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    植物激素調(diào)控OsBLR1基因促進(jìn)水稻萌發(fā)的機(jī)制分析

    2022-01-21 06:10:08常彥鵬耿梓宸王坤李夢(mèng)琪張博趙文麗
    關(guān)鍵詞:脫落酸種子休眠內(nèi)源

    常彥鵬,耿梓宸,王坤,李夢(mèng)琪,張博,趙文麗

    (1.河南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院,河南 鄭州 450002;2.中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)生物學(xué)院,北京 100089;3.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院,江蘇 南京 210000)

    植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程主要包括幼苗期、分蘗期、抽穗期和結(jié)實(shí)期4個(gè)時(shí)期。幼苗期的種子萌發(fā)是水稻生長(zhǎng)階段的起始,種子休眠是種子在合適的生長(zhǎng)環(huán)境下依然不能萌發(fā)的現(xiàn)象[1-4]。影響種子休眠與萌發(fā)的因素很多,分為外在因素和內(nèi)在因素。外在因素包括外界環(huán)境光照、溫度、濕度等[5-7];內(nèi)在因素主要是種子成熟度、α-淀粉酶活性、內(nèi)源植物激素的含量及比例等[8-9]。植物激素是影響種子休眠和萌發(fā)的重要因素之一,多種激素共同調(diào)控種子休眠和萌發(fā)過(guò)程。研究表明,在種子休眠和萌發(fā)過(guò)程中起主要作用的激素是脫落酸ABA和赤霉素GA[10-11]。ABA誘導(dǎo)種子休眠,抑制種子萌發(fā)。GA與ABA的作用相反[12-13]。GA在解除種子休眠和促進(jìn)種子萌發(fā)中起著重要作用,GA的合成是打破種子休眠狀態(tài)的必要條件之一[14]。

    bHLH (basic helix-loop-helix) 轉(zhuǎn)錄因子家族是真核生物中最大的轉(zhuǎn)錄因子家族之一,具有重要的功能,因其保守的bHLH結(jié)構(gòu)域而得名[15]。研究表明,bHLH轉(zhuǎn)錄因子參與信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、生長(zhǎng)發(fā)育、逆境脅迫及合成代謝等生物過(guò)程的調(diào)控[16]。擬南芥中,PIF (bHLH轉(zhuǎn)錄因子) 作為光信號(hào)負(fù)調(diào)控因子參與phyA/phyB下游基因的表達(dá)調(diào)控,最終抑制種子萌發(fā)[17-18]。紅光和遠(yuǎn)紅光信號(hào)通過(guò)蛋白酶體降解PIF3-1ike 5 (PIL5,bHLH轉(zhuǎn)錄因子) 促進(jìn)種子萌發(fā)[19]。擬南芥中bHLH轉(zhuǎn)錄因子SPATULA是種子萌發(fā)的光穩(wěn)定阻遏物[20]。在前期研究中發(fā)現(xiàn),水稻中一個(gè)典型的bHLH轉(zhuǎn)錄因子OsBLR1(Os02g0705500),參與BR信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,OsBLR1-OE株系表型為葉夾角增大且籽粒變長(zhǎng),對(duì)外源BR更為敏感[21]。

    目前,關(guān)于bHLH轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控種子萌發(fā)的報(bào)道并不多,并且OsBLR1是否參與調(diào)控萌發(fā)過(guò)程尚不明確。本研究以O(shè)sBLR1-OE (OsBLR1-overexpression)轉(zhuǎn)基因株系為研究材料,分析GA3和ABA對(duì)OsBLR1轉(zhuǎn)錄的影響,并測(cè)定OsBLR1-OE萌發(fā)過(guò)程中GA3和ABA的含量,利用qRT-PCR試驗(yàn)分析GA和ABA通路相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄變化,旨在初步探索GA和ABA調(diào)控OsBLR1促進(jìn)水稻種子萌發(fā)的機(jī)制,并為bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族參與調(diào)控萌發(fā)提供新的試驗(yàn)證據(jù)和理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    日本晴(Nip,OryzasativaL.ssp.japonicacv.)和OsBLR1-OE株系,均為河南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院昆蟲(chóng)生理生化與分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室所有。

