胥欣欣,匡華
(1 江南大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫 214122; 2 江南大學(xué)食品學(xué)院,生物界面與生物檢測研究所,江蘇 無錫 214122)
食品安全是世界性問題。隨著經(jīng)濟(jì)全球化的日益發(fā)展,食品安全已成為關(guān)乎人類健康的全球性挑戰(zhàn)。食品安全問題對國家的政治穩(wěn)定、經(jīng)濟(jì)建設(shè)、社會(huì)發(fā)展等都具有重要的影響。民以食為天,我國為保證食品安全,保障公眾身體健康和生命安全,制定了《中華人民共和國食品安全法》?,F(xiàn)行國家食品安全標(biāo)準(zhǔn)中明確規(guī)定了食品、食品添加劑、食品相關(guān)產(chǎn)品中的致病性微生物、農(nóng)藥殘留、獸藥殘留、生物毒素、重金屬等污染物質(zhì)以及其他危害人體健康物質(zhì)的限量要求。對食源性疾病、食品污染以及食品中的有害因素進(jìn)行監(jiān)測,是食品安全風(fēng)險(xiǎn)監(jiān)測和評估的重要環(huán)節(jié)之一。
目前,已經(jīng)有多種成熟的檢測技術(shù)被廣泛應(yīng)用于食品安全檢測,如高效液相色譜(HPLC)、氣相色譜(GC)、高效液相色譜-質(zhì)譜(HPLC-MS)、氣 相 色 譜- 質(zhì) 譜(GC-MS) 和 核 磁 共 振(NMR)[1-2]。這些儀器分析技術(shù)有普遍的局限性,如檢測時(shí)間長,依賴專業(yè)的樣品處理技術(shù)和昂貴的儀器等,限制了它們的應(yīng)用。ELISA(enzyme linked immunosorbent assay)、膠體金免疫色譜(gold immunochromatographic assay,GICA)、電化學(xué)生物傳感器等相對低成本、便攜且易于操作,在食品分析領(lǐng)域展現(xiàn)出巨大的潛力[3-8]。還有基于分子印跡聚合物(molecular imprinted polymer,MIP)的傳感器,利用MIP可以模仿抗體、酶和其他生物分子的特異性和選擇性的優(yōu)勢,能夠?qū)崿F(xiàn)污染物的識(shí)別、富集和分離[9-11]。
除了上述幾種檢測手段,基于受體-配體相互作用的受體結(jié)合測定技術(shù)(receptor-binding assay,RBA)也是篩查分析食品安全相關(guān)毒害物質(zhì)的有效工具和研究熱點(diǎn)[7,12-14]。所謂受體,是指細(xì)胞膜或細(xì)胞內(nèi)的一些能與生物活性分子(如藥物、毒素、神經(jīng)遞質(zhì)、激素和抗體等,統(tǒng)稱配體)相互作用的生物大分子。和抗體-抗原一樣,受體-配體反應(yīng)具有高親和力、高特異性和高飽和。受體只能與相應(yīng)的活性物質(zhì)結(jié)合,因此受體技術(shù)在食品安全檢測方面同樣具有準(zhǔn)確性。
本文將概述應(yīng)用于食品檢測的受體種類,以及制備受體的常用表達(dá)方式,列舉已經(jīng)開發(fā)用于食品檢測的具體受體,例如針對抗生素類藥物,生物毒素等。本文也將分析受體在食品安全檢測中的優(yōu)勢和潛在局限性,同時(shí)展望受體在食品安全檢測中的應(yīng)用前景和未來研究方向。
廣義上來說,受體的涵蓋范圍很廣。只要能和目標(biāo)物特異性結(jié)合的物質(zhì)(如核酸、多肽、蛋白質(zhì)等化合物),都可以被稱為受體。本文所述受體主要聚焦于受體蛋白,是來自于生物體或細(xì)胞的生物大分子。
受體和配體之間有3個(gè)相互關(guān)聯(lián)的功能:①識(shí)別和結(jié)合,即兩者以高親和力、高特異性識(shí)別并結(jié)合結(jié)構(gòu)互補(bǔ)區(qū)域;②轉(zhuǎn)導(dǎo)信號(hào),即受體-配體的相互作用會(huì)激活級聯(lián)反應(yīng),將細(xì)胞外的信號(hào)傳遞到效應(yīng)器,比如酶、離子通道等,使它們的活性或構(gòu)象發(fā)生相應(yīng)的變化;③產(chǎn)生相應(yīng)的生物效應(yīng),及引起細(xì)胞功能變化。另外,如果受體結(jié)合的是拮抗劑,那么就會(huì)阻斷某個(gè)生物效應(yīng)。從受體-配體的結(jié)合角度看,受體具有四大特征:立體選擇性、飽和性、可逆性、高親和力[15]。本文著重介紹:基于受體-配體的特異性識(shí)別和結(jié)合,可以開發(fā)類似基于抗體-抗原反應(yīng)的檢測裝置;基于受體-配體結(jié)合后產(chǎn)生的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),可以開發(fā)細(xì)胞傳感器,用于檢測目標(biāo)物。
根據(jù)不同的細(xì)胞定位,可將受體分為三大類[15]:①外膜受體,包括神經(jīng)遞質(zhì)、絕大多數(shù)激素、生長因子、神經(jīng)營養(yǎng)因子、免疫活性物質(zhì)以及感覺刺激物等的受體;②內(nèi)膜受體,即細(xì)胞器膜受體,如三磷酸肌醇受體等;③細(xì)胞漿膜內(nèi)的受體,包括類固醇激素和一些脂溶性激素等的受體,這類受體都是在胞質(zhì)中與配體結(jié)合,再移位至細(xì)胞核,激活相應(yīng)基因的轉(zhuǎn)錄而發(fā)揮作用。由于它們最終與核內(nèi)的DNA相互作用,故又被稱為核受體。
