賀 燕 鐘菲菲 王曉慶 徐文泱 楊 滔
(1. 湖南省產(chǎn)商品質(zhì)量檢驗(yàn)研究院,湖南 長(zhǎng)沙 410000;2. 長(zhǎng)沙市食品藥品檢驗(yàn)所,湖南 長(zhǎng)沙 410000)
泛酸又名維生素B5,是一種重要的水溶性維生素。它具有酸性,易溶于乙醇和水,不溶于脂類溶劑,在酸性環(huán)境中易分解,在中性環(huán)境中較為穩(wěn)定,是嬰幼兒乳粉中添加的重要營(yíng)養(yǎng)強(qiáng)化劑[1-4]。目前泛酸的檢測(cè)方法有微生物法、高效液相色譜法、酶聯(lián)免疫法、超高效液相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜法(UPLC-MC/MS)[5-7]。微生物法主要是利用植物乳桿菌對(duì)泛酸的特異性,在含有泛酸樣品中根據(jù)生長(zhǎng)產(chǎn)生的光密度來測(cè)定泛酸的含量[8],此方法靈敏度高,不僅能檢測(cè)出強(qiáng)化泛酸,還能檢測(cè)出原生泛酸,這是較儀器方法的優(yōu)異之處[9]。但由于現(xiàn)有的微生物方法GB 5009.210—2016中關(guān)鍵步驟試驗(yàn)條件不具體(菌液濃度的把控等)、提取方法存在不足、試驗(yàn)過程繁瑣(吸光度的測(cè)定)等,導(dǎo)致此方法具有操作過程既復(fù)雜,檢驗(yàn)試驗(yàn)又易失敗等缺點(diǎn)[10]。研究主要從菌種的選擇、濃度的確定、樣品前處理方法、吸收光度測(cè)定方法等方面進(jìn)行深入研究,優(yōu)化目前用于泛酸檢測(cè)的微生物方法,以期為后續(xù)國(guó)標(biāo)檢測(cè)方法的修訂提供試驗(yàn)依據(jù)。
嬰幼兒奶粉:市售;
質(zhì)控樣品:山東美正生物科技有限公司;
ATCC 8014植物乳桿菌、CICC 6076植物乳桿菌:上海北諾生物科技有限公司;
泛酸鈣標(biāo)準(zhǔn)品:95.5%,德國(guó)DR.Ehrenstorfer公司;
乙酸鈉、乙醇、鹽酸:分析純,國(guó)藥集團(tuán)藥業(yè)股份有限公司。
電子天平:ME204E型,梅特勒—托利多儀器(上海)有限公司;
紫外分光光度計(jì):T9型,普析通用儀器有限公司;
高壓滅菌鍋:HVA-85型,日本平山制作所株式會(huì)社廠;
培養(yǎng)箱:MIR-254型,松下電器(中國(guó))有限公司;
酶標(biāo)儀:Infinite M200型,美國(guó)Tecan公司。
1.3.1 植物乳桿菌的選擇及制備優(yōu)化
本文以休閑口味調(diào)味泡菜脆口蘿卜為例,引用Q10方法[5],通過加速貨架期試驗(yàn)[6](Accelerated Shelf-life Testing,ASLT)研究了3種不同包裝材質(zhì)對(duì)脆口蘿卜貨架期的影響。為該類型的產(chǎn)品選擇合適的包裝材料提供了重要的數(shù)據(jù)支撐。
(1) 不同來源的植物乳桿菌菌種測(cè)試:GB 5413.17—2010《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 嬰幼兒食品和乳品中泛酸的測(cè)定》和GB 5009.210—2016《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品中泛酸的測(cè)定》中的微生物法均采用ATCC 8014植物乳桿菌,而對(duì)于其他來源的植物乳桿菌則未提及。采用不同來源的植物乳桿菌即ATCC 8014植物乳桿菌、CICC 6076植物乳桿菌,按照GB 5009.210—2016第一法(微生物法)來測(cè)定質(zhì)控樣品及市售嬰幼兒配方奶粉,分析不同來源的植物乳桿菌對(duì)嬰幼兒奶粉中泛酸測(cè)定的影響。
(2) 菌液濃度對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響:將保存的ATCC 8014轉(zhuǎn)接到乳酸桿菌瓊脂培養(yǎng)基上,36 ℃培養(yǎng)18~24 h,再將其接種于乳酸桿菌肉湯中,36 ℃培養(yǎng)24 h。肉湯培養(yǎng)物先500 r/min 離心10 min留菌液,再以2 500 r/min 離心10 min,再將沉淀物用無菌生理鹽水洗滌3次。添加菌液或無菌生理鹽水將透光率調(diào)至60%,70%,80%,90%,以此菌懸液作為測(cè)試菌液用來測(cè)定樣品,菌液的添加量為50 μL。按照GB 5009.210—2016第一法(微生物法),研究不同濃度的菌液直接添加至待測(cè)液中對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響。
