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    超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時測定動物源性食品中46 種食源性興奮劑殘留量

    2022-08-02 03:11:14張海超張婧雯艾連峰黃雪靜
    食品科學(xué) 2022年14期
    關(guān)鍵詞:食源性興奮劑乙腈

    張海超,王 敬,洪 燈,張婧雯,田 浩,*,艾連峰,黃雪靜

    (1.石家莊海關(guān)技術(shù)中心,河北 石家莊 050051;2.杭州海關(guān)技術(shù)中心,浙江 杭州 310000)

    近年來在畜牧養(yǎng)殖生產(chǎn)中,由于各種飼料添加劑和人工激素的廣泛使用導(dǎo)致畜禽肉制品中產(chǎn)生獸藥殘留的現(xiàn)象屢見不鮮。每年國家食品安全監(jiān)督抽查中β-受體激動劑、糖皮質(zhì)激素、蛋白同化劑等藥物殘留常被檢出,也成為動物源性食品的重點監(jiān)控項目[1]。殘留的這些藥物也給體育賽事造成食源性興奮劑的困擾[2]。我國發(fā)布了《冬奧會食品安全食品動物食源性興奮劑類藥品控制管理規(guī)范》,該規(guī)范包含40余項動物食源性興奮劑,有激動劑、蛋白同化劑、糖皮質(zhì)激素和利尿劑等。針對每一種或每一類化合物進行分析耗時較長、浪費人力物力,因此,研究多種食源性興奮劑的快速篩查方法對于檢測效率、快速準(zhǔn)確出具監(jiān)測數(shù)據(jù)顯得尤為重要。

    目前,針對食品中這些興奮劑的檢測方法有氣相色譜-質(zhì)譜[3]、液相色譜[4-6]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(liquid chromatography-tandem mass spectrometry,LC-MS/MS)[7-16]和液相色譜-高分辨質(zhì)譜[17-19]等。但針對這些化合物同時檢測的技術(shù)研究卻很少,難以滿足重大體育賽事對于時效性的要求。齊鶴鳴等[20]采用LC-MS/MS測定牛肉中18 種興奮劑殘留,包括β-受體激動劑、類固醇激素、糖皮質(zhì)激素和玉米赤霉醇。該方法雖然針對多種食源性興奮劑進行檢測,但是覆蓋面較窄,無法滿足冬奧會監(jiān)管項目要求。馬俊美等[21]采用四極桿/飛行時間質(zhì)譜測定牛肉中16 種蛋白同化制劑、8 種利尿劑、6 種糖皮質(zhì)激素共30 種食源性興奮劑。該方法簡便、快速,但四極桿/飛行時間質(zhì)譜這種高分辨質(zhì)譜價格昂貴,大部分實驗室仍未普及,LC-MS/MS儀仍是當(dāng)前檢測機構(gòu)的主流檢測手段,現(xiàn)行有效檢測標(biāo)準(zhǔn)方法也大多采用LC-MS/MS法[22-24]。且由于動物源性食品含有較多的蛋白、脂肪和磷脂,為保證數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性,減少對色譜柱和儀器的污染,需要對其進行凈化處理。近年來在多種獸藥快速分析中多采用PRiME HLB固相萃取柱[25-28]和QuEChERS法[29-32]凈化。為使方法普適性更強,能夠為大多數(shù)實驗室使用,本研究針對冬奧會指定檢測項目對PRiME HLB固相萃取和QuEChERS法的凈化效果進行比較,采用LC-MS/MS儀建立動物源性品中10 種β-受體激動劑、3 種β-受體阻斷劑、13 種蛋白同化劑、9 種糖皮質(zhì)激素、11 種利尿劑共計46 種食源性興奮劑的檢測技術(shù)。方法操作簡便、快速,為多種食源性興奮劑的測定提供了技術(shù)參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    5 種動物源食品樣品(豬肉、牛肉、羊肉、雞蛋和牛奶)隨機購買于河北石家莊當(dāng)?shù)剞r(nóng)貿(mào)市場。乙腈、甲醇(均為色譜純) 德國Merck公司;甲酸(色譜純)德國Fluka公司;乙酸、乙酸鈉、氯化鈉(均為分析純)廣州化學(xué)試劑廠;高純水 美國Millipore公司。

