雷林翰 鄭迪杰 吳純宸 鄭戩 謝華華 華豪 孫誠誼 喻超
貴州醫(yī)科大學臨床醫(yī)學院(貴陽 550004);貴州醫(yī)科大學附屬醫(yī)院肝膽外科,貴州醫(yī)科大學肝膽胰脾重點實驗室,貴州省肝膽胰脾疾病研究所(貴陽 550004)
肝細胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是侵襲性較強的惡性腫瘤,也是臨床上最常見的肝癌類型,預(yù)計到2025年全球肝癌發(fā)病人數(shù)將超過100 萬例[1],但HCC 的治療情況并不令人滿意,究其原因主要在于發(fā)病機制尚未完全闡明,缺乏針對性的有效手段[2]。因此,深入研究HCC 病變過程的分子生物學機制及發(fā)現(xiàn)潛在治療靶點是攻克HCC 的當務(wù)之急。目前研究發(fā)現(xiàn)長鏈非編碼RNA(LncRNA)在肝癌、胰腺癌等各種癌癥中失調(diào),這表明lncRNA可以作為新的治療靶點和潛在的生物標志物用于患者的診斷和預(yù)后[3-5]。Linc00858 長度為2 685 個核苷酸,在胃癌、結(jié)腸癌、卵巢癌、宮頸癌等惡性腫瘤中均為異常高表達。有研究[6-9]指出Linc00858 可以通過調(diào)控多種microRNA,從而影響腫瘤細胞的增殖、侵襲、轉(zhuǎn)移和凋亡,另外高表達Linc00858 還與腫瘤的臨床分期、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移密切相關(guān)[10]。因此Linc00858 是在腫瘤靶向治療中很有前景的候選基因,然而在HCC 中Linc00858 的研究尚少。根據(jù)生物信息學分析,本研究選擇微小RNA?3126?5p(miR?3126?5p)作為Linc00858 的調(diào)控對象,通過初步探索Linc00858通過靶向調(diào)控miR?3126?5p 參與HCC 的增殖、遷移和侵襲的分子機制,以期探索新的HCC 治療靶點。
1.1 臨床樣本及細胞系通過收集2018年9月至2020年12月貴州醫(yī)科大學附屬醫(yī)院肝膽外科共24 例經(jīng)病理診斷為肝細胞肝癌的手術(shù)切除標本。所有患者在手術(shù)前均未接受任何輔助放、化療。每例標本均取得癌組織和相應(yīng)的癌旁組織,所有手術(shù)標本使用液氮速凍,放置于-80 ℃冰箱保存。本研究獲得貴州醫(yī)科大學附屬醫(yī)院倫理委員會同意,患者均簽署知情同意書。人正常肝細胞LO2和人肝癌細胞HUH?7,SK?HEP?1,HEP3B,MHCC?97H 及HEPG2 細胞系均購自中國科學院上海細胞生物研究所細胞庫。
1.2 實驗材料DMEM/High Glucose 培養(yǎng)基、0.25%胰蛋白酶消化液(含EDTA,含酚紅)均購自武漢賽維爾生物科技有限公司;胎牛血清(Fetal Bovine Serum)購自以色列biological industries 公司;Trizol 試劑購自美國Invitrogen 公司;逆轉(zhuǎn)錄和PCR SYBRGREEN定量試劑盒均購自日本Takara生物技術(shù)有限公司,CCK?8 試劑盒購自江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司,Transwell 小室和Matrigel 基質(zhì)膠均購自美國Corning 公司,雙熒光素酶試劑盒購自美國Promega公司;兔抗人波形蛋白(Vimentin)單克隆抗體、小鼠抗人E?鈣粘蛋白(E?cdherin)單克隆抗體、兔抗人細胞周期蛋白E1(cyclinE1)單克隆抗體、兔抗人周期素依賴性激酶2(CDK2)單克隆抗體、兔抗人抗Kip1(p27)單克隆抗體、兔抗人GAPDH 單克隆抗體均購自武漢三鷹生物工程有限公司;RIPA 裂解液、辣根過氧化物酶標記的羊抗小鼠和兔IgG(二抗)、超敏ECL化學發(fā)光即用型底物劑盒均購自武漢博士德生物工程有限公司;PVDF 膜購自美國Sigma?Aldrich 公司;攜帶Linc00858cDNA的重組慢病毒及其陰性對照慢病毒、攜帶Linc00858?shRNA 的重組慢病毒及其陰性對照慢病毒、慢病毒感染增強液HitransG A 均購自上海吉凱基因化學技術(shù)有限公司;miR?3126?5p mimics 和miR?3126?5p inhibitor 及其相應(yīng)陰性對照均購自廣州瑞博生物科技有限公司。