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    金銀花U6啟動(dòng)子的克隆及轉(zhuǎn)錄活性分析

    2022-04-08 05:44:44唐志強(qiáng)李小麗許小涵蒲高斌
    山東科學(xué) 2022年2期
    關(guān)鍵詞:原生質(zhì)金銀花克隆

    唐志強(qiáng),李小麗,許小涵,蒲高斌,2*

    (1.山東中醫(yī)藥大學(xué),山東 濟(jì)南 250355;2.山東省中藥質(zhì)量控制與全產(chǎn)業(yè)鏈建設(shè)協(xié)同創(chuàng)新中心,山東 濟(jì)南 250355)

    金銀花為忍冬科植物忍冬LonicerajaponicaThunb.的干燥花蕾或帶初開的花,有清熱解毒、疏散風(fēng)熱等功效。目前,中國(guó)新冠肺炎疫情雖然整體得到了有效的控制,但是國(guó)內(nèi)個(gè)別地區(qū)仍有反復(fù),國(guó)際形勢(shì)依然非常嚴(yán)峻。金銀花為清熱類藥物,通過發(fā)揮清熱解毒、疏風(fēng)散熱等功效,起到防御病毒的作用,成為各個(gè)省份使用頻率較高的中藥之一,社會(huì)需求也隨之不斷加大[1]。病蟲害是導(dǎo)致金銀花產(chǎn)量不高、質(zhì)量不穩(wěn)的主要原因,因此急需培育出優(yōu)良種質(zhì)來提高金銀花的產(chǎn)量、質(zhì)量和抗病蟲害能力,滿足社會(huì)需求。

    基因編輯是改良品種、創(chuàng)新種質(zhì)的新方法,已在多個(gè)物種中成功應(yīng)用。CRISPR/Cas9基因組編輯技術(shù)因?yàn)槠涓咝Ш?jiǎn)便等優(yōu)點(diǎn),已經(jīng)成為目前功能基因研究及種質(zhì)改良的主要工具。在水稻中過表達(dá)OsPPDK基因,能夠在種子形成時(shí)期提高葉片的光合效率,促進(jìn)衰老葉片的N活化,在延緩葉片衰老的同時(shí)提升水稻的持綠性,為增加水稻產(chǎn)量打下了基礎(chǔ)[2]。Wang等[3]利用CRISPR/Cas9技術(shù)生成攜帶TaMLO-A1等位基因突變的轉(zhuǎn)基因小麥植株,提高抗白粉病能力的同時(shí)增加了小麥的產(chǎn)量。Do等[4]通過編輯大豆FAD2-1A和FAD2-1B基因,將油酸含量增加了80%,亞油酸含量下降到1.3%~1.7%,改善了種子油脂的性狀,創(chuàng)造出高油酸大豆。U6RNA是一種小的非編碼RNA,廣泛參與mRNA前體的剪接成熟[5]。U6RNA所對(duì)應(yīng)的U6啟動(dòng)子通常被用來驅(qū)動(dòng)sgRNA的轉(zhuǎn)錄,是CRISPR/Cas9系統(tǒng)中的重要組成部分。目前,U6啟動(dòng)子已在多種植物的CRISPR/Cas9系統(tǒng)中使用,包括蘋果[6]、藜麥[7]、大豆[8]、地錢[9]等。藏旭陽等[10-11]利用海島棉的U6啟動(dòng)子構(gòu)建GbU6-1P啟動(dòng)子并且利用PEG瞬時(shí)轉(zhuǎn)化法將核心片段轉(zhuǎn)入原生質(zhì)體中,篩選出GbU6-7P啟動(dòng)子,以GGB為靶序列構(gòu)建CRISPR/Cas9基因編輯載體并成功轉(zhuǎn)入棉花的原生質(zhì)體中,實(shí)現(xiàn)了對(duì)棉花內(nèi)源靶基因GGB的定點(diǎn)編輯。王怡婷等[12]以大豆YT9啟動(dòng)子構(gòu)建的CRISPR/Cas9基因編輯體系能夠靶向敲除GmPDS11和GmPDS18雙基因,實(shí)現(xiàn)大豆靶向基因編輯功能。Pompili等[13]利用擬南芥U6啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)sgRNA的轉(zhuǎn)錄,對(duì)蘋果中火疫病相關(guān)基因進(jìn)行定點(diǎn)突變,以植株接種病菌后的發(fā)病情況來判斷基因編輯的效果,統(tǒng)計(jì)了蘋果的轉(zhuǎn)基因和基因組編輯效率。

