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    牦牛乳酪蛋白酶解產(chǎn)物抗氧化活性研究

    2022-02-16 08:40:22李佳逸陽(yáng)輝蓉陳煉紅
    保鮮與加工 2022年2期
    關(guān)鍵詞:乳酪蛋白酶解解液

    李佳逸,陽(yáng)輝蓉,陳煉紅

    (西南民族大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,四川 成都 610041)

    牦牛被譽(yù)為“高原之舟”,牦牛乳易被人體消化吸收,營(yíng)養(yǎng)豐富,具有高蛋白、高乳脂率的特點(diǎn)。牦牛乳中蛋白質(zhì)含量比荷斯坦牛乳高約2倍,氨基酸含量較普通荷斯坦牛乳高出近15%[1]。目前,國(guó)內(nèi)關(guān)于牦牛乳及乳中成分抗氧化性的研究也日漸深入。楊靜等[2]研究表明,牦牛乳硬質(zhì)干酪中的抗氧化因子較荷斯坦牛乳硬質(zhì)干酪高,使干酪在成熟后期的氧化速率變慢。宋雪梅等[3]研究發(fā)現(xiàn),在不同溫度和時(shí)間下成熟的牦牛干酪制備的水溶性肽均具有抗氧化、殺菌和降壓的作用。

    酪蛋白是乳蛋白中的主要蛋白質(zhì),約占乳蛋白含量的80%以上,營(yíng)養(yǎng)價(jià)值高,功能性強(qiáng),其獨(dú)特的氨基酸序列具有很高的研究?jī)r(jià)值,因此被廣泛應(yīng)用于食藥醫(yī)療領(lǐng)域[4]。酪蛋白可以通過(guò)不同的酶解產(chǎn)生不同的生物活性肽,如抑菌肽[5]、抗氧化肽[6]、血管緊張素轉(zhuǎn)換酶抑制肽[7]。其中抗氧化肽能夠清除體內(nèi)過(guò)多的自由基,抑制脂肪氧合酶活性,分解氧化物,增強(qiáng)人體的抗衰老和抗病能力[8-9]。

    為進(jìn)一步研究牦牛乳酪蛋白酶解液在體內(nèi)及體外的抗氧化性,根據(jù)實(shí)驗(yàn)室前期研究的最佳酶解工藝條件,采用復(fù)合酶解(中性蛋白酶∶胰蛋白酶=1∶2)制備牦牛乳酪蛋白酶解液,以1,1-二苯-2-苦肼基自由基(DPPH·)、超氧陰離子自由基(O2·)、羥自由基(·OH)清除率及還原力為體外抗氧化活性測(cè)定指標(biāo),并設(shè)置小鼠試驗(yàn)對(duì)酶解液在體內(nèi)的抗氧化活性進(jìn)行研究,測(cè)定小鼠血液中超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH-Px)活力,旨在為抗氧化功能性產(chǎn)品的研發(fā)奠定基礎(chǔ),開(kāi)發(fā)出更天然、更安全的抗氧化產(chǎn)品。

    1 材料與方法

    1.1 材料與設(shè)備

    1.1.1 材料與試劑

    牦牛乳采自四川省阿壩藏族羌族自治州紅原牧區(qū),現(xiàn)場(chǎng)將樣品裝入滅菌的采樣瓶中,置于保溫盒內(nèi)當(dāng)日帶回實(shí)驗(yàn)室,于4℃條件下冷藏待用;五周齡SPF級(jí)昆明系小鼠:體重(25±2)g,生產(chǎn)許可證號(hào)為SZXK(川)2020-030,購(gòu)于四川達(dá)碩公司;試驗(yàn)用鼠普通維持飼料,購(gòu)于江蘇省協(xié)同醫(yī)藥生物工程有限責(zé)任公司。

