馮麗萍 張輝潔 歐雯婷 余 盈(廣東醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院腫瘤中心,湛江 524000)
2018年數(shù)據(jù)顯示,全球因肝癌死亡人數(shù)高達(dá)78.2萬,而我國占50%以上[1]。肝癌是我國癌癥死亡的重要原因之一,且其發(fā)病率和死亡率持續(xù)升高,嚴(yán)重威脅人們身體健康和生命安全[2]。丙型肝炎病毒(hepatitis C virus,HCV)是一種小包膜正鏈單股RNA病毒,其感染是除乙型肝炎病毒外誘發(fā)肝癌的另一大危險因素;HCV核心蛋白(HCV core protein,HCVc)是HCV編碼的一種多功能蛋白,可通過與細(xì)胞內(nèi)信號通路相互作用調(diào)控相關(guān)因子表達(dá),影響細(xì)胞增殖和凋亡等生物學(xué)行為,導(dǎo)致肝癌發(fā)生[3]。因此,深入研究HCVc促進(jìn)肝癌發(fā)生的分子機(jī)制對HCV感染相關(guān)性肝癌防治具有重要意義。
微小RNA(microRNAs,miRNAs)是一類非編碼RNA,可通過與靶基因3'UTR特異性結(jié)合在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控其表達(dá)發(fā)揮作用,其異常表達(dá)與HCV感染相關(guān)性肝癌發(fā)生聯(lián)系密切[4]。研究指出,miR-486-5p在肝癌中異常低表達(dá)且可抑制HepG2細(xì)胞生長[5];另外,原發(fā)性外周血單個核細(xì)胞中人類免疫缺陷病毒和HCV共同感染可引發(fā)miR-486-5p表達(dá)下調(diào)[6];但HCV單獨(dú)感染是否影響肝癌miR-486-5p表達(dá)尚未明確。研究顯示,HCV感染可引起肝組織中醛酮還原家族1B10(aldehyde reductase family 1 member B10,AKR1B10)表達(dá)上調(diào),而AKR1B10在肝癌中異常高表達(dá),且可通過調(diào)控HepG2細(xì)胞增殖和凋亡發(fā)揮重要促癌作用[7-9]。本研究采用生物信息學(xué)軟件探索miR-486-5p和AKR1B10 3'UTR的互補(bǔ)結(jié)合位點(diǎn),推測miR-486-5p與AKR1B10的可能靶向關(guān)系,HCV感染可能通過調(diào)控肝癌中miR-486-5p/AKR1B10發(fā)揮致癌作用,因此,本研究擬通過HCVc腺病毒感染人肝癌細(xì)胞株HepG2,觀察miR-486-5p和AKR1B10表達(dá)變化及兩者作用關(guān)系,以期為HCV感染相關(guān)性肝癌發(fā)生機(jī)制和治療提供新的方向。
1.1 材料 人肝癌細(xì)胞株HepG2購于寧波明舟生物科技有限公司(貨號:ATCC HB-8065);EMEM培養(yǎng)基購于上海子起生物科技有限公司(貨號:30-2003);胎牛血清購于上海生工生物工程股份有限公司(貨號:E510002-0100);重組腺病毒Ad-GFPHCVc(滴度為1×1011pfu/ml)和陰性對照腺病毒Ad-GFP(滴度為1×1011pfu/ml)由長沙艾碧維生物科技有限公司旗下奧諾基因合成(貨號:均為HGrAd003167);脂質(zhì)體3000、Trizol試劑、雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒、通用RT-PCR試劑盒、MTT試劑盒和Annexin V-FITC/PI凋亡檢測試劑盒購于北京索萊寶生物科技有限公司(貨號:L3000008、15596018、D0010、RP1100、M1020-500T、CA1020-20T);SYBR Green定量PCR試劑盒購于北京金福賽生物科技有限公司(貨號:GF1051);miR-486-5p模擬物、模擬物陰性對照miR-NC、miR-486-5p抑制劑和抑制劑陰性對照購于南通百奧邁科生物技術(shù)有限公司(貨號:CS7004、CS7005、CS8004、CS8005)。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)與腺病毒感染 采用含10%胎牛血清的EMEM培養(yǎng)基常規(guī)培養(yǎng)HepG2細(xì)胞(37℃、5%CO2、95%相對濕度)。將長勢良好的指數(shù)期HepG2細(xì)胞按1×105個/孔平鋪于6孔板,常規(guī)培養(yǎng)貼壁,以感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection,MOI)為20、40、60、80和100對HepG2細(xì)胞進(jìn)行GFP腺病毒感染,感染48 h后采用熒光顯微鏡觀察感染效率。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組與處理 實(shí)驗(yàn)分為空白組:正常培養(yǎng)不進(jìn)行感染;陰性對照組:感染陰性對照腺病毒Ad-GFP;HCVc組:感染重組腺病毒Ad-GFPHCVc,每組設(shè)3個重復(fù)。按1×105個/孔取指數(shù)期HepG2細(xì)胞接種至6孔板,常規(guī)培養(yǎng)貼壁,根據(jù)實(shí)驗(yàn)分組分別加入Ad-GFP、Ad-GFP-HCVc腺病毒(MOI=60)培養(yǎng)48 h。