    近年來,越來越多的金銀花功能基因被相繼克隆出來,為金銀花的基因編輯奠定了基礎(chǔ)。喬永剛等[14]從金銀花中篩選出34個(gè)AP2轉(zhuǎn)錄因子,DREB和RAV均能響應(yīng)低溫脅迫,隨著處理時(shí)間和組織部位的不同,表達(dá)量也存在差異,在一定程度上闡明金銀花AP2轉(zhuǎn)錄因子響應(yīng)低溫脅迫的機(jī)制。Yan等[15]發(fā)現(xiàn)在不同濃度的鹽脅迫下,HQT和PAL家族基因轉(zhuǎn)錄水平升高,綠原酸含量升高,藥材生物量積累和質(zhì)量都得到提高。Qi等[16]采用BLAST法和HMM法從忍冬轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)果中得到CYP450基因,通過qRT-PCR篩選出5個(gè)與綠原酸生物合成相關(guān)的CYP450s酶進(jìn)行探究,克隆得到3個(gè)LjC4Hs基因和2個(gè)LjC3Hs基因,有效地促進(jìn)了綠原酸的生物合成。目前為止U6啟動(dòng)子已應(yīng)用于多種植物,但是關(guān)于金銀花U6啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄活性的研究還未見報(bào)道。金銀花基因組中含有多種U6啟動(dòng)子,這些啟動(dòng)子的活性也并不相同,并且U6啟動(dòng)子具有物種偏好性,外源的啟動(dòng)子在金銀花中可能難以高效啟動(dòng)轉(zhuǎn)錄,因此有必要克隆金銀花自身的U6啟動(dòng)子,以便于開展金銀花的基因編輯。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    本研究所用的金銀花華金6號(hào)和煙草均由山東中醫(yī)藥大學(xué)中藥資源研究室種植;大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞購自全式金生物技術(shù)有限公司;農(nóng)桿菌感受態(tài)細(xì)胞購自上海唯地生物技術(shù)有限公司;基因組DNA提取試劑盒、純化試劑盒和5minTMTA/Blunt-Zero Cloning Kit購自南京諾唯贊生物技術(shù)有限公司;質(zhì)粒小提試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司;啟動(dòng)子測(cè)序由鉑尚生物技術(shù)(上海)有限公司完成;DNA聚合酶采用北京聚合美生物科技有限公司生產(chǎn)的新型藍(lán)色染料高保真Taq酶mix;染色液5-溴-4-氯-3-吲哚葡萄糖苷X-Gluc和10×PBS緩沖液購自北京索萊寶科技有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 啟動(dòng)子的克隆

    取山東中醫(yī)藥大學(xué)藥圃中生長(zhǎng)良好的華金6號(hào)金銀花葉片,采用植物基因組提取試劑盒提取金銀花基因組DNA。利用設(shè)計(jì)好的引物(表1)和DNA聚合酶進(jìn)行擴(kuò)增,PCR程序?yàn)椋?8 ℃ 3 min;95 ℃ 30 s、55 ℃ 30 s、72 ℃ 1 min,32個(gè)循環(huán);72 ℃ 5 min。反應(yīng)體系為:DNA模板2.5 μL、正向引物和反向引物各1.25 μL、DNA聚合酶25 μL、水20 μL,共50 μL。用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)正確后,膠回收試劑盒回收并純化目的片段。回收完成后與pCE2 TA/Blunt-Zero載體連接、轉(zhuǎn)化、一次活化,對(duì)重組質(zhì)粒采用PCR方法鑒定,鑒定正確的質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序。用DNAMAN軟件對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行分析,序列對(duì)比正確后進(jìn)行二次活化。

    表1 本研究使用的引物序列

    1.2.2 U6啟動(dòng)子表達(dá)載體構(gòu)建

    圖1 金銀花不同截短U6啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)GUS的融合表達(dá)載體構(gòu)建

