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    農(nóng)桿菌介導(dǎo)的山蒼子遺傳轉(zhuǎn)化體系的構(gòu)建

    2022-10-12 06:50:38王民炎俞文仙趙耘霄陳益存吳立文吳善群汪陽(yáng)東
    林業(yè)科學(xué)研究 2022年5期
    關(guān)鍵詞:潮霉素山蒼子頭孢

    王民炎,俞文仙,趙耘霄,陳益存,高 暝,吳立文,吳善群,汪陽(yáng)東*

    (1. 中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院亞熱帶林業(yè)研究所,浙江 杭州 311400;2. 南京林業(yè)大學(xué),江蘇 南京 210037;3. 杭州市富陽(yáng)區(qū)農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,浙江 杭州 311400;4. 福建省大田縣森林資源管理站,福建 大田 366100)

    山蒼子(Litsea cubeba(Lour) Pers.)為樟科(Lauraceae)木姜子屬(LitseaLam.)落葉灌木或小喬木,是我國(guó)重要的香料植物資源之一。其植物精油具有特殊的芳香氣味及抗菌、抗蟲(chóng)、抗氧化等多種特征,被廣泛用于香料、化妝品、醫(yī)藥行業(yè)[1-3]。隨著生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展及山蒼子基因組圖譜的完成,有助于解讀山蒼子中基因在各個(gè)組織、器官、個(gè)體在不同發(fā)育時(shí)期表達(dá)差異,全面理解基因分子生物學(xué)功能[4-5]。開(kāi)展山蒼子基因功能研究,將山蒼子中重要的功能基因?qū)氲缴缴n子植株中進(jìn)行表型鑒定和挖掘,已成為一種主要方法,其中組培再生體系和遺傳轉(zhuǎn)化體系的建立是重要研究?jī)?nèi)容。

    植物再生體系是遺傳轉(zhuǎn)化的基礎(chǔ),不同外植體再生能力有較大差異,尤其是木本植物生長(zhǎng)周期長(zhǎng)、再生困難,通過(guò)調(diào)整外源激素比例可提高其再生效率[6-9]。目前,有關(guān)山蒼子的腋芽器官離體再生和愈傷誘導(dǎo)研究已有一定的進(jìn)展[10-13],但由于遺傳轉(zhuǎn)化體系的缺乏,利用基因工程技術(shù)進(jìn)行山蒼子遺傳改良的研究尚未展開(kāi)。農(nóng)桿菌介導(dǎo)法是植物遺傳轉(zhuǎn)化采用最多的一種方法,具有成本低、操作簡(jiǎn)便、可重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn)。農(nóng)桿菌介導(dǎo)遺傳轉(zhuǎn)化法原理:植物受傷部位產(chǎn)生酚類(lèi)物質(zhì)(乙酰丁香酮等),在酚類(lèi)物質(zhì)誘導(dǎo)下農(nóng)桿菌聚集和vir誘導(dǎo)因子表達(dá),促進(jìn)T-DNA復(fù)合物產(chǎn)生,然后T-DNA復(fù)合物轉(zhuǎn)移并整合到植物細(xì)胞的基因組中[14-15]。遺傳轉(zhuǎn)化步驟主要包括農(nóng)桿菌液準(zhǔn)備、侵染和共培養(yǎng)、轉(zhuǎn)化組織的篩選和分化、轉(zhuǎn)化植株的檢測(cè)[16-19]。在篩選培養(yǎng)階段至少需要添加兩種抗生素進(jìn)行篩選,一種能抑制農(nóng)桿菌生長(zhǎng),另一種能殺死未轉(zhuǎn)化細(xì)胞并保留轉(zhuǎn)化成功的細(xì)胞。頭孢霉素能顯著抑制農(nóng)桿菌生長(zhǎng),對(duì)植物生長(zhǎng)影響較小,而潮霉素能顯著殺死未轉(zhuǎn)化的植物細(xì)胞組織,大幅降低假陽(yáng)性的產(chǎn)生,這兩種抗生素被廣泛應(yīng)用于植物的遺傳轉(zhuǎn)化[20-22]。然而,如抗生素濃度使用過(guò)度,會(huì)影響愈傷組織的正常生長(zhǎng)和分化,甚至造成已轉(zhuǎn)化成功愈傷組織的死亡,且不同植物對(duì)抗生素忍耐性不同[23]。因此,選擇合適的抗生素濃度能顯著提升遺傳轉(zhuǎn)化的效率。

