武林芝,郝秀萍
(太原學(xué)院 材料與化學(xué)工程系,太原 030032)
樹莓果富含多種營養(yǎng)物質(zhì)和活性成分,這些物質(zhì)具有強大的保健功效[1]。我國每年的紅樹莓產(chǎn)量已經(jīng)超過了2萬噸[2]。目前,紅樹莓被加工的產(chǎn)品主要為一些果酒和飲料,種類單一,并且加工的工藝簡單[3]。隨著我國紅樹莓產(chǎn)量的不斷增加,傳統(tǒng)加工工藝也需要升級。
紅樹莓的果實是漿果型,有特殊的香味,含有豐富的營養(yǎng)物質(zhì),主要包括糖類和多種礦物質(zhì)元素[4-5]。相關(guān)的研究結(jié)果表明,在100 g的紅樹莓中含有240 mg的維生素和0.168 g鉀,維生素中含量較高的是維生素C和維生素E[6]。紅樹莓中也富含酮類物質(zhì)和酚類物質(zhì),這些物質(zhì)具有抗氧化作用[7]。
當(dāng)紅樹莓成熟之后,很容易腐爛,不易儲存,所以大部分的紅樹莓被粗加工,制成一些紅樹莓果汁和果脯[8]。我國紅樹莓的加工還處于起步階段,加工程度較低,隨著樹莓產(chǎn)量的不斷增加,樹莓的加工有待進一步升級和多樣化[9]。
本試驗通過對不同區(qū)域的紅樹莓發(fā)酵過程中的活性物質(zhì)和微生物量變化進行研究,探究紅樹莓發(fā)酵過程中活性物質(zhì)變化與微生物量變化的相關(guān)性,從而了解紅樹莓的自然發(fā)酵機理,并采用傳統(tǒng)的菌株分離方式,分離并培養(yǎng)出發(fā)酵性能良好的菌株,以豐富我國的紅樹莓發(fā)酵微生物資源庫。
1.1.1 試驗原料和試劑
兩種紅樹莓樣品A和樣品B分別從不同的市場上購得;化學(xué)試劑包括樣品琥珀酸、PDA土豆培養(yǎng)基、蘋果酸、真菌DNA提取試劑盒。
1.1.2 試驗設(shè)備與儀器
奧林巴斯光學(xué)顯微鏡、離心機、滅菌鍋、天平、振蕩儀、紫外分光光度計、水浴鍋和PCR儀。
1.2.1 紅樹莓發(fā)酵液的制備
樣品A和樣品B紅樹莓分別放入體積為30 L的發(fā)酵罐中進行發(fā)酵,每間隔10 d取一次樣品,取樣的時間分別為0,10,20,30,40,50 d,取出的樣品放置在4 ℃的條件下保存待用[10]。
1.2.2 紅樹莓發(fā)酵液理化指標(biāo)的測定
1.2.2.1 紅樹莓中有機酸含量的測定
紅樹莓中有機酸的測定根據(jù)高效液相色譜法[11],色譜柱為4.5 mm×250 mm×5 μm;洗脫時間為10 min,柱溫為38 ℃,有機酸的檢測波長為210 nm。
1.2.2.2 紅樹莓發(fā)酵液中總酚含量的測定
紅樹莓發(fā)酵液中總酚的測定根據(jù)參考文獻[12],采用福林酚法對紅樹莓發(fā)酵液中總酚進行測定,把沒食子酸的質(zhì)量濃度定為橫坐標(biāo),吸光度定為縱坐標(biāo),并根據(jù)回歸方程式Y(jié)=0.0125X+0.0076(R2=0.9998)進行計算。吸取1 mL的樣品,在樣品中添加2 mL的福林酚試劑,搖勻,避光1 h,在波長760 nm處測定吸光值,并計算總酚含量。
1.2.2.3 紅樹莓發(fā)酵液對DPPH自由基清除率的測定
稱取0.005 g DPPH,將其溶解在100 mL的無水乙醇中,并制成DPPH自由基溶液。吸取1 mL稀釋后的紅樹莓發(fā)酵液,與3 mL DPPH自由基溶液在遮光條件下反應(yīng)25 min,測定波長在517 nm處的吸光值X1。取1 mL稀釋后的紅樹莓發(fā)酵液和3 mL無水乙醇自由基溶液,反應(yīng)25 min,并在波長517 nm處測定吸光值X2。取1 mL無水乙醇和3 mL DPPH自由基溶液混合,搖勻,反應(yīng)25 min,在波長517 nm條件下測定吸光值X3,X3為空白對照。計算公式如下:
DPPH自由基清除率=[1-(X1-X2)/X3]×100%[13]。
1.2.2.4 紅樹莓發(fā)酵液中DNA的提取和檢測
紅樹莓中真菌的基因組采用基因組的試劑盒進行提取,提取之后,DNA在電泳的條件下進行檢測[14-15]。
1.2.2.5 紅樹莓發(fā)酵液中真菌的分離和純化
真菌的分離和純化:取少許發(fā)酵完成的紅樹莓發(fā)酵液,在無菌的環(huán)境條件下稀釋,把稀釋后的菌液涂于PDA平板上,將接種后的培養(yǎng)基放置在25 ℃恒溫條件下,培養(yǎng)36 h,并挑取單個菌落進行分離純化培養(yǎng),在4 ℃的條件下保存?zhèn)溆肹16]。
利用分子生物學(xué)鑒定:將分離純化的菌株使用真菌提取試劑盒進行DNA提取,使用ITS5/ITS4引物對真菌的保守區(qū)域進行擴增[17]。
利用高效液相色譜法,對紅樹莓發(fā)酵后的各種酸進行分析和測定,測定的樣品由樣品A和樣品B混勻,混勻之后的紅樹莓發(fā)酵液中有機酸含量變化見圖1。
圖1 紅樹莓發(fā)酵過程中有機酸含量的變化Fig.1 Changes of organic acid content in the fermentation process of Rubus idaeus L.
