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    胡桃葉色素的提取工藝優(yōu)化及其抗氧化活性研究

    2022-05-06 08:40:30王涵艾合買提江艾海提
    中國調(diào)味品 2022年5期
    關(guān)鍵詞:胡桃液固比色素

    王涵,艾合買提江·艾海提

    (新疆大學(xué) 生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,烏魯木齊 830046)

    胡桃又叫核桃,被譽為“萬歲子”、“長壽果”[1],是一種營養(yǎng)和經(jīng)濟(jì)價值都很高的珍貴果木[2]。胡桃葉含有多種營養(yǎng)物質(zhì),如維生素B、維生素C及胡蘿卜素等,也含有豐富的生物活性物質(zhì),如核桃醌、核桃甙等。胡桃葉的藥理功能在我國民間早有記載,其制劑能改善新陳代謝,促進(jìn)機體強壯,對患維生素缺乏癥、皮膚病等均有較好療效[3-4]。隨著胡桃的生產(chǎn),胡桃葉在短時間內(nèi)大量堆積,通常處理方法是堆砌焚燒,造成嚴(yán)重的環(huán)境污染和資源的極大浪費。為了使這一巨大自然資源得到更合理的利用,需對胡桃葉資源進(jìn)行深度開發(fā)研究。目前國內(nèi)外對胡桃葉的研究有Abbasi Z等[5]和Jelodar G等[6]表明胡桃葉色素的藥理功能,Vieira V等[7]表明葡萄牙東北部胡桃葉具有抑菌活性,翟梅枝等[8]研究胡桃葉的化學(xué)組成,而對胡桃葉色素的相關(guān)研究相對較少。

    植物色素的提取方法有很多:溶劑提取法、超臨界流體萃取法、超聲輔助提取法等。溶劑提取法是植物色素提取常用的方法,但仍存在效率低、提取效果不佳等弊端;超臨界流體萃取法設(shè)備復(fù)雜、價格昂貴,而超聲輔助提取法能縮短提取時間,易操作。目前多見于提取黑玉米色素、青花椒色素和洋蔥色素等,用于胡桃葉色素的提取還未見報道[9-10]。

    胡桃葉中含有多種酚類化合物如萘醌類及其衍生物、黃酮類、鞣質(zhì)等[11]。表明胡桃葉色素具有強大的抗氧化性。為更好開發(fā)胡桃葉色素提供理論依據(jù),通過單因素試驗和響應(yīng)面分析法,對胡桃葉色素的提取條件進(jìn)行優(yōu)化,同時對得到的胡桃葉色素抗氧化活性進(jìn)行分析。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    胡桃葉:采自于新疆阿克蘇地區(qū);無水乙醇、檸檬酸、氫氧化鈉(粒)、甲醇、石油醚、硫酸亞鐵、30% H2O2、水楊酸、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)標(biāo)準(zhǔn)品:以上試劑除注明外均為分析純。

    RHP-1000A型高速多功能粉碎機 吳哲食品機械廠;SB-3200DTD型超聲波清洗機 寧波新芝生物科技股份有限公司;FA1004B型電子天平 上海越平科學(xué)儀器(蘇州)制造有限公司;RE-3000型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海亞榮生化儀器廠;Multiskan Sky酶標(biāo)儀 ThermoFisher Scientific公司;101型電熱鼓風(fēng)干燥箱、XMTD-4000型電熱恒溫水浴鍋 北京市永光明醫(yī)療儀器有限公司。

    1.2 試驗內(nèi)容

    1.2.1 原料預(yù)處理

    將清凈的胡桃葉放置于50 ℃的恒溫干燥箱內(nèi),干燥至恒重,粉碎,過80目篩,在干燥器中保存待用。

    1.2.2 最佳提取溶劑及最佳吸收波長的確定

    準(zhǔn)確稱取2.0 g胡桃葉粉6份,置于6個50 mL離心管中,分別加入20 mL蒸餾水、0.5%檸檬酸、3%氫氧化鈉、50%乙醇、甲醇、石油醚,然后于室溫振蕩50 min,抽濾,觀察色澤差異與溶解性。抽濾,取濾液1 mL定容至100 mL,進(jìn)行全波長掃描,確定最佳提取溶劑及最佳吸收波長。

