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    瘤胃菌中乳酸脫氫酶的異源表達(dá)與酶學(xué)性質(zhì)研究

    2022-05-24 02:18:04金紫陽(yáng)袁思棋
    釀酒科技 2022年5期
    關(guān)鍵詞:丙酮酸結(jié)構(gòu)域乳酸

    金紫陽(yáng),袁思棋,劉 君,2

    (1.四川輕化工大學(xué)生物工程學(xué)院,四川宜賓 644000;2.宜賓五糧液集團(tuán)有限公司,四川宜賓 644000)

    乳酸脫氫酶(ldh)是一種廣泛分布于植物、微生物和動(dòng)物細(xì)胞內(nèi)的重要功能酶,是糖酵解的關(guān)鍵酶之一,性質(zhì)存在較大差異,能催化氧化還原反應(yīng),于生物體內(nèi)氧化產(chǎn)能以及解毒等途徑發(fā)揮關(guān)鍵作用。在哺乳動(dòng)物中l(wèi)dh-a、ldh-b 和ldh-c 3 個(gè)基因編碼廣泛分布于不同組織中的6 種結(jié)構(gòu)相似的ldh蛋白,其中包括5 種由ldh-a 和ldh-b 基因編碼的同工酶,以及一種由ldh-c基因編碼并在睪丸和精子中表達(dá)的酶。在生物體內(nèi),ldh 在輔酶NAD/NADH 的作用下能催化丙酮酸與乳酸之間的可逆轉(zhuǎn)化。在可逆轉(zhuǎn)化時(shí)ldh每個(gè)亞基可以與單個(gè)輔酶分子以及單個(gè)底物分子相連結(jié),以便獨(dú)立發(fā)生轉(zhuǎn)化,該轉(zhuǎn)化有NAD的參與時(shí),使乳酸被ldh 可逆地催化氧化去質(zhì)子化,轉(zhuǎn)化成H以及去質(zhì)子化的丙酮酸,同時(shí),NAD和來(lái)源于底物的H結(jié)合生成NADH。

    在醫(yī)學(xué)檢測(cè)方面,ldh 是一種常用的臨床診斷酶,是檢測(cè)其他酶和生物制品的一種通用輔助酶,如檢測(cè)丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶、肌激酶和丙酮酸激酶等酶活性。ldh 可檢測(cè)人體血清中的丙酮酸含量,可用ldh 試劑盒對(duì)NK 細(xì)胞的活性進(jìn)行檢測(cè)?;趌dh 的廣泛底物譜,ldh 可用于生產(chǎn)乳酸、蘋(píng)果酸、苯乳酸和扁桃酸等高附加值有機(jī)酸。例如,乳酸和蘋(píng)果酸均是安全的食品添加劑,已用于發(fā)酵奶制品、腌漬食品和飲料的生產(chǎn)。這些有機(jī)酸在食品、醫(yī)藥和材料等行業(yè)均有重要的應(yīng)用價(jià)值。

    課題組保存的1 株瘤胃菌R1 具有利用乳酸合成己酸的功能,在這個(gè)過(guò)程中,乳酸在乳酸脫氫酶和NADH 的催化下轉(zhuǎn)化為丙酮酸,以丙酮酸作為中間體將羧酸鏈延長(zhǎng),降三碳的乳酸合成六碳的己酸。本研究從R1 中克隆獲取乳酸脫氫酶基因,構(gòu)建重組質(zhì)粒pEGX-6p-1-,并轉(zhuǎn)化到BL21(DE3)進(jìn)行異源表達(dá),研究重組的酶學(xué)性質(zhì),為隨后的菌種分子改造與己酸發(fā)酵提供更加精確的理論基礎(chǔ),為工業(yè)應(yīng)用提供指導(dǎo)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株和質(zhì)粒

    克隆表達(dá)菌株DH5α 和BL21(DE3)購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司;瘤胃菌R1和質(zhì)粒PEGX 6P-1 由實(shí)驗(yàn)室保藏。

    1.1.2 試劑及耗材

    培養(yǎng)基成分購(gòu)自上海源葉生物技術(shù)有限公司;IPTG、氨芐青霉素購(gòu)自生工生物工程股份(上海)有限公司;細(xì)菌基因組DNA 提取試劑盒、DNA 快速回收純化試劑盒、膠回收試劑盒購(gòu)自O(shè)MEGA 公司;Ex Taq DNA 聚合酶及限制性內(nèi)切酶BamH I 和Xho I均購(gòu)自TaKaRa 公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 引物設(shè)計(jì)