    1.2 方法

    1.2.1 水稻常規(guī)培養(yǎng) 將水稻種子浸于體積分?jǐn)?shù)10%的H2O2溶液中消毒10 min,用清水沖洗5~6次。將消毒后的種子浸入適量水中,黑暗環(huán)境下30 ℃萌發(fā)1~2 d。萌發(fā)后的種子點(diǎn)于96孔培養(yǎng)穴中,于恒溫氣候箱中培養(yǎng),條件為相對(duì)濕度60%,28 ℃光照16 h,25 ℃黑暗8 h。

    1.2.2 表型鑒定及分析 將開(kāi)始浸種的時(shí)間標(biāo)記為0 h,在浸種24 h后,將種子放入含有清水的培養(yǎng)皿中培養(yǎng),浸種后第1~5天每天統(tǒng)計(jì)種子發(fā)芽數(shù)和第5天種子根長(zhǎng)。第5天幼苗轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中,用普通相機(jī)進(jìn)行表型拍攝。

    1.2.3 ABA和GA3激素處理 將Nip種子點(diǎn)種后置于恒溫培養(yǎng)箱中水培,正常生長(zhǎng)至14 d,對(duì)水稻幼苗進(jìn)行激素處理。脫落酸(ABA)(20 μmol·L-1)、赤霉素(GA3)(10 μmol·L-1)溶液均勻噴灑至葉片表面或加入培養(yǎng)液中,在處理后 0、3、6、12和24 h取葉片或根,用于RNA提取和熒光定量PCR試驗(yàn)。qRT-PCR反應(yīng)程序如表1所示。熒光定量數(shù)據(jù)分析利用公式:R= 2[ΔCt sample-ΔCt control],R為相對(duì)表達(dá)水平,ΔCtsample為試驗(yàn)組中基因Ct值與內(nèi)參β-actinCt值的差值,ΔCtcontrol為對(duì)照組中基因Ct值與內(nèi)參β-actinCt值的差值。試驗(yàn)包含3次生物學(xué)重復(fù)和3次技術(shù)重復(fù)。qRT-PCR所用引物如表2所示。利用Turkey test 進(jìn)行組間差異分析。

    表1 熒光定量PCR反應(yīng)體系Table 1 qRT-PCR system

    1.2.4 GA3和ABA激素含量測(cè)定 選取不同株系浸種后24 h的水稻種子,取完整種子作為樣品(> 2 g)于液氮速凍后研缽中磨碎,然后溶解于1.5 mL 體積分?jǐn)?shù)80%甲醇水溶液中,4 ℃浸提過(guò)夜。隨后采用液相色譜技術(shù)(HPLC)對(duì)樣品內(nèi)源ABA和GA3進(jìn)行測(cè)定,測(cè)定試驗(yàn)由蘇州科銘生物技術(shù)有限公司完成(科銘,蘇州,中國(guó))。

    1.2.5 Nip和OsBLR1-OE吸脹萌發(fā)時(shí)基因表達(dá)差異分析 將Nip和OsBLR1-OE種子浸種24 h后,分別將種子用液氮研磨后,進(jìn)行RNA提取、反轉(zhuǎn)錄和qRT-PCR。相關(guān)基因引物序列參見(jiàn)表2。

    表2 熒光定量PCR所用引物及序列Table 2 Primers and sequences used in qRT-PCR

    2 結(jié)果與分析

    2.1 OsBLR1基因?qū)λ痉N子萌發(fā)速率的影響

    種子萌發(fā)試驗(yàn)結(jié)果表明,Nip和OsBLR1-OE株系種子在第3天開(kāi)始萌發(fā),OsBLR1-OE萌發(fā)率顯著高于Nip且第4天時(shí)萌發(fā)率達(dá)到100%,Nip種子在第5天時(shí)萌發(fā)率達(dá)到100%(圖1-A)。并且,OsBLR1-OE的發(fā)芽勢(shì)顯著高于Nip(圖1-B)。對(duì)Nip和OsBLR1-OE浸種萌發(fā)5 d時(shí)的表型進(jìn)行拍照和統(tǒng)計(jì)分析,結(jié)果顯示,OsBLR1-OE根長(zhǎng)顯著長(zhǎng)于Nip(圖1-C和圖1-D)。以上結(jié)果表明,OsBLR1-OE比Nip萌發(fā)速度快。

