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    一種新型檢測(cè)大腸桿菌O157∶H7的免疫磁珠-量子點(diǎn)納米顆粒的制備和應(yīng)用

    2022-07-25 07:33:06文湘郡滕鑫丁星宇佘竹欣李壹熊曉輝
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2022年13期
    關(guān)鍵詞:磁珠菌液量子

    文湘郡,滕鑫,丁星宇,佘竹欣,李壹,熊曉輝

    (南京工業(yè)大學(xué) 食品與輕工學(xué)院,江蘇 南京,211800)

    食品安全在全世界引起了越來(lái)越多的關(guān)注[1]。食源性疾病大多由食用了被15種致病菌污染的食物引起的[2]。其中,EscherichiacoliO157∶H7是一種主要的食源性致病菌,常導(dǎo)致溶血性尿毒癥綜合征、血性腹瀉等嚴(yán)重疾病,甚至導(dǎo)致死亡[3],特別是在不發(fā)達(dá)國(guó)家和地區(qū)[4]。感染極低劑量的活E.coliO157∶H7即可引起疾病并進(jìn)一步引發(fā)疫情[5-7],對(duì)其快速、靈敏的檢測(cè)方法有助于臨床管理和預(yù)防傳播。

    現(xiàn)已發(fā)展了多種檢測(cè)E.coliO157∶H7的方法,經(jīng)典標(biāo)準(zhǔn)檢測(cè)方法是瓊脂平板培養(yǎng)法[8-9],該法簡(jiǎn)單可靠,但耗時(shí)長(zhǎng),可能延誤患者治療的時(shí)機(jī)和疫情的控制[10]。聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)因時(shí)間短、靈敏度高而被國(guó)家食品安全標(biāo)準(zhǔn)推薦,但往往需要訓(xùn)練有素的技術(shù)人員和復(fù)雜的DNA提取程序[11]。酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)具有快速檢測(cè)和高通量的特點(diǎn),但缺乏足夠的靈敏度,檢測(cè)限為104CFU/mL[11-12]。電化學(xué)發(fā)光和表面等離子體共振也被用于病原體檢測(cè)[13-14]。YU等[15]提出了一種檢測(cè)E.coliO157∶H7的石英晶體微天平傳感器,在50 min內(nèi)可檢測(cè)到低至1.46×103CFU/mL的E.coliO157∶H7,靈敏度高,但整個(gè)過(guò)程步驟繁多。上述方法均難以滿足E.coliO157∶H7現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)的要求。因此,開發(fā)一種簡(jiǎn)單、靈敏、快速的細(xì)菌檢測(cè)方法對(duì)保證食品安全有著至關(guān)重要的作用。

    量子點(diǎn)又稱納米晶體,是粒子尺寸小于或接近激子玻爾半徑的納米晶體粒子,在被激發(fā)時(shí)能產(chǎn)生熒光發(fā)射。它們通常由第II-VI組、第III-V組或第IV-VI組元素組成。量子點(diǎn)具有斯托克斯位移大、激發(fā)光譜寬、發(fā)射光譜窄、光學(xué)穩(wěn)定性好、量子產(chǎn)率高、發(fā)射波長(zhǎng)可調(diào)等獨(dú)特的光學(xué)特性[16-17],在食源性致病菌檢測(cè)中具有很大的應(yīng)用潛力[18]。免疫磁分離技術(shù)具有簡(jiǎn)單、快速、特異性強(qiáng)的優(yōu)點(diǎn)[19]。

    本研究建立了一種基于免疫磁珠富集和量子點(diǎn)發(fā)光的便捷、靈敏檢測(cè)樣品中E.coliO157∶H7的熒光免疫分析法。首先使用SiO2、羧基和E.coliO157∶H7抗體依次包覆Fe3O4納米顆粒制得的免疫磁珠對(duì)樣品中的E.coliO157∶H7進(jìn)行富集,然后使用由量子點(diǎn)標(biāo)記過(guò)的抗體,即熒光探針與E.coliO157∶H7結(jié)合,磁分離后,使用熒光光譜儀測(cè)定其發(fā)光強(qiáng)度,從而得到樣品中E.coliO157∶H7的濃度。將SiO2包覆在磁珠表面,可以減少其非特異性吸附,從而提高對(duì)目標(biāo)菌的選擇性并且有效的阻止了三明治結(jié)構(gòu)中量子點(diǎn)因電子轉(zhuǎn)移至Fe3O4而引起的熒光猝滅,為分析方法的可行性提供了保證。