    克倫特羅(CAS號:37148-27-9)、沙丁胺醇(CAS號:18559-94-9)、萊克多巴胺(CAS號:97825-25-7)、特布他林(CAS號:23031-25-6)、氯丙那林(CAS號:3811-25-4)、非諾特羅(CAS號:13392-18-2)、妥布特羅(CAS號:41570-61-0)、噴布特羅(CAS號:36507-48-9)、西馬特羅(CAS號:54239-37-1)、普萘洛爾(CAS號:525-66-6)、阿替洛爾(CAS號:29122-68-7)、美托洛爾(CAS號:37350-58-6)、克倫丙羅(CAS號:38339-11-6)、美雄酮(CAS號:72-63-9)、司坦唑醇(CAS號:10418-03-8)、甲基睪酮(CAS號:58-18-4)、丙酸睪酮(CAS號:57-85-2)、諾龍(CAS號:434-22-0)、丙酸諾龍(CAS號:7207-92-3)、苯丙酸諾龍(CAS號:62-90-8)、勃地酮(CAS號:846-48-0)、群勃龍(CAS號:10161-33-8)、睪酮(CAS號:58-22-0)、去氫表睪酮(CAS號:53-43-0)、澤倫諾(CAS號:26538-44-3)、齊帕特羅(CAS號:117827-79-9)、潑尼松(CAS號:53-03-2)、潑尼松龍(CAS號:50-24-8)、地塞米松(CAS號: 50-02-2)、倍他米松(CAS號:378-44-9)、氟氫可的松(CAS號:37148-27-9)、甲基潑尼松龍(CAS號:83-43-2)、倍氯米松(CAS號:4419-39-0)、氫化可的松(CAS號:50-23-7)、可的松(CAS號:53-06-5)、乙酰唑胺(CAS號:59-66-5)、坎利酮(CAS號:976-71-6)、氯噻酮(CAS號:77-36-1)、呋塞米(CAS號:54-31-9)、螺內(nèi)酯(CAS號:52-01-7)、芐氟噻嗪(CAS號:73-48-3)、氯噻嗪(CAS號:58-94-6)、氫氯噻嗪(CAS號:58-93-5)、氨苯蝶啶(CAS號:396-01-0)、精磺胺(CAS號:121-30-2)、托拉塞米(CAS號:56211-4-6),純度均大于等于95%,均為First Standard標(biāo)準(zhǔn)品,購于天津阿爾塔科技有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    8050超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(ultra-high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry,UPLC-MS/MS)儀 日本Shimadzu公司;3K-15型離心機 美國Sigma公司;PT2100型均質(zhì)器瑞士Kinematica公司;N-EVAP112氮吹儀 美國Organomation公司;渦旋混合器 美國Scientific Industries公司;Milli-Q純化系統(tǒng) 美國Millipore公司;ACQUITY UPLC BEH C18色譜柱(2.1 mmh100 mm,1.7 μm)、Oasis PRiME HLB固相萃取柱(200 mg,6 mL) 美國Waters公司;C18、中性氧化鋁分散固相粉末 上海安譜實驗科技股份有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制

    準(zhǔn)確稱取適量各化合物標(biāo)準(zhǔn)品,用甲醇溶解,配制質(zhì)量濃度約為100 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,于-18 ℃保存,有效期6 個月。移取各化合物標(biāo)準(zhǔn)儲備液1 mL,用甲醇溶解,配制質(zhì)量濃度為1.0 μg/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)中間液,于4 ℃避光保存,有效期2 個星期。在實驗過程中根據(jù)需要精確吸取適量標(biāo)準(zhǔn)溶液用甲醇-水(1∶1,V/V)稀釋成所需質(zhì)量濃度。