(3) 菌液添加量對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響:為簡(jiǎn)化菌液的制備和添加過程,制備系列5 mL乳桿菌接種肉湯,分別接種活化后的植物乳桿菌斜面培養(yǎng)物1環(huán),于36 ℃培養(yǎng)20 h,將肉湯培養(yǎng)物首先500 r/min離心10 min留菌液,再將菌液以2 500 r/min離心10 min,再將沉淀物洗滌3次,充分洗滌后按2.5,5.0,10.0 mL的菌液量添加到400 mL泛酸測(cè)試培養(yǎng)基中,按照GB 5009.210—2016第一法(微生物法)測(cè)定質(zhì)控樣品,比較相同測(cè)試培養(yǎng)基添加不同菌液量對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響。
1.3.2 泛酸樣品前處理方法 分別采用GB 5413.17—2010水解法和GB 5009.210—2016的直接提取法,對(duì)泛酸質(zhì)控樣品及奶粉樣品進(jìn)行測(cè)定,比較不同樣品前處理方法對(duì)結(jié)果的影響。
1.3.3 吸光度測(cè)定方法 吸光度的測(cè)定有紫外分光光度法和酶標(biāo)儀測(cè)定方法,對(duì)質(zhì)控樣品、市售的5個(gè)奶粉以及加標(biāo)樣品按照GB 5009.210—2016第一法(微生物法)處理,分別采用紫外分光光度法和酶標(biāo)儀法測(cè)定吸光度,比較吸光度測(cè)定方法對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響。
1.3.4 加標(biāo)試驗(yàn) 以9號(hào)樣品的奶粉作為試驗(yàn)樣品,添加10 μg加標(biāo)按照GB 5009.210—2016第一法(微生物法)進(jìn)行試驗(yàn),本底樣品和加標(biāo)樣品分別進(jìn)行6次平行試驗(yàn),分析酶標(biāo)法測(cè)定對(duì)結(jié)果的影響。
2.1.1 不同來源的植物乳桿菌菌種對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響
用ATCC 8014植物乳桿菌和CICC 6076植物乳桿菌按照GB 5009.210—2016第一法(微生物法)檢測(cè)質(zhì)控樣品及市售奶粉樣品1號(hào)、樣品2號(hào)、樣品3號(hào)測(cè)定泛酸結(jié)果見表1,標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。
圖1 不同植物乳桿菌測(cè)定的標(biāo)準(zhǔn)曲線圖
表1 不同來源的植物乳桿菌測(cè)定泛酸結(jié)果表
采用ATCC 8014植物乳桿菌、CICC 6076植物乳桿菌按照GB 5009.210—2016第一法(微生物法)測(cè)定的3個(gè)奶粉樣品和質(zhì)控樣品,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差在0.82%~6.59%,在允許的相對(duì)偏差范圍內(nèi)。此外,以兩種不同來源的植物乳桿菌菌株得到的標(biāo)準(zhǔn)曲線性方程y=0.004 8x+0.041 5(R2=0.995 2)和y=0.004 3x+0.041 8(R2=0.993 0),線性良好且二者線性范圍一致,說明ATCC 8014植物乳桿菌和CICC 6076植物乳桿菌均可用來測(cè)定嬰幼兒配方奶粉中的泛酸含量。有關(guān)研究[11-13]及現(xiàn)有標(biāo)準(zhǔn)(GB 5009.210—2016和GB 5413.17—2010)均使用ATCC 8014植物乳桿菌測(cè)定泛酸,該菌貨期長(zhǎng),但價(jià)格昂貴。