    本研究以快繁的無(wú)菌組培苗為試驗(yàn)材料,進(jìn)一步優(yōu)化山蒼子組培再生過(guò)程,研究頭孢霉素和潮霉素對(duì)山蒼子再生的影響,初步建立山蒼子的遺傳轉(zhuǎn)化體系,為山蒼子種質(zhì)資源繁育及基因功能研究和遺傳改良提供技術(shù)支撐。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料與試劑

    本研究以‘安徽3號(hào)’優(yōu)株為山蒼子組培苗材料,采集杭州市富陽(yáng)區(qū)新沙島繁育基地的當(dāng)年生帶芽莖段為外植體,經(jīng)過(guò)消毒處理后在繼代培養(yǎng)基中誘導(dǎo)不定芽20~30 d左右,取不定芽更換至新的繼代培養(yǎng)基進(jìn)行增殖培養(yǎng),以繼代培養(yǎng)3~5 cm高的無(wú)菌苗進(jìn)行愈傷誘導(dǎo)及生根等試驗(yàn),具體消毒過(guò)程及苗繼代培養(yǎng)基的配方參照林麗媛等方法[24]。試驗(yàn)所需農(nóng)桿菌菌株采用LBA4404;載體為pCAMBIA1300-GFP,帶綠色熒光蛋白標(biāo)記(GFP)和潮霉素篩選標(biāo)記;MS固體培養(yǎng)基(M519);6-BA、IBA、TDZ、NAA、IAA先用1 mol ·L-1NaOH溶解加無(wú)菌水配制成1 mg·mL-1母液并4 ℃保存;卡那霉素、頭孢霉素、潮霉素用無(wú)菌水配制50 mg·mL-1母液并-20 ℃保存,乙酰丁香酮和利福平直接用二甲基亞砜溶解分別配制成200 mg·mL-1、20 mg·mL-1母液并-20 ℃保存。所有培養(yǎng)基pH調(diào)至5.8,除6-BA、IBA、TDZ、NAA激素外,其余激素和抗生素均滅菌冷卻至50 ℃左右加入。

    1.2 山蒼子再生體系的建立

    1.2.1 外源激素對(duì)愈傷組織分化的影響 將長(zhǎng)至3~5 cm高的幼嫩組培苗去掉葉片和芽并切成0.5 cm左右的莖段,用鑷子將莖段夾至愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基中(MS 4.43 g + 蔗糖30 g + 瓊脂粉7.5 g +6-BA 2.0 mg·L-1+ IBA 0.2 mg·L-1,pH 5.8),弱光培養(yǎng)3周,然后弱光繼代培養(yǎng)1周。在預(yù)實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,將繼代培養(yǎng)1周的愈傷組織接種至含有3種不同濃度的激素組合6-BA(0.1~2.0 mg·L-1)、IBA(0.01~0.10 mg·L-1)、TDZ(0.01~0.50 mg·L-1)MS培養(yǎng)基中光照培養(yǎng),觀察愈傷組織生長(zhǎng)和出芽情況。每個(gè)組合30個(gè)愈傷組織,進(jìn)行3次以上獨(dú)立重復(fù)試驗(yàn)。

    1.2.2 外源激素對(duì)組培苗生根的影響 將長(zhǎng)至3~5 cm高的幼嫩組培苗去掉基部的大部分愈傷組織,接種至含有3種不同濃度的激素組合NAA、6BA、IBA的1/2 MS培養(yǎng)基(1/2 MS 2.17 g + 蔗糖20 g,pH 5.8),光照培養(yǎng)并觀察苗狀態(tài)。

    1.3 抗生素濃度的選擇

    1.3.1 頭孢霉素對(duì)愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)的影響 將誘導(dǎo)0.5 cm左右的莖段接種至含有0、200、300、500 mg·L-1頭孢霉素的愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基中誘導(dǎo)愈傷組織,觀察愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)狀態(tài)。