由圖1可知,在紅樹莓發(fā)酵后,發(fā)酵液中有機酸變化明顯,而隨著發(fā)酵時間的增長,乳酸、檸檬酸和蘋果酸的變化最為明顯;琥鉑酸和酒石酸的變化量較少。紅樹莓發(fā)酵50 d之后,發(fā)酵液中含量最多的乳酸由原來的1.52 mg/mL增加至14.0 mg/mL,其含量增大了8.2倍;檸檬酸在紅樹莓發(fā)酵過程中呈現(xiàn)先增高后降低然后再增高的趨勢,當(dāng)發(fā)酵至50 d結(jié)束時,紅樹莓中的檸檬酸含量為6 mg/mL,相比之前的0.8 mg/mL也增加了6.5倍。
紅樹莓發(fā)酵過程中有機酸含量的變化與紅樹莓發(fā)酵液中微生物的糖代謝有著密切的關(guān)系,隨著發(fā)酵時間延長,發(fā)酵液中的氧氣含量逐漸被消耗,使得檸檬酸轉(zhuǎn)化為琥珀酸的氧化反應(yīng)受到阻礙,造成檸檬酸在紅樹莓自然發(fā)酵的過程中逐漸積累,發(fā)酵液中的琥珀酸含量逐漸降低。在缺氧的條件下,發(fā)酵液中的丙酮酸被還原為乙醇或者乳酸,那么樣品中的乳酸也會隨著發(fā)酵時間的增長而逐漸升高。此外,在紅樹莓發(fā)酵液中可能存在一些將蘋果酸轉(zhuǎn)化為乳酸的細(xì)菌,從而將蘋果酸降解,乳酸含量增高[18]。
本試驗通過Folin-Ciocalteau法對紅樹莓中總酚的含量進行測定,兩種樣品在不同時間段內(nèi)的總酚含量變化見圖2。
圖2 兩個樣本發(fā)酵過程中總酚含量的變化Fig.2 Changes of total phenol content during the fermentation process of two samples
由圖2可知,無論是樣品A還是樣品B,發(fā)酵后樣品中的總酚含量明顯增加。當(dāng)發(fā)酵時間至30 d時,兩個樣品中的總酚含量均最高,其中樣品A中的總酚含量為1.2 mg/mL,樣品B中的總酚含量為1.14 mg/mL。當(dāng)發(fā)酵時間超過30 d時,紅樹莓自然發(fā)酵液中的總酚逐漸呈現(xiàn)下降的趨勢,但是下降的趨勢并不明顯。當(dāng)發(fā)酵時間為50 d時,樣品A中總酚含量為0.9 mg/mL,而樣品B中總酚含量為0.7 mg/mL,分別是未經(jīng)過發(fā)酵時的2倍和8倍。樣品A和樣品B在發(fā)酵過程中,樣品A中的總酚一直高于樣品B中的總酚,這是由于不同的生活環(huán)境導(dǎo)致紅樹莓中酚類物質(zhì)的差異。
酚類物質(zhì)是人們公認(rèn)的抗氧化物質(zhì)[19],經(jīng)過發(fā)酵的紅樹莓發(fā)酵液中的酚類物質(zhì)隨著發(fā)酵時間的增長先增加后降低,在發(fā)酵結(jié)束時,發(fā)酵液中的酚類物質(zhì)逐漸降低,這可能是由于發(fā)酵液中的酚類物質(zhì)被分解,導(dǎo)致酚類成分降低。
DPPH自由基為脂溶性自由基,以氮為中心,與羥基自由基和超氧自由基相比,其穩(wěn)定性更高,是測定物質(zhì)抗氧化活性最基本的方法之一。由圖3可知,紅樹莓在發(fā)酵過程中,發(fā)酵液對DPPH自由基的清除率明顯增強,隨著發(fā)酵時間的延長,DPPH自由基的清除率更高。在紅樹莓發(fā)酵的過程中,樣品A對DPPH自由基的清除率明顯高于樣品B對DPPH自由基的清除率。當(dāng)發(fā)酵時間為50 d時,樣品A對DPPH自由基的清除率為45%,樣品B對DPPH自由基的清除率為33%,分別是未發(fā)酵時的1.8倍和1.32倍。
圖3 兩個樣本發(fā)酵過程中DPPH自由基清除率的變化Fig.3 Changes of DPPH free radical scavenging rates during the fermentation process of two samples
對于樣品中的微生物多樣性分析,常常使用α多樣性分析[20],一般用于對物種豐富度和多樣性分析。Ace、Sobs和Chao常常被用于估計微生物群落中的豐富度,香農(nóng)指數(shù)(Shannon)和辛普森指數(shù)(Simpson)被用于計算微生物多樣性,Shannon和Simpson表示微生物的多樣性高低,Coverage表示對樣本的覆蓋率。