1.2.3 RT-PCR檢測HepG2細(xì)胞中HCVc基因表達(dá)收集處理后的3組HepG2細(xì)胞,加入1 ml Trizol試劑提取總RNA,參照RT-PCR試劑盒說明書進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并將擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳分析,擴(kuò)增條件為:94℃6 min,94℃15 s、60℃30 s、72℃30 s,72℃5 min,38個循環(huán)。PCR擴(kuò)增引物HCVc基因(長度180 bp)F:5'-CAACGCAAACCAAAATGCGA-3',R:5'-CTTTCGGAATCGGCTGAC-3';內(nèi)參GAPDH基因(長度217 bp)F:5'-GAGTCAACGGATTTGGTCGT-3',R:5'-TTGATTTTGGAGGGATCTCG-3'。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.4 MTT法檢測HepG2細(xì)胞增殖 將指數(shù)期HepG2細(xì)胞調(diào)整濃度為1×105個/ml,200μl/孔接種至96孔板,常規(guī)培養(yǎng)貼壁后,按1.2.2分組處理;分別在腺病毒感染細(xì)胞48 h、72 h和96 h時,參照MTT試劑盒說明書采用酶標(biāo)儀檢測HepG2細(xì)胞增殖活力,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測HepG2細(xì)胞凋亡 收集腺病毒感染48 h后的3組HepG2細(xì)胞,預(yù)冷磷酸緩沖液漂洗2次,嚴(yán)格按照Annexin V-FITC/PI凋亡檢測試劑盒說明書操作,流式細(xì)胞儀檢測HepG2細(xì)胞凋亡率,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.6 qRT-PCR檢測HepG2細(xì)胞miR-486-5p表達(dá)采用Trizol法提取3組HepG2細(xì)胞總RNA,逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,以cDNA為模板,參照SYBR Green定量PCR試劑盒說明書采用熒光定量PCR儀進(jìn)行擴(kuò)增,以U6為內(nèi) 參,2-ΔΔCt法計 算HepG2細(xì)胞miR-486-5p表達(dá)。擴(kuò)增條件為:94℃2 min,94℃10 s、60℃30 s,40個循環(huán)。PCR擴(kuò)增引物序列:miR-486-5p F:5'-CATTGTGCTGTTCGTGCAGTTAA-3',R:5'-CCCTCCAGGAATTGGCCTGTCTT-3';U6 F:5'-CTCGCTTCGGCAGCACATATACT-3',R:5'-CGCTTCACGAATTTGCGTGT-3'。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.7 Western blot檢 測HepG2細(xì) 胞HCVc和AKR1B10蛋白表達(dá) 收集處理后的3組HepG2細(xì)胞,加入細(xì)胞裂解液抽提總蛋白,二奎啉甲酸法對總蛋白進(jìn)行定量;將蛋白樣品和上樣緩沖液按1∶1混合,進(jìn)行SDS-PAGE電泳分離,半干法轉(zhuǎn)膜,5%脫脂奶粉封閉2 h,轉(zhuǎn)入1∶1 000稀釋的一抗(HCVc、AKR1B10、GAPDH)4℃孵育過夜,轉(zhuǎn)入1∶2 000稀釋的二抗(辣根過氧化物酶標(biāo)記)室溫孵育2 h,顯影;以GAPDH為內(nèi)參,Quantity one軟件分析HepG2細(xì)胞HCVc和AKR1B10蛋白表達(dá)。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.8 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 將指數(shù)期HepG2細(xì)胞平鋪至6孔板,常規(guī)培養(yǎng)至70%融合,參照脂質(zhì)體3000說明書將miR-486-5p抑制劑及其陰性對照轉(zhuǎn)染至HepG2細(xì)胞,命名為anti-miR-486-5p組和anti-miRNC組,以正常培養(yǎng)不進(jìn)行轉(zhuǎn)染的HepG2細(xì)胞作為對照組,每組設(shè)3個復(fù)孔。轉(zhuǎn)染48 h后收集3組細(xì)胞,RT-qPCR檢測miR-486-5p表達(dá),Western blot檢測AKR1B10蛋白表達(dá)。