    根據(jù)NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中已報(bào)道的瘤胃菌CPB6基因組中的ldh 基因(GenBank:CP020705.1)序列為模板,設(shè)計(jì)引物,對(duì)R1 提取DNA 后進(jìn)行PCR 擴(kuò) 增。ldh-F:5'-CGCGGATCCATGAAAACAAGAAAAATCGGCG-3',下劃線序列為BamHⅠ酶切位點(diǎn);ldh-R:5'-CCGCTCGAGGTCGACGCAAAGGTCTTTTAGC-3',下劃線序列為Xho I 酶切位點(diǎn)。引物由成都擎科生物科技有限公司合成。

    1.2.2 構(gòu)建重組質(zhì)粒

    經(jīng)過(guò)PCR 擴(kuò)增得到ldh 基因片段。將擴(kuò)增后的目的片段和pEGX 6p-1 載體使用相應(yīng)的限制性內(nèi)切酶酶切后,用T4 DNA 連接酶進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)化至DH5α,挑取單菌落經(jīng)菌落PCR 及提取質(zhì)粒雙酶切后送至成都擎科生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測(cè)序鑒定。

    1.2.3 重組ldh的表達(dá)和純化

    挑取攜帶pGEX 6p-1-質(zhì)粒的BL21(DE3)單菌落,至含Amp抗性的LB液體培養(yǎng)基中過(guò)夜培養(yǎng)。以2%的接種量轉(zhuǎn)接到100 mL LB培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)直至OD達(dá)到0.7 左右,加入終濃度為0.1 mmol/L的IPTG,18 ℃過(guò)夜誘導(dǎo)。8000 r/min離心3 min 收集菌體細(xì)胞,PBS 重懸后超聲破碎細(xì)胞,以10000 r/min、4 ℃離心20 min,收集上清液。用谷胱甘肽-瓊脂糖凝膠4B 掛柱,PP 酶切除GST標(biāo)簽。SDS-PAGE 凝膠電泳檢測(cè)目的條帶,純化后的蛋白于4 ℃冰箱保藏。

    1.2.4 ldh生物信息學(xué)分析

    根據(jù)測(cè)序結(jié)果使用ExPASy 網(wǎng)站提供的Prot-Param 工具對(duì)ldh 的氨基酸序列進(jìn)行理化性質(zhì)分析;親疏水性特征使用ExPASy 網(wǎng)站的ProtScale 工具進(jìn)行分析;使用在線工具NPSA server 中的SOPMA 進(jìn)行l(wèi)dh 的氨基酸序列二級(jí)結(jié)構(gòu)分析和預(yù)測(cè);使用CDD 和SMART 對(duì)ldh 保守結(jié)構(gòu)的分析;ldh 信號(hào)肽的分析和預(yù)測(cè)采用工具SignalP 5.0 server;運(yùn)用TMHMM 2.0 Server 進(jìn)行l(wèi)dh 的跨膜結(jié)構(gòu)域的分析 和 預(yù) 測(cè);使 用SWISS-MODEL 和I-TASSER 對(duì)ldh 進(jìn)行3D 建模,以及使用SAVES 對(duì)模型進(jìn)行評(píng)價(jià)。

    1.2.5 ldh酶活測(cè)定

    用0.1 mol/L pH7.5 的PBS 緩沖液配制80 mM的丙酮酸鈉溶液和4 mM 的NADH 溶液,測(cè)定酶活前將溶液25 ℃水浴預(yù)熱。取2 支光徑為1 cm 的石英比色皿,1 支中加入3 mL 丙酮酸鈉溶液,放在紫外分光光度計(jì)中,340 nm處調(diào)A值為0;另取1支比色皿依次加入2.9 mL 丙酮酸鈉溶液和0.1 mL NADH 溶液,加蓋搖勻后立即測(cè)定A,然后加入純化后的酶液10 μL,立即計(jì)時(shí),每隔30 s 測(cè)1 次A,連續(xù)測(cè)定3 min,計(jì)算ΔA。

    1.2.6 ldh最適反應(yīng)溫度與溫度穩(wěn)定性

    用0.1 mol/L pH7.5 的磷酸鹽緩沖液配制底物丙酮酸鈉溶液和輔酶NADH 溶液,在20~60 ℃條件下測(cè)定A并計(jì)算比活力,以最高反應(yīng)速度作為100%反應(yīng)活力,得到其他相對(duì)活力,100%反應(yīng)活力對(duì)應(yīng)的溫度即為ldh的最適溫度。