隨著分子生物相關(guān)學(xué)科的快速發(fā)展,越來越多的重組蛋白生產(chǎn)系統(tǒng)已經(jīng)被開發(fā)出來。從最簡單的細(xì)菌到高等的轉(zhuǎn)基因動(dòng)物,它們都可以作為表達(dá)宿主。目前,世界上已開發(fā)完善且得到廣泛認(rèn)可的重組蛋白表達(dá)體系主要包括:大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)、酵母表達(dá)系統(tǒng)、昆蟲表達(dá)系統(tǒng)和哺乳動(dòng)物表達(dá)系統(tǒng)(圖1),這些表達(dá)系統(tǒng)具有不同的優(yōu)劣勢(表1)。
表1 4種表達(dá)系統(tǒng)的比較Tab.1 Comparison of 4 expression systems
圖1 不同的重組蛋白表達(dá)系統(tǒng)Fig.1 Different expression systems for recombinant proteins production
2.1.1 原核表達(dá)系統(tǒng)
最常用的原核蛋白表達(dá)系統(tǒng)是大腸桿菌E.coli表達(dá)系統(tǒng)。大腸桿菌遺傳背景清晰、易培養(yǎng)、基因工程操作簡單,而且繁殖速度快、成本低,商品化表達(dá)載體種類齊全,最重要的是外源蛋白表達(dá)水平高。缺點(diǎn)是重組表達(dá)的蛋白易形成包含體,蛋白復(fù)性后易損失活性。在重組蛋白的N 端融合一個(gè)信號(hào)肽,將蛋白質(zhì)定位到大腸桿菌的周質(zhì)空間,通過周質(zhì)空間的分子伴侶協(xié)助蛋白質(zhì)正確折疊和二硫鍵形成,一定程度上可以穩(wěn)定蛋白。就本身來源于原核細(xì)胞的受體蛋白來說,用大腸桿菌系統(tǒng)表達(dá)是最佳的選擇,比如β-內(nèi)酰胺類抗生素受體[16]。
2.1.2 酵母表達(dá)系統(tǒng)
酵母細(xì)胞在明確定義的培養(yǎng)基中能夠快速生長,不需要?jiǎng)游镌葱陨L因子的參與,并且可以分泌大量重組蛋白。酵母細(xì)胞相對于大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)的主要優(yōu)點(diǎn)在于:無內(nèi)毒素、完整的真核蛋白合成途徑和重組蛋白的分泌能力;另外,在酵母細(xì)胞中的蛋白質(zhì)能夠正確折疊并進(jìn)行翻譯后修飾,可以用于糖蛋白的表達(dá)。因此,當(dāng)高等生物來源的受體蛋白難以在細(xì)菌中表達(dá)時(shí),酵母表達(dá)系統(tǒng)不失為一個(gè)良好的選擇。與哺乳動(dòng)物細(xì)胞系統(tǒng)相比,酵母細(xì)胞的蛋白質(zhì)生產(chǎn)往往更快、更便宜。然而,酵母畢竟是低等的真核生物,其N-糖基化模式單一,可能無法保證重組受體的天然活性,這也是酵母表達(dá)系統(tǒng)的主要缺點(diǎn)。
2.1.3 哺乳動(dòng)物表達(dá)系統(tǒng)
對于高等動(dòng)物來源的重組蛋白,哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)是首選。因?yàn)椴溉閯?dòng)物細(xì)胞的糖基化修飾完整,表達(dá)的蛋白折疊正確、活性高,最接近天然蛋白。長期以來,人胚胎腎細(xì)胞HEK293被認(rèn)為是瞬時(shí)表達(dá)重組蛋白的最佳宿主。如今,隨著培養(yǎng)基成分的優(yōu)化和宿主細(xì)胞的工程改造,用懸浮馴化的中國倉鼠卵巢細(xì)胞CHO-K1作為瞬時(shí)轉(zhuǎn)染的宿主細(xì)胞,能夠進(jìn)一步提高重組蛋白的產(chǎn)量。值得注意的是,細(xì)胞培養(yǎng)需要昂貴的培養(yǎng)基和嚴(yán)格的培養(yǎng)條件,而且細(xì)胞株構(gòu)建和發(fā)酵周期長,因此成本較高。
2.1.4 昆蟲表達(dá)系統(tǒng)
昆蟲細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)也屬于真核細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng),是介于酵母和哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)之間的存在。昆蟲細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)的優(yōu)勢如下:生長迅速,蛋白表達(dá)量高,易規(guī)?;?;具有糖基化等翻譯后修飾系統(tǒng);蛋白質(zhì)的正確折疊,使重組蛋白更加接近天然結(jié)構(gòu);重組蛋白的可控性定位(核膜或分泌至胞外);普適性,能表達(dá)絕大多數(shù)物種來源的蛋白。
2.1.5 無細(xì)胞翻譯系統(tǒng)
無細(xì)胞翻譯是一種不依賴于活細(xì)胞,在體外實(shí)現(xiàn)基因轉(zhuǎn)錄和翻譯過程的蛋白質(zhì)合成系統(tǒng)(圖2)。該體系的組成主要包括細(xì)胞(微生物、動(dòng)物或植物)裂解液中所含有的蛋白合成所需的必要元件、外源添加核苷酸、tRNA、能量物質(zhì)等元素和含目的基因的質(zhì)粒。目前,基于大腸桿菌裂解物的無細(xì)胞系統(tǒng)最為常用[17]。此外,真核細(xì)胞(小麥胚芽、昆蟲、酵母等)裂解物也可以用于無細(xì)胞系統(tǒng)[18-19]。無細(xì)胞翻譯系統(tǒng)能夠規(guī)避蛋白生產(chǎn)對細(xì)胞生長的影響,適用于膜蛋白的表達(dá)和具有細(xì)胞毒性蛋白的表達(dá),以及非天然氨基酸的嵌入。相比其他成熟的表達(dá)系統(tǒng),無細(xì)胞翻譯在大規(guī)模生產(chǎn)方面尚有不足,特別是真核無細(xì)胞系統(tǒng),細(xì)胞培養(yǎng)的成本較高。
圖2 基于無細(xì)胞翻譯系統(tǒng)的蛋白制備Fig.2 Protein preparation based on cell-free translation system.