2.1.2 不同濃度菌液直接添加至待測(cè)液中對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響 用無菌生理鹽水調(diào)制透光率分別為60%,70%,80%,90%的菌液,由不同的菌液濃度得到的泛酸標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖2,測(cè)定的質(zhì)控樣品結(jié)果見表2。
表2 不同濃度菌液測(cè)定的質(zhì)控樣品結(jié)果
由圖2可知,透光率為70%,80%,90%時(shí),曲線吸光度值基本上呈線性增加,透光率為80%時(shí)菌液濃度所得標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性最好,泛酸標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=0.007 3x-0.044 3,相關(guān)系數(shù)R2為0.991 2。分析原因?yàn)椋航臃N 60%透光率的菌液濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線由于菌液濃度較高,當(dāng)達(dá)到高濃度標(biāo)準(zhǔn)值(90~100 ng/mL)時(shí),定量標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)消耗后,植物乳桿菌繁殖增加速度減緩,吸光度值增加幅度變緩,故曲線明顯趨向于持平;當(dāng)接種90%透光率菌液時(shí),因?yàn)榻臃N量較少,在低含量的營(yíng)養(yǎng)成分的條件下,繁殖增加緩慢,較低濃度的吸光度值特別低。利用植物乳桿菌對(duì)泛酸的特異性進(jìn)行檢測(cè)時(shí),添加菌液濃度至關(guān)重要,菌液濃度不宜太高,太高則會(huì)出現(xiàn)高濃度標(biāo)準(zhǔn)值(90~100 ng/mL)的吸光值無明顯變化,太低則會(huì)出現(xiàn)低濃度標(biāo)準(zhǔn)值的吸光度值過低,同時(shí)不同管之間的平行性較差。
圖2 不同濃度菌液直接添加至待測(cè)液中所得的標(biāo)準(zhǔn)曲線
從測(cè)定質(zhì)控樣品的結(jié)果來看,添加菌液透光率為60%~90%時(shí)結(jié)果均在質(zhì)控樣品允許接受的范圍內(nèi),但從標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性以及平行測(cè)試管的平行性來看,以添加透光率為80%的菌液50 μL至測(cè)試管中,得到的標(biāo)準(zhǔn)曲線及樣品測(cè)定結(jié)果最佳。GB 5009.210—2016和GB 5413.17—2010標(biāo)準(zhǔn)方法及現(xiàn)有研究中對(duì)于菌液濃度的定量不明確或者范圍很廣,研究定量菌液濃度數(shù)據(jù)結(jié)果,有利于檢測(cè)操作的標(biāo)準(zhǔn)化,確保檢驗(yàn)試驗(yàn)的成功和檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確。
2.1.3 不同的菌液量直接添加至測(cè)試培養(yǎng)基中對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響 國(guó)標(biāo)方法及現(xiàn)有研究中一般接種一定范圍內(nèi)的透光率的菌液,此方法需要經(jīng)過多次調(diào)試和測(cè)定菌液濃度,對(duì)于初學(xué)的檢測(cè)者難度較大。為減少菌液的制備及接種過程,研究直接添加到測(cè)試培養(yǎng)基的菌液添加量,便于檢測(cè)過程的標(biāo)準(zhǔn)化操作。按2.5,5.0,10.0 mL的菌液量添加到400 mL泛酸測(cè)試培養(yǎng)基中,用來測(cè)定質(zhì)控樣品,得到接種2.5 mL菌液的標(biāo)準(zhǔn)曲線和測(cè)試樣品在低濃度時(shí),培養(yǎng)后吸光度值過低,而添加10.0 mL菌液的標(biāo)準(zhǔn)曲線在高標(biāo)準(zhǔn)液濃度70 ng/mL以上增加緩慢,在90,100 ng/mL 的標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度吸光度值基本無變化。因而以添加5.0 mL菌液到400 mL泛酸測(cè)試培養(yǎng)基中得到的標(biāo)準(zhǔn)曲線及樣品測(cè)定結(jié)果最佳(見圖3),線性極好,R2達(dá)到了0.996 9,測(cè)定得到的質(zhì)控樣品結(jié)果為3.83×103μg/100 g(質(zhì)控樣品泛酸參考值為2 970~4 610 μg/100 g),基本接近中位值。