1.2.9 雙熒光素酶報告基因?qū)嶒?yàn) 將含miR-486-5p和AKR1B10結(jié)合位點(diǎn)序列和定點(diǎn)突變序列克隆重組至pmirGLO載體,構(gòu)建pmirGLO-AKR1B10野生型載體質(zhì)粒(AKR1B10-Wt)和pmirGLO-AKR1B10突變型載體質(zhì)粒(AKR1B10-Mut);參照脂質(zhì)體3000說明書將miR-486-5p模擬物、模擬物陰性對照miR-NC分別與AKR1B10-Wt、AKR1B10-Mut共轉(zhuǎn)染至HepG2細(xì)胞(每組設(shè)3個復(fù)孔),轉(zhuǎn)染48 h后,采用雙熒光素酶報告基因?qū)嶒?yàn)檢測各處理組細(xì)胞熒光素酶活性。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.3 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS22.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,數(shù)據(jù)以±s表示,兩組間比較采用t檢驗(yàn),多組間比較采用單因素方差分析,組間進(jìn)一步比較采用SNK-q檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 GFP腺病毒感染效果 采用Ad-GFP腺病毒在MOI=60時感染HepG2細(xì)胞48 h,熒光顯微鏡觀察顯示感染效率達(dá)95%以上(圖1A)。RT-PCR和Western blot檢測結(jié)果顯示,空白組和陰性對照組細(xì)胞中未見HCVc mRNA和蛋白表達(dá),而HCVc組細(xì)胞中可見HCVc mRNA和蛋白表達(dá)(圖1B、C)。
圖1 腺病毒感染效果Fig.1 Adenovirus infection effect
2.2 HCVc促進(jìn)肝癌HepG2細(xì)胞增殖并抑制其凋亡 腺病毒感染48 h、72 h和96 h時,陰性對照組和空白組細(xì)胞增殖活力差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),但HCVc組細(xì)胞增殖活力明顯高于陰性對照組(P<0.05);陰性對照組和空白組細(xì)胞凋亡率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),但HCVc組細(xì)胞凋亡率明顯低于陰性對照組(P<0.05,圖2、表1)。
表1 HCVc對HepG2細(xì)胞增殖和凋亡的影響(±s,n=9)Tab.1 Effects of HCVc on proliferation and apoptosis of HepG2 cells(±s,n=9)
表1 HCVc對HepG2細(xì)胞增殖和凋亡的影響(±s,n=9)Tab.1 Effects of HCVc on proliferation and apoptosis of HepG2 cells(±s,n=9)
Note:1)P<0.05 vs Negative control group.
Groups Blank Negative control HCVc FP OD490 48 h 0.62±0.03 0.60±0.04 0.73±0.061)21.689<0.001 72 h 0.89±0.06 0.93±0.05 1.35±0.101)108.894<0.001 96 h 1.19±0.13 1.22±0.15 1.68±0.151)32.903<0.001 Apoptosis rate(%)9.52±1.16 8.75±1.23 3.02±0.211)117.323<0.001
圖2 流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果Fig.2 Flow cytometry results
2.3 HCVc下調(diào)肝癌HepG2細(xì)胞miR-486-5p表達(dá),上調(diào)AKR1B10蛋白表達(dá) 與空白組相比,陰性對照組細(xì)胞miR-486-5p和AKR1B10蛋白表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與陰性對照組相比,HCVc組細(xì)胞miR-486-5p表達(dá)明顯降低,而AKR1B10蛋白表達(dá)明顯升高(P<0.05,圖3、表2)。
表2 HCVc對HepG2細(xì) 胞miR-486-5p和AKR1B10蛋 白表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.2 Effects of HCV on miR-486-5p and AKR1B10 protein expressions of HepG2 cells(±s,n=9)
表2 HCVc對HepG2細(xì) 胞miR-486-5p和AKR1B10蛋 白表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.2 Effects of HCV on miR-486-5p and AKR1B10 protein expressions of HepG2 cells(±s,n=9)
Note:1)P<0.05 vs Negative control group.