    將酶液在15~75 ℃下分別放置4 h,每隔1 h測(cè)定一次A并計(jì)算比活力,將0 h 的酶活力作為100 %反應(yīng)活力,記錄不同溫度下ldh 酶活力的變化情況。

    1.2.7 ldh最適反應(yīng)pH值及其穩(wěn)定性

    用pH5~8 的0.1 mol/L 磷酸鹽緩沖液分別配制底物丙酮酸鈉溶液和輔酶NADH 溶液,在37 ℃反應(yīng)并測(cè)定A并計(jì)算比活力,以最高反應(yīng)速度作為100%反應(yīng)活力,得到其他相對(duì)活力,100%反應(yīng)活力對(duì)應(yīng)的pH值即為ldh的最適pH值。

    將酶液在pH5~8 的環(huán)境下放置4 h,每隔1 h測(cè)定一次A并計(jì)算比活力,將0 h 的酶活力作為100%反應(yīng)活力,記錄不同pH 值下ldh 酶活力的變化情況。

    1.2.8 金屬離子和EDTA對(duì)ldh酶活的影響

    Mn、Ca等是某些酶的激活劑,在最適反應(yīng)條件下,反應(yīng)體系中添加3 mM 的NaCl、ZnCl、CaCl、MnSO、FeCl、CuCl、CoCl、MgCl和EDTA,研究不同金屬離子對(duì)ldh酶活性的影響。將不加任何金屬離子只加入等量緩沖液的對(duì)照組的酶活力作為100%反應(yīng)活力,計(jì)算不同金屬離子條件下的相對(duì)活力并分析結(jié)果。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 ldh外源表達(dá)與蛋白質(zhì)純化

    利用PCR 技術(shù)擴(kuò)增出ldh 基因。PCR 產(chǎn)物用1%濃度的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),結(jié)果如圖1 所示,在1000 bp 左右出現(xiàn)單一條帶,與預(yù)測(cè)的ldh基因長(zhǎng)度964 bp一致,判定條帶是目標(biāo)產(chǎn)物。

    圖1 ldh的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物

    圖2 重組蛋白SDS-PAGE電泳圖

    對(duì)重組質(zhì)粒pGEX-6p-1-在大腸桿菌BL21(DE3)中的表達(dá)結(jié)果進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳驗(yàn)證檢測(cè)。SDS-PAGE 結(jié)果顯示經(jīng)過(guò)12 h 誘導(dǎo)后,BL21(DE3)/ pGEX-6p-1-全 細(xì) 胞 在60 kDa附近出現(xiàn)一條明顯的條帶,與目的基因表達(dá)后的大小一致(含GST 標(biāo)簽),且在上清中表達(dá),而未誘導(dǎo)的重組的菌株無(wú)該條帶存在,初步表明添加IPTG 后,重組質(zhì)粒pGEX-6p-1-在BL21(DE3)中得到了正確的可溶性表達(dá)。按照瓊脂糖凝膠4B 親和層析純化方法,對(duì)重組蛋白進(jìn)行純化。通過(guò)粗酶液與beads 結(jié)合、雜蛋白漂洗、pp 酶切掉GST 標(biāo)簽、目的蛋白的純化,得到純度較高的目的蛋白。純化后的目的蛋白在約37 kDa 處有一條明顯條帶。

    2.2 ldh理化性質(zhì)和親水性/疏水性分析

    使用ProtParam 工具分析ldh 酶氨基酸序列理化性質(zhì),在線預(yù)測(cè)結(jié)果見(jiàn)表1。使用ProtScale對(duì)ldh氨基酸序列進(jìn)行親水性/疏水性預(yù)測(cè),結(jié)果見(jiàn)圖3。

    圖3 ldh的親水性/疏水性分析

    表1 ldh氨基酸序列理化性質(zhì)分析

    通過(guò)ProtParam 的預(yù)測(cè)結(jié)果可知,CPB6-ldh 的氨基酸數(shù)為320 aa,分子量約為34.79 kDa,不穩(wěn)定系數(shù)為27.28,小于40,表明ldh蛋白是較穩(wěn)定蛋白,且脂肪系數(shù)較高,為92.06,推測(cè)ldh 是熱穩(wěn)定性蛋白。根據(jù)ProtScale 預(yù)測(cè)結(jié)果,Hphob./Kyte &Doolittle 量表規(guī)定疏水性越強(qiáng)的氨基酸標(biāo)度值越高,當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)的氨基酸標(biāo)度值大于0 時(shí)為疏水,小于0 時(shí)為親水。平均親水系數(shù)為0.004 表明ldh 疏水性較高,這可能是由于ldh中丙氨酸(Ala)、亮氨酸(Leu)等疏水性氨基所占比例較高,在親水性/疏水性分析中,ldh 氨基酸序列的第273 位纈氨酸(Val)的值為2.344,疏水性最強(qiáng);第201 位賴氨酸(Lys)的值為-2.778,親水性最強(qiáng)。