由表1可知,樣品A和樣品B中的真菌群落多樣性和豐富度均存在一定的差異,樣品A中的Ace、Chao、Sobs和Shannon數(shù)值均小于樣品B中的數(shù)值,Simpson大于樣品B中的數(shù)值,表明樣品A中的真菌豐富度和多樣性一直高于樣品B中的豐富度和多樣性。兩個樣品中的覆蓋率均大于0.99,表明試驗結(jié)果與真實值較接近。樣品A中的真菌多樣性明顯多于樣品B中的真菌多樣性,這是由于樣品A的采集地溫度和濕度相對較高,適宜微生物的生長和繁殖,使得樣品A中的外源微生物明顯多于樣品B中的外源微生物,所以導(dǎo)致樣品A在自然發(fā)酵過程中微生物的含量明顯高于樣品B。
表1 紅樹莓自然發(fā)酵液中的真菌多樣性分析Table 1 Analysis of fungal diversity in natural fermentation broth of Rubus idaeus L.
從紅樹莓發(fā)酵結(jié)束后的發(fā)酵液中一共鑒定到50個不同屬,其中樣品A中含有45個不同的屬,樣品B中含有30個不同的屬,樣品A中的真菌多樣性明顯多于樣品B中的真菌多樣性。
由圖4可知,兩種樣品中的真菌優(yōu)勢屬為Saccharomyces、Hanseniaspora、Kazachstania和Pichia。Hanseniaspora(漢森氏酵母)和Kazachstania、Pichia在兩個樣品中所占的比例相似。樣品A中的Saccharomyces少于樣品B。說明不同產(chǎn)地的紅樹莓樣品A和樣品B在發(fā)酵過程中微生物的物種量存在一定的差異。
圖4 兩個樣本發(fā)酵完成后真菌群落多樣性的分析Fig.4 Analysis of fungal community diversity after the fermentation of two samples
將紅樹莓中的真菌進行分離純化,分離之后獲得菌株,按照試劑盒的要求,提取菌株的DNA,獲得DNA之后進行PCR擴增,將PCR產(chǎn)物在電泳的條件下進行質(zhì)量檢測,把質(zhì)量好的PCR產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序。完成測序后分析并確定分離菌株大致的屬范圍,從NCBI數(shù)據(jù)庫中下載數(shù)據(jù)。
下載完成后的數(shù)據(jù)使用BioEdit進行對齊,將對齊好的數(shù)據(jù)上傳至Cipres (https://www.phylo.org/portal2/login!input.action)平臺上,進行系統(tǒng)發(fā)育樹的建立,分離獲得的菌株親緣關(guān)系見圖5。
圖5 基于ITS分析獲得紅樹莓發(fā)酵液中微生物多樣性的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.5 Phylogenetic tree of microbial diversity in Rubus idaeus L. fermentation broth obtained based on ITS analysis注:每個分支上的數(shù)值表示支持率:最大簡約樹和貝葉斯樹的支持率,最大簡約樹的支持率70%被展示,貝葉斯樹的支持率大于90%被展示。
由圖5可知,分離獲得的真菌種類最多的為Pichia(畢赤酵母屬),一共有7個菌株,其次為Kazachstania(哈薩克斯坦酵母屬),一共有1個菌株。
紅樹莓經(jīng)過發(fā)酵后,能產(chǎn)生有利于身體健康的微生物代謝產(chǎn)物、酶和多糖等多種物質(zhì)。但是紅樹莓發(fā)酵液的質(zhì)量不穩(wěn)定,發(fā)酵產(chǎn)品質(zhì)量受原材料質(zhì)量、產(chǎn)地和發(fā)酵工藝等多種因素的影響。本研究以紅樹莓作為原料,研究紅樹莓自然發(fā)酵過程中發(fā)酵液活性成分和微生物的多樣性的改變。