對于可溶性的受體蛋白,尤其是來源于細(xì)菌的受體,比如磺胺類抗生素受體蛋白[20],大腸桿菌是最佳的表達(dá)宿主,只需要質(zhì)粒構(gòu)建、感受態(tài)轉(zhuǎn)化、誘導(dǎo)表達(dá)、親和色譜純化和離子交換純化的流程即可獲得較純的重組蛋白。對于簡單跨膜蛋白,比如β-內(nèi)酰胺抗生素受體[21-22],可以通過去除跨膜域的方式來提高受體蛋白的可溶性,提高其表達(dá)量,同時(shí)保證其對配體親和力的完整性。對于多跨膜域的膜蛋白,比如真核來源的β-興奮劑受體,往往需要用哺乳動(dòng)物細(xì)胞[23]和昆蟲細(xì)胞[24]這類真核細(xì)胞或無細(xì)胞翻譯體系[25]來進(jìn)行表達(dá)。具有磷脂雙分子層的細(xì)胞膜或其他膜類結(jié)構(gòu)可以作為膜蛋白的載體,使受體蛋白無需被分離純化,這種膜和受體的復(fù)合體能夠保持受體的天然結(jié)合功能[26-27]。
隨著分子生物學(xué)相關(guān)技術(shù)的日益發(fā)展,人們的研究范圍不僅限于對蛋白質(zhì)的功能和結(jié)構(gòu)解析,還拓展到了對具有生物(催化)活性的蛋白質(zhì)的理性設(shè)計(jì)和改造等領(lǐng)域?;诖祟惢A(chǔ)理論研究和技術(shù)支撐,合理改造受體蛋白,以提高其親和性、特異性等物化性質(zhì),將是合成受體生物應(yīng)用的重要發(fā)展方向之一。
2.3.1 受體蛋白的定點(diǎn)突變
定點(diǎn)突變技術(shù)是分子生物學(xué)中研究蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)和功能特性的寶貴工具[28]。定點(diǎn)突變的設(shè)計(jì)往往需要與計(jì)算機(jī)科學(xué)(同源建模、分子對接、動(dòng)力學(xué)模擬等)相結(jié)合,是有目的地對某一個(gè)或某幾個(gè)氨基酸進(jìn)行理性改變。通過基于定點(diǎn)突變的蛋白質(zhì)合理改造,可以提高蛋白的催化活性或熱穩(wěn)定性等[29]。就基于合成受體的生物檢測而言,Ning 等[30]通過同源建模構(gòu)建了地衣芽孢桿菌ATCC14580 的BlaR-CTD 的三維結(jié)構(gòu),同時(shí)與40 種β-內(nèi)酰胺抗生素進(jìn)行分子對接,系統(tǒng)分析活性口袋附近的關(guān)鍵氨基酸并合理設(shè)計(jì)定點(diǎn)突變,同時(shí)插入二硫鍵和鹽橋,最終異源表達(dá)了23 種突變受體蛋白。經(jīng)活性和穩(wěn)定性測試,其中3種突變體對多種β-內(nèi)酰胺抗生素具有更高的親和力,而I188K/S19C/G24C突變體的穩(wěn)定性最好。這一研究表明,受體蛋白BlaR-CTD 的結(jié)構(gòu)變化會(huì)引起其親和力和穩(wěn)定性的改變,為受體蛋白的理性設(shè)計(jì)研究提供了思路。Wang等[31]也利用了類似方式,對四環(huán)素類抗生素受體蛋白TetR 進(jìn)行了P105F 和P105Y點(diǎn)突變改造。利用免疫分析方法檢測四環(huán)素時(shí),這兩種突變受體比野生型的親和力和靈敏度更高。
2.3.2 受體蛋白的定向進(jìn)化
自然界存在“適者生存”的篩選法則,而在實(shí)驗(yàn)室中,科學(xué)家們?nèi)藶樵O(shè)定篩選條件,模擬蛋白質(zhì)的發(fā)展進(jìn)化過程,短時(shí)間內(nèi)獲得性能優(yōu)良的蛋白,即蛋白定向進(jìn)化。最近,研究人員設(shè)計(jì)構(gòu)建了人工受體蛋白文庫,利用核糖體展示技術(shù)在大腸桿菌裂解液系統(tǒng)中進(jìn)行體外轉(zhuǎn)錄和翻譯。經(jīng)過多輪淘選,從隨機(jī)文庫中獲得的3種突變體蛋白對百草枯具有高親和力和檢測靈敏度[32]。該研究中的受體蛋白設(shè)計(jì)和定向進(jìn)化篩選過程理論上也適用于其他類型的受體蛋白,具有一定的借鑒參考價(jià)值。2018 年諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)對“定向進(jìn)化”和“噬菌體展示”的概念給予了肯定,認(rèn)可該研究在酶和抗體改造方面的重大貢獻(xiàn)[33]。就合成受體的生物檢測應(yīng)用而言,為了獲得高特異、高親和、高靈敏的受體蛋白,對受體的定向進(jìn)化改造是大勢所趨。
抗生素是一種抑制或殺死細(xì)菌的化學(xué)物質(zhì),是由微生物或高等動(dòng)植物在生活過程中產(chǎn)生的一類次級代謝產(chǎn)物。得益于其有效的抑菌作用,抗生素被廣泛應(yīng)用于畜牧業(yè)和水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)中。然而,抗生素的濫用使其在食品中殘留超標(biāo)的案例屢見不鮮。對抗生素殘留進(jìn)行快速、靈敏檢測,是保障食品安全的重要環(huán)節(jié)。受體只能與對應(yīng)的活性分子相結(jié)合,因此受體技術(shù)在檢測抗生素方面具有更高的準(zhǔn)確性[7]。近些年,基于受體的抗生素篩查分析技術(shù)已成為一個(gè)研究熱點(diǎn),應(yīng)用于檢測β-內(nèi)酰胺、磺胺、四環(huán)素等抗生素殘留(表2)。
表2 基于受體的抗生素篩查分析方法Tab.2 Receptor-based antibiotic screening and analysis method
3.1.1β-內(nèi)酰胺的檢測