    1.2.3 原生質(zhì)體的制備

    取無菌煙草葉片1 g,剪成約0.5 cm2的碎片,加入10 mL酶解液(纖維素酶1%,離析酶0.5%,甘露醇0.6 mol/L,MES 20 mmol/L,KCl 20 mmol/L,55 ℃水浴10 min后加入BSA 0.1%和CaCl21 mmol/L),26 ℃,60 r/min,避光酶解4 h[17]。酶解后的葉片過70 um細(xì)胞濾網(wǎng),700 r/min離心5 min,棄上清后用W5(NaCl 154 mmol/L,CaCl2125 mmol/L,KCl 5 mmol/L)洗滌3次,加入1 mL MMM緩沖液(MgCl215 mmol/L,MES 0.1%,甘露醇 0.5 mmol/L),于4 ℃保存。煙草原生質(zhì)體在4 ℃中保存的時(shí)間約為3 d[18]。

    1.2.4 農(nóng)桿菌侵染原生質(zhì)體

    取1 mL二次活化后的菌液,4 000 r/min離心5 min,棄上清;加入1 mL LB液體培養(yǎng)基懸浮菌體,靜置2 min后離心,棄上清;加入1 mL MS液體培養(yǎng)基,懸浮菌體,28 ℃,200 r/min培養(yǎng)1~2 h;加入1 mL原生質(zhì)體,25 ℃培養(yǎng)30 min,離心,棄上清,加入1 mL MS液體培養(yǎng)基懸浮后,28 ℃放置24 h。

    1.2.5 原生質(zhì)體染色和計(jì)數(shù)

    在原生質(zhì)體中加入1 mL的染色液(X-Gluc母液100 mL+50 mmol/L的PBS 900 mL;X-Gluc母液:5-溴-4-氯-3-吲哚葡萄糖苷 X-Gluc用N-N-二甲基甲酰胺配成20 mmol/L),37 ℃染色12 h。12 h后使用75%乙醇脫色3次,滴入血球計(jì)數(shù)板,鏡檢。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 啟動(dòng)子克隆

    從華金6號(hào)金銀花中分別克隆出Chr01 U6-F1、Chr02 U61-F1、Chr02 U61-F2、Chr02 U62-F1和Chr02 U62-F2啟動(dòng)子片段,回收純化后與T載體連接,PCR擴(kuò)增后根據(jù)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果(圖2),將正確的質(zhì)粒送去測(cè)序。測(cè)序結(jié)果符合預(yù)期。

    注:M—D2000; 1—Chr01 U6-F1;2—Chr02 U61-F1;3—Chr02 U61-F2;4—Chr02 U62-F1;5—Chr02 U62-F2。

    2.2 啟動(dòng)子序列分析

    本研究克隆了金銀花中3個(gè)候選的啟動(dòng)子,發(fā)現(xiàn)其都含有RNA聚合酶Ⅲ結(jié)合、識(shí)別所需要的TATA框和USE元件(圖3),這表明克隆的3個(gè)金銀花U6啟動(dòng)子可能都具有轉(zhuǎn)錄活性。

    注:箭頭為U6RNA的轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)。

    2.3 表達(dá)載體的構(gòu)建

    利用Hind Ⅲ和BamH Ⅰ雙酶切構(gòu)建好的T載體(圖4),經(jīng)驗(yàn)證每個(gè)啟動(dòng)子片段大小正確,回收、純化目的片段并成功與PBI 121載體大片段相連(圖5)。

    注:M—D2000。

    注:M—D2000;1—Chr01 U6-F1;2—Chr02 U61-F1;3—Chr02 U61-F2;4—Chr02 U62-F1;5—Chr02 U62-F2。

    2.4 啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄活性分析

    農(nóng)桿菌侵染原生質(zhì)體后,利用染色液對(duì)原生質(zhì)體進(jìn)行染色。本研究以CaMV35S啟動(dòng)子為陽性對(duì)照,以農(nóng)桿菌為陰性對(duì)照,通過染色的結(jié)果可發(fā)現(xiàn)Chr01 U6-F1啟動(dòng)子具有較高的轉(zhuǎn)錄活性,Chr02 U62-F1啟動(dòng)子的轉(zhuǎn)錄活性低于Chr01 U6-F1啟動(dòng)子,Chr02 U61-F1、Chr02 U61-F2和Chr02 U62-F2啟動(dòng)子染色結(jié)果均未出現(xiàn)藍(lán)色,表明這些啟動(dòng)子不具備轉(zhuǎn)錄活性或轉(zhuǎn)錄活性極低(圖6)。