    注:圖中不同小寫(xiě)字母表示同一處理下不同株系間差異顯著(P<0.05)。下同。Note: Different lowercase betters in the figure indicate significant differences between different lines under the same treatment (P<0.05).The same as below.圖1 Nip和OsBLR1-OE在種子發(fā)芽率(A)、發(fā)芽勢(shì)(B)、萌發(fā)情況(C)和根長(zhǎng)(D)中的差異Fig.1 Differences between Nip and OsBLR1-OE in seed germination rate (A),germination potential (B),germination status (C) and root length (D)

    2.2 外源ABA和GA3對(duì)OsBLR1基因轉(zhuǎn)錄的影響

    外源激素ABA和GA3處理后,OsBLR1轉(zhuǎn)錄顯著上調(diào)。葉片中,OsBLR1的表達(dá)在ABA處理1、3、6和24 h分別顯著上調(diào)2.04、5.96、3.13和2.75倍;OsBLR1的表達(dá)在GA3處理6、12和24 h分別顯著上調(diào)1.68、1.39和1.39倍(圖2-A和2-B)。根中,OsBLR1的表達(dá)在ABA處理1, 3, 6,12和24 h分別顯著上調(diào)2.12、8.41、2.39、4.42和6.07倍;OsBLR1的表達(dá)在GA3處理3和12 h分別顯著上調(diào)1.41和2.61倍(圖2-C和2-D)。

    圖2 ABA和GA3對(duì)葉片中OsBLR1轉(zhuǎn)錄(A和B)和根中OsBLR1轉(zhuǎn)錄(C和D)的影響Fig.2 Effects of ABA and GA3 on the transcripts of OsBLR1 in the leaves (A and B) and the roots (C and D)

    2.3 OsBLR1基因?qū)?nèi)源激素ABA和GA3含量的影響

    內(nèi)源ABA和GA3激素含量測(cè)定結(jié)果顯示,OsBLR1-OE中內(nèi)源ABA含量顯著低于Nip 18.21%(圖3-A),內(nèi)源GA3含量顯著高于Nip 19.84%(圖3-B),GA3與ABA比值顯著高于Nip 1.44倍(圖3-C)。

    圖3 不同株系中ABA含量(A)、GA3含量(B)和GA3/ABA比值(C)Fig.3 ABA content (A),GA3 content (B) and GA3/ABA ratio (C) in different lines

    2.4 OsBLR1基因?qū)A和ABA信號(hào)通路基因表達(dá)的影響

    熒光定量PCR結(jié)果顯示,OsBLR1-OE中,ABA 生物合成的關(guān)鍵酶OsNCED3基因表達(dá)量顯著低于Nip 67.83%(圖4-A);涉及脫落酸和高滲透?jìng)鲗?dǎo)的OsSAPK3基因表達(dá)量顯著低于Nip 31.58%(圖4-B);脫落酸外排轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白OsDG1基因表達(dá)量顯著低于Nip 24.81%(圖4-C);GA合成通路基因GA20氧化酶OsGA20ox1和赤霉素20-氧化酶OsGA20ox3基因表達(dá)量分別顯著高于Nip 141.18%和237.06%(圖4-D和圖4-E);GA失活基因赤霉素2-β-雙加氧酶OsGA2ox3基因表達(dá)量顯著低于Nip 39.58%(圖4-F)。

    圖4 不同株系中OsNCED3基因表達(dá)量(A)、OsSARK3基因表達(dá)量(B)、OsDG1基因表達(dá)量(C)、OsGA20ox1基因表達(dá)量(D)、OsGA20ox3基因表達(dá)量(E)和OsGA2ox3基因表達(dá)量(F)Fig.4 OsNCED3 gene expression (A),OsSARK3 gene expression (B),OsDG1 gene expression (C),OsGA20ox1 gene expression (D),OsGA20ox3 gene expression (E),and OsGA2ox3 gene expression (F) in different lines