    1.2.3 單因素試驗設(shè)計

    1.2.3.1 乙醇濃度對色素提取效果的影響

    準(zhǔn)確稱取2.0 g胡桃葉粉共5份,分別置于5個50 mL離心管中,分別加入30%、40%、50%、60%、70%的乙醇溶液,液固比5∶1(mL/g),超聲時間50 min,超聲功率108 W,抽濾,取1 mL稀釋100倍,在231 nm處測其吸光度。

    1.2.3.2 超聲時間對色素提取效果的影響

    準(zhǔn)確稱取2.0 g胡桃葉粉共5份,分別置于5個50 mL離心管中,在50%乙醇濃度條件下,液固比5∶1(mL/g),分別超聲30,40,50,60,70 min,超聲功率108 W,抽濾,取1 mL稀釋100倍,在231 nm處測其吸光度。

    1.2.3.3 液固比對色素提取效果的影響

    準(zhǔn)確稱取2.0 g胡桃葉粉共5份,分別置于5個50 mL離心管中,在50%乙醇濃度和超聲時間50 min的條件下,液固比分別為3∶1、4∶1、5∶1、6∶1、7∶1(mL/g),超聲功率108 W,抽濾,取1 mL稀釋100倍,在231 nm處測其吸光度。

    1.2.3.4 超聲功率

    準(zhǔn)確稱取2.0 g胡桃葉粉共5份,分別置于5個50 mL離心管中,在50%乙醇濃度、超聲時間50 min和液固比5∶1(mL/g)的條件下,超聲功率分別為72,90,108,126,144 W,抽濾,取1 mL稀釋100倍,在231 nm處測其吸光度。

    1.2.4 響應(yīng)面優(yōu)化試驗

    對單因素試驗結(jié)果進(jìn)行分析,在此基礎(chǔ)上,選取色素提取試驗中的乙醇濃度、超聲時間、液固比和超聲功率4個因素為自變量,以提取色素的吸光度值為響應(yīng)值R,采用Design Expert 8.0.6軟件對試驗數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸分析, 預(yù)測胡桃葉色素提取最佳工藝,具體因素水平表見表1。

    表1 響應(yīng)面優(yōu)化超聲輔助提取試驗的因素與水平值Table 1 The factors and levels of response surface optimization for ultrasonic-assisted extraction test

    1.3 胡桃葉色素提取物的抗氧化活性分析

    1.3.1 胡桃葉色素提取物對羥自由基(·OH)清除能力的測定

    羥自由基(·OH)清除能力的測定參考王玢[12]的方法,將胡桃葉色素濃縮液用超純水稀釋,配制成25,50,75,100,125,150,175,200 mg/L的待測溶液。向25 mL比色管中加入2 mol/L FeSO43 mL,1 mol/L H2O23 mL搖勻;其中H2O2是最后加入并啟動整個反應(yīng),接著加入6 mol/L水楊酸3 mL,搖勻,于37 ℃水浴加熱15 min后取出,在510 nm處測其吸光度A0。然后加入待測液1.0 mL搖勻,繼續(xù)水浴加熱15 min,取出測其吸光度AX。為消除后加的1.0 mL待測液所造成的體系吸光度值的降低,方法同上。恒溫15 min后測其吸光度值A(chǔ)00,加1 mL蒸餾水,搖勻后再測一次其吸光度AXX,A降低=A00-AXX。按照下式計算羥自由基清除率。