    2.3 ldh的信號(hào)肽和跨膜區(qū)域預(yù)測(cè)

    利用SignalP 5.0 server 對(duì)ldh 的氨基酸序列進(jìn)行信號(hào)肽分析,分析結(jié)果見(jiàn)圖4,表示氨基酸序列存在信號(hào)肽,可能性達(dá)到0.8645,且裂解位點(diǎn)在氨基酸序列29位和30位之間。

    圖4 ldh信號(hào)肽預(yù)測(cè)

    利用在線工具TMHMM 2.0 Server 對(duì)ldh 的跨膜區(qū)進(jìn)行分析和預(yù)測(cè),結(jié)果見(jiàn)圖5。在預(yù)測(cè)結(jié)果中,Inside 表示胞內(nèi)區(qū),Outside 表示胞外區(qū),Transmembrane 表示跨膜區(qū),數(shù)值越大表示可能性越大。因此可以看出ldh 為胞外酶,不存在跨膜結(jié)構(gòu)域。

    圖5 ldh跨膜結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)

    2.4 ldh二級(jí)結(jié)構(gòu)與結(jié)構(gòu)域分析

    通過(guò)SOPMA 在線工具對(duì)ldh 的二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè),結(jié)果見(jiàn)圖6。蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)一般由α-螺旋、β-鏈、β-轉(zhuǎn)角和無(wú)規(guī)則卷曲等結(jié)構(gòu)原件組成。由圖6 可以看出,ldh 的二級(jí)結(jié)構(gòu)以α-螺旋和無(wú)規(guī)則卷曲為主,其中α-螺旋占43.12 %,無(wú)規(guī)則卷曲占27.5 %,此外,延伸鏈占21.56 %,β-轉(zhuǎn)角占7.81 %。蛋白質(zhì)的功能作用主要取決于蛋白質(zhì)空間結(jié)構(gòu),其中α-螺旋主要是穩(wěn)定其骨架,可起到跨膜傳遞的作用;蛋白酶的功能部位通常在無(wú)規(guī)則卷曲的構(gòu)象區(qū)域。無(wú)規(guī)則卷曲可以使空間結(jié)構(gòu)中的自由能達(dá)到最大,從而促進(jìn)蛋白質(zhì)的穩(wěn)定性,預(yù)測(cè)結(jié)果中的無(wú)規(guī)則卷曲占比較多,說(shuō)明ldh 可能具有較高的熱穩(wěn)定性。

    圖6 ldh二級(jí)結(jié)構(gòu)(a)與結(jié)構(gòu)域(b)分析

    通過(guò)CDD和SMART工具對(duì)ldh的保守結(jié)構(gòu)域分析。分析可知,ldh 具有高度保守的功能位點(diǎn)和結(jié)構(gòu)域,ldh 特定匹配在L-2-羥基異丙酸脫氫酶(HicDH)亞家族,屬于NADB-Rossmann超級(jí)家族,含有l(wèi)dh-1-N 結(jié)構(gòu)域(氨基酸序列第4~145 位)和ldh-1-C 結(jié)構(gòu)域(氨基酸序列第148~315 位)。這兩個(gè)結(jié)構(gòu)域存在于代謝途徑的許多脫氫酶中,如糖酵解過(guò)程和許多其他氧化還原酶。結(jié)構(gòu)域中存在NAD結(jié)合位點(diǎn)的典型高度保守基序GXGXXG,使酶蛋白在輔酶NAD/NADH 的存在下才能催化乳酸和丙酮酸的可逆轉(zhuǎn)化。

    2.5 ldh蛋白質(zhì)的三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)及評(píng)價(jià)