    1 材料與方法

    1.1 儀器與試劑

    Pure掃描電子顯微鏡,荷蘭Phenom公司;透射電子顯微鏡,荷蘭Philips公司;Nicolet IS5傅立葉紅外光譜儀,美國(guó)Thermo Fisher公司;熒光光譜光度計(jì),日本Hitachi High-Tech公司。

    乙酸鈉、乙二醇、FeCl3·6H2O(生化試劑),上海生工有限公司;聚乙二醇2000(氣相色譜)、正硅酸乙酯(分析純)、異丙醇、油酸(分析純),麥克林有限公司;二乙二醇(氣相色譜)、1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳二亞胺鹽酸鹽[1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide,EDC],阿拉丁有限公司;氨水(分析純)、無(wú)水乙醇(>99.5%),西隴科學(xué)股份有限公司;N-羥基丁二酰亞胺(N-hydroxy succinimide,NHS),美國(guó)Aldrich公司;LB肉湯(生物試劑),海博生物計(jì)數(shù)有限公司;量子點(diǎn),蘇州星爍納米科技有限公司;大腸桿菌O157∶H7 CICC 21530,廣東省微生物菌種保藏中心;大腸桿菌O157∶H7抗體,武漢華美生物工程有限公司。

    1.2 E.coli O157∶H7的培養(yǎng)

    將細(xì)菌培養(yǎng)物儲(chǔ)存在-20 ℃的甘油中,然后在LB肉湯中37 ℃過(guò)夜培養(yǎng)進(jìn)行激活。取上述菌液100 μL加入到40 mL LB肉湯培養(yǎng)基中,37 ℃,160 r/min,搖勻2.5 h,去除培養(yǎng)基后,用無(wú)菌PBS連續(xù)10倍稀釋使最終濃度為1.0×101~1.0×108CFU/mL。將100 μL的稀釋液涂布于LB瓊脂平板表面上,37 ℃培養(yǎng)22~24 h,計(jì)數(shù)可見(jiàn)菌落。

    1.3 免疫磁珠Fe3O4@SiO2@Ab1的制備

    以FeCl3·6H2O為鐵源,無(wú)水乙酸鈉為沉淀劑,聚乙二醇2000為表面活性劑,在還原劑乙二醇和二乙二醇的混合溶液中,200 ℃反應(yīng)12 h,制備了單分散性良好、粒徑均一的Fe3O4納米粒子。

    將1.0 g粒徑200 nm的Fe3O4分散在20 mL去離子水中,分散均勻后加入4 mL氨水(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為32%)和120 mL異丙醇溶液。超聲混勻25 min后,用分液漏斗將20 mL異丙醇和4 mL正硅酸乙酯的混合溶液逐滴加入到混合物中,調(diào)整水浴鍋溫度為35 ℃,氮?dú)獗Wo(hù)下連續(xù)攪拌20 h。待結(jié)束反應(yīng)后,磁分離回收Fe3O4@SiO2,經(jīng)過(guò)多次去離子水和乙醇洗滌后,真空干燥,儲(chǔ)存?zhèn)溆肹20]。

    將100 mg的Fe3O4@SiO2分散在4 mL去離子水中,分散均勻后加入12 mL氨水和4 mL油酸。70 ℃反應(yīng)1 h,使用無(wú)水乙醇清洗3次后,磁分離回收,隨后加入30 mL 0.02 mol/L的KMnO4,快速機(jī)械攪拌8 h,磁分離,經(jīng)過(guò)多次去離子水和乙醇洗滌后,真空干燥,儲(chǔ)存?zhèn)溆肹21]。

    隨后使用EDC和NHS對(duì)Fe3O4@SiO2上的羧基進(jìn)行活化,加入E.coliO157∶H7的抗體,37 ℃空氣浴振蕩5 h制得免疫磁珠Fe3O4@SiO2@Ab1,合成路線如圖1-a所示。

    a-Fe3O4@SiO2@Ab1;b-Qds@Ab2圖1 Fe3O4@SiO2@Ab1和Qds@Ab2的合成路徑圖Fig.1 Synthetic route of Fe3O4@SiO2@Ab1 and Qds@Ab2