    1.3.2 潮霉素對(duì)愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)的影響 將誘導(dǎo)0.5 cm左右的莖段和繼代培養(yǎng)1周后的愈傷組織分別接種至含有0、5、10、20、30、50 mg·L-1潮霉素的愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基和愈傷組織繼代培養(yǎng)基中,觀察愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)狀態(tài)。

    1.4 農(nóng)桿菌介導(dǎo)的山蒼子遺傳轉(zhuǎn)化

    1.4.1 農(nóng)桿菌菌液的制備 將目的載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌LBA4404中,2 d后挑單菌落接種于2 mL LB液體培養(yǎng)基中(含50 mg·L-1卡那霉素,20 mg·L-1利福平),28 ℃下200 r·min-1振蕩培養(yǎng)過(guò)夜,取1 mL轉(zhuǎn)移至100 mL含相同抗生素培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)10 h左右,至菌液OD值在0.5~0.8之間,3500 g離心5 min,用侵染液懸浮農(nóng)桿菌OD600至0.6~0.8左右(MS 2.22 g·L-1+ 20 g·L-1蔗糖 + 10 g·L-1葡萄糖 + 10 mmol ·L-1MES + 200 mg·L-1AS)。

    1.4.2 侵染及共培養(yǎng) 選取繼代培養(yǎng)1周長(zhǎng)勢(shì)良好且鮮嫩的愈傷組織放入侵染液中侵染30 min,用漏勺將侵染后的愈傷組織放至無(wú)菌濾紙吸干多余水分,接種至共培養(yǎng)基中(MS 4.43 g·L-1+ 30 g·L-1蔗糖 + 10 g·L-1葡萄糖 + 1 mg·L-16BA + 0.1 mg·L-1IBA + 0.5 mg·L-1TDZ + 200 mg·L-1AS),于22~25 ℃暗培養(yǎng)2~3 d。

    1.4.3 脫菌及篩選培養(yǎng) 將共培養(yǎng)好的愈傷放入無(wú)菌水中清洗3次,每次5 min,再用含300 mg·L-1頭孢霉素的無(wú)菌水清洗3次,每次5 min。放置無(wú)菌濾紙上完全干燥后,夾至篩選培養(yǎng)基中(MS4.43 g·L-1+ 30 g·L-1蔗糖 + 1 mg·L-16BA + 0.1 mg·L-1IBA + 300 mg·L-1頭孢霉素 + 5 mg·L-1潮霉素)。光照條件下篩選培養(yǎng)至剛好可見(jiàn)新的愈傷,然后不斷降低頭孢霉素濃度、增加潮霉素篩選濃度對(duì)抗性愈傷組織進(jìn)行篩選培養(yǎng),每15 d更換培養(yǎng)基。

    1.4.4 誘導(dǎo)抗性愈傷組織分化 將1~2 cm抗性愈傷組織接種至愈傷分化培養(yǎng)基中(MS 4.43 g·L-1+ 30 g·L-1蔗糖 + 2 mg·L-16BA + 0.01 mg·L-1IBA + 0.05 mg·L-1TDZ)誘導(dǎo)不定芽,將分化出的芽接種至含20 mg·L-1潮霉素的繼代培養(yǎng)基中,進(jìn)行擴(kuò)繁。

    1.5 轉(zhuǎn)基因植株的分子檢測(cè)

    1.5.1 PCR鑒定 提取3 cm以上抗性苗葉片DNA(共16株),設(shè)計(jì)3對(duì)引物進(jìn)行驗(yàn)證,第1對(duì)引物為插入基因片段,擴(kuò)增長(zhǎng)度為904 bp(21/MAD31-272 bp PF: ATGAATCTGTGCAGT GAAGAAGGAA和eGFP-79 bp PR: CGTCGCCG TCCAGCTCGACCAG);第2對(duì)引物為潮霉素基因片段,擴(kuò)增長(zhǎng)度為506 bp(PF: GCGTCTGCT GCTCCATACA和PR: TGACATTGGGGAGTTTA GCG);第3對(duì)引物為T(mén)-DNA插入?yún)^(qū)外的卡那霉素基因片段,擴(kuò)增片段長(zhǎng)度為443 bp(PF: ATG TTGCTGTCTCCCAGGTCG和CGGTATAAAGG GACCACCTATGA)。

