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    β-葡聚糖酶降解黑木耳多糖工藝研究

    2022-03-27 02:38:14吳迪王旭升于特曹慧馨趙競(jìng)吳瓊
    食品研究與開發(fā) 2022年6期
    關(guān)鍵詞:葡聚糖黑木耳分子量

    吳迪,王旭升,于特,曹慧馨,趙競(jìng),吳瓊*

    (1.長春大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,吉林 長春 130022;2.長春市十一高中,吉林 長春 130000)

    黑木耳(Auricularia auricula)又稱為黑菜、桑耳,木耳科木耳屬真菌[1],是一種具有價(jià)值的食用菌[2],其中的黑木耳多糖具有抗腫瘤、抗凝血、抗氧化、降血脂、降血糖等多種生物活性[3]。但天然的黑木耳多糖分子量大、形成的溶液黏度較大[4-5],不利于黑木耳多糖的進(jìn)一步開發(fā)及利用,因此,將高分子量的黑木耳多糖降解成低分子量且溶解黏度小的酶解多糖[6],對(duì)黑木耳多糖的應(yīng)用具有重要意義。研究表明,酶解后多糖的生物活性會(huì)得到明顯的提高[7],多糖酶解主要是通過改變多糖的分子結(jié)構(gòu)、分子質(zhì)量、溶解度及取代基的種類、數(shù)量以實(shí)現(xiàn)其理化性質(zhì)的改變、生物活性的增強(qiáng)等效果[8-9]。

    黑木耳多糖主要由水溶性β-D-葡聚糖、水不溶性β-D-葡聚糖和2種酸性雜多糖構(gòu)成[10-11],且兩種β-D-葡聚糖都是由β-1,3-糖苷鍵連接而成。β-葡聚糖酶(β-glucanase) 是可降解 β-1,3-糖苷鍵、β-1,4-糖苷鍵的水解酶,可使多糖改性增溶[12-13],基于此,本試驗(yàn)將β-葡聚糖酶作為外源酶酶解黑木耳多糖,并通過調(diào)節(jié)加酶量、酶解pH值、酶解時(shí)間和酶解溫度進(jìn)行試驗(yàn),降低黑木耳多糖的分子量[14],得到最佳降解效果。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    黑木耳:市售;氫氧化鈉、檸檬酸:北京化工廠;3-5二硝基水楊酸:國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;β-葡聚糖酶(20 000 U/g):河南萬邦實(shí)業(yè)有限公司;溴化鉀:天津科密歐化學(xué)試劑有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    高效液相色譜儀(SPD-20A):島津儀器(蘇州)有限公司;紅外光譜儀(NICOLET iS5):賽默飛世爾科技有限公司;集熱式恒溫加熱磁力攪拌器(DF-101S):鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;醫(yī)用離心機(jī)(3K15):曦瑪離心機(jī)有限公司。

    1.3 試驗(yàn)方法

    1.3.1 黑木耳多糖的提取

    稱取黑木耳粉末40 g,采用水提醇沉法對(duì)黑木耳多糖進(jìn)行提取[15-16],以料液比 1∶10(g/mL)加入 80%的乙醇溶液,70℃下浸提2次,每次2 h,將濾渣60℃烘干,以料液比1∶30(g/mL)稱取濾渣并加入蒸餾水,90℃下浸提2次,每次4 h,3 500 r/min離心20 min得上清液,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至原體積的1/4,所得的濃縮溶液即為黑木耳粗多糖。向濃縮溶液中加入三氯乙酸,4℃冰箱中靜置24 h,4 000 r/min離心20 min得黑木耳多糖[17],加入4倍體積的無水乙醇,將其放入4℃冰箱中靜置24 h,8 000 r/min離心20 min,所得沉淀凍干,得黑木耳多糖[18]。