β-內(nèi)酰胺類抗生素是化學(xué)結(jié)構(gòu)中具有β-內(nèi)酰胺環(huán)的一大類抗生素,包括青霉素類、頭孢菌素類、單環(huán)β-內(nèi)酰胺類和碳青霉烯類。β-內(nèi)酰胺環(huán)具有不穩(wěn)定性,在抗體制備過程中容易降解,因此難以獲得針對完整β-內(nèi)酰胺類抗生素的抗體。β-內(nèi)酰胺類抗生素的受體是其抗體的絕佳代替物,人們已經(jīng)開發(fā)了多種基于受體的檢測方法。
針對肺炎鏈球菌來源的青霉素結(jié)合蛋白PBP2x,Zeng 等[21]通過截短N(yùn) 端的跨膜域,提高PBP2x的可溶性,在大腸桿菌中重組表達(dá)受體蛋白PBP2x*?;赑BP2x*建立微孔板檢測方法,45 min 可檢測42 個(gè)牛奶樣品的16 種β-內(nèi)酰胺類抗生素,其中15種的檢測限低于歐盟最大限量規(guī)定。該課題組進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),青霉素結(jié)合蛋白3的可溶性部分(sPBP3*)對β-內(nèi)酰胺類抗生素的親和力更高,可應(yīng)用于檢測牛奶中的11 種青霉素和16 種頭孢菌素[34]。Lamar 等[35]基于PBP2x*開發(fā)了微孔板檢測法,通過使用HRP 標(biāo)記的地高辛抗體Fab 片段檢測DIG-AMP/PBP2x*復(fù)合物,建立標(biāo)準(zhǔn)曲線可檢測牛奶、肉汁、雞蛋和蜂蜜中的β-內(nèi)酰胺。Peng等[22]在大腸桿菌BL21(DE3)中重組表達(dá)了地衣芽孢桿菌BlaR 的C 端活性域(BlaRCTD),作為β-內(nèi)酰胺受體蛋白,建立ELISA 方法用于檢測牛奶、牛肉和雞肉3種不同基質(zhì)中的β-內(nèi)酰胺類抗生素,可以同時(shí)檢測15 種β-內(nèi)酰胺,其中11 種的檢出限低于歐盟規(guī)定的最大殘留限量。Yuan 課題組[16,30]通過同源建模和分子對接技術(shù),設(shè)計(jì)了23種BlaR-CTD突變蛋白,篩選獲得高穩(wěn)定性、高親和力的I188K/S19C/G24C 突變受體,建立了酶聯(lián)受體檢測方法可檢測13 種食物樣品中的40 種β-內(nèi)酰胺。Li 等[36]利用I188K/S19C/G24C 的BlaR-CTD 突變受體,結(jié)合膠體金免疫色譜(GICA)技術(shù),可以在10 min 內(nèi)實(shí)現(xiàn)對牛奶和雞肉樣品中21種β-內(nèi)酰胺的快速檢測。
最近,F(xiàn)an 等[37]基于四環(huán)素抗體和青霉素結(jié)合蛋白PBP-6,構(gòu)建表面增強(qiáng)拉曼散射(SERS)的免疫傳感器,實(shí)現(xiàn)了四環(huán)素和青霉素的聯(lián)合檢測,其中對青霉素的檢測限可達(dá)0.010 ng/mL,IC50值為1.77 ng/mL,是目前最靈敏的生物分析方法。
3.1.2 磺胺類抗生素的檢測
磺胺類藥是一類具有廣譜抗菌活性的合成抗生素,在獸醫(yī)醫(yī)學(xué)中被廣泛用于預(yù)防和治療傳染病。就磺胺類藥而言,基于受體的檢測方法很少。二氫葉酸合成酶(DHPS)是磺酰胺類的受體之一,該受體是葉酸輔酶因子合成過程中的關(guān)鍵酶??刮⑸镌噭ㄈ缁前泛桶北巾浚┦菍Π被郊姿幔≒ABA)的競爭抑制劑,通過競爭結(jié)合DHPS,影響二氫葉酸的合成,最終抑制細(xì)菌的生長。
Liang 等[20]在大腸桿菌中表達(dá)肺炎鏈球菌來源的DHPS,用于開發(fā)新型微孔板檢測法以檢測磺胺類藥。該方法是基于磺胺類藥和HRP 標(biāo)記的磺胺類衍生物之間的競爭作用,在最佳條件下,對9 種磺胺類藥和PABA 的檢測限可達(dá)100 ng/mL 以下;對于28 種不同磺胺類藥,IC50值在426~50 000 ng/mL 之間。該檢測方法雖然靈敏度不夠高,但是具有很強(qiáng)的獨(dú)創(chuàng)性,為檢測磺胺類藥物提供了新的思路。在后續(xù)工作中,該團(tuán)隊(duì)合成的DHPS-DHPPP(二氫蝶呤焦磷酸)二元復(fù)合物,對磺胺類藥具有更高的親和力,繼而開發(fā)了熒光偏振測定法(FPA)和生物傳感器,可檢測牛奶樣品中29 種磺胺類藥,IC50值小于100 ng/mL[38-39]?;贒HPS-DHPPP 復(fù)合物的生物傳感器同樣可以檢測不同基質(zhì)中的磺胺類藥,以磺胺甲嘧啶(SMZ)為例,其在雞肉、豬肉、雞蛋和蜂蜜中的檢出限分別為17.82 μg/kg、20.55 μg/kg、23.22 μg/kg和5.57 μg/kg[40]。
3.1.3 四環(huán)素藥物檢測
四環(huán)素藥物(TC)是一類廣譜抗菌藥物,在人類和動(dòng)物中廣泛用于治療細(xì)菌性疾病。在自然界中,某些抗TC 的細(xì)菌具有特殊Tet 阻遏蛋白(TetR),可以特異性結(jié)合TC 并將其轉(zhuǎn)移出細(xì)菌[49-50]。