    1.3.2 樣品前處理

    準(zhǔn)確稱取5 g樣品(精確到0.01 g)于50 mL塑料離心管中,加入0.2 mol/L乙酸鈉溶液(pH 5.2)8 mL,再加入β-鹽酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶溶液50 μL,渦旋混勻,于37 ℃下恒溫水浴16 h。樣品酶解后冷卻至室溫加入20 mL乙腈、5 g氯化鈉,均質(zhì)1 min,10 000 r/min離心5 min。移取10 mL乙腈層至另一離心管中,加入10 mL乙腈飽和正己烷,渦旋振蕩1 min后棄去正己烷層,再加入10 mL乙腈飽和正己烷重復(fù)操作1 次。取上清液約6 mL置于50 mg C18和300 mg中性氧化鋁的另一離心管中,渦旋振蕩2 min,10 000 r/min離心5 min。準(zhǔn)確移取5 mL上清液于10 mL離心管中,40 ℃氮吹至干,用1 mL體積分?jǐn)?shù)50%甲醇溶液溶解殘渣。經(jīng)0.22 μm濾膜過濾,用UPLCMS/MS儀測定。

    1.3.3 色譜條件

    Waters ACQUITY UPLC BEH C18色譜柱(2.1 mmh100 mm,1.7 μm);流動相:0.005%甲酸溶液(A)和甲醇(B);流速0.4 mL/min;柱溫35 ℃;進樣量5 μL;梯度洗脫程序:0~1.0 min,95% A、5% B;1.0~8.0 min,95%~10% A、5%~90% B;8.0~9.0 min,10% A、90% B;9.0~9.5 min,10%~5% A、90%~95% B;9.5~11.0 min,5% A、95% B;11.0~11.1 min,5%~95% A、95%~5% B;11.1~13.0 min,95% A、5% B。

    地塞米松或倍他米松檢測條件:流動相:水(A)和乙腈(B);流速0.4 mL/min;柱溫35 ℃;進樣量5 μL;梯度洗脫程序:0~0.5 min,80%~70% A、20%~30% B;0.5~4.5 min,70% A、30% B;4.5~6.0 min,70%~10% A、30%~90% B;6.0~8.0 min,10% A、90% B;8.0~8.1 min,10%~80% A、90%~20% B;8.1~10.0 min,80% A、20% B。

    1.3.4 質(zhì)譜條件

    電噴霧電離源(electro-spray ionization,ESI),正、負(fù)離子模式,采用多反應(yīng)監(jiān)測模式正負(fù)同時掃描。離子源溫度350 ℃,毛細(xì)管溫度250 ℃,加熱模塊溫度350 ℃,氮氣流速3.0 L/min,干燥氣流速10.0 L/min,加熱氣流速10.0 L/min。

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    所有數(shù)據(jù)均用Labsolution 5.86軟件(日本Shimadzu公司)采集,采用Postrun Analysis軟件進行定性分析,采用Quant Browser軟件進行定量分析;采用WPS Office軟件對實驗數(shù)據(jù)進行柱狀圖繪制。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 提取溶劑的選擇

    樣品制備是藥物多殘留分析中的一個關(guān)鍵步驟,旨在同時從基質(zhì)中提取出所有具有不同理化性質(zhì)的分析物,有效消除基質(zhì)干擾,提高方法的靈敏度和穩(wěn)健性。β-受體激動劑類藥物極性范圍在極性至中等極性之間,以極性化合物為主的弱堿性化合物;蛋白同化激素在弱極性或中等極性的溶劑中有良好的溶解性;糖皮質(zhì)激素疏水性較強;利尿劑大多同時含有酸性和堿性基團,性質(zhì)差異較大。本實驗在參考文獻(xiàn)基礎(chǔ)上,通過待測物加標(biāo)回收率考察乙腈、乙酸乙酯的提取效果。乙酸乙酯回收率為42%~121%,乙腈回收率為75%~108%。相比,乙腈作為提取溶劑較為合適。