    注:A—煙草原生質(zhì)體;B—Chr01 U6-F1啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;C—Chr02 U61-F1啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;D—Chr02 U61-F2啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色; E—Chr02 U62-F1啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;F—Chr02 U62-F2啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;G—CaMV35S轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;H—農(nóng)桿菌侵染后的原生質(zhì)體染色。

    3 小結(jié)與討論

    本研究從金銀花全基因組測(cè)序結(jié)果中篩選出多個(gè)候選的U6啟動(dòng)子,利用BLAST和PCR驗(yàn)證,最終確立Chr01 U6-F1、Chr02 U61-F1、Chr02 U61-F2、Chr02 U62-F1和Chr02 U62-F2這5種U6啟動(dòng)子進(jìn)行后續(xù)研究。通過構(gòu)建不同長(zhǎng)度啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)GUS的植物融合表達(dá)載體和農(nóng)桿菌瞬時(shí)轉(zhuǎn)化等方法,最終篩選出Chr01 U6-F1這一長(zhǎng)度為255 bp的高效轉(zhuǎn)錄啟動(dòng)子。在篩選出的啟動(dòng)子中Chr02 U62-F1的轉(zhuǎn)錄活性低于Chr01 U6-F1,其余啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄活性較低或不具有轉(zhuǎn)錄活性。針對(duì)Chr02 U62-F1和Chr02 U62-F2這兩個(gè)同一啟動(dòng)子5′端不同截短染色情況差異提出假設(shè),猜測(cè)其5′端有抑制因子或隨著序列長(zhǎng)度增加,組織轉(zhuǎn)染難度也相應(yīng)提高。研究表明,U6啟動(dòng)子在具備必要元件時(shí)即可擁有轉(zhuǎn)錄活性,而序列過長(zhǎng)可能會(huì)存在抑制因子,使較長(zhǎng)序列的U6啟動(dòng)子的轉(zhuǎn)錄活性受到抑制[19]。卞書迅等[20]在包含必要的USE和TATA盒前提下,把蘋果10號(hào)染色體上的U6啟動(dòng)子從5′端進(jìn)行不同長(zhǎng)度的截短,發(fā)現(xiàn)長(zhǎng)度為275 bp的U6啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄活性最高,而長(zhǎng)度為1 527 bp和959 bp的U6啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄活性較低。卞書迅提出蘋果U6啟動(dòng)子的5′末端存在一些抑制因子,抑制了這些啟動(dòng)子的轉(zhuǎn)錄活性。雷建峰等[21]從棉花中克隆得長(zhǎng)度分別為1 166、1 119、1 134、1 214和1 176 bp的5種GbU6啟動(dòng)子,經(jīng)過篩選,最終確定了轉(zhuǎn)錄活性較高,序列長(zhǎng)度為1 134 bp的GbU6-5P,為構(gòu)建棉花CRISPR/Cas9基因組編輯載體系統(tǒng)提供了有效的啟動(dòng)子。在番茄中,U6啟動(dòng)子被截取到200 bp左右時(shí)仍具有較高的轉(zhuǎn)錄活性[22],而在擬南芥中,U6啟動(dòng)子被截取到79 bp時(shí)還可用于基因編輯體系[23]。這些研究結(jié)果進(jìn)一步驗(yàn)證了啟動(dòng)子5′端有抑制因子或隨著序列長(zhǎng)度增加組織轉(zhuǎn)染難度也相應(yīng)提高的猜想。

    綜上所述,本研究克隆并鑒定得到了一個(gè)具有高效轉(zhuǎn)錄活性的U6啟動(dòng)子,為在金銀花中建立CRISPR/Cas9基因組編輯系統(tǒng)提供了理論依據(jù),為后續(xù)對(duì)金銀花功能基因研究、種質(zhì)改良、新品種培育、提高抵抗生物及非生物脅迫能力奠定了堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。

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