    使用SWISS-MODEL 工具對(duì)ldh 氨基酸序列進(jìn)行同源建模,預(yù)測(cè)結(jié)果如圖7(左)所示。根據(jù)結(jié)果顯示,ldh 與3wsw.1(SMTL:ID)模板覆蓋率為98%,同源性為30.57%。在預(yù)測(cè)到的三維結(jié)構(gòu)中,紅色表示α-螺旋,黃色表示β-折疊,綠色為無(wú)規(guī)則卷曲區(qū)域,總體來(lái)看,ldh 的三維結(jié)構(gòu)以α-螺旋和無(wú)規(guī)則卷曲構(gòu)象區(qū)域?yàn)橹?,預(yù)測(cè)結(jié)果與二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)相符合。

    使用在線軟件SAVES 中的Verify_3D 以及拉氏構(gòu)象圖對(duì)模型進(jìn)行評(píng)價(jià)。結(jié)果顯示,ldh 的Verify_3D 評(píng)分為82.86 %。拉氏構(gòu)象圖簡(jiǎn)稱拉氏圖(Ramachandran Plot),它的作用是體現(xiàn)氨基酸殘基在拉氏圖中的區(qū)域分布。拉氏構(gòu)象圖分為四個(gè)區(qū),紅色區(qū)域是最合適區(qū)域,其中的氨基酸數(shù)目越多表示該蛋白模型的骨架結(jié)構(gòu)越合理;黃色區(qū)域是允許區(qū)域;淺黃色區(qū)域是最大允許區(qū);白色區(qū)域是不允許區(qū),該區(qū)域氨基酸的構(gòu)象是不合理的。根據(jù)圖7(右)可知,處于最合適區(qū)域的氨基酸殘基占92.3%,不允許區(qū)占0.2%。

    圖7 ldh三維結(jié)構(gòu)模型(左)與拉氏構(gòu)象圖(右)

    2.6 重組ldh酶活測(cè)定

    重組ldh 表達(dá)后經(jīng)細(xì)胞破碎得到粗酶液,粗酶液經(jīng)過(guò)瓊脂糖凝膠4B 親和純化得到電泳級(jí)ldh。ldh 的分離純化結(jié)果如表2 所示,最終重組ldh 的純化倍數(shù)為14.29,比活力為29.365 U/mg。

    表2 重組ldh比活力

    2.7 重組ldh最適反應(yīng)溫度及溫度穩(wěn)定性

    在20~60 ℃條件下測(cè)定了ldh 的酶活,由圖8(a)可以看出,在20~60 ℃條件下ldh 均有酶活。在20~40 ℃低溫范圍內(nèi),隨著溫度的升高,酶活力不斷增加,當(dāng)溫度達(dá)到40 ℃時(shí),酶活性達(dá)到最高值;當(dāng)溫度大于40 ℃時(shí),酶活呈不斷下降的趨勢(shì),在60 ℃時(shí),ldh酶活降到最低。

    在15~75 ℃條件下測(cè)定了ldh 的溫度熱穩(wěn)定性能力。結(jié)果如圖8(b)所示,不同溫度處理4 h后,只有15 ℃條件下ldh 相對(duì)酶活還能保持80 %以上,25 ℃和35 ℃條件下處理4 h 后還能保持在45%以上。從45 ℃水浴開(kāi)始,隨著時(shí)間延長(zhǎng),酶活大幅度下降,65 ℃和75 ℃處理影響最明顯,在處理1 h 后相對(duì)活性就開(kāi)始急劇下降,2 h 后完全失活。綜合上述最適溫度結(jié)果可知,ldh 耐高溫能力較弱,即使高溫下有酶活,但經(jīng)過(guò)長(zhǎng)時(shí)間處理后,也會(huì)導(dǎo)致酶失活。

    圖8 ldh的最適溫度(a)和溫度穩(wěn)定性(b)

    2.8 重組ldh最適反應(yīng)pH值及其穩(wěn)定性

    在pH 5.0~8.0 條件下測(cè)定了ldh 的酶活。結(jié)果如圖9(a)所示,在pH 值為6.0 和6.5 時(shí),ldh 表現(xiàn)較大活性,且pH6.5時(shí)酶活性最高;在pH值低于5.5時(shí)酶活較低,pH 值高于7.0 時(shí)酶活性急劇下降,pH8.0時(shí)相對(duì)活性僅有21%左右。

    在pH5.0~8.0 條件下測(cè)定了ldh 的耐酸堿穩(wěn)定性,從圖9(b)可以看出,在pH 6.5~7.5 的條件下處理4h 后ldh 相對(duì)活性仍然能保持在50 %以上;在pH 值為6.0 和8.0 條件下處理2 h 后相對(duì)活性也能保持在60 %左右,但隨著時(shí)間延長(zhǎng)相對(duì)活性也急劇下降;在pH5.0 條件下,4 h 后ldh 完全失活。由此可見(jiàn),ldh在中性環(huán)境中有更好的pH值穩(wěn)定性。