    2.2 凈化條件的優(yōu)化

    對PRiME HLB固相萃取柱和QuEChERS兩種凈化方式進行比較。PRiME HLB固相萃取柱不需要活化、平衡等步驟,可將提取液直接過柱達(dá)到凈化目的。本實驗發(fā)現(xiàn),采用該種凈化方式對司坦唑醇、丙酸睪酮、苯丙酸諾龍、丙酸諾龍保留性強,回收率只有20%~55%,其余化合物回收率為70.2%~116.5%。再經(jīng)后續(xù)乙腈洗脫,這4 種化合物的回收率可提高至50%~80%,但洗脫液顏色加深,分析原因為部分蛋白同化劑類化合物極性較弱,易同磷脂、蛋白等一起保留在凈化柱上,加大洗脫體積,連同雜質(zhì)目標(biāo)物洗脫出固相萃取柱,導(dǎo)致凈化效果較差。QuEChERS前處理方法具有快速、簡單、廉價、有效、可靠、安全等特點,常用的凈化劑有N-丙基乙二胺、十八烷基硅烷(C18)、石墨化炭黑、中性氧化鋁等。動物源食品多含有蛋白、磷脂的基質(zhì)特點,實驗考察不同配比C18和中性氧化鋁的凈化效果。取5 mL提取液,固定加入100 mg中性氧化鋁,分別比較C18添加量為10、30、50、70 mg的回收率,發(fā)現(xiàn)C18添加量50 mg時46 種化合物的回收率最高;固定加入50 mg C18,分別比較中性氧化鋁添加量為100、300、500 mg的回收率,發(fā)現(xiàn)中性氧化鋁添加量300 mg時46 種化合物的回收率最高。因此,實驗最終選擇提取液加入50 mg C18和300 mg中性氧化鋁作為組合凈化劑,可以獲得良好的凈化效果,基質(zhì)干擾小,且不會對目標(biāo)物產(chǎn)生明顯吸附。

    2.3 色譜條件的優(yōu)化

    本實驗所測化合物性質(zhì)差異較大,且含有3 對同分異構(gòu)體,坎利酮和螺內(nèi)酯、地塞米松和倍他米松、潑尼松龍和可的松。這3 對化合物具有相同的前體和產(chǎn)物離子,若要準(zhǔn)確定量這些化合物,色譜峰需有一定程度的分離。因此,實驗對色譜參數(shù)如流動相梯度條件、流動相成分進行測試,以實現(xiàn)目標(biāo)化合物的最佳色譜分離以及各化合物的良好峰形和最佳響應(yīng)。實驗考察首先考察甲醇、乙腈、0.1%甲酸溶液、水作為流動相,采用不同梯度在ACQUITY BEH C18色譜柱(100 mmh2.1 mm,1.7 μm)上進行分離,結(jié)果顯示,無論在乙腈-水還是甲醇-水條件下,潑尼松龍和可的松均可達(dá)到分離,但采用甲醇不能分離地塞米松和倍他米松,在乙腈條件下坎利酮和螺內(nèi)酯分離度也很差,需要運行36 min才能徹底分離,并且峰形較寬。綜合其他化合物,在乙腈-水條件下西馬特羅、特布他林、齊帕特羅峰溶劑效應(yīng)較強,峰提前流出,司坦唑醇峰形較差。在甲醇-水條件下,除司坦唑醇峰形較差外,各化合物在色譜柱上保留、峰形均較好。與乙腈-水體系相比,甲醇-水條件下噴布特羅、丙酸睪酮和苯丙酸諾龍響應(yīng)值提高2~5 倍。加入0.1%甲酸,β-激動劑、坎利酮、螺內(nèi)酯、睪酮等化合物靈敏度提高0.5~2 倍,芐氟噻嗪、氯噻嗪、乙酰唑胺和糖皮質(zhì)激素類等大部分化合物電離產(chǎn)生抑制作用,但司坦唑醇峰形得到改善。通過再次優(yōu)化甲酸濃度,實驗最終采用0.005%甲酸-甲醇作為流動相,除地塞米松和倍他米松無法分離外,各化合物靈敏度和和峰形均可滿足要求,整個梯度運行時間13 min;當(dāng)?shù)厝姿珊捅端姿蓹z出時采用1.3.3節(jié)色譜條件分離進行準(zhǔn)確定量。46 種化合物的總離子流色譜圖見圖1。

