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    LRP1-pPyk2-MMP9通路在高氧誘導(dǎo)新生大鼠肺損傷中的作用

    2021-12-22 03:31:14鄭亞斐朱海艷王維胡晶晶包天平田兆方
    中國當代兒科雜志 2021年12期
    關(guān)鍵詞:高氧勻漿肺泡

    鄭亞斐 朱海艷 王維 胡晶晶 包天平 田兆方

    (南京醫(yī)科大學(xué)附屬淮安第一醫(yī)院新生兒科/淮安市小兒呼吸診療重點實驗室,江蘇淮安 223300)

    支氣管肺發(fā)育不良(bronchopulmonary dysplasia,BPD)是早產(chǎn)兒常見的慢性肺部疾病,由肺損傷和未成熟肺的修復(fù)之間的不平衡引起[1]。此外,BPD還會對神經(jīng)系統(tǒng)和其他系統(tǒng)器官造成損害[2]。由于目前BPD 缺乏有效的治療方法,因而針對其發(fā)病機制的研究以便實現(xiàn)精準治療一直是新生兒學(xué)的熱點話題。

    低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白1(low-density lipoprotein receptor-related protein 1,LRP1) 是本課題組在前期臨床試驗中通過數(shù)據(jù)非依賴采集質(zhì)譜技術(shù),從BPD 患兒與非BPD 患兒的血漿中篩選并得到驗證的差異表達蛋白[3]。這提示LRP1可能涉及BPD 發(fā)病機制。LRP1 是一種普遍存在的I型跨膜受體,可介導(dǎo)多種途徑的信號轉(zhuǎn)導(dǎo),涉及蛋白酶降解、炎癥調(diào)節(jié)、細胞生長、細胞存活和遷移等[4];還可結(jié)合內(nèi)吞40 多種結(jié)構(gòu)和功能不同的配體,包括載脂蛋白、蛋白酶、蛋白酶抑制復(fù)合物和細胞外基質(zhì)蛋白,如基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)和尿激酶型纖溶酶原激活物[5]。MMPs是一種鋅依賴的蛋白水解酶,具有消化細胞外基質(zhì)蛋白的能力,在生理和病理條件下都在細胞外基質(zhì)重塑中發(fā)揮重要作用[6]。MMPs不僅參與炎癥和致癌過程的啟動和調(diào)節(jié),還參與胚胎發(fā)育和器官成熟(包括肺)[7],其在BPD進展中具有的作用已得到公認[8-9],近年來MMP9 在BPD的作用受到重視[10-11]。酪氨酸激酶2(prolinerich tyrosine kinase 2,Pyk2)是一種富含脯氨酸的非受體酪氨酸激酶,可由細胞內(nèi)鈣水平升高而激活,還可被多種其他信號激活,如毒蕈堿型乙酰膽堿受體M1、蛋白激酶C、生長因子、活性氧等[12],pPyk2是其磷酸化形式。目前已有文獻報道在血管平滑肌細胞[13]和成纖維細胞[14]中存在LRP1-pPyk2-MMP9信號通路。相關(guān)實驗結(jié)果表明,pPyk2 與 LRP1β 鏈發(fā)生作用,且 pPyk2 和 MMP9 的特異性熒光在動脈粥樣硬化斑塊的血管細胞中重疊[13]。另外,共聚焦顯微鏡圖像顯示,pPyk2、MMP9 和LRP1 共定位于心肌梗死后的心肌成纖維細胞中[14]。但目前尚未有 LRP1-pPyk2-MMP9 通路參與BPD 發(fā)病的相關(guān)報道。因此,本研究旨在通過高氧誘導(dǎo)新生大鼠BPD 模型研究LRP1-pPyk2-MMP9信號通路的變化,為BPD的發(fā)病機制的研究提供新思路。

    1 材料與方法

    1.1 實驗分組

    Sprague-Dawley 大鼠飼養(yǎng)于南京醫(yī)科大學(xué)附屬淮安第一醫(yī)院SPF級動物房,嚴格執(zhí)行實驗動物管理條例。將出生時間相差半小時以內(nèi)的新生大鼠16只,雌雄不限,體重6~8 g,隨機分配至空氣對照組(吸入氧濃度=21%,空氣組)、高氧模型組(吸入氧濃度>95%,高氧組),每組8