    1.5.2 Southern Blot印跡雜交檢測(cè) DNA提取方法參考艾德萊公司試劑盒說(shuō)明書(shū),Southern雜交檢測(cè)流程如下:取轉(zhuǎn)化得到的抗性愈傷組織和未轉(zhuǎn)化野生型愈傷組織的DNA,各 10 ug,采用Hind III限制酶酶切回收后,按照羅氏公司Southern Blot雜交試劑盒說(shuō)明書(shū)DIG High Prime DNA Labeling and DetectionStarter Kit I,依次進(jìn)行DNA電泳分離和轉(zhuǎn)膜、使用地高辛標(biāo)記的潮霉素基因進(jìn)行雜交、洗膜和顯色、拍照等步驟。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 外源激素對(duì)山蒼子組培再生的影響

    2.1.1 外源激素對(duì)山蒼子愈傷組織分化的影響 誘導(dǎo)培養(yǎng)21 d的山蒼子愈傷組織置于6-BA、IBA、TDZ 3種不同激素配比培養(yǎng)基下培養(yǎng)。試驗(yàn)顯示:6-BA濃度在1.0~2.0 mg·L-1時(shí)的愈傷組織生長(zhǎng)狀態(tài)較好,且能保持持續(xù)分裂;IBA濃度在0.1 mg·L-1左右時(shí)有利于愈傷組織的增殖繼代,而在0.01 mg·L-1IBA低濃度時(shí)有利于愈傷組織的分化;TDZ有助于細(xì)胞生長(zhǎng)及分裂,在加入0.05~0.50 mg·L-1TDZ后,愈傷組織表現(xiàn)出持續(xù)生長(zhǎng)和分化,有效防止了褐化。外源激素組合為1.0 mg·L-16-BA +0.1 mg·L-1IBA + 0.5 mg·L-1TDZ有利于愈傷增殖繼代培養(yǎng), 愈傷組織僅在2.0 mg·L-16-BA + 0.01 mg·L-1IBA + 0.05 mg·L-1TDZ激素組合下出現(xiàn)分化,分化率在16.67%~36.67%之間(表1)。

    表1 外源激素對(duì)山蒼子愈傷組織分化的影響Table 1 Effects of exogenous hormones on callus differentiation in L. cubeba

    2.1.2 外源激素對(duì)山蒼子組培苗生根的影響 將長(zhǎng)至高3~5 cm的山蒼子無(wú)菌苗去除基部愈傷組織,置于不同濃度的NAA、IBA、IAA配比下進(jìn)行生根誘導(dǎo)。結(jié)果表明:NAA不能誘導(dǎo)苗生根,而IBA在適宜濃度下能誘導(dǎo)苗生根,但生根率較低,且基部有愈傷形成,阻礙了養(yǎng)分的運(yùn)輸及根的形成,導(dǎo)致葉片掉落,苗生長(zhǎng)狀態(tài)差。在培養(yǎng)基中僅添加IAA時(shí)植株生長(zhǎng)狀態(tài)較好,基部無(wú)愈傷組織形成,在0.5 mg·L-1IAA時(shí)生根率達(dá)97.33%(表2)。

    2.2 抗生素臨界濃度的選擇

    2.2.1 頭孢霉素對(duì)愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)的影響 頭孢霉素能抑制農(nóng)桿菌的生長(zhǎng),濃度范圍一般控制在200~500 mg·L-1,濃度低于200 mg·L-1不能有效抑制農(nóng)桿菌的生長(zhǎng),濃度高于500 mg·L-1時(shí)影響愈傷的生長(zhǎng)及分化。本試驗(yàn)在0、200、300、500 mg·L-1不同頭孢霉素濃度下誘導(dǎo)莖段愈傷,在濃度200~300 mg·L-1時(shí)愈傷組織顏色鮮綠保持正常,與不添加頭孢霉素保持一致。在濃度500 mg·L-1時(shí)愈傷組織顏色比正常愈傷更為深綠,出現(xiàn)老化狀態(tài)。因此,篩選培養(yǎng)前期選擇頭孢霉素濃度300 mg·L-1作為農(nóng)桿菌抑制濃度,后期應(yīng)不斷降低頭孢霉素濃度,防止對(duì)愈傷分化產(chǎn)生影響(表3)。

    表3 不同濃度頭孢霉素對(duì)愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)的影響Table 3 Effects of different concentrations of cefotaxime on callus induction and growth