    1.3.2 黑木耳多糖的降解

    取100 mL 10 mg/mL黑木耳多糖溶液,通過添加檸檬酸或 NaOH 調(diào)節(jié)酶解 pH 值 4.4、4.8、5.2、5.6、6.0,按加酶量 300、500、700 、900、1 100 U/g分別添加至配制好的多糖溶液中,在酶解溫度 10、20、30、40、50℃,酶解時(shí)間 1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 h 下,測(cè)定篩選最佳反應(yīng)條件。

    在最佳工藝條件下制備黑木耳酶解多糖,通過添加檸檬酸或NaOH將黑木耳多糖溶液的pH值調(diào)至5.2,按加酶量700 U/g加入β-葡聚糖酶,置于30℃恒溫振蕩水槽中反應(yīng)2 h,反應(yīng)后沸水浴10 min滅活β-葡聚糖酶,6 000 r/min離心5 min,加入4倍體積無水乙醇,將其放入4℃冰箱中靜置24 h,8 000 r/min離心20 min,所得沉淀凍干,得黑木耳酶解多糖。

    1.3.3 還原糖生成量測(cè)定

    量取0.5 mL離心后的上清液放入試管中,加入1.5 mL二硝基水楊酸試劑,沸水浴5 min,加蒸餾水定容至10 mL。于540 nm處測(cè)定吸光度,3次平行試驗(yàn),通過下式計(jì)算還原糖生成量。

    1.3.4 溶解率的測(cè)定

    取酶解前后的黑木耳多糖10 mg于EP管中,充分溶解,在8 000 r/min離心10 min,除去上清液,在50℃下烘至完全干燥,稱重,通過下式計(jì)算溶解率。

    1.3.5 多糖的結(jié)構(gòu)分析

    1.3.5.1 分子量測(cè)定

    將樣品配制成5 mg/mL的溶液,0.22 μm微孔濾膜過濾后取20 μL溶液進(jìn)樣。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品分子量。采用高效液相色譜對(duì)酶解前后黑木耳多糖的分子量進(jìn)行測(cè)定,分子量標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示。

    圖1 分子量測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve for molecular weight determination

    以RID-10A示差折射檢測(cè)器,不銹鋼色譜柱7.8 mm×300 mm,柱溫為35℃,流動(dòng)相為超純水,流速為0.5 mL/min,分子量標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制以保留時(shí)間為橫坐標(biāo),以標(biāo)準(zhǔn)葡聚糖的分子量對(duì)數(shù)(lgMw)為縱坐標(biāo),得標(biāo)準(zhǔn)曲線 y=-0.191 4x+0.951 8,R2=0.995 4。

    1.3.5.2 紅外光譜測(cè)定

    在相對(duì)干燥環(huán)境下,取1 mg樣品與0.18 g溴化鉀混合研磨均勻,壓片,在波段400 cm-1~4 000 cm-1處進(jìn)行紅外光譜掃描[19],檢測(cè)樣品中是否存在多糖的特征吸收峰。

    1.3.5.3 紫外-可見光譜分析

    用去離子水配制濃度為0.3 mg/mL的β-葡聚糖酶解黑木耳多糖溶液,以去離子水作為空白對(duì)照,在200 nm~800 nm內(nèi)進(jìn)行紫外全波段掃描,檢測(cè)樣品中是否具有核酸和蛋白質(zhì)的特征吸收峰。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果分析

    2.1.1 加酶量對(duì)還原糖生成量的影響

    加酶量對(duì)還原糖生成量的影響如圖2所示。

    圖2 加酶量對(duì)黑木耳多糖降解效率的影響Fig.2 Effect of enzyme dosage on the degradation efficiency of Auricularia auricula polysaccharide

    還原糖生成量隨加酶量增加先增大后減小,這是由于當(dāng)加酶量大于一定值后,底物被充分利用,還原糖生成量不再增多,如果繼續(xù)增加β-葡聚糖酶的量會(huì)導(dǎo)致酶之間出現(xiàn)相互附著的情況,降低了酶與底物之間的作用效果,導(dǎo)致酶不能更好地分解黑木耳多糖,因此,在以還原糖的生成量為參考指標(biāo)時(shí),最適加酶量在300 U/g~700 U/g。