    中性蛋白酶(最適反應(yīng)pH為7.0,溫度為55℃,蛋白酶活力60 000 U/g)、胰蛋白酶(最適反應(yīng)pH為8.0,溫度為50℃,蛋白酶活力250 U/mg)、水楊酸、無(wú)水乙醇、硫酸亞鐵、過(guò)氧化氫、Tris、冰乙酸等,成都瑞普信生物技術(shù)有限公司;1,1-二苯基-2-苦肼基(DPPH),美國(guó)Sigma公司;谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH-PX)測(cè)試盒、總超氧化物歧化酶(SOD)測(cè)試盒、丙二醛(MDA)測(cè)試盒,南京建成生物工程研究所。

    1.1.2 儀器與設(shè)備

    HC-2062型高速離心機(jī),安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司;PL303型分析天平,梅特勒托利多儀器有限公司;UV-2100型分光光度計(jì),尤尼柯儀器有限公司;PHS-3C型pH計(jì),上海雷磁儀器廠;DZG-303A型純水儀,成都唐氏康寧艾柯科技有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 牦牛乳酪蛋白酶解液的制備

    參考本實(shí)驗(yàn)室馬宇驥等[10]的工藝制備牦牛乳酪蛋白酶解液。

    取鮮牦牛乳,經(jīng)離心脫脂后加入一定量的去離子水,配制成蛋白濃度為50 mg/mL的溶液。調(diào)節(jié)pH至7.5,42.5℃水浴鍋中預(yù)熱10 min,加入3%復(fù)合蛋白酶(中性蛋白酶∶胰蛋白酶=1∶2),酶解150 min,酶解過(guò)程中每隔20 min用1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)1次pH值,酶解結(jié)束后將pH值調(diào)至7.0,并在沸水浴中滅酶10 min,冷卻至室溫,6 000 r/min離心取上清液,冷凍干燥后置于4℃冰箱中備用。

    1.2.2 體外抗氧化活性研究

    取牦牛乳酪蛋白酶解液凍干粉,分別用蒸餾水配制濃度為0、5、10、15、20、25、30、35、40、45、50 mg/mL的蛋白溶液,測(cè)定其DPPH·、O2·、·OH清除率及還原力。

    1.2.2.1 DPPH·自由基清除率測(cè)定

    參照You等[11]的方法測(cè)定。配制0.1 mmol/L DPPH乙醇溶液,加入2.5 mL樣品和2.0 mL DPPH溶液,充分搖勻,用錫紙包裹避光反應(yīng)30 min,待反應(yīng)完畢后10 000 r/min離心15 min,以2.0 mL樣品加入2.0 mL無(wú)水乙醇為對(duì)照組,2.0 mL無(wú)水乙醇加入等量DPPH溶液為空白組,在517 nm處測(cè)定吸光度。同時(shí)以同濃度VC溶液代替樣品為陽(yáng)性對(duì)照。

    式中:A1為樣品組吸光度;A2為對(duì)照組吸光度;A3為空白組吸光度。

    參照劉靜等[12]的方法測(cè)定。將鄰苯三酚和樣液在25℃條件下水浴15 min,依次加入2.8 mL Tris-HCl、0.2 mL鄰苯三酚和1 mL樣品后迅速混勻,用蒸餾水代替樣品溶液為對(duì)照組,在325 nm處測(cè)定吸光度,反應(yīng)時(shí)間為5 min,每30 s測(cè)定1次,反應(yīng)結(jié)束后加入0.1 mL蒸餾水和2.8 mL Tris-HCl緩沖液調(diào)零。橫坐標(biāo)設(shè)為時(shí)間,縱坐標(biāo)為OD值,斜率即為鄰苯三酚自氧化速率。同時(shí)以同濃度VC溶液代替樣品作為陽(yáng)性對(duì)照。

    式中:V1為對(duì)照組鄰苯三酚自氧化的速率;V2為樣品組鄰苯三酚氧化的速率。

    1.2.2.3 ·OH清除率測(cè)定

    參照董玉瑋等[13]的方法稍作修改。依次加入2 mL 9 mmol/L水楊酸-乙醇、2 mL 9 mmol/L FeSO4、2 mL 8.8 mmol/L H2O2溶液和2 mL樣品后充分搖勻,空白組樣品取2 mL蒸餾水代替樣品溶液,對(duì)照組加2 mL蒸餾水代替H2O2,37℃反應(yīng)60 min,充分反應(yīng)后于510 nm處測(cè)定吸光度。同時(shí)以同濃度VC溶液代替樣品作為陽(yáng)性對(duì)照。