在含有四環(huán)素的條件下,TetR 會(huì)與同源操縱子tetO 解離,這種解離效應(yīng)和四環(huán)素濃度之間存在劑量關(guān)系。21 世紀(jì)初,瑞士的科研人員利用該原理,在微孔板或PVDF 膜上固定tetO,用mouse anti-His 和anti-mouse IgG-HRP 間接法檢測His 標(biāo)記的TetR,實(shí)現(xiàn)對四環(huán)素的定量。在牛奶和牛血清基質(zhì)中微孔板法的檢測限是0.1~7.2 ng/mL[41];在牛奶、肉末、牛血清基質(zhì)中試紙條法的線性范圍是5~10 ng/mL[42]。Wang等[43]將TetR視為四環(huán)素的受體,在大腸桿菌Rosetta-gami(DE3)中表達(dá)TetR 受體蛋白,通過分子對接技術(shù)探究其對四環(huán)素的識(shí)別機(jī)理,最終建立了基于TetR 的化學(xué)發(fā)光免疫分析方法,可用于測定牛奶中的5種四環(huán)素藥物,檢測限為5~16 pg/mL,空白牛奶樣品中的添加回收率在71.7%~95.8%之間。同年,作者通過定向進(jìn)化獲得TetR 蛋白結(jié)合口袋的關(guān)鍵氨基酸Pro105的兩種突變體,能夠同時(shí)識(shí)別9種四環(huán)素藥物。與野生型TetR相比,它們具有更高的親和力和靈敏度?;谧顑?yōu)突變體開發(fā)的競爭性熒光免疫測定法,可以檢測雞蛋樣品中的9種四環(huán)素藥物,IC50值在3.1~17.2 ng/mL,檢測限在0.3~5.8 ng/mL[31]。Meyer 等[44]建立了基于TetR-tetO 的可再生化學(xué)發(fā)光受體測定法,適用于檢測環(huán)境和食品樣品中四環(huán)素。雖然該研究僅針對加標(biāo)自來水,且檢測限僅為0.1 μg/L,不過可回收、可再生性是它的一個(gè)亮點(diǎn)和特色。
3.1.4 大環(huán)內(nèi)酯類檢測
大環(huán)內(nèi)酯類抗生素是一類分子結(jié)構(gòu)中具有12~16 碳內(nèi)酯環(huán)的抗菌藥物。Weber 等[45]以哺乳動(dòng)物細(xì)胞為模型,在細(xì)胞內(nèi)構(gòu)建基于大環(huán)內(nèi)酯類調(diào)控蛋白MphR(A)及其操縱子ETR 的調(diào)控系統(tǒng),通過調(diào)控表達(dá)分泌型堿性磷酸酶作為標(biāo)志物,檢測大環(huán)內(nèi)酯類抗生素。M?hrle 等[46]采用類似的方式構(gòu)建微生物傳感器,以熒光素酶基因表達(dá)產(chǎn)物作為檢測信號(hào)。Weber 等[41]基于MphR(A)和ETR 建立了類似ELISA 的微孔板法,可檢測紅霉素、竹桃霉素、克拉霉素、羅紅霉素、阿奇霉素,檢測限分別為1.7 ng/mL、26 ng/mL、63 ng/mL、605 ng/mL、5000 ng/mL。Cheng 等[47-48]在前人的研究基礎(chǔ)上,對大環(huán)內(nèi)酯類抗生素調(diào)控蛋白MphR(A)、MphR(E)與不同操縱子DNA 的組合進(jìn)行優(yōu)化,最終以MphR(A)和A-DNA為基礎(chǔ),采用蛋白和抗生素藥物分步反應(yīng)的方式,建立了檢測原奶中紅霉素殘留的類ELISA 系統(tǒng),CCα 值為43.28 ng/mL, CCβ 值 為46.44 ng/mL。 然 而,MphR(A)僅對紅霉素具有高親和力,限制了此類方法的實(shí)用性,若要作為實(shí)際應(yīng)用產(chǎn)品,仍需要進(jìn)一步深入研究。
百草枯(PQ)是一種水溶性的季銨鹽除草劑,長期以來在農(nóng)業(yè)、園林業(yè)等領(lǐng)域被廣泛使用。膽素結(jié)合蛋白(bilin-binding protein,BBP)是一種脂質(zhì)運(yùn)載蛋白,Li 等[32]利用核糖體展示技術(shù),經(jīng)數(shù)輪篩選,獲得并鑒定3 個(gè)BBP 變體,對PQ 復(fù)合物具有高親和力,IC50值低至14.039 ng/mL±0.970 ng/mL,檢測限達(dá)到0.083 ng/mL±0.011 ng/mL。BBP 作為一種穩(wěn)定的半抗原的受體蛋白,有潛力成為重組抗體片段的替代品,在生物分析領(lǐng)域具有較高的應(yīng)用價(jià)值。
3.3.1 β興奮劑的受體
β 興奮劑,即β-腎上腺素受體激動(dòng)劑,是一類體能增強(qiáng)藥物,會(huì)被一些運(yùn)動(dòng)員違規(guī)濫用。Bovee等[51]基于放射性標(biāo)記的β 興奮劑和可溶性的受體建立了β 興奮劑的發(fā)光檢測方法。在無β 興奮劑的條件下,放射性標(biāo)記的β 興奮劑仍然與受體結(jié)合,通過計(jì)數(shù)測量發(fā)光強(qiáng)度;在含有β興奮劑藥物的條件下,藥物競爭結(jié)合受體并取代放射性標(biāo)記的β興奮劑,發(fā)光強(qiáng)度減弱。該方法可實(shí)際檢出真實(shí)的陽性樣本。
在牲畜養(yǎng)殖業(yè),β 興奮劑被用于促進(jìn)家畜動(dòng)物的生長。β 興奮劑在我國是被嚴(yán)禁使用的。β 興奮劑包含多種不同的藥物,因此基于β興奮劑受體結(jié)合的檢測方法具有一定的廣譜性優(yōu)勢。Wang 等[23]利用人胚胎腎細(xì)胞HEK293 表達(dá)重組β 興奮劑受體蛋白β2-AR,開發(fā)了一種基于β2-AR的酶聯(lián)受體測定法(ELRA)。該方法類似競爭法ELISA,可用于豬尿中克倫特羅、沙丁胺醇和萊克多巴胺的快速高通量檢測,對應(yīng)的IC50值分別為34 μg/L、53 μg/L 和63 μg/L。在后續(xù)工作中,該作者所在課題組利用無細(xì)胞翻譯系統(tǒng)[25]和SF9 昆蟲細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)[24]表達(dá)了β2-AR 并建立ELRA。用無細(xì)胞翻譯系統(tǒng)可提高β2-AR 的表達(dá)量至1.1 mg/mL,但對β 興奮劑的檢測靈敏度會(huì)有所下降,針對克倫特羅、沙丁胺醇和萊克多巴胺的IC50值分別為45.99 μg/L、60.38 μg/L 和78.02 μg/L。