    2.1.2 酶解pH值對(duì)還原糖生成量的影響

    酶解pH值對(duì)還原糖生成量的影響如圖3所示。

    圖3 酶解pH值對(duì)黑木耳多糖降解效率的影響Fig.3 Effect of pH value on the degradation efficiency of Auricularia auricula polysaccharide

    還原糖生成量會(huì)根據(jù)pH值的不同而變化,pH值過高或過低時(shí)還原糖生成量都較低,這是由于在多糖溶液中pH值大于或小于β-葡聚糖酶的最適pH值時(shí),酶的活性被抑制,導(dǎo)致β-葡聚糖酶對(duì)黑木耳多糖分子的催化作用變?nèi)?,因此影響了?葡聚糖對(duì)黑木耳多糖的降解效率。因此,酶解最適pH值在4.8~5.6。

    2.1.3 酶解時(shí)間對(duì)還原糖生成量的影響

    酶解時(shí)間對(duì)還原糖生成量的影響如圖4所示。

    圖4 酶解時(shí)間對(duì)黑木耳多糖降解效率的影響Fig.4 Effect of enzymolysis time on the degradation efficiency of Auricularia auricula polysaccharide

    還原糖生成量隨著酶解時(shí)間的增加先增大后趨于平緩,這是因?yàn)殡S著酶解時(shí)間的延長,底物的多糖溶液在β-葡聚糖酶的作用下不斷減少,在2 h后底物被完全利用,曲線開始呈現(xiàn)平滑趨勢(shì),因此,確定最佳酶解時(shí)間在2 h~3 h。

    2.1.4 酶解溫度對(duì)還原糖生成量的影響

    酶解溫度對(duì)還原糖生成量的影響如圖5所示。

    圖5 酶解溫度對(duì)黑木耳多糖降解效率的影響Fig.5 Effect of enzymolysis temperature on the degradation efficiency of Auricularia auricula polysaccharide

    還原糖的生成量隨著溫度的升高,先上升后下降,這是由于在30℃之前,隨著溫度的升高,黑木耳多糖分子以及β-葡聚糖酶分子之間的運(yùn)動(dòng)速度加快,相互接觸的機(jī)會(huì)增大[20],使得反應(yīng)速率加快,因此曲線呈快速上升的趨勢(shì),在30℃時(shí)達(dá)到最大值;當(dāng)反應(yīng)溫度大于30℃時(shí),β-葡聚糖酶由于吸收了過多熱量,自身化學(xué)鍵不穩(wěn)定[21],發(fā)生斷裂,最終導(dǎo)致酶活性降低甚至喪失,黑木耳多糖的降解效率也隨之降低,因此,最適酶解溫度在25℃~35℃。

    2.2 正交試驗(yàn)

    以單因素試驗(yàn)結(jié)果為依據(jù),設(shè)計(jì)以加酶量、酶解pH值、酶解時(shí)間、酶解溫度的正交試驗(yàn)。各因素水平設(shè)置如表1所示。

    表1 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 1 Orthogonal experimental design

    極差分析結(jié)果表明,對(duì)β-葡聚糖酶活力影響的主次順序:加酶量>酶解pH值>酶解時(shí)間>酶解溫度,最佳酶解條件為加酶量700 U/g,酶解pH值5.2,酶解時(shí)間2h,酶解溫度30℃,即最優(yōu)參數(shù)組合為A3B3C2D1。通過驗(yàn)證試驗(yàn),在最佳條件下,還原糖生成量為42.64 mg/g,證實(shí)正交試驗(yàn)結(jié)果可信。

    2.3 溶解率

    酶解前后黑木耳多糖干物質(zhì)重分別為0.026 6、0.0243g,酶解前后黑木耳多糖的溶解率分別為37.96%、41.56%,酶解前后黑木耳多糖溶解率提高了3.6%。