    式中:A1為樣品組吸光度值;A2為空白組吸光度值;A3為對(duì)照組吸光度值。

    1.2.2.4 還原力測(cè)定

    參照王穎穎等[14]的方法并略作修改。

    精確量取2.5 mL樣品,加入2.5 mL PBS緩沖液(0.2 mol/L,pH 6.6)和2.5 mL 1%鐵氰化鉀溶液后迅速混勻,50℃水浴保溫30 min。反應(yīng)結(jié)束后迅速冷卻至室溫,再加入2.5 mL 10%(m/V)三氯乙酸溶液,振蕩混勻后以6 000 r/min離心50 min。吸取2.5 mL上清液,加入等量蒸餾水和0.5 mL 0.1%氯化鐵,混勻后于25℃水浴保溫10 min,在700 nm處測(cè)定OD值,以雙蒸水為空白樣。

    1.2.3 體內(nèi)抗氧化活性研究

    1.2.3.1 小鼠分組、飼喂及采樣方法

    SPF級(jí)昆明系小鼠40只,雌雄各半,預(yù)試3 d后進(jìn)入正式期(排除小鼠因?yàn)檫\(yùn)輸造成應(yīng)激反應(yīng)影響試驗(yàn)結(jié)果),將小鼠隨機(jī)分成4組,每組10只并進(jìn)行編號(hào)(雌雄各半且分隔飼養(yǎng)),分籠飼養(yǎng)于環(huán)境溫度22~26℃,相對(duì)濕度50%~60%的動(dòng)物房中,每天光照12 h,自由進(jìn)食進(jìn)水,喂養(yǎng)普通維持飼料,每天更換飲水和墊料,分組情況見(jiàn)表1。

    表1 小鼠灌胃分組Table 1 Mouse gavage grouping

    每日上午9點(diǎn)對(duì)對(duì)照組和試驗(yàn)組小鼠經(jīng)口灌胃0.25 mL蒸餾水和不同濃度酶解液[15],周期30 d,同時(shí)每組每日供應(yīng)等量的顆粒飼料,自由進(jìn)食進(jìn)水。試驗(yàn)期間保持實(shí)驗(yàn)房溫度為(24±2)℃,每日12 h燈光照明。

    末次灌胃后禁食24 h,將小鼠稱重并用乙醚麻醉后進(jìn)行心臟采血,將血液置于1 mL EP管中,室溫下靜置30 min,于4℃下以3 000 r/min離心10 min,取上層血清,置于-80℃待檢測(cè)。

    取小鼠脾臟稱重,計(jì)算脾臟指數(shù)。

    脾臟指數(shù)=臟器質(zhì)量(mg)/體重(g)

    1.2.3.2 體內(nèi)抗氧化分析

    分別采用SOD、MDA、GSH-Px試劑盒進(jìn)行檢測(cè),并按各說(shuō)明書的公式進(jìn)行計(jì)算。

    1.2.4 數(shù)據(jù)處理

    所有試驗(yàn)測(cè)定3次,結(jié)果取平均值,采用SPSS V22.0統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 牦牛乳酪蛋白酶解液體外抗氧化活性研究

    2.1.1 酶解液對(duì)DPPH·清除能力的分析

    如圖1所示,蛋白濃度在0~30.0 mg/mL時(shí),牦牛乳酪蛋白酶解液的DPPH·清除能力隨著蛋白濃度的增加而顯著升高,當(dāng)濃度大于30.0 mg/mL后,DPPH·的清除能力雖仍繼續(xù)增加,但不再顯著提升。樣品中的DPPH·清除率達(dá)到66.45%±1.59%時(shí)的蛋白濃度為50 mg/mL。VC的DPPH·清除率在濃度0~15.0 mg/mL時(shí)有顯著提升,之后增長(zhǎng)緩慢,濃度為50.0 mg/mL時(shí),VC的DPPH·清除率達(dá)到89.02%±1.07%。結(jié)果表明,牦牛乳酪蛋白酶解液的DPPH·清除率始終低于VC,但仍具有一定強(qiáng)度的抗氧化活性,在蛋白濃度為50.0 mg/mL時(shí),DPPH·的清除率達(dá)到同濃度VC的74.45%。