Groups Blank Negative control HCVc F P miR-486-5p 1.00±0.00 0.98±0.08 0.41±0.041)378.788<0.001 AKR1B10 protein 0.48±0.04 0.46±0.03 0.89±0.071)214.905<0.001
圖3 Western blot檢測AKR1B10蛋白表達(dá)Fig.3 AKR1B10 protein expression detected by Western blot
2.4 下調(diào)miR-486-5p表達(dá)可上調(diào)HepG2細(xì)胞AKR1B10蛋白表達(dá) 與對照組相比,anti-miR-NC組細(xì)胞miR-486-5p和AKR1B10蛋白表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與anti-miR-NC組相比,antimiR-486-5p組細(xì)胞miR-486-5p表達(dá)明顯降低,而AKR1B10蛋白表達(dá)明顯升高(P<0.05,圖4、表3)。
表3 下調(diào)miR-486-5p表達(dá)對HepG2細(xì)胞AKR1B10蛋白表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.3 Effect of miR-486-5p down-regulation on AKR1B10 protein expression of HepG2 cells(±s,n=9)
表3 下調(diào)miR-486-5p表達(dá)對HepG2細(xì)胞AKR1B10蛋白表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.3 Effect of miR-486-5p down-regulation on AKR1B10 protein expression of HepG2 cells(±s,n=9)
Note:1)P<0.05 vs anti-miR-NC group.
Groups Control anti-miR-NC anti-miR-486-5p F P miR-486-5p 1.00±0.00 0.98±0.09 0.19±0.031)640.300<0.001 AKR1B10 protein 0.43±0.03 0.45±0.04 0.78±0.061)171.000<0.001
圖4 Western blot檢測AKR1B10蛋白表達(dá)Fig.4 AKR1B10 protein expression detected by Western blot
2.5 miR-486-5p可與AKR1B10靶向結(jié)合Target-Scan軟件預(yù)測結(jié)果顯示,miR-486-5p和AKR1B10 3'UTR存在互補(bǔ)結(jié)合位點(diǎn)(圖5);與模擬物陰性對照miR-NC相比,共轉(zhuǎn)染miR-486-5p模擬物與AKR1B10-Wt質(zhì)粒細(xì)胞熒光素酶活性明顯降低(P<0.05),但共轉(zhuǎn)染miR-486-5p模擬物與AKR1B10-Mut質(zhì)粒細(xì)胞熒光素酶活性無明顯改變(P>0.05,圖6)。
圖5 miR-486-5p與AKR1B10存在互補(bǔ)結(jié)合位點(diǎn)Fig.5 There were complementary binding sites between miR-486-5p and AKR1B10
圖6 各組細(xì)胞熒光素酶活性Fig.6 Luciferase activity of cells in each group
HCVc是一種反式激活蛋白,不僅可通過影響HCV感染細(xì)胞的基因表達(dá),還可通過形成同二聚體結(jié)構(gòu)、異二聚體結(jié)構(gòu)或多聚體結(jié)構(gòu)干擾細(xì)胞內(nèi)信號通路轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)節(jié)細(xì)胞周期、凋亡等過程,進(jìn)而發(fā)揮致癌作用[10]。本研究采用HCVc重組腺病毒感染HepG2細(xì)胞,細(xì)胞增殖活力明顯增強(qiáng),凋亡能力明顯降低,表明HCVc具有促進(jìn)HepG2細(xì)胞增殖和抑制細(xì)胞凋亡的作用,與XU等[11]報道的HCVc可通過上調(diào)miR-196a靶向FOXO1促進(jìn)HepG2細(xì)胞異常增殖的結(jié)果以及FENG等[12]報道的HCVc可通過調(diào)控sirt1-p53-bax通路抑制HepG2細(xì)胞凋亡的結(jié)果一致。