    2.4 分子量分析

    酶解前后黑木耳多糖分子量圖譜如圖6所示。

    圖6 酶解前后黑木耳多糖分子量圖譜Fig.6 Molecular weight map of Auricularia auricula polysaccharide before and after enzymolysis

    由圖6可知,采用凝膠色譜法測(cè)定各標(biāo)準(zhǔn)樣品的保留時(shí)間與分子量之間的關(guān)系,由圖6可知,黑木耳多糖及其酶解多糖的保留時(shí)間分別是9.823、13.209 min,由標(biāo)準(zhǔn)曲線得出其分子量分別為131 300、3 388 Da,分析結(jié)果表明,酶解后黑木耳多糖保留時(shí)間延后,酶解前后分子量降低了127 912 Da,說明酶解對(duì)多糖分子量的降低具有很好的作用。

    2.5 紅外光譜分析

    紅外光譜掃描結(jié)果如圖7所示。

    圖7 酶解多糖的紅外光譜圖Fig.7 Infrared spectrum of enzymolysis polysaccharide

    由圖7可知,黑木耳酶解多糖在3 404、2 929、1 729、1 622、1 375、1 250、1 038 cm-1的附近存在吸收峰,在3 404 cm-1處的強(qiáng)吸收是-OH的伸縮振動(dòng)峰,在2 929 cm-1處的峰是CH3和-CH2-中C-H鍵的伸縮振動(dòng)峰[22],1 375 cm-1處的吸收峰為C-H鍵的變角振動(dòng),其與C-H的伸縮振動(dòng)構(gòu)成了糖環(huán)的吸收[23],1 729 cm-1處的吸收峰表明多糖中含有糖醛酸,1 622 cm-1處的吸收峰是分子內(nèi)氫鍵的特征峰[24],在1 250 cm-1處的振動(dòng)是由于O-H的拉伸和振動(dòng)造成的,可以推斷,黑木耳酶解多糖具有多糖的特征吸收峰[25]。

    2.6 紫外-可見光譜分析結(jié)果

    紫外光譜掃描結(jié)果如圖8所示。

    圖8 酶解前后黑木耳多糖的紫外全波段掃描圖Fig.8 UV scanning of Auricularia auricula polysaccharide before and after enzymolysis

    由圖8可知,最大吸收峰比較集中,黑木耳多糖的成分較為單一,吸收峰主要在250 mm~280 nm,說明酶解前后的黑木耳多糖可能含有少量的蛋白質(zhì)或核酸等成分[26-27]。

    3 結(jié)論

    本研究以水提醇沉法提取黑木耳多糖,并用β-葡聚糖酶酶解,得酶解最佳條件,即在加酶量700 U/g、酶解pH值5.2、酶解時(shí)間2 h、酶解溫度30℃的條件下,得到的還原糖生成量為42.64 mg/g,并對(duì)酶解前后樣品的溶解率、分子量、紅外光譜以及紫外全光譜進(jìn)行測(cè)定,對(duì)黑木耳多糖酶解前后的結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征,酶解前后黑木耳多糖的溶解率分別37.96%、41.56%,酶解后溶解率提高了3.6%,說明酶解使黑木耳多糖的溶解率得到提高;酶解前后的黑木耳多糖分子量分別為131 300、3 388 Da,酶解后分子量降低了127 912 Da,表明酶解有效降低了黑木耳多糖的分子量;通過FTIR分析發(fā)現(xiàn),酶解前后黑木耳多糖的主要吸收峰沒有變化,說明酶解對(duì)黑木耳多糖的主要結(jié)構(gòu)沒有影響。研究表明,將黑木耳多糖從高分子量降低成低分子量,可以提高其生物活性,并且低分子多糖更易被人體吸收,因此,本項(xiàng)研究對(duì)黑木耳多糖降解工藝的研究具有一定的推動(dòng)作用。

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