(tuán),也增加一定的親水基,有助于活性提高.因此,PEAP相較于PAP表現(xiàn)出更好的體外抗氧化活性,Qi等[35]與Liu等[36]也報(bào)道過同類的研究結(jié)果.
本文探討了酶解處理對蘋果渣中多糖的影響,對比研究PEAP與PAP,分析二者的理化特性,對比酶解前后的結(jié)構(gòu)變化,評價(jià)其抗氧化活性,并探討了結(jié)構(gòu)與抗氧化活性的關(guān)系.研究表明PAP與PEAP是酸性多糖,單糖組成類型一致,但具體的單糖組成含量存在差異,這其中,含量差異最大的為半乳糖醛酸,PEAP的半乳糖醛酸含量高出APP含量20.01%;PAP的分子量高于PEAP的分子量;APP與PEAP的紅外光譜吸收帶基本一致,這與單糖分析一致的結(jié)果吻合.通過評價(jià)APP與PEAP對·OH 、O2-·、DPPH·與ABTS+自由基清除活性,其結(jié)果表明PAP與PEAP的體外抗氧化活性均呈現(xiàn)出濃度依賴性,總體上PEAP相較于PAP具有更強(qiáng)的體外抗氧化活性,結(jié)合現(xiàn)有研究,推斷這可歸因于PAP與PEAP組成多糖的糖醛酸含量、分子量大小和分支結(jié)構(gòu)的差異,具體影響規(guī)律有待于進(jìn)一步研究.本研究說明不同提取方法會影響蘋果渣中多糖的結(jié)構(gòu)與活性,為蘋果渣及其活性多糖成分的提取及深入開發(fā)利用提供了理論依據(jù).