    使用掃描電子顯微鏡(scanning electron microscope, SEM)觀察免疫磁珠形貌;采用溴化鉀顆粒技術(shù),在傅里葉光譜儀上獲得免疫磁珠表面官能團(tuán)性質(zhì);采用SEM對(duì)樣品在10 kV加速電壓下的形貌進(jìn)行了表征;利用透射電鏡(transmission electron microscopy, TEM)獲得了納米粒子的尺寸和結(jié)構(gòu)細(xì)節(jié),將納米粒子懸浮液滴在碳涂層銅網(wǎng)格上,制得透射電鏡樣品。

    1.4 熒光探針Qds@Ab2的制備

    將量子點(diǎn)與E.coliO157∶H7的抗體置于室溫下空氣浴振蕩30 min得到熒光探針Qds@Ab2,合成路線圖如圖1-b所示。

    1.5 E.coli O157∶H7免疫捕獲條件的優(yōu)化

    應(yīng)用Miscellaneous設(shè)計(jì)和響應(yīng)面方法,研究在105CFU/mL的菌液濃度中免疫磁珠添加量、熒光探針添加量、孵育時(shí)間和磁分離時(shí)間4個(gè)自變量對(duì)E.coliO157∶H7的影響,因素和水平如表1所示。使用Design-Expert V8.0.6.1軟件設(shè)計(jì)方案,建立回歸模型,通過(guò)計(jì)算得到應(yīng)用于實(shí)際樣品時(shí)滿足檢測(cè)要求的最優(yōu)組合。

    表1 免疫磁分離體系檢測(cè)E.coli O157∶H7熒光強(qiáng)度的試驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and levels for fluorescence intensity of E.coli O157∶H7 by immunomagnetic separation system

    1.6 E.coli O157∶H7的檢測(cè)

    在優(yōu)化條件下,在離心管中分別加入40 μL免疫磁珠、100 μL菌液,37 ℃下孵育45 min,磁分離,使用PBS清洗3次后定容到100 μL;隨后添加20 μL抗體-量子點(diǎn)復(fù)合物,室溫下?lián)u床反應(yīng)30 min,反應(yīng)完畢后,磁分離,并用100 μL PBS定容。如圖2所示,游離的E.coliO157∶H7首先與免疫磁珠結(jié)合,然后由量子點(diǎn)標(biāo)記的抗體與E.coliO157∶H7結(jié)合,形成一個(gè)三明治結(jié)構(gòu)最后將“免疫納米磁珠-菌-免疫量子點(diǎn)”復(fù)合物進(jìn)行熒光檢測(cè)。

    圖2 反應(yīng)原理圖Fig.2 Overall working principle of the approach

    選擇與E.coliO157∶H7相近的沙門氏菌、金黃色葡萄球菌、單增李斯特氏菌、阪崎腸桿菌和痢疾志賀氏菌等食源性致病菌對(duì)模型的特異性進(jìn)行檢測(cè)。

    在1 g牛肉樣品中加入1 mL一定濃度的菌液,等其自然風(fēng)干后,在其中加入2 mL體積分?jǐn)?shù)為3%三氯乙酸、7 mL PBS,渦旋后8 000 r/min離心10 min;取1 mL含有一定濃度菌液的牛奶、蜂蜜,在其中加入2 mL體積分?jǐn)?shù)為3%三氯乙酸、7 mL PBS,混合均勻后在5 000 r/min離心10 min。將沉淀?xiàng)壢ィ謩e在上清液中加入1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH至7.0,定容后用pH為7.4的PBS稀釋上清液5~10倍,制備菌液終濃度為0~108CFU/mL的加標(biāo)牛肉、牛奶、蜂蜜樣品。最后根據(jù)上述所提出的免疫磁分離體系對(duì)添加的樣品進(jìn)行檢測(cè)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 免疫磁珠的表征

    2.1.1 紅外光譜表征

    圖3 Fe3O4、Fe3O4@SiO2和Fe3O4@SiO2@Ab1的紅外光譜Fig.3 FT-IR spectrogram of Fe3O4 particles, Fe3O4@SiO2and Fe3O4@SiO2@Ab1