    圖1 46 種食源性興奮劑標(biāo)準(zhǔn)溶液總離子流色譜圖(10 ng/mL)Fig.1 Total ion current chromatograms of 46 foodborne stimulant drugs (10 ng/mL)

    2.4 質(zhì)譜條件的優(yōu)化

    采用不接分析柱的方式向質(zhì)譜系統(tǒng)注入1 mg/L標(biāo)準(zhǔn)溶液,進樣量1 μL。確定各化合物的最佳質(zhì)譜條件,包括離子源溫度、毛細(xì)管溫度、加熱模塊溫度、加熱氣流速、干燥氣流速、氮氣流速、選擇特征離子對、Q1和Q3電壓、碰撞能量等質(zhì)譜分析條件。各化合物標(biāo)準(zhǔn)溶液和UPLC流動相溶液混合進入ESI源,在正負(fù)離子同時掃描方式下進行一級全掃描質(zhì)譜分析,其中大部分化合物分子離子峰[M+H]+響應(yīng)值最高,噻嗪類利尿劑均表現(xiàn)為[M-H]-響應(yīng)值最高。螺內(nèi)酯在高溫離子源內(nèi)不穩(wěn)定,脫去一分子乙酰基硫基可顯示較高的[M-C2H3OS]+,與坎利酮母離子相同。可的松和潑尼松龍的分子離子峰[M+COOH]-峰反而比[M+H]+響應(yīng)值高。然后選擇相應(yīng)的母離子峰進行子離子掃描,得到主要的子離子,并選擇響應(yīng)值高的子離子進行碰撞能量優(yōu)化,最終確定多反應(yīng)監(jiān)測的離子對及碰撞能量,本實驗采用正、負(fù)離子切換模式同時檢測樣品中46 種興奮劑類藥物。建立的質(zhì)譜參數(shù)如表1所示。

    表1 46 種化合物的質(zhì)譜參數(shù)、線性關(guān)系、檢出限和定量限Table 1 Mass spectrometric parameters, linearity, LODs and LOQs of 46 compounds

    續(xù)表1

    續(xù)表1

    2.5 基質(zhì)效應(yīng)

    基質(zhì)效應(yīng)是指色譜分離時共洗脫的物質(zhì)改變了待測成分的離子化效應(yīng),引起信號的抑制或提高。基質(zhì)效應(yīng)影響大時會降低方法的靈敏度和準(zhǔn)確性,造成測定誤差。動物源性食品基質(zhì)復(fù)雜,容易對目標(biāo)物產(chǎn)生干擾。一般認(rèn)為,基質(zhì)匹配校正曲線斜率與標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率的比值在0.85~1.15之間不存在基質(zhì)效應(yīng)[15-17]。本實驗方法對所選動物源樣品存在一定基質(zhì)效應(yīng),以豬肉為例,基質(zhì)效應(yīng)在0.32~1.40之間,結(jié)果見圖2。所建立方法采用基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液進行校正。

    圖2 46 種食源性興奮劑基質(zhì)效應(yīng)Fig.2 Matrix effects of 46 foodborne stimulant drugs

    2.6 方法學(xué)驗證

    2.6.1 方法的線性關(guān)系、檢出限和定量限

    取不含46 種化合物的豬肉、牛肉、羊肉、雞蛋和牛奶按照1.3.1節(jié)方法制備得到空白基質(zhì)溶液,用各基質(zhì)溶液稀釋混合標(biāo)準(zhǔn)中間液得到質(zhì)量濃度為0.1、0.5、1.0、2.0、5.0、10、20、50、100、200 ng/mL系列混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,繪制基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線,得到各化合物線性范圍、線性方程和相關(guān)系數(shù)(r)。以分析物質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),相應(yīng)峰面積為縱坐標(biāo),結(jié)果顯示,46 種化合物的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作液在各自范圍內(nèi)均呈良好線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)均大于0.99。