β2-AR 在昆蟲細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)中的表達(dá)量更高, 可達(dá)1.23 mg/mL,ELRA 檢測方法對3種β興奮劑的IC50值分別為28.36 μg/L、50.70 μg/L、59.57 μg/L,呈現(xiàn)出更好的檢測性能。Cheng 等[52]利用SF9 細(xì)胞表達(dá)了敘利亞倉鼠肺來源的β2-AR并建立ELRA方法,針對萊克多巴胺的檢測限為5.20 μg/L,IC50值為30.38 μg/L。值得一提,重組受體β2-AR 也可以通過大腸桿菌E.coli[53]、釀酒酵母[54]和其他哺乳動(dòng)物細(xì)胞[55]等體系表達(dá),不過能否適用于β 興奮劑的檢測仍有待進(jìn)一步研究。理論上來說,哺乳動(dòng)物細(xì)胞中表達(dá)的受體蛋白在結(jié)構(gòu)上與天然受體最為接近,也最具有應(yīng)用前景?;谑荏w的非法添加劑篩查分析方法見表3。
表3 基于受體的非法添加劑篩查分析方法Tab.3 Receptor-based screening and analysis method of illegal additives
3.3.2 磷酸二酯酶PDE5抑制劑
磷酸二酯酶PDE5 抑制劑是一類用于治療勃起功能障礙的藥物,市場上用于增強(qiáng)性功能的膳食補(bǔ)充劑產(chǎn)品經(jīng)常摻入PDE5 抑制劑,對人體健康造成影響。Santillo 等[56]基于PDE5 抑制劑對PDE5活性的抑制作用,開發(fā)了一種熒光檢測方法來快速檢測摻假產(chǎn)品中的PDE5 抑制劑。在不含基質(zhì)的溶液中,可以靈敏檢測9 種PDE5 抑制劑,IC50值在0.4~4.0 ng/mL 之間。在空白基質(zhì)加標(biāo)1 mg/g 的濃度下,成功檢測到所有9種摻假物。該方法可在15 min內(nèi)同時(shí)分析40多個(gè)樣品。
真菌毒素是由絲狀真菌產(chǎn)生的有毒次生代謝物或有機(jī)化合物。目前人們已經(jīng)發(fā)現(xiàn)超過300種真菌毒素,其中較為常見且危害較大的霉菌毒素包括黃曲霉毒素、赭曲霉毒素、單端孢霉烯、伏馬毒素、玉米赤霉烯酮、展青霉素、橘霉素和交鏈孢霉毒素等,它們主要產(chǎn)自于鐮刀菌、曲霉菌、青霉菌和交鏈孢霉菌等不同菌屬[57-59]。目前,基于天然受體的真菌毒素檢測方法鮮有報(bào)道,只有少量基于多肽片段的真菌毒素識(shí)別研究,而且設(shè)計(jì)具有高親和力的新型多肽受體仍具有挑戰(zhàn)性[60-61]。
Bazin 等[62]固相合成來自氧化還原蛋白的不同多肽片段,通過HPLC評估多肽結(jié)合赭曲霉毒素OTA 的能力,篩選獲得OTA 結(jié)合肽NFO4 并建立競爭性ELISA,可用于檢測紅葡萄酒基質(zhì)中的OTA,檢測限可達(dá)2 μg/L。該課題組以O(shè)TA 結(jié)合肽NFO4為基礎(chǔ),對檢測體系進(jìn)行了更加深入的研究,將NFO4 分別和三維多孔殼聚糖載體[63]和電流傳感器[64]聯(lián)合使用,能夠稍微提高對OTA 的檢測靈敏度。Heurich等[65]通過計(jì)算模型設(shè)計(jì),從多肽文庫中篩選出兩個(gè)與OTA 有親和力的肽段:八肽和十三肽。雖然這兩種多肽在體外均能與OTA結(jié)合,但是該研究并未以此建立OTA 的競爭性檢測方法。
除了多肽受體外,還有基于分子印跡蛋白的玉米赤霉烯酮(ZEN)[66]和黃曲霉毒素(AFB1)[67]檢測方法,可用于真實(shí)樣品中真菌毒素的檢測。
海洋生物毒素是由微觀藻類產(chǎn)生的天然化學(xué)物質(zhì),可以在貝殼類和魚類等水生生物中蓄積。人類位于食物鏈頂端,誤食海洋生物毒素污染的水產(chǎn)品會(huì)對人類的生命健康造成極大的威脅[68-69]。
3.5.1 環(huán)亞胺類毒素檢測
環(huán)亞胺類毒素是鞭毛藻來源的神經(jīng)毒素,它們是煙堿乙酰膽堿受體(nAChR)的有效拮抗劑。利用富含煙堿乙酰膽堿受體的電鰩細(xì)胞膜和熒光標(biāo)記的α-金環(huán)蛇毒素,Vilari?o等[70]建立了熒光偏振定量檢測方法,原理是檢測物中的環(huán)亞胺抑制了金環(huán)蛇毒素與nAChR 的相互作用,產(chǎn)生熒光偏振變化。該方法可用于檢測貽貝提取物中裸草胺-A 和13-去甲基螺旋內(nèi)酯C,檢測范圍分別是50~2000 μg/kg 和70~700 μg/kg。該方法對檢測蛤蚌、牡蠣、扇貝基質(zhì)中裸草胺-A 和13-去甲基螺旋內(nèi)酯C 具有普適性[71],而且適用于檢測13,19-去二甲基螺旋內(nèi)酯C,定量范圍為40~200 μg/kg[72]。在前人的基礎(chǔ)上,Otero等[73]用熒光素衍生物直接標(biāo)記nAChR,開發(fā)了螺環(huán)內(nèi)酯的熒光偏振直接測定法,從間接識(shí)別到直接識(shí)別的轉(zhuǎn)變使得檢測靈敏度和速度都顯著提高。
基于相同的傳感特性,具有不同檢測技術(shù)的固相受體結(jié)合檢測方法已經(jīng)被開發(fā)出來[74-77]。原理類似競爭抑制ELISA,比如待測物中環(huán)亞胺與固相上的毒素競爭結(jié)合其受體,再用受體的一抗、HRP-二抗檢測受體的量,從而計(jì)算目標(biāo)物的含量。Aráoz 等[75]基于環(huán)亞胺類毒素對α-金環(huán)蛇毒素與nAChR 結(jié)合的競爭性抑制,開發(fā)了受體結(jié)合微孔板測定法,能夠檢測貝類樣品中的環(huán)亞胺類毒素。該方法具有高靈敏度和可重復(fù)性,但是選擇性較低,需結(jié)合質(zhì)譜分析才能確認(rèn)毒素類型。Rodríguez 遵循類似的原理,利用微球/流式細(xì)胞儀系統(tǒng)開發(fā)了基于受體的螺內(nèi)酯檢測方法,所用的受體分別是石紋電鰩來源的nAChR 和靜水椎實(shí)螺來源的乙酰膽堿結(jié)合蛋白(AChBP)。通過將nAChR 或AChBP 固定在羧化微球表面上,用環(huán)亞胺與α-金環(huán)蛇毒素競爭結(jié)合受體蛋白的方式來進(jìn)行熒光定量檢測。經(jīng)簡單樣品前處理,該方法可以靈敏檢測貽貝、扇貝和蛤蚌中13-去甲基螺旋內(nèi)酯C,檢測范圍為10~6000 μg/kg[76]。