    2.1.2 SEM表征

    如圖4所示,對(duì)比Fe3O4和Fe3O4@SiO2的SEM圖像,F(xiàn)e3O4尺寸較小,表面粗糙(圖4-a)。從圖4-b可知,SiO2包覆Fe3O4后,顆粒團(tuán)聚減少,表面光滑。結(jié)果表明,SiO2幾乎均勻的分布在Fe3O4表面上。

    a-Fe3O4;b-Fe3O4@SiO2圖4 Fe3O4和 Fe3O4@SiO2的SEM表征圖Fig.4 SEM graphs of Fe3O4 and Fe3O4@SiO2

    2.1.3 TEM表征

    如圖5所示,F(xiàn)e3O4納米顆粒由許多納米晶簇形成[24],形狀為球形,表面粗糙,粒徑約為200 nm,分散性均一性較好(圖5-a)。SiO2包覆在Fe3O4顆粒表面之后,F(xiàn)e3O4@SiO2的粒徑增加至576 nm,SiO2的殼層厚度在376 nm左右(圖5-b),與Fe3O4納米粒子相比,F(xiàn)e3O4@SiO2表面變?yōu)楣饣那蛐谓Y(jié)構(gòu),可有效防止Fe3O4在空氣中氧化。其次,SiO2層的引入增加了材料的生物相容性[25],同時(shí)也可以阻斷Fe3O4上的電子轉(zhuǎn)移,減少由于電子轉(zhuǎn)移造成的量子點(diǎn)熒光猝滅。

    a-Fe3O4;b-Fe3O4@SiO2圖5 Fe3O4和Fe3O4@SiO2的TEM表征圖Fig.5 TEM images Fe3O4, Fe3O4@SiO2

    2.2 E.coli O157∶H7免疫捕獲條件的優(yōu)化

    按照1.6節(jié)的實(shí)驗(yàn)方法,依照實(shí)驗(yàn)因素水平表1進(jìn)行27次試驗(yàn),以回收率為指標(biāo),各因素組合下E.coliO157∶H7回收率的結(jié)果如表2所示。

    表2 E.coli O157∶H7試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案與結(jié)果Table 2 Miscellaneous test design scheme and results of E.coli O157∶H7

    (1)回歸方程及方差分析

    以回收率為響應(yīng)值,各因素之間的關(guān)系建立的二次回歸方程如下:

    Y=102.06+21.19A+19.32B+1.27C+0.98D+9.09AB-2.75AC-5.45AD-3.15BC+2.77BD-3.28CD-29.58A2- 27.99B2-9.42C2-1.24D2

    式中:Y,回收率;A,免疫磁珠添加量;B,熒光探針添加量;C,孵育時(shí)間;D,磁分離時(shí)間。

    方差分析(表3)表明得到的回歸方程極顯著,模型的F值為8.06,模型P<0.05,表明模型具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。Y的相關(guān)系數(shù)R2=0.903 8,表明實(shí)測(cè)值與預(yù)測(cè)值吻合較好。擬合損失值為0.373 2,>0.05,不存在擬合損失因子。因此,該模型可用于分析各種因素對(duì)免疫磁分離體系檢測(cè)細(xì)菌的影響,優(yōu)化和預(yù)測(cè)滿足檢測(cè)條件的最佳條件。

    表3 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)結(jié)果的方差分析Table 3 Variance analysis of response surface experiments results

    注:*,對(duì)結(jié)果影響顯著(P<0.05);**,對(duì)結(jié)果極顯著影響(P<0.01)

    (2)各因素交互作用分析

    回歸方程模擬了4個(gè)因素對(duì)免疫磁分離體系檢測(cè)E.coliO157∶H7回收率的影響,如圖6所示,通過(guò)三維響應(yīng)面圖的分析,可以更直觀地發(fā)現(xiàn)不同變量對(duì)免疫磁分離體系檢測(cè)到的回收率的影響,表面高度越高、顏色越深,回收率越好。故免疫磁分離體系的最優(yōu)條件為免疫磁珠添加量40 mg、熒光探針添加量20 μL、孵育時(shí)間45 min、磁分離時(shí)間1.5 min。

    圖6 免疫磁分離體系檢測(cè)細(xì)菌響應(yīng)面圖Fig.6 Response surface diagram of bacteria detected by immunomagnetic separation system