    羥自由基清除率(%)=(A0-AX-A降低)/A0×100%。

    1.3.2 胡桃葉色素對DPPH自由基清除能力的測定

    DPPH自由基清除能力的測定參考鄭嵐等[13]的方法。將胡桃葉色素濃縮液用超純水稀釋,配制成25,50,75,100,125,150,175,200 mg/L的待測溶液。用移液槍抽取不同濃度的待測樣品液2 mL與DPPH溶液2 mL,把它們加入同一試管中,混勻后避光反應(yīng)30 min,于波長517 nm處測定其吸光度A。用移液槍抽取不同濃度的待測樣品液2 mL與2 mL乙醇溶液,把它們加入同一試管中,混勻后避光反應(yīng)30 min,測定其吸光度A0。用移液槍抽取2 mL去離子水與2 mL DPPH乙醇溶液,把它們加入同一試管中,混勻后避光反應(yīng)30 min,測定其吸光度A1。按照下式計算DPPH自由基清除率。

    DPPH自由基清除率(%)=[1-(A-A0)/A1]×100%。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 提取溶劑的選擇和最大波長的確定

    不同種類溶劑對胡桃葉色素的溶解性見表2。

    表2 不同種類溶劑對胡桃葉色素的溶解性Table 2 The solubility of different kinds of solvents on pigments from walnut leaves

    由表2可知,0.5%檸檬酸、3%氫氧化鈉、50%乙醇的萃取效果較好,因此,選用0.5%檸檬酸、50%乙醇、3%氫氧化鈉的提取液進(jìn)行全波長掃描。

    選用0.5%檸檬酸、50%乙醇、3%氫氧化鈉的提取液進(jìn)行全波長掃描,見圖1。

    圖1 胡桃葉色素最佳吸收波長的確定Fig.1 The determination of optimum absorption wavelength of pigments from walnut leaves

    由圖1可知,3種溶劑的提取液均在231 nm處有明顯的吸收峰,50%乙醇的提取液在最大波長處的吸光值大于其他溶劑。因此,選取50%乙醇為胡桃葉色素的提取溶劑,231 nm作為提取色素的定量波長。

    2.2 單因素試驗結(jié)果

    2.2.1 乙醇濃度對色素提取的影響

    由圖2可知,胡桃葉色素的吸光度開始隨著乙醇濃度的增大而明顯增加,當(dāng)濃度達(dá)到50%時,胡桃葉色素的吸光度最大;當(dāng)乙醇濃度繼續(xù)增加時,吸光度反而下降。可能是由于乙醇濃度越大時,胡桃葉中的其他醇溶性、脂溶性雜質(zhì)溶出增加,競爭性地減少了提取劑中色素的含量,從而使胡桃葉色素提取液的吸光值呈逐漸下降的趨勢。因此,乙醇濃度控制在50%為宜[14]。

    圖2 乙醇濃度對胡桃葉色素提取的影響Fig.2 Effect of the ethanol concentration on the extraction of pigments from walnut leaves注:不同小寫字母表示存在顯著性差異(P<0.05),下圖同。

    2.2.2 超聲時間對色素提取的影響

    由圖3可知,超聲時間在30~50 min范圍內(nèi),吸光值隨著時間的增加而顯著變大,50 min時達(dá)到最大值,隨后吸光值明顯下降。這可能是由于隨著時間的延長,有效物質(zhì)不斷從細(xì)胞內(nèi)向細(xì)胞外溶解,50 min時基本達(dá)到濃度平衡;隨后吸光值開始減小,可能是由于高溫下提取時間過長,導(dǎo)致色素在空氣中被氧化,成分被破壞[15]。故超聲時間選擇50 min比較適宜。

    圖3 超聲時間對胡桃葉色素提取的影響Fig.3 Effect of the ultrasonic time on the extraction of pigments from walnut leaves