3.5.2 其他海洋生物毒素
軟骨藻酸是一種興奮性神經(jīng)遞質(zhì)谷氨酸酯的類似物。Van Dolah 等[26]開發(fā)了一種受體測定法,即在SF9 昆蟲細(xì)胞膜上表達(dá)了谷氨酸受體GLUR6,利用競爭法檢測軟骨藻酸。由于GLUR6 同樣能夠識(shí)別谷氨酸,所以檢測樣品必須經(jīng)過去谷氨酸處理,使得該方法具有一定的局限性。Van Dolah 和來自6 個(gè)不同國家的9 所實(shí)驗(yàn)室合作,開展了一項(xiàng)針對麻痹性貝類毒素的受體結(jié)合測定研究。該研究基于提取物與3H 標(biāo)記的蛤蚌毒素(3H-saxitoxin)競爭結(jié)合大鼠腦膜的鈉離子通道,3H-saxitoxin 結(jié)合數(shù)量的減少與海鮮中存在的貝類毒素量成比例[78]。
??舅兀≒LT)是一種高毒性非肽類海洋天然產(chǎn)物,具有復(fù)雜的化學(xué)結(jié)構(gòu),其作用靶點(diǎn)是Na+,K+-ATPase 酶。Alfonso 等[79]結(jié)合熒光偏振開發(fā)了一種基于Na+,K+-ATPase和??舅叵嗷プ饔玫臋z測方法,用熒光偏振度來量化??舅貪舛取T摲椒梢詸z測貽貝樣品和鞭毛藻培養(yǎng)物中??舅?,定量限為10 nmol/L,檢出限為2 nmol/L。隨后,該團(tuán)隊(duì)還開發(fā)了基于Na+,K+-ATPase的表面等離子體共振生物傳感器,對??舅氐臋z出限為3.73 pg,定量限為11.20 pg[80]。
食源性致病菌是導(dǎo)致食品安全問題的重要來源,檢測食品中存在的食源性致病菌對于預(yù)防傳染病的傳播至關(guān)重要。利用感官受體蛋白構(gòu)建電子鼻、舌,可以用于食品質(zhì)量和安全評估[81]。
受真菌污染的谷物中會(huì)產(chǎn)生1-辛烯-3-醇,可以被特定人類嗅覺受體(OR)所識(shí)別。Ahn 等[27]利用人胚胎腎細(xì)胞HEK293 生產(chǎn)含OR 的納米囊泡,并將囊泡整合到單壁碳納米管場效應(yīng)晶體管(swCNT-FET)中,構(gòu)建了對特定氣味的感知和信號(hào)放大系統(tǒng)。該系統(tǒng)對1-辛烯-3-醇具有高選擇性,因此可以有效用于谷物中真菌污染的實(shí)時(shí)測量,檢測靈敏度可達(dá)1 fmol/L。遵循類似的手法,Son等[82]利用兩種人類嗅覺受體OR51S1 和OR3A4,分別用以識(shí)別細(xì)菌產(chǎn)生的土臭素(GSM)和2-甲基異冰片醇(MIB),結(jié)合swCNT-FET 放大信號(hào),所構(gòu)建的電子鼻可以實(shí)現(xiàn)對自來水、瓶裝水和河水中細(xì)菌的檢測,靈敏度低至10 ng/L。Sankaran等[8]利用來自果蠅增香劑結(jié)合蛋白LUSH 的多肽片段作為感知材料,開發(fā)了石英微天平(QCM)傳感器,以檢測指示包裝牛肉中沙門氏菌污染所產(chǎn)生的揮發(fā)性有機(jī)化合物,如3-甲基-1-丁醇和1-己醇。
RAW264.7 免疫細(xì)胞表面富含受體蛋白比如TLR,能夠識(shí)別病原體相關(guān)分子模型(PAMP)。細(xì)胞被細(xì)菌污染后,最終會(huì)激活細(xì)胞因子的表達(dá),比如TNF-α?;谶@一原理,Seo等[83]以RAW264.7細(xì)胞為感知元件,用雙抗體夾心的傳感器檢測TNF-α,形成檢測信號(hào),可以應(yīng)用于實(shí)時(shí)檢測牛奶樣品中的志賀氏菌、金黃色葡萄球菌和單核細(xì)胞增生李斯特氏菌等致病細(xì)菌。不過,該傳感器的信號(hào)傳導(dǎo)易受培養(yǎng)基的攪動(dòng)程度和體積影響,這勢必會(huì)影響在實(shí)際應(yīng)用中的推廣。再者,這種傳感器雖然基于受體-配體結(jié)合的原理,但是其檢測信號(hào)本質(zhì)上是經(jīng)由復(fù)雜通路激活產(chǎn)生的,在穩(wěn)定性上可能會(huì)有所欠缺。
瑞鮑迪苷A(Reb-A)是一種甜菊醇糖苷,是可以從菊科甜菊中提取的天然甜味劑。Reb-A在高溫條件下具有良好的穩(wěn)定性,因此在食品中被廣泛使用。Arodola等[84]通過同源性建模、分子對接和分子動(dòng)力學(xué)模擬等計(jì)算機(jī)輔助技術(shù),闡明了Reb?A 和人類甜味受體T1R2 單體之間的相互作用關(guān)系,構(gòu)建了基于T1R2-Reb-A 復(fù)合物、氧化鋅納米顆粒(ZnO-NPs)和氧化石墨烯(GO)的電化學(xué)傳感器,用于檢測Reb-A,遺憾的是該方法沒有落實(shí)到真實(shí)樣品的檢測。另外,該作者所在團(tuán)隊(duì)[85]還開發(fā)了一種新型的細(xì)胞色素C 修飾的納米復(fù)合電化學(xué)生物傳感器,用于測定不同食品樣品中的Reb-A。雖然目前還沒有關(guān)于甜菊糖苷對健康危害的報(bào)道,但考慮到此類甜味劑在食品工業(yè)中的廣泛使用,上述檢測方法可能在未來有一定的應(yīng)用前景。