    圖9 ldh的最適pH(a)和pH穩(wěn)定性(b)

    2.9 金屬離子和EDTA對(duì)ldh酶活的影響

    金屬離子能夠?qū)Φ鞍酌富町a(chǎn)生一定的影響,以不添加任何金屬離子的底物溶液作為空白對(duì)照,3 mM 不同金屬離子的反應(yīng)體系作為實(shí)驗(yàn)組。結(jié)果如圖10 所示,添加Na對(duì)ldh 酶活有輕微促進(jìn)作用;添加Mn和Co有較明顯的促進(jìn)作用;酶活提高了20%左右;添加Ca、Zn、Fe、Cu對(duì)ldh 酶活有較大的抑制作用,其中Fe的抑制作用最大,Mg的抑制作用相對(duì)較小,處理后的酶活能維持在85 %左右。汪勛清等研究發(fā)現(xiàn),添加Ca和Zn后ldh 無(wú)明顯變化,添加Mn后明顯抑制了ldh 酶活,與本研究結(jié)果有差異,可能與ldh來(lái)源和結(jié)構(gòu)不同有關(guān),并且實(shí)驗(yàn)所添加的金屬離子的濃度和ldh的純度不同也會(huì)對(duì)結(jié)果產(chǎn)生影響。值得注意的是,本研究中Co對(duì)ldh 的活性促進(jìn)作用最大,而重金屬Co對(duì)大多數(shù)酶的活性都有抑制作用,猜測(cè)可能是Co與ldh 氨基酸殘基結(jié)合而影響了ldh 活性中心,或類似堿性羧肽酶中Co代替Zn作為酶的輔助因子而促進(jìn)了ldh活性。

    圖10 金屬離子和EDTA對(duì)酶活的影響

    添加金屬螯合劑EDTA 對(duì)ldh 酶活的抑制作用很明顯,EDTA 可以和一些金屬離子形成穩(wěn)定的絡(luò)合物,酶的活性中心通常會(huì)有金屬離子,與EDTA絡(luò)合后酶的活性受到了抑制,因此金屬離子對(duì)ldh酶活有重要影響。

    3 結(jié)論

    己酸可作為食用香料、動(dòng)物飼料添加劑、天然抗菌劑和液體燃料的前體。隨著對(duì)己酸需求的增加,微生物發(fā)酵產(chǎn)己酸的研究越來(lái)越受到重視。實(shí)驗(yàn)室保藏的瘤胃菌R1 具有將乳酸轉(zhuǎn)化為己酸的功能,在其轉(zhuǎn)化乳酸的過(guò)程中,乳酸脫氫酶開(kāi)啟了第一步反應(yīng)。雖然各界學(xué)者對(duì)乳酸脫氫酶的研究已經(jīng)非常透徹,但是關(guān)于瘤胃菌中乳酸脫氫酶的性質(zhì)研究報(bào)道非常少。為了研究ldh在微生物利用乳酸產(chǎn)己酸的過(guò)程中的作用,通過(guò)分子層面提高乳酸轉(zhuǎn)化的效率,本研究通過(guò)異源表達(dá)技術(shù)和酶學(xué)性質(zhì)研究對(duì)ldh 進(jìn)行了初步探索。以R1 基因組為模板,利用PCR 技術(shù)擴(kuò)增出ldh 基因,經(jīng)測(cè)序后用NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)的BLAST 工具比對(duì)分析,與GenBank公布的瘤胃菌CPB6 的ldh 基因序列的同源性為99%,氨基酸序列的同源性為100%,說(shuō)明ldh 基因在瘤胃菌中是非常保守的。本研究構(gòu)建了pEGX 6p-1-ldh 重組質(zhì)粒,并將其導(dǎo)入BL21(DE3)中實(shí)現(xiàn)了異源表達(dá)。經(jīng)純化后的重組ldh酶活達(dá)到29.365 U/mg,酶學(xué)性質(zhì)測(cè)定結(jié)果顯示,最適反應(yīng)溫度為45 ℃,最適反應(yīng)pH 值為6.5,Na、Mn和Co對(duì)ldh酶活有促進(jìn)作用,這對(duì)后續(xù)研究使ldh酶活達(dá)到最大化提供了理論依據(jù)。

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