    2.2.2 潮霉素對(duì)愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)的影響 潮霉素對(duì)愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)影響較大,潮霉素濃度在5 mg·L-1時(shí),能很大程度地誘導(dǎo)愈傷組織,但愈傷組織整體狀態(tài)差且誘導(dǎo)培養(yǎng)3周后愈傷組織全部褐化;隨著潮霉素濃度的增加,其濃度10 mg·L-1時(shí)已不能誘導(dǎo)愈傷組織(表4)。將繼代培養(yǎng)1周后的愈傷組織在含潮霉素培養(yǎng)基中培養(yǎng)3周,隨著潮霉素濃度的增加愈傷組織死亡越多,10 mg·L-1濃度下愈傷組織出現(xiàn)大面積褐化死亡,濃度30 mg·L-1的愈傷組織表面已無(wú)可見(jiàn)愈傷。因此,綜合考慮遺傳轉(zhuǎn)化過(guò)程中多步驟操作及農(nóng)桿菌對(duì)愈傷的影響,以潮霉素濃度5 mg·L-1為第1次篩選濃度,持續(xù)時(shí)間為7~10 d,潮霉素濃度20~30 mg·L-1作為愈傷組織臨界篩選濃度,持續(xù)時(shí)間應(yīng)不短于2個(gè)月。

    表4 潮霉素對(duì)山蒼子愈傷組織誘導(dǎo)及生長(zhǎng)的影響Table 4 Effects of hygromycin on callus induction and growth of L. cubeba

    2.3 農(nóng)桿菌介導(dǎo)的山蒼子遺傳轉(zhuǎn)化及轉(zhuǎn)基因植株的分子檢測(cè)

    山蒼子農(nóng)桿菌遺傳轉(zhuǎn)化流程見(jiàn)圖1。首先在光照條件下誘導(dǎo)愈傷組織約21 d,并繼代培養(yǎng)7~10 d,然后采用農(nóng)桿菌侵染繼代培養(yǎng)后的愈傷組織30 min,放置于無(wú)菌濾紙上超凈臺(tái)吹干至愈傷組織表面無(wú)水分;將侵染后愈傷組織轉(zhuǎn)移至共培養(yǎng)基黑暗共培養(yǎng)2~3 d至剛好肉眼可見(jiàn)農(nóng)桿菌,立即用頭孢霉素清洗愈傷組織并吹干,此處應(yīng)完全吹干至愈傷組織表面發(fā)白為止,防止農(nóng)桿菌污染;轉(zhuǎn)移愈傷組織至含5 mg·L-1潮霉素篩選培養(yǎng)基初步篩選抗性愈傷組織30 d左右,再將愈傷組織轉(zhuǎn)移至含30 mg·L-1潮霉素進(jìn)行繼代培養(yǎng)約60 d;最后將新長(zhǎng)出的抗性愈傷組織在10 mg·L-1潮霉素下進(jìn)行抗性愈傷組織分化約30~60 d,并將誘導(dǎo)出的芽繼代培養(yǎng)約60~90 d。從農(nóng)桿菌侵染愈傷組織至產(chǎn)生抗性幼苗需要約7~9個(gè)月時(shí)間。

    圖1 農(nóng)桿菌介導(dǎo)的山蒼子遺傳轉(zhuǎn)化流程Fig. 1 Agrobacterium mediated genetic transformation process of L. cubeba

    陽(yáng)性苗的驗(yàn)證首先采用PCR檢測(cè)目的基因的方法,共檢測(cè)了16株抗性幼苗,利用第1對(duì)和第2對(duì)引物均擴(kuò)增出目的條帶,送北京擎科生物科技有限公司測(cè)序拼接后,與插入基因和載體的序列比對(duì)完全正確和無(wú)移碼突變,表明目的基因已插入山蒼子基因組中(圖2)。且通過(guò)第3對(duì)引物擴(kuò)增未擴(kuò)增出條帶,說(shuō)明沒(méi)有農(nóng)桿菌質(zhì)粒的干擾,排除了假陽(yáng)性的存在(圖2)。共計(jì)轉(zhuǎn)化了300個(gè)左右愈傷組織,得到約80個(gè)抗性愈傷,共2個(gè)愈傷分化,得到38株幼苗,轉(zhuǎn)化率為0.67%。