Linc00858 上游引物序列5'?TG?CAATCTGTTTAATGTGCCAGT?3',下游引物序列5'?CTGGAGCACCTCTCTAAGAACC?3';miR?3126?5p上游引物序列5'?ATGCGTGAGGGACAGATGC?3',下游引物序列5'?GTCGTATCCAGTGCAGGGTC?3';GAPDH 上游引物序列5'?GGAGCGAGATCCCTC?CAAAAT?3',下游引物序列5'?GGCTGTTGTCATA?CTTCTCATGG?3';U6 上游引物序列5'?CTCGCTTC?GGCAGCACA?3',下游引物序列5'?ACGCTTCAC?GAATTTGCGT?3'。
1.3 試驗方法
1.3.1 實時熒光定量PCR使用Trizol 法提取出總RNA。使用PrimeScriptTMRT reagent Kit(日本Takara 公司)對提取出的總RNA 進行逆轉(zhuǎn)錄以獲得cDNA;采用SYBR?Premix Ex TaqTM ⅡKit(日本Takara 公司)進行qRT?PCR 分析;分別以GAPDH 和U6 作為Linc00858 和miR?3126?5p 的內(nèi)參。以2?ΔΔCt法值表示目的基因的相對表達水平。
1.3.2 細胞轉(zhuǎn)染和分組將正常肝細胞和各肝癌細胞系從液氮罐中取出,37 ℃水浴鍋復(fù)蘇,用DMEM完全培養(yǎng)基培養(yǎng)(10%FBS、1%青鏈霉素),放置于恒溫37 ℃、體積分數(shù)5%CO2的培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)。選取生長狀態(tài)良好的HUH?7 細胞,將其在6 孔板中進行鋪板,每孔密度為1×105個/孔,使用慢病毒感染增強液HitransG A 進行重組慢病毒感染,12~16 h 后更換新鮮培養(yǎng)基;分組為Empty Vector組(陰性對照組)和pcDNA?Linc00858 組;分別使用mimics?NC、miR?3126?5p mimics 與Linc00858 過表達慢病毒共轉(zhuǎn)染HUH?7 細胞,分組為pcDNA?Linc00858+miR?NC 組與pcDNA?Linc00858+miR?3126?5p mimics 組;MCHH?97H 細胞的轉(zhuǎn)染方式如上,分組為sh?NC 組(陰性對照)組和sh?Linc00858組,分別使用inhibitor?NC、miR?3126?5p inhibitor 與sh?Linc00858 共轉(zhuǎn)染MCHH?97H 細胞,分組為sh?Linc00858+anti?NC 組和sh?Linc00858+anti?miR?3126?5p 組;以上步驟均嚴格按照吉凱基因公司《重組慢病毒載體使用手冊》和銳博生物公司《miRNA 產(chǎn)品使用說明》進行操作,篩選出穩(wěn)定表達的細胞株,并采用qRT?PCR 法檢測轉(zhuǎn)染效率。
1.3.3 CCK?8法檢測細胞增殖各組細胞按照3×103個/孔的密度接種于96 孔板中,四周每孔加入100 μL PBS 以減少蒸發(fā),隨后放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞貼壁后觀察。分別取6、24、48、72 h 共4 個時間點,每孔加入10 μL 的CCK?8 試劑后避光孵育2 h,隨后利用酶標儀在450 nm 的波長下檢測其吸光值(OD值),并繪制生長曲線。每組設(shè)置5 個復(fù)孔,且每組實驗重復(fù)3 次。