    3 結(jié)論與討論

    汪德州等[22]認(rèn)為,玉米ZmbHLH4基因在擬南芥中過(guò)表達(dá)可促進(jìn)擬南芥種子萌發(fā),且影響形態(tài)建成。SHI等[23]認(rèn)為,擬南芥中bHLH轉(zhuǎn)錄因子HFR1抑制種子萌發(fā)。上述研究表明,在不同物種中,bHLH轉(zhuǎn)錄因子影響種子萌發(fā)。本研究結(jié)果表明,轉(zhuǎn)錄因子OsBLR1促進(jìn)種子萌發(fā)與以上研究結(jié)果相符合。

    種子萌發(fā)過(guò)程與ABA 和 GA 的變化密切相關(guān)。ABA誘導(dǎo)種子休眠和維持種子吸脹休眠狀態(tài)[24]。在萌發(fā)完成前(種子吸水第2階段的后期),ABA的含量是種子能否完成萌發(fā)的決定性因素[25]。GA具有破除種子休眠和促進(jìn)種子萌發(fā)功能,是種子萌發(fā)的激活因子[26]。ABA含量多或GA含量少導(dǎo)致多數(shù)種子處于休眠狀態(tài),相反,ABA含量少或GA 含量多解除種子休眠利于種子萌發(fā)[27-28]。本研究發(fā)現(xiàn),ABA 和 GA3均顯著上調(diào)OsBLR1基因的表達(dá)量,OsBLR1-OE株系中,ABA含量低于Nip,GA3含量高于Nip,且GA3與ABA含量比值顯著高于Nip。因此,推測(cè)OsBLR1-OE中GA3和ABA含量變化是導(dǎo)致其種子萌發(fā)速度加快的原因。

    植物中多種基因參與ABA的生物合成,9-順式-環(huán)氧類(lèi)胡蘿卜素雙加氧酶(NCED)是ABA 生物合成的關(guān)鍵酶[29-31]。蔗糖非發(fā)酵相關(guān)蛋白激酶(SnRK2)通過(guò)修飾C端產(chǎn)生ABA應(yīng)答能力[32]。脫落酸外排轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(DG1)是外排轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白家族成員,具有脫落酸外排轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白活性,介導(dǎo)ABA長(zhǎng)距離運(yùn)輸[33]。GA2ox、GA3ox和GA20ox是GA合成的關(guān)鍵基因[34-38]。GA20ox在花生和列當(dāng)種子萌發(fā)過(guò)程中表達(dá)顯著上調(diào)[39-40]。在黃芪種子萌發(fā)時(shí),GA2ox基因表達(dá)上調(diào),GA20ox基因表達(dá)下調(diào)。外源GA3處理華重樓萌發(fā)種子時(shí),GA2ox基因表達(dá)下調(diào),GA20ox基因表達(dá)上調(diào)[41-42]。本研究發(fā)現(xiàn),OsBLR1-OE株系中,OsNCED3、OsSAPK3和OsDG1基因表達(dá)量顯著低于Nip,且GA合通路基因OsGA20ox1和OsGA20ox3基因表達(dá)顯著上調(diào),而GA失活基因OsGA2ox3基因表達(dá)量顯著低于Nip。結(jié)合上述基因的轉(zhuǎn)錄變化,我們推測(cè)OsBLR1-OE種子萌發(fā)時(shí),上述基因的轉(zhuǎn)錄變化導(dǎo)致內(nèi)源ABA含量下降,GA含量增多。

    綜上所述,OsBLR1轉(zhuǎn)錄水平受GA3和ABA影響而上調(diào),OsBLR1-OE株系中ABA合成和運(yùn)輸通路相關(guān)基因表達(dá)量降低,GA合成通路相關(guān)基因表達(dá)量升高,且GA活性的負(fù)反饋抑制減弱,導(dǎo)致ABA含量下降,GA合成增多且活性不受抑制,GA/ABA比值增大,最終促進(jìn)種子萌發(fā)。

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