    2.2.3 液固比對色素提取的影響

    由圖4可知,液固比在3∶1~4∶1(mL/g)時,吸光度隨著液固比的增大呈上升趨勢,液固比增加到5∶1(mL/g)時,色素提取液的吸光度達(dá)到最大,液固比大于5∶1(mL/g)時,色素提取的吸光度隨著液固比的增加而明顯下降,這是由于當(dāng)物料一定時,增加提取溶劑的用量,能夠增加有效成分的溶出,當(dāng)提取溶劑增加到一定程度后,大部分有效成分已基本溶出[16],繼續(xù)增加溶劑用量對提取效果沒有提高的效果,造成提取溶劑的浪費[17]。所以,本試驗選擇液固比為5∶1(mL/g)。

    圖4 液固比對胡桃葉色素提取的影響Fig.4 Effect of the liquid-solid ratio on the extraction of pigments from walnut leaves

    2.2.4 超聲功率對色素提取的影響

    由圖5可知,隨著超聲功率從72 W開始增加,色素的吸光度也開始顯著增加,當(dāng)超聲功率為108 W時,色素的吸光度值達(dá)到了最大;繼續(xù)增大超聲功率,提取胡桃葉色素的溶液吸光度反而下降。對胡桃葉色素提取的這種影響可能是由于超聲功率過高,超聲波對胡桃葉的組織結(jié)構(gòu)產(chǎn)生了破壞作用[18],所以本試驗選擇超聲功率為108 W。

    圖5 超聲功率對胡桃葉色素提取的影響Fig.5 Effect of the ultrasonic power on the extraction of pigments from walnut leaves

    2.3 響應(yīng)面試驗結(jié)果

    根據(jù)單因素試驗結(jié)果和考慮綜合因素確定最佳條件,決定用乙醇濃度、超聲時間、液固比、超聲功率4個因素(分別用A、B、C、D表示),以胡桃葉色素吸光度為響應(yīng)值R設(shè)計四因素三水平共29個試驗點的組合試驗,利用Design Expert 8.0.6軟件進(jìn)行處理,試驗結(jié)果見表3。

    表3 響應(yīng)面試驗結(jié)果Table 3 Response surface experimental results

    續(xù) 表

    2.3.1 模型的建立及方差分析

    利用統(tǒng)計分析軟件Design Expert 8.0.6對表3的試驗數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸擬合后,得到乙醇濃度(A)、超聲時間(B)、液固比(C)、超聲功率(D)與吸光度值(R)之間的二次多元回歸方程為:R=0.51-0.9583E-003A+0.022B-7.000E-003C+0.013D-0.017AB-0.026AC+0.022AD-0.018BC+0.015BD+3.750E-003CD-0.038A2-0.071B2-0.026C2+0.012D2。

    由表4可知,模型極顯著(P<0.01),失擬項的P為0.0981,差異不顯著,說明該模型對優(yōu)化胡桃葉色素超聲提取工藝有實際應(yīng)用意義。對回歸方程系數(shù)進(jìn)行F檢驗和方差分析,結(jié)果表明B、D、AC、AD、A2、B2、C2對吸光值的影響極顯著(P<0.01);A、AB、BC、BD、D2對吸光值的影響顯著(P<0.05);影響因素的主次順序為超聲時間>超聲功率>乙醇濃度>液固比。

    表4 回歸方程方差分析Table 4 Analysis of variance of regression equation

    續(xù) 表

    2.3.2 響應(yīng)面分析

    各因素交互作用對胡桃葉色素吸光度的影響見圖6。

    圖6 各因素交互作用對胡桃葉色素吸光度影響的響應(yīng)面圖Fig.6 Response surface diagrams of interaction of various factors on the absorbance of pigments from walnut leaves