1.3.4 Transwell 法檢測細胞遷移和侵襲能力將Matrigel 膠與無血清DMEM 培養(yǎng)基按1∶8 的比例配比稀釋,在每個小室中加入60 μL 基質(zhì),置37 ℃30~60 min(培養(yǎng)箱內(nèi))使膠凝固。用200 μL 的無血清培養(yǎng)基將各組細胞密度調(diào)整為1×105個/孔,將其加入到侵襲小室內(nèi),每種細胞種3 個小室。下室加入含20% FBS 的完全培養(yǎng)基600 μL,培養(yǎng)24~48 h 后。棄去小室內(nèi)培養(yǎng)基,用PBS漂洗3次。4%的多聚甲醇固定20~30 min,用0.1%結(jié)晶紫染色20~30 min,用清水洗3 次,用棉簽輕輕拭去小室的上室膜中未穿過小室的細胞,待烘箱將其烘干后,在倒置光學顯微鏡選取5 個視野拍照記錄,將各組細胞進行計數(shù)匯總,再進行統(tǒng)計學分析。Transwell 遷移實驗中,小室不鋪Matrigel 膠,其余步驟與前述的侵襲實驗相同。
1.3.5 雙熒光素酶報告基因檢測構(gòu)建含有miR?3126?5p 結(jié)合位點的(3'UTR)雙熒光報告基因載體(廣州市銳博生物科技有限公司),即linc00858野生型(linc00858?wt)質(zhì)粒、linc00858突變型(linc00858?mut)質(zhì)粒。將HUH?7 細胞接種于96 孔板中,孵育至細胞密度達70%。然后,將WT·Linc00858、MUT·Linc00858 與miR?3126?5p mimics 共轉(zhuǎn)染HUH?7 細胞中。根據(jù)生產(chǎn)廠家的說明書,采用雙熒光素酶試劑盒(美國promega 公司)測定各組細胞的熒光素酶活性。
1.3.6 蛋白質(zhì)印跡法檢測HUH?7 和MHCC?97H細胞中上皮?間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial mesenchymal transition,EMT)和細胞周期相關(guān)的蛋白表達水平的影響使用胰蛋白酶將各組細胞消化處理后,使用RIPA 細胞裂解液分別提取各組細胞的總蛋白,行SDS?PAGE,在90 V 下分離處理后的蛋白樣本30 min 后再在110 V 下分離70 min,然后將分離后的蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF 膜上,用5% 脫脂牛奶的封閉液封閉2 h,放置于針對Vimentin、E?cdherin、cyclin E1、CDK2、p27 和GAPDH 的特異性一抗(體積稀釋比例均為1∶1 000)中,于4 ℃下?lián)u床反應(yīng)過夜;隨后加入辣根過氧化物酶標記的羊抗兔/小鼠IgG(體積稀釋比例均為1∶5 000)的二抗中,室溫下?lián)u床反應(yīng)2 h,然后將超敏ECL 化學發(fā)光液(A 液:B 液為1∶1)滴加在條帶上,凝膠成像儀采集圖像,最后用ImageJ1.42 軟件進行灰度分析。
1.4 統(tǒng)計學方法所有實驗至少獨立重復(fù)3次,統(tǒng)計分析使用SPSS 22.0 軟件。正態(tài)分布的計量資料以(±s)表示,兩組間比較采用LSD?t檢驗。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 Linc00858 在人肝癌組織和肝癌細胞系中高表達根據(jù)TCGA 數(shù)據(jù)庫的數(shù)據(jù)分析,Linc00858在肝癌組織中的表達情況明顯高于癌旁組織(P<0.05),見圖1A。qRT?PCR 結(jié)果顯示,相比癌旁正常組織,肝癌組織中Linc00858 的表達水平較高(P<0.05),見圖1B;在肝癌細胞系中的Linc00858的相對表達量也顯著高于正常肝細胞LO2(P<0.05),見圖1C;篩選出相對表達量最高的MHCC?97H 和最低的HUH?7 作為后續(xù)研究對象。
圖1 Linc00858 在肝癌組織及細胞中表達情況Fig.1 The expression of Linc00858 in hepatoma tissue and cell