    圖2 轉(zhuǎn)基因幼苗的PCR鑒定Fig. 2 PCR identification of transgenic plants

    PCR結(jié)果主要是利用特異性引物的聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng),可能存在一定的假陽(yáng)性。而Southern雜交法是當(dāng)前鑒定外源基因整合及表達(dá)的權(quán)威方法,具有靈敏性高、特異性強(qiáng)、假陽(yáng)性低的優(yōu)點(diǎn)。因此,通過(guò)Southern雜交試驗(yàn)進(jìn)一步驗(yàn)證目的基因是否插入山蒼子基因組中。結(jié)果表明,轉(zhuǎn)化的抗性愈傷組織中有陽(yáng)性條帶,外源基因已插入山蒼子基因組中(圖3)。

    圖3 轉(zhuǎn)基因愈傷組織Southern鑒定Fig. 3 Southern identification of transgenic callus

    3 討論

    3.1 高效穩(wěn)定的山蒼子組培再生體系

    山蒼子育種主要以提高果實(shí)產(chǎn)量及其品質(zhì)為目標(biāo),利用遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù)能將外源目的基因?qū)肷缴n子中進(jìn)行遺傳改良,有助于提高果實(shí)產(chǎn)量和品質(zhì),創(chuàng)制新的優(yōu)良種質(zhì)資源。山蒼子全基因組測(cè)序的完成,對(duì)全面解析和利用山蒼子基因分子生物學(xué)功能具有重要意義[4]。目前山蒼子轉(zhuǎn)基因體系尚未建立,高效穩(wěn)定的離體再生體系又是影響遺傳轉(zhuǎn)化成功的一個(gè)重要因素。已有文獻(xiàn)報(bào)道中愈傷分化率較低,易出現(xiàn)褐化現(xiàn)象且不穩(wěn)定,不利于開(kāi)展山蒼子基因功能的研究[24]。因此,本研究?jī)?yōu)化了莖段組織離體再生過(guò)程并初步建立山蒼子遺傳轉(zhuǎn)化流程。

    不同植物再生效率具有較大差異,可通過(guò)調(diào)整激素的種類(lèi)及配比促進(jìn)植株再生[25-26]。細(xì)胞分裂素能增強(qiáng)細(xì)胞的分裂與膨大,生長(zhǎng)素促使細(xì)胞的伸長(zhǎng),當(dāng)細(xì)胞分裂素/生長(zhǎng)素比例較高時(shí)能促進(jìn)芽的分化,比例適中有利于愈傷組織的誘導(dǎo)與苗的生長(zhǎng),比例較低時(shí)促進(jìn)根的生長(zhǎng)[27-29]。先前研究表明,山蒼子愈傷組織誘導(dǎo)最適激素比例6-BA∶IBA為20∶1[24]。本試驗(yàn)結(jié)果中也得到證實(shí),6-BA濃度低于1.0 mg·L-1時(shí)愈傷組織生長(zhǎng)較差,6-BA∶IBA比例在10∶1至20∶1時(shí)能誘導(dǎo)愈傷組織且正常生長(zhǎng)繁殖。當(dāng)降低IBA濃度使細(xì)胞分裂素/生長(zhǎng)素比例達(dá)到200∶1時(shí)愈傷組織開(kāi)始分化形成不定芽,而低于此比例愈傷不分化。因此,山蒼子愈傷組織誘導(dǎo)生長(zhǎng)培養(yǎng)基6-BA濃度采用2.0 mg·L-1,IBA濃度采用0.1 mg·L-1,在愈傷分化階段應(yīng)提高6-BA∶IBA的比值,采用2.0 mg·L-16BA和0.01 mg·L-1IBA濃度。TDZ是一種多功能性人工合成的植物類(lèi)激素,能誘導(dǎo)芽和愈傷組織的形成與增殖,促進(jìn)體細(xì)胞胚的發(fā)生,降低褐化,被廣泛應(yīng)用于木本植物組織培養(yǎng)[30-31]。山蒼子愈傷組織分化較困難,長(zhǎng)期培養(yǎng)易出現(xiàn)褐化現(xiàn)象。先前山蒼子組織培養(yǎng)過(guò)程中發(fā)現(xiàn),僅添加6-BA和IBA的激素組合,愈傷組織不能保持持續(xù)的增殖繼代,而本研究中添加0.05~0.50 mg·L-1濃度范圍的TDZ后能有效地保存愈傷組織的繼代繁殖能力,褐化現(xiàn)象降低。同時(shí),只有在TDZ存在時(shí),愈傷組織才能分化出不定芽,表明TDZ是一種對(duì)山蒼子高效再生的激素,在遺傳轉(zhuǎn)化過(guò)程中發(fā)揮重要作用。