    由圖6可知乙醇濃度和超聲時間、乙醇濃度和液固比、乙醇濃度和超聲功率、超聲時間和液固比兩兩因素間的交互作用。響應(yīng)圖中曲線越陡峭,說明該因素對吸光度的影響越大,反之越小[19]。由圖6可知,乙醇濃度和超聲時間、乙醇濃度和液固比、乙醇濃度和超聲功率、超聲時間和液固比的交互作用比較好,而超聲時間和超聲功率的交互作用比較弱,與之前方差分析結(jié)果一致[20]。

    2.3.3 驗證試驗

    通過上述試驗分析,得到最佳提取條件為:乙醇濃度60.69%,液固比5.22∶1(mL/g),超聲時間43.19 min,超聲功率126 W,此時吸光度理論值為0.513。綜合考慮實際操作性,將條件修正為:乙醇濃度60%,液固比5∶1(mL/g),超聲時間43 min,超聲功率126 W。在此優(yōu)化工藝下進(jìn)行3次平行試驗,實際測得平均吸光值為0.506,與模型預(yù)測值相對誤差為1.36%,表明采用響應(yīng)面優(yōu)化得到的工藝可行[21]。

    2.4 胡桃葉色素提取物的抗氧化活性分析

    2.4.1 胡桃葉色素提取物對羥自由基(·OH)清除能力的測定

    羥自由基是一種氧化能力很強的自由基,可以發(fā)生電子轉(zhuǎn)移,奪取氫原子和羥基化等反應(yīng)。按照前述公式計算清除率,不同濃度的胡桃葉色素樣品對羥自由基的清除率見圖7。

    由圖7可知,濃度為25,50,75,100,125,150,175,200 mg/L胡桃葉色素對羥自由基有一定的清除作用,其清除效果與胡桃葉色素濃度在一定范圍內(nèi)呈一定的量效關(guān)系。隨著胡桃葉色素濃度的不斷增加,清除率也隨之不斷增加。胡桃葉色素濃度為200 mg/L時清除作用達(dá)到最大值64.0%。胡桃葉色素的半數(shù)清除率EC50為135.46 mg/L。

    圖7 胡桃葉色素對·OH清除能力的測定Fig.7 Determination of the scavenging ability of pigments from walnut leaves on ·OH

    2.4.2 胡桃葉色素對DPPH自由基清除能力的測定

    當(dāng)自由基清除劑存在時,DPPH自由基接受一個電子或氫原子,形成穩(wěn)定的化合物,使其溶液從深紫色變?yōu)榈S色,變色程度與其接受的電子數(shù)量成定量關(guān)系,因而可通過吸光度大小來判斷清除能力[22]。由圖8可知,胡桃葉色素對DPPH自由基都有清除能力,且隨著樣品濃度的增加,DPPH自由基的清除能力增強。胡桃葉色素濃度為200 mg/L時清除作用達(dá)到最大值95.7%。胡桃葉色素濃度>175 mg/L時,胡桃葉色素清除DPPH自由基的能力趨于穩(wěn)定。胡桃葉色素的半數(shù)清除率EC50為49.17 mg/L。

    圖8 胡桃葉色素對DPPH自由基清除能力的測定Fig.8 Determination of the scavenging ability of pigments from walnut leaves on DPPH radicals

    3 結(jié)論

    以胡桃葉為原料提取色素,并對其提取工藝和抗氧化活性進(jìn)行相關(guān)研究。由響應(yīng)面法得到最佳提取條件為乙醇濃度60%,液固比5∶1(mL/g),超聲時間43 min,超聲功率126 W,預(yù)測最大吸光度為0.513,實際吸光度的平均值為0.506。在一定濃度范圍內(nèi),胡桃葉色素提取物有較好的抗氧化活性,羥自由基、DPPH自由基的EC50分別為135.46,49.17 mg/L。胡桃葉色素提取物對羥自由基的清除能力強于DPPH自由基。因此,作為天然抗氧化劑在實際生產(chǎn)應(yīng)用時,應(yīng)選擇適宜的劑量范圍,以使其達(dá)到最佳的抗氧化效果。

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