    (3)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證

    為使E.coliO157∶H7的回收率在80%~120%,目標(biāo)值接近100%,利用本模型得出免疫磁珠最佳添加量為40 mg、熒光探針最佳添加量為20 μL。為了驗(yàn)證本模型預(yù)測(cè)值的準(zhǔn)確性,進(jìn)行回歸模型的驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),進(jìn)行3次平行實(shí)驗(yàn),取平均值。實(shí)際測(cè)得E.coliO157∶H7的回收率為97%,與預(yù)測(cè)結(jié)果接近,說(shuō)明優(yōu)化結(jié)果可信,有實(shí)際指導(dǎo)作用。

    2.3 E.coli O157∶H7的檢測(cè)

    細(xì)菌樣品中472 nm處的熒光強(qiáng)度(fluorescence intensity,F(xiàn)I)與E.coli細(xì)胞數(shù)(N)的關(guān)系如圖7所示。

    a-不同菌液濃度的熒光強(qiáng)度;b-標(biāo)準(zhǔn)曲線圖7 E.coli O157∶H7在472 nm處的熒光檢測(cè)Fig.7 The intensities of fluorescence peaks at 472 nm as functions of the concentrations of E.coli O157∶H7

    細(xì)胞數(shù)在10~108CFU/mL范圍內(nèi)時(shí),E.coliO157∶H7的回歸模型為:FI=34.32e(lgN/2.03)+24.20e(lgN/4.11)-1.81,R2=0.989 45。這些結(jié)果表明,通過(guò)測(cè)量472 nm處的熒光強(qiáng)度可以確定E.coliO157∶H7的細(xì)菌數(shù)量,檢測(cè)可在2 h內(nèi)完成且檢測(cè)范圍為10~108CFU/mL,檢出限為10 CFU/mL。

    將免疫磁珠分別加入104CFU/mL的E.coliO157∶H7、沙門氏菌、金黃色葡萄球菌、單增李斯特氏菌、阪崎腸桿菌和痢疾志賀氏菌中,在優(yōu)化條件下根據(jù)1.6所提出的模型對(duì)添加的樣品進(jìn)行檢測(cè)?;厥章嗜鐖D8所示,該免疫磁分離體系對(duì)E.coliO157∶H7有很好的選擇性。

    圖8 免疫磁分離體系對(duì)E.coli O157∶H7的特異性Fig.8 Specificity of immunomagnetic separation system for E.coli O157∶H7

    實(shí)際樣品中,該免疫磁分離體系對(duì)E.coliO157∶H7的回收率見(jiàn)表4,分別為80%~120%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)差(relative standard deviation,RSD)值均不高于7.8%。

    表4 Fe3O4@SiO2@Ab1對(duì)食品樣品中添加的E.coli O157∶H7的回收率Table 4 Recovery efficiency of E.coli O157∶H7 spiked in food samples by the Fe3O4@SiO2@Ab1

    3 結(jié)論

    本文建立了免疫磁珠和熒光量子點(diǎn)標(biāo)記的抗體檢測(cè)E.coliO157∶H7的方法。采用溶劑熱法制備了Fe3O4納米顆粒,并用SiO2、羧基和E.coliO157∶H7抗體依次包覆制得免疫磁珠。游離的E.coliO157∶H7首先與免疫磁珠結(jié)合,然后由量子點(diǎn)標(biāo)記的抗體與E.coliO157∶H7結(jié)合,形成一個(gè)三明治結(jié)構(gòu);隨后分析磁分離采集的磁珠的熒光強(qiáng)度(激發(fā)/發(fā)射波長(zhǎng)為370 nm/472 nm)。在引入SiO2殼層后,能減少傳統(tǒng)免疫磁珠的非特異性吸附,從而提高對(duì)目標(biāo)菌的選擇性,SiO2的殼結(jié)構(gòu)能有效地阻止量子點(diǎn)因電子轉(zhuǎn)移至Fe3O4而引起的熒光猝滅。動(dòng)態(tài)范圍為10~108CFU/mL,檢出限為10 CFU/mL。牛肉、牛奶和蜂蜜樣品中E.coliO157∶H7的平均加樣回收率分別為95%~104%、90%~94%、90%~110%;RSD分別為2.1%~3.8%、3.2%~7.8%、5.8%~6.3%。該方法縮短了傳統(tǒng)方法的檢測(cè)時(shí)間,提高了檢測(cè)效率。

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