miRNAs是一類與肝癌發(fā)生密切相關(guān)的非編碼RNA[13]。HCVc可通過調(diào)控部分miRNAs表達(dá)發(fā)揮致癌作用。如SHIU等[14]報道,HCVc可通過下調(diào)miR-138表達(dá)抑制肝癌細(xì)胞復(fù)制性衰老;WANG等[15]研究指出,HCVc可通過調(diào)節(jié)TGFBRAP1和HOTTIP表達(dá)影響參與調(diào)控致癌進(jìn)展的miR-122和miR-204表達(dá);HUANG等[16]發(fā)現(xiàn),HCVc可通過下調(diào)miR-152表達(dá)調(diào)節(jié)Wnt1表達(dá)促進(jìn)肝癌細(xì)胞異常增殖。miR-486-5p是在肝癌中異常低表達(dá)的miRNA,可通過調(diào)控相關(guān)靶基因(如PIK3R1、H3F3B、NEK2等)抑制癌細(xì)胞增殖和誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[5,17-18];但miR-486-5p是否參與HCVc致癌機(jī)制尚未闡明。本研究進(jìn)一步檢測發(fā)現(xiàn),HCVc重組腺病毒感染后,HepG2細(xì)胞miR-486-5p表達(dá)下調(diào),表明HCVc可抑制HepG2細(xì)胞miR-486-5p表達(dá)。提示HCVc促進(jìn)肝癌發(fā)生的分子機(jī)制可能與下調(diào)肝癌中的抑癌基因miR-486-5p表達(dá)有關(guān)。
AKR1B10是一種醛酮還原酶,不僅在調(diào)節(jié)視黃酸代謝和促進(jìn)脂質(zhì)合成等過程中發(fā)揮重要作用,還在包括肝癌在內(nèi)的多種腫瘤細(xì)胞中發(fā)揮重要致癌作用[19-20]。本研究進(jìn)一步檢測發(fā)現(xiàn),HCVc可上調(diào)HepG2細(xì)胞AKR1B10蛋白表達(dá),與SATO等[21]研究所得出的HCVc可上調(diào)肝組織中AKR1B10表達(dá)結(jié)果一致。同時鑒于錢瑞坤等[8]研究證實(shí),AKR1B10在肝癌中可通過調(diào)控HepG2細(xì)胞增殖和凋亡發(fā)揮促癌作用,提示HCVc促進(jìn)肝癌發(fā)生過程中,其可能通過增強(qiáng)促癌因子AKR1B10表達(dá)使AKR1B10的致癌作用增強(qiáng)進(jìn)而促進(jìn)肝癌發(fā)生。本研究通過轉(zhuǎn)染miR-486-5p抑制劑下調(diào)miR-486-5p表達(dá)后發(fā)現(xiàn),HepG2細(xì)胞中AKR1B10蛋白表達(dá)明顯升高,表明miR-486-5p低表達(dá)可促進(jìn)HepG2細(xì)胞AKR1B10蛋白表達(dá)。另外,本研究通過生物信息學(xué)軟件預(yù)測及雙熒光素酶報告基因?qū)嶒?yàn)驗(yàn)證發(fā)現(xiàn),miR-486-5p可與AKR1B10靶向結(jié)合,表明AKR1B10是miR-486-5p的潛在靶基因。提示肝癌發(fā)生過程中,低表達(dá)miR-486-5p可能通過靶向上調(diào)促癌因子AKR1B10蛋白表達(dá)發(fā)揮促癌作用。
綜上所述,HCVc可引起HepG2細(xì)胞miR-486-5p表達(dá)下調(diào)和AKR1B10蛋白表達(dá)上調(diào),AKR1B10是miR-486-5p的潛在靶基因,HCVc促進(jìn)HepG2細(xì)胞增殖并抑制細(xì)胞凋亡的作用機(jī)制可能與調(diào)控miR-486-5p/AKR1B10有關(guān)。但HCVc是直接還是間接調(diào)控miR-486-5p表達(dá)有待進(jìn)一步探討。