    圖1 不同濃度酶解液的DPPH·清除能力Fig.1 DPPH radical scavenging activity of enzymatic hydrolysates with different concentrations

    圖2 不同濃度酶解液的O2·清除能力Fig.2 Superoxide radical scavenging activity of enzymatic hydrolysates with different concentrations

    2.1.3 酶解液對(duì)·OH清除能力的分析

    研究表明,·OH易與氨基酸、蛋白質(zhì)和核酸等游離基團(tuán)相結(jié)合,從而造成細(xì)胞損傷導(dǎo)致機(jī)體產(chǎn)生疾病甚至癌癥等危害。由圖3可以看出,牦牛乳酪蛋白的酶解液·OH清除能力在0~40.0 mg/mL時(shí)隨著蛋白濃度的提高而顯著增強(qiáng),之后清除率基本保持不變。在蛋白濃度為5.0 mg/mL時(shí),樣品對(duì)·OH的清除率只有15.36%±0.68%,但當(dāng)濃度升至50.0 mg/mL時(shí),樣品對(duì)·OH的清除率達(dá)到了60.40%±1.96%,是相同濃度下VC對(duì)·OH清除率的61.65%;樣品與VC的·OH清除能力在濃度0~10.0 mg/mL時(shí)基本相同。但隨著濃度的增加,酶解液的·OH清除能力增速低于VC,當(dāng)濃度升至30.0 mg/mL時(shí),VC對(duì)·OH清除率顯著高于樣品。

    圖3 不同濃度酶解液的·OH清除能力Fig.3 Hyroxyl radical scavenging activity of enzymatic hydrolysates with different concentrations

    2.1.4 酶解液還原力分析

    由圖4可知,牦牛乳酪蛋白酶解液還原力整體隨著蛋白濃度的增加而增強(qiáng),但濃度在15.0~20.0 mg/mL時(shí),蛋白濃度對(duì)牦牛乳酶解液的還原力影響并不顯著。當(dāng)濃度達(dá)到25.0 mg/mL后,繼續(xù)增加濃度,VC的還原力不再顯著增強(qiáng)。樣品的還原力在蛋白濃度為50 mg/mL時(shí)是相同濃度下VC還原力的63.03%。隨著濃度的增加,酶解液與VC的還原能力的差距逐漸縮小,但酶解液的還原力始終小于VC。

    圖4 不同濃度酶解液的還原力Fig.4 Reducing power of enzymatic hydrolysates with different concentrations

    2.2 牦牛乳酪蛋白酶解液體內(nèi)抗氧化活性研究

    2.2.1 牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠體重及免疫功能的影響

    由表2可見(jiàn),飼喂30 d后,試驗(yàn)組小鼠體重均高于對(duì)照組。與對(duì)照組相比,低劑量組小鼠體重?zé)o顯著變化,中劑量組和高劑量組的小鼠體重均顯著增加(P<0.05),且高劑量組的體重增加最多。牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠脾臟指數(shù)的影響,與對(duì)照組相比,低、中和高劑量組均有顯著增加(P<0.05),且中劑量組與高劑量組之間無(wú)顯著性差異。

    表2 牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠體重增重及脾臟指數(shù)的影響Table 2 Effect of yak casein hydrolysate on weight gain and spleen index of mice

    酪蛋白酶解釋放的酪蛋白活性肽可增加小鼠的鈣吸收率及儲(chǔ)留率。除此之外,酪蛋白水解物還含有小分子肽及各類游離氨基酸,小分子肽對(duì)動(dòng)物的生長(zhǎng)有促進(jìn)作用[16],但具體成分及機(jī)制有待進(jìn)一步的研究。在之前的研究中,鄭華等[17]研究發(fā)現(xiàn):用酪蛋白飼喂小鼠24 d后,小鼠體重顯著高于對(duì)照組;飼喂36 d后,小鼠體重極顯著高于對(duì)照組,與本試驗(yàn)結(jié)果一致,說(shuō)明酪蛋白可促進(jìn)小鼠的生長(zhǎng)。