2.2 Linc00858 對肝癌細胞增殖、遷移和侵襲能力的影響qRT?PCR檢測結(jié)果顯示:pcDNA?Linc00858組的Linc00858 表達水平明顯高于Empty Vector組,sh?Linc00858 組的Linc00858 表達水平明顯低于sh?NC組(P<0.05),見圖2A。與Empty Vector 組對比,pcDNA?Linc00858 組的細胞增殖、遷移和侵襲能力均顯著上升(P<0.05),見圖2B-D,同時cyclin E1、Vimentin 和CDK2 的蛋白表達水平明顯上升,而p27 和E?cadherin 的表達水平則明顯下降,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖2E。和sh?NC 組比較顯示,sh?Linc00858 組的MHCC?97H細胞增殖、遷移和侵襲能力明顯下降(P<0.05),見圖2B、C、D;同時cyclin E1、Vimentin 和CDK2 的蛋白表達水平明顯下降,而p27 和E?cadherin 的表達水平則明顯上升,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖2E。
圖2 改變Linc00858 的表達后對肝癌細胞增殖、遷移、侵襲能力和相關(guān)蛋白表達情況的影響Fig.2 Effects of altered expression of Linc00858 on proliferation,migration,invasion and expression of related proteins in hepatocellular carcinoma cells
2.3 Linc00858靶向調(diào)控miR?3126?5p的表達通過starbase 網(wǎng)站(https://starbase.sysu.edu.cn/index.php)和LncBASE 網(wǎng)站(https://labworm.com/tool/diana?lncbase)發(fā)現(xiàn)共有10 個microRNA 可能是其潛在的下游靶基因(圖3A)。qRT?PCR 檢測結(jié)果表示,在各組的對比中,miR?3126?5p 的表達量變化差異最為顯著(圖3B)。雙熒光素酶報告實驗結(jié)果表明,miR?3126?5p mimics 能明顯降低WT?Linc00858 的熒光素酶活性(P<0.05),對MUT?Linc00858 則無明顯影響(圖3C)。qRT?PCR 檢測結(jié)果顯示,miR?3126?5p 在肝癌細胞系中的表達量也顯著低于人正常肝細胞LO2(P<0.05,圖3D);Spearman 等級相關(guān)性實驗顯示,Linc00858 的表達和miR?3126?5p 呈負相關(guān)(圖3E)。以上結(jié)果均提示Linc00858 可以負向調(diào)控miR?3126?5p 的表達。
圖3 Linc00858 負向調(diào)控miR?3126?5p 的表達Fig.3 Linc00858 negatively regulates the expression of miR?3126?5p
2.4 改變miR?3126?5p 的表達水平能夠逆轉(zhuǎn)Linc00858 對肝癌細胞增殖、遷移和侵襲能力的影響在HUH?7 細胞中,mimics?miR?3126?5p 組的miR?3126?5p 表達水平明顯高于mimics?NC 組;而在MHCC?97H 細胞中,anti?miR?3126?5p 組的miR?3126?5p 表達水平明顯低于anti?NC 組(P<0.05,圖4A)。與pcDNA?Linc00858+mimics?NC 組相比,pcDNA?Linc00858+mimics?miR?3126?5p 組在HUH?7細胞中增殖、遷移及侵襲能力減弱;蛋白質(zhì)印跡法檢測結(jié)果顯示對比pcDNA?Linc00858+mimics?NC 組,pcDNA?Linc00858+mimics?miR?3126?5p 組cyclin E1、Vimentin 和CDK2 的蛋白表達水平下降,而p27 和E?cadherin 的表達水平則上升(圖4E);與sh?Linc00858+anti?NC 組相比,sh?Linc00858+anti?miR?3126?5p 組在MHCC?97H 細胞中增殖、遷移及侵襲能力增強,發(fā)生了逆轉(zhuǎn)(圖4B-D),蛋白質(zhì)印跡法檢測結(jié)果顯示對比sh?Linc00858+anti?NC 組,sh?Linc00858+anti?miR?3126?5p 組的cyclin E1、Vi?mentin 和CDK2 的蛋白表達水平上升,而p27 和E?cadherin 的表達水平則下降(圖4E)。