    不定芽生根是組培再生過(guò)程形成完整植株的重要步驟,發(fā)達(dá)粗壯的根系有利于幼苗的移栽成活和植株的生長(zhǎng)。細(xì)胞分裂素能抑制植株生根,而生長(zhǎng)素有利于植株生根[32-34]。已有山蒼子組培生根文獻(xiàn)報(bào)道中,NAA、IBA、IAA 3種生長(zhǎng)激素不同組合均能誘導(dǎo)生根,但生根過(guò)程中植株下部葉片脫落,基部有愈傷形成,根數(shù)量少且形成一個(gè)長(zhǎng)的主根,移栽成活率低[11-12,35-36]。本研究3種激素試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),IAA有助于山蒼子不定芽生根,單獨(dú)添加IAA誘導(dǎo)生根率達(dá)97.33%,且較少有葉片的衰老掉落現(xiàn)象。這可能是誘導(dǎo)生根過(guò)程中,在不定芽底部產(chǎn)生傷口后,添加高活性生長(zhǎng)素NAA、IBA誘導(dǎo)了愈傷組織形成,阻礙整個(gè)植株吸收培養(yǎng)基養(yǎng)分,表現(xiàn)出葉片掉落,甚至出現(xiàn)植株死亡的現(xiàn)象(活性NAA>IBA>IAA)。試驗(yàn)中基本無(wú)側(cè)根產(chǎn)生,但移栽穴盆1個(gè)月后能產(chǎn)生大量的側(cè)根,形成發(fā)達(dá)的根系。原因可能是植物具有適應(yīng)環(huán)境的能力,培養(yǎng)基中營(yíng)養(yǎng)成分比在土壤中更易吸收,不需要產(chǎn)生更多的側(cè)根吸收營(yíng)養(yǎng)來(lái)保證植株的正常生長(zhǎng)發(fā)育,或由于培養(yǎng)基中某種元素成分相對(duì)豐富抑制了側(cè)根的發(fā)育,具體原因有待研究。同時(shí)存在誘導(dǎo)生根過(guò)程中過(guò)小的苗大部分死亡,過(guò)大組培苗也不能誘導(dǎo)生根的現(xiàn)象,且移栽成活率不高。因此,應(yīng)充分考慮植株大小、生根時(shí)間和移栽過(guò)程,提高植株存活率。

    3.2 山蒼子遺傳轉(zhuǎn)化體系的建立

    遺傳轉(zhuǎn)化過(guò)程中抗生素臨界濃度的選擇十分重要??股貪舛冗^(guò)高不利于愈傷組織的分化及芽的正常生長(zhǎng),過(guò)低不能有效篩選出抗性植株。頭孢霉素對(duì)農(nóng)桿菌抑制范圍一般選擇在200~500 mg·L-1[37-39]。本試驗(yàn)中,發(fā)現(xiàn)頭孢霉素濃度在500 mg·L-1時(shí)愈傷組織顏色較深綠,成熟過(guò)早不利于愈傷的分化。200~300 mg·L-1濃度范圍愈傷組織與不添加頭孢霉素?zé)o顯著性差異,因此選擇頭孢霉素濃度300 mg·L-1作為農(nóng)桿菌臨界濃度,但后期步驟中應(yīng)不斷降低濃度,減少頭孢霉素對(duì)愈傷分化增殖的影響。