    機(jī)體的非特異性免疫情況可由脾臟指數(shù)體現(xiàn)。有研究指出,免疫與抗氧化存在著相輔相成的關(guān)系[17]。在本試驗(yàn)中,脾臟指數(shù)與牦牛乳酪蛋白酶解液劑量成正比,表明牦牛乳酪蛋白酶解液可以促進(jìn)小鼠的非特異性免疫。在陳東平等[18]的研究中發(fā)現(xiàn),用不同分子量的酪蛋白肽飼喂小鼠30 d后,飼喂大于3 ku酪蛋白肽的分組,小鼠脾臟指數(shù)顯著高于對(duì)照組,1~3 ku及小于1 ku的分組,小鼠脾臟指數(shù)極顯著高于對(duì)照組,與本試驗(yàn)的結(jié)果基本一致,說(shuō)明牦牛乳酪蛋白酶解液在30 d時(shí)可顯著提高小鼠的脾臟指數(shù),表明酶解液對(duì)小鼠具有顯著抗氧化作用。

    2.2.2 牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠血清中SOD活力的影響

    如表3所示,飼喂牦牛乳酪蛋白酶解液30 d后,與對(duì)照組相比,低劑量組、中劑量組及高劑量組的小鼠血清對(duì)SOD活力影響均有顯著提高(P<0.05),低、中、高劑量組的SOD活力分別提高約5.65%、12.34%和16.22%,且各組間差異顯著(P<0.05)。

    表3 牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠血清中SOD活力的影響Table 3 Effect of yak casein hydrolysate on SOD activity in serum of mice

    研究證明:人體衰老、心腦血管等疾病均與人體內(nèi)SOD活力的降低有關(guān)[19];同時(shí),生物的致死率上升與機(jī)體內(nèi)的SOD活性下降呈正相關(guān)[20-21]。Lee等[22]在研究鴨皮組織時(shí)發(fā)現(xiàn),提高SOD活性可抑制抗氧化系統(tǒng)損傷,增強(qiáng)機(jī)體的抗氧化能力。在本試驗(yàn)中,用不同劑量的酪蛋白酶解液飼喂小鼠30 d后發(fā)現(xiàn),試驗(yàn)組的小鼠血清中SOD活力明顯高于對(duì)照組,且低、中、高劑量組的SOD活力呈梯度性變化,說(shuō)明牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠SOD活力的提高有顯著影響,進(jìn)而提升小鼠的抗氧化能力。

    2.2.3 牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠血清中MDA含量的影響

    由表4可見(jiàn),經(jīng)30 d飼喂牦牛乳蛋白酶解液后,低、中、高劑量組小鼠血清中MDA含量與對(duì)照組之間差異顯著(P<0.05),但試驗(yàn)組間差異不顯著,低、中、高劑量組的MDA含量相較于對(duì)照組分別下降了約17.96%、19.39%和23.67%,呈逐漸下降的趨勢(shì)。

    表4 牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠血清中MDA含量的影響Table 4 Effect of yak casein hydrolysate on MDA content in serum of mice

    機(jī)體通過(guò)酶系統(tǒng)與非酶系統(tǒng)產(chǎn)生氧自由基,非酶系統(tǒng)能攻擊生物膜中的多不飽和脂肪酸,由此引發(fā)脂質(zhì)過(guò)氧化作用,最終形成脂質(zhì)的過(guò)氧化物(酮基、羰基、醛基等)。MDA作為其中主要的毒性產(chǎn)物,不僅可導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)環(huán)境紊亂,致使細(xì)胞凋亡,而且也可改變DNA及RNA序列的轉(zhuǎn)錄翻譯工作,使細(xì)胞環(huán)境失衡[23]。因此,MDA含量能間接地反映出細(xì)胞氧化損傷的程度,其與機(jī)體受損程度呈正相關(guān)。