圖4 改變miR?3126?5p 的表達水平后對Linc00858 導致的肝癌細胞增殖、遷移、侵襲能力和相關(guān)蛋白表達情況的影響Fig.4 Effects of altered miR?3126?5p expression on proliferation,migration,invasion and related protein expression of hepatoma cells induced by Linc00858
HCC 是世界范圍內(nèi)最常見的惡性腫瘤之一,是全球癌癥相關(guān)死亡率的第二大原因[11],其中發(fā)生侵襲轉(zhuǎn)移和術(shù)后復(fù)發(fā)是影響患者結(jié)局的主要原因之一[12]。目前,手術(shù)切除后化療是最常見的HCC 治療方案,但患者結(jié)局卻不盡如人意,患者生存時間未能明顯延長[13],因此探索侵襲轉(zhuǎn)移的分子機制對于HCC 的分子診斷、預(yù)防和治療具有重要意義。LncRNA 通常位于細胞的細胞核和細胞質(zhì)中,盡管不參與編碼蛋白質(zhì),但許多研究表明LncRNA 在細胞發(fā)育、分化和遷移等生物學過程扮演了重要角色[14-16]。劉澤鋒等[17]發(fā)現(xiàn),LncRNA DUXAP8 通過增加m6A 甲基化介導的穩(wěn)定性來維持其表達上調(diào)核糖核酸。DUXAP8 水平,這與肝癌細胞增殖、遷移、侵襲和化療耐藥正相關(guān)。LncRNA有作為HCC 潛在的生物標志物和分子靶向治療靶標的可能性。
本研究發(fā)現(xiàn)Linc00858 在肝癌組織和細胞中的均呈高表達,并且其能促進肝癌細胞的增殖、遷移和侵襲。在抑制Linc00858 的表達后,其能通過上調(diào)p27 的表達,從而抑制CDK2?Cyclin E1 的蛋白激酶復(fù)合物,而cyclin E1和CDK2是細胞周期G1和S 期轉(zhuǎn)換的限速因子,p27 能抑制cyclin E1 與細胞周期依賴性蛋白結(jié)合并誘導細胞周期阻滯從而抑制細胞的增殖;另外在上調(diào)了Linc00858表達后,上皮樣標志物E?cadherin 的表達降低,而間質(zhì)樣標志物Vimentin的表達上升,這提示Linc00858可能是通過EMT 現(xiàn)象增強了肝癌細胞的遷移和侵襲能力。本研究利用生物信息學數(shù)據(jù)庫分析miR?3126?5p可能是Linc00858 的潛在下游靶點,而目前研究[18]指出,在HCC 患者血清中的miR?3126?5p 的表達水平比健康人群顯著降低,并且其有可能作為HCC早期診斷的重要標記物。雙熒光素酶報告基因?qū)嶒灪蛁RT?PCR 結(jié)果顯示miR?3126?5p 的表達水平和Linc00858 呈負相關(guān),且Linc00858 可以靶向調(diào)控miR?3126?5p 的表達。通過改變miR?3126?5p 的表達,本研究發(fā)現(xiàn)Linc00858 帶來的肝癌增殖、遷移和侵襲能力發(fā)生了逆轉(zhuǎn),此外細胞周期蛋白和EMT 相關(guān)蛋白的表達水平也發(fā)生了逆轉(zhuǎn)。即Linc00858 可通過發(fā)揮ceRNA 機制來競爭性吸附miR?3126?5p,進而誘導細胞周期蛋白和EMT 相關(guān)蛋白的表達。此外,對于Linc00858 和細胞周期與EMT 相關(guān)蛋白之間的關(guān)系,仍需要進一步研究來闡明其具體調(diào)控機制。
綜上所述,本研究表明Linc00858 可以通過miR?3126?5p 調(diào)節(jié)細胞周期蛋白和EMT 相關(guān)蛋白的表達,并促進肝癌細胞的增殖、侵襲和遷移,這表明Linc00858 有望成為肝癌治療的重要靶點。