圖3 接種5.0 mL菌液至400 mL泛酸測(cè)試培養(yǎng)基得到的標(biāo)準(zhǔn)曲線
由表3可知,利用水解法和直接提取法提取泛酸,兩種方法所得結(jié)果不一致,直接提取法明顯高于水解法,兩者測(cè)定的結(jié)果相對(duì)偏差范圍達(dá)到了12%~32%。其原因是:① 水解法中泛酸的提取通過121 ℃水解來實(shí)現(xiàn),該過程可能會(huì)造成游離泛酸的分解而導(dǎo)致總泛酸測(cè)定結(jié)果偏低;② 直接提取法提取奶粉中全部的水溶性維生素包括生物素、煙酸也將全部被提取出來,生物素和煙酸對(duì)植物乳桿菌也有特異性,能促進(jìn)植物乳桿菌的生長(zhǎng)而導(dǎo)致測(cè)定結(jié)果偏高,另外,直接提取法提取不經(jīng)過濾,樣品液明顯呈現(xiàn)渾濁狀態(tài),也可能導(dǎo)致結(jié)果偏高。
表3 兩種前處理方法所得泛酸結(jié)果分析表
GB 5413.17—2010第一法(微生物法)和GB 5009.210—2016第一法(微生物法)均要求采用紫外分光光度進(jìn)行測(cè)定。此法最大的弊端是開展大批量樣品檢測(cè)時(shí)耗時(shí)長(zhǎng),并會(huì)導(dǎo)致后續(xù)樣品測(cè)定結(jié)果偏高,而酶標(biāo)儀測(cè)定吸光度的速度則較快。從表4結(jié)果來看,用紫外分光光度法和酶標(biāo)儀測(cè)定的1個(gè)質(zhì)控樣品及5個(gè)奶粉樣品相對(duì)偏差在1.0%~4.8%,在GB 5413.17—2010第一法(微生物法)和GB 5009.210—2016第一法(微生物法)允許的偏差誤差范圍內(nèi)。由表5可知,采用酶標(biāo)儀測(cè)定吸光度的加標(biāo)回收率達(dá)到了96.9%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為4.95%,回收率符合要求且測(cè)定方法的精密度高。為減少現(xiàn)行國(guó)標(biāo)法檢測(cè)泛酸時(shí)檢測(cè)吸光度的繁瑣程度,建議改用酶標(biāo)儀進(jìn)行測(cè)定,此法方便,測(cè)定耗時(shí)短,準(zhǔn)確度高。
表4 不同吸光度測(cè)定方法的結(jié)果分析
表5 酶標(biāo)法測(cè)定9號(hào)加標(biāo)樣品的結(jié)果分析表?
(1) 植物乳桿菌CICC 6076作為測(cè)試菌株用來測(cè)定嬰幼兒食品中的泛酸含量具有和植物乳桿菌 ATCC 8014同等的效果,建議在允許(如內(nèi)銷食品檢驗(yàn))時(shí)替換使用。
(2) 為利于檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)化操作,對(duì)微生物法關(guān)鍵測(cè)定步驟的菌懸液準(zhǔn)備研究出兩種標(biāo)準(zhǔn)化的定量操作條件:① 直接接種透光率為80%的菌液50 μL于滅菌測(cè)試管中;② 采用5 mL菌液(單一菌落接種5 mL乳桿菌肉湯培養(yǎng)20 h后的培養(yǎng)液)添加至400 mL滅菌測(cè)試培養(yǎng)基中,后者操作更簡(jiǎn)單。
(3) 用紫外分光光度法和酶標(biāo)儀測(cè)定的結(jié)果相對(duì)偏差小,且采用酶標(biāo)儀測(cè)定吸光度加標(biāo)回收的回收率可達(dá)到96.9%,用酶標(biāo)儀測(cè)定泛酸的吸光度值,耗時(shí)短,準(zhǔn)確性高,故建議GB 5009.210—2016的后續(xù)修訂可在第一法中引入此方法測(cè)定吸光度值。
(4) 對(duì)于微生物法測(cè)定泛酸含量使用直接提取法導(dǎo)致結(jié)果偏高的原因還有待于深入研究,特別是如何避免和解決提取過程中因煙酸、生物素含量引起的結(jié)果偏高問題。