    本試驗(yàn)中,小鼠在飼喂酪蛋白酶解液30 d后,血清中的MDA含量明顯下降,說(shuō)明酪蛋白酶解液可有效減少機(jī)體內(nèi)脂質(zhì)過(guò)氧化物,降低細(xì)胞的損傷程度,提高機(jī)體的抗氧化作用。

    2.2.4 牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠血清中GSH-Px活力的影響

    由表5可以看出,低、中、高劑量組小鼠血清中GSH-Px活力均顯著高于對(duì)照組(P<0.05),但試驗(yàn)組之間差異不顯著。低、中、高劑量組的GSH-Px活力較對(duì)照組分別升高了約30.89%、37.72%和48.98%,呈逐漸上升的趨勢(shì)。

    表5 牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠血清中GSH-Px活力的影響Table 5 Effect of yak casein hydrolysate on GSH-Px activity in serum of mice

    GSH-Px能將還原性谷胱甘肽(Glutathione,GSH)催化為氧化型谷胱甘肽,是測(cè)定GSH活性水平的指標(biāo)之一[24],其濃度可影響GSH對(duì)毒性物質(zhì)的降解效果以及清除超氧陰離子自由基的效率,起到保護(hù)細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)和功能完整的作用。因此,測(cè)定GSH-Px活力可用來(lái)作為判別機(jī)體抗氧化性能的指標(biāo)。本試驗(yàn)中可以看出,牦牛乳酪蛋白酶解液可以提高機(jī)體GSH-Px活力,從而提高機(jī)體的抗氧化能力。

    3 結(jié)論

    體外試驗(yàn)通過(guò)在最優(yōu)酶解條件下制備牦牛乳酪蛋白酶解液,測(cè)定其抗氧化活性指標(biāo)。結(jié)果表明:酶解液在蛋白濃度為50 mg/mL時(shí)對(duì)DPPH·、·OH、O2·均具有一定的清除能力,蛋白濃度在0~30.0 mg/mL時(shí)的DPPH·清除率和·OH清除率均隨著濃度的增加而顯著增強(qiáng),二者在濃度為50.0 mg/mL時(shí)的清除率分別達(dá)到66.45%±1.59%和60.40%±1.96%,相當(dāng)于相同濃度下VC對(duì)其清除率的74.45%和61.65%。還原能力除15.0~20.0 mg/mL外,整體均隨著蛋白濃度的增加而顯著增強(qiáng),當(dāng)濃度升至50.0 mg/mL時(shí),還原力達(dá)到了1.775±0.004,是相同濃度下VC還原力的63.03%。在蛋白濃度為0~45.0 mg/mL時(shí),牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)O2·的清除率隨著蛋白濃度的增加而顯著增強(qiáng),濃度升至50.0 mg/mL時(shí),酶解液的清除能力達(dá)到了46.02%±2.26%。

    體內(nèi)試驗(yàn)結(jié)果表明:經(jīng)灌胃30 d后,試驗(yàn)組小鼠體重及脾臟指數(shù)均高于對(duì)照組;試驗(yàn)組小鼠血清中的SOD活力、MDA含量、GSH-Px活力與對(duì)照組之間差異均顯著(P<0.05);試驗(yàn)組組間的SOD活力差異顯著(P<0.05),MDA含量、GSH-Px活力差異不顯著。以上數(shù)據(jù)表明,試驗(yàn)組小鼠較對(duì)照組而言,體重及脾臟指數(shù)均有增加,說(shuō)明牦牛乳酪蛋白酶解液對(duì)小鼠的生長(zhǎng)及非特異性免疫有促進(jìn)作用;與對(duì)照組相比,試驗(yàn)組小鼠血清中SOD活力與GSH-Px活力均有提升,MDA含量有一定程度的下降。

    本試驗(yàn)結(jié)果表明:牦牛乳酪蛋白酶解產(chǎn)物在體外和體內(nèi)均表現(xiàn)出較好的抗氧化活性,為牦牛乳抗氧化功能產(chǎn)品的研究提供了理論依據(jù),在天然抗氧化劑應(yīng)用中具有廣闊前景。

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