    采用信噪比(RSN)法進行46 種目標(biāo)化合物的檢出限和定量限確定,在各基質(zhì)空白樣品中添加標(biāo)準(zhǔn)溶液按1.3.2節(jié)步驟進行樣品前處理后進樣測定,以RSN≥3計算檢出限,RSN≥10計算定量限,同一化合物在不同基質(zhì)中檢出限、定量限和線性范圍一致(表1)。代表性牛肉基質(zhì)中各化合物的線性方程和相關(guān)系數(shù)見表1。

    2.6.2 方法的回收率和精密度

    根據(jù)GB/T 27404ü2008《實驗室質(zhì)量控制規(guī)范 食品理化檢測》的要求,實驗選取豬肉、牛肉、羊肉、雞蛋和牛奶5 種不含46 種食源性興奮劑化合物的基質(zhì)分別在3 個質(zhì)量濃度進行加標(biāo)回收實驗,每個水平測定6 次。由表2可知,方法的平均回收率在76.0%~111.9%之間,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation,RSD)在2.3%~12.4%之間。

    表2 方法的加標(biāo)回收率及RSD(n=6)Table 2 Recoveries and RSDs of the developed method (n = 6)

    續(xù)表2

    續(xù)表2

    2.7 實際樣品分析

    采用本方法對市售豬肉、牛肉、羊肉共計50 批,雞蛋10 批和牛奶10 批進行測定,結(jié)果表明,1 批豬肉檢出克倫特羅,檢出量為1.86 μg/kg,采用GB/T 22286ü2008《動物源性食品中多種β-受體激動劑殘留量的測定 液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法》[23]進行驗證,結(jié)果為1.90 μg/kg,RSD為1.50%,無明顯差異,結(jié)果可靠??藗愄亓_陽性樣品離子色譜圖和質(zhì)譜圖如圖3所示。

    圖3 陽性樣品中克倫特羅提取離子色譜(A)及質(zhì)譜圖(B)Fig.3 Extracted ion chromatogram (A) and mass spectrum (B) of clenbuterol in positive samples

    2.8 與文獻(xiàn)方法比較

    如表3所示,本方法采用普適性較強的UPLC-MS/MS儀建立動物源性食品中10 種β-受體激動劑、3 種β-受體阻斷劑、13 種蛋白同化劑、9 種糖皮質(zhì)激素、11 種利尿劑共計5 類46 種食源性興奮劑的同時檢測技術(shù),定量限為0.1~2.0 μg/kg,可滿足大型體育賽事對于食源性興奮劑的監(jiān)管要求。與文獻(xiàn)方法相比,該方法普適性強,覆蓋化合物范圍全面,測定基質(zhì)范圍廣泛,可以一次樣品處理獲得所有結(jié)果,提高工作效率。

    表3 本方法與文獻(xiàn)分析方法的對比Table 3 Comparison of the present method with previously reported methods

    3 結(jié) 論

    應(yīng)用QuEChERS凈化,以UPLC-MS/MS法建立同時檢測動物源性食品中46 種食源性興奮劑的方法,分別對前處理方法、色譜和質(zhì)譜條件進行優(yōu)化,采用多反應(yīng)監(jiān)測模式檢測,測定β-激動劑、糖皮質(zhì)激素類、利尿劑類和蛋白同化劑類等多種食源性興奮劑。該方法具有靈敏度高、普適性強、操作簡便等優(yōu)點,適用于動物源性食品中多種食源性興奮劑的測定,可為體育賽事的食品保障工作提供有效的技術(shù)支撐。

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