傳統(tǒng)抗體的制備都要經(jīng)由動(dòng)物免疫,不僅周期長,而且需要熟練的操作技藝。另外,對于本身帶有毒性的待測物,動(dòng)物經(jīng)免疫后易死亡,獲得特異性抗體難度較大。受體的制備主要通過在細(xì)胞中重組表達(dá)產(chǎn)生的,相對制備周期短、效率高。此外,受體還具有檢測優(yōu)勢,受體最重要和獨(dú)特的特征是特異性,受體可以與特定藥物類別中許多藥物組合,無論其結(jié)構(gòu)相似性如何。遇到同一類別的多種藥物的混合物并不少見,對應(yīng)某一類非法添加物,受體的另一個(gè)優(yōu)點(diǎn)得以呈現(xiàn),即受體測定方法能夠?qū)Π喾N藥物的混合物產(chǎn)生單一的信號(hào)響應(yīng)。受體在這類混合物的檢測中往往能發(fā)揮重大作用。對于一些高毒素分子和低免疫原性的分子,往往無法通過制備單克隆抗體的方式檢測,受體檢測是絕佳的選擇。和基于抗體的檢測方法類似,受體同樣可以和多種標(biāo)記技術(shù)串聯(lián)使用,從而獲得更高的檢測靈敏度。
常規(guī)的單克隆抗體,往往需要經(jīng)過多次免疫和篩選的過程,以不斷完善抗體的高親和力進(jìn)化。相比之下,天然的受體蛋白與配體的親和力相對固定。隨著檢測要求的不斷提高,其性能可能難以達(dá)標(biāo)。另外,相比抗體,蛋白的穩(wěn)定性較差是酶標(biāo)受體的缺點(diǎn)之一。受體對藥物分子的識(shí)別通常具有廣譜性,對于一類化合物中某種特定藥物的高特異性檢測,恐怕很難滿足。再者,一些受體蛋白,特別是含有多個(gè)跨膜域的膜蛋白,由于其本身性質(zhì),在不同的蛋白表達(dá)系統(tǒng)中表達(dá)量都不會(huì)太高,不易制備,或者制備所得受體物質(zhì)活性會(huì)有所損失,導(dǎo)致特異性減弱。要想真正將此類受體應(yīng)用于食品檢測,這是必須要改進(jìn)的一個(gè)方面。
21 世紀(jì)是生物技術(shù)學(xué)科飛速發(fā)展的時(shí)代,分子生物學(xué)和合成生物學(xué)技術(shù)和理論的不斷革新,進(jìn)一步推動(dòng)受體結(jié)合測定技術(shù)的進(jìn)步。目前,基于受體蛋白的受體結(jié)合測定技術(shù)已經(jīng)成為食品安全檢測的有效手段,可應(yīng)用于檢測食品中抗生素、農(nóng)藥、生物毒素、病原菌、非法添加物等多種危害物質(zhì)殘留,展現(xiàn)出不俗的未來發(fā)展前景和一定的市場應(yīng)用潛力。究其原因,是不斷的生物進(jìn)化或人為進(jìn)化過程使受體蛋白對配體(如危害物質(zhì))具有高親和力和特異性,從而成為配體的“天然靶標(biāo)”。特別是當(dāng)受體蛋白能夠識(shí)別某一類物質(zhì)的共有位點(diǎn)或被某一類物質(zhì)的共有位點(diǎn)抑制活性時(shí),那么就可以利用受體蛋白實(shí)現(xiàn)對此類物質(zhì)的廣譜性檢測。比如,基于β-內(nèi)酰胺受體蛋白的檢測技術(shù)發(fā)展較為成熟,已有多款檢測試劑盒(試紙條)類產(chǎn)品實(shí)現(xiàn)商品化,用于β-內(nèi)酰胺類抗生素的快速、靈敏檢測。
不過,許多基于受體蛋白的檢測方法仍處于實(shí)驗(yàn)室研究階段,亟待解決的瓶頸問題主要包括受體蛋白的穩(wěn)定性、特異性或廣譜性等。隨著分子克隆和基因工程等生物技術(shù)的快速發(fā)展,“定向進(jìn)化”和“噬菌體展示”的概念已逐漸被人們所認(rèn)可且熟知。研究人員通過對酶的定向改造,可以使其擁有更高的活性和穩(wěn)定性[86]、更多的選擇性和功能性[87-88]。噬菌體展示技術(shù)是目前最高效的高通量篩選手段之一,能夠?qū)崿F(xiàn)基因型(DNA 序列)和表型(高親和力、高特異性)的完美對接,適用于篩選優(yōu)質(zhì)的結(jié)合蛋白或抗體[33]。對于正在開展檢測應(yīng)用研究的受體蛋白來說,這些技術(shù)的合理利用是解決上述瓶頸的關(guān)鍵。利用同源建模、分子對接和動(dòng)力學(xué)模擬,預(yù)測受體蛋白識(shí)別和結(jié)合配體的活性位點(diǎn)。針對相關(guān)位點(diǎn)設(shè)計(jì)隨機(jī)突變引物,結(jié)合PCR 擴(kuò)增技術(shù)構(gòu)建受體蛋白噬菌體展示文庫。通過對受體蛋白的定向進(jìn)化設(shè)計(jì),改變其特異性或提高其親和力、穩(wěn)定性,從而擴(kuò)展其在食品檢測中的應(yīng)用將是未來的研究熱點(diǎn)。另一方面,對危害物質(zhì)的檢測可以借助能夠被危害物質(zhì)抑制的酶,或者能夠代謝危害物質(zhì)的酶,又或者能夠識(shí)別、轉(zhuǎn)運(yùn)危害物質(zhì)的酶。這些酶都是能和危害物質(zhì)相互作用的蛋白,均可視為危害物質(zhì)的潛在“受體蛋白”。因此,將來開發(fā)此類受體蛋白并運(yùn)用于食品安全檢測也具有不錯(cuò)的研究前景。
通過多學(xué)科交叉研究的方式,開發(fā)更廉價(jià)的檢測設(shè)備,實(shí)現(xiàn)受體信號(hào)的轉(zhuǎn)換和放大;針對不同類型受體蛋白,優(yōu)化不同底盤生物中的表達(dá)條件,實(shí)現(xiàn)受體蛋白的量產(chǎn)化,從而降低受體檢測應(yīng)用的價(jià)格;一些難以制備抗體的小分子毒害物質(zhì),可以嘗試使用其天然的受體或定向篩選非天然受體,比如分子印跡蛋白質(zhì)、多肽片段等。以上都是未來值得研究的方向。