    潮霉素能顯著抑制非轉(zhuǎn)化植株的生長(zhǎng),假陽(yáng)性低,被廣泛應(yīng)用于遺傳轉(zhuǎn)化體系中,且隨轉(zhuǎn)化過(guò)程不斷調(diào)整抗生素濃度,以達(dá)到最佳轉(zhuǎn)化目的。大多數(shù)文獻(xiàn)報(bào)道中,一般采用先高后低的原則,即先使用高濃度潮霉素最大程度地殺死非轉(zhuǎn)化細(xì)胞,降低后期篩選的工作量,保證極少的嵌合體存在。而后因潮霉素不斷累積毒害作用,應(yīng)適當(dāng)降低潮霉素濃度,保證愈傷分化及芽的生長(zhǎng)[40-43]。本試驗(yàn)前期預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),在篩選培養(yǎng)初期階段,由于采用高濃度的潮霉素和農(nóng)桿菌對(duì)愈傷的雙重毒害,愈傷褐化嚴(yán)重,并局部出現(xiàn)潰爛現(xiàn)象,轉(zhuǎn)化的愈傷已不能存活。因此,在高濃度潮霉素篩選前,先采用5 mg·L-1低濃度潮霉素預(yù)篩選7~10 d左右,保證已轉(zhuǎn)化愈傷的正常生長(zhǎng),再使用30 mg·L-1高濃度潮霉素進(jìn)行篩選,愈傷20~30 d后有抗性愈傷的產(chǎn)生。

    在遺傳轉(zhuǎn)化過(guò)程中,外源基因?qū)胫参锛?xì)胞的頻率較低,通常只有小部分細(xì)胞獲得了外源DNA,而目的整合到基因組并實(shí)現(xiàn)表達(dá)的轉(zhuǎn)化細(xì)胞則更少。必須采用多種方法反復(fù)印證,才能精確篩選和鑒定出轉(zhuǎn)基因植株,包括基因組、轉(zhuǎn)錄、翻譯水平上的檢測(cè)。PCR檢測(cè)具有方便快速、需求更少樣本進(jìn)行轉(zhuǎn)基因植株驗(yàn)證的優(yōu)點(diǎn)。本試驗(yàn)前期采用PCR方法對(duì)插入片段進(jìn)行檢測(cè),較準(zhǔn)確地篩選出陽(yáng)性植株且測(cè)序驗(yàn)證,并大概率排除了農(nóng)桿菌殘留的污染。但PCR檢測(cè)仍可能存在假陽(yáng)性,某些未轉(zhuǎn)化植株操作在DNA提取過(guò)程中的污染也能擴(kuò)增出相應(yīng)的片段。Southern雜交法是進(jìn)行核酸序列分析、重組子鑒定及檢測(cè)外源基因整合表達(dá)的有力手段,具有靈敏性高、特異性強(qiáng)的特點(diǎn),可清除操作過(guò)程中的污染以及轉(zhuǎn)化愈傷組織中質(zhì)粒殘留所引起的假陽(yáng)性信號(hào)[44-45]。本研究中,通過(guò)Southern雜交方法檢測(cè)到陽(yáng)性條帶,證實(shí)了目的基因已插入山蒼子基因組中。山蒼子是一種次生代謝產(chǎn)物豐富的木本油料植物,在遺傳轉(zhuǎn)化過(guò)程中極易產(chǎn)生褐化導(dǎo)致遺傳轉(zhuǎn)化困難,轉(zhuǎn)化效率較低。因此,后續(xù)將進(jìn)一步提高農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化效率,如侵染農(nóng)桿菌菌液濃度、時(shí)間、共培養(yǎng)時(shí)間及AS濃度的條件優(yōu)化,尤其在遺傳轉(zhuǎn)化過(guò)程中減少愈傷組織褐化方面進(jìn)行重點(diǎn)研究。

    4 結(jié)論

    植物組培再生體系和遺傳轉(zhuǎn)化體系是培育優(yōu)良種質(zhì)資源的重要基礎(chǔ)。本研究?jī)?yōu)化了山蒼子組培再生體系,愈傷分化率為16.67%~36.67%,生根率為97.33%。對(duì)農(nóng)桿菌介導(dǎo)的山蒼子遺傳轉(zhuǎn)化體系進(jìn)行初步研究,確定了遺傳轉(zhuǎn)化過(guò)程中最適頭孢霉素和潮霉素濃度,且已成功將目的基因?qū)肷缴n子基因組中,初步建立山蒼子遺傳轉(zhuǎn)化體系,為進(jìn)一步開(kāi)展基因功能研究及遺傳改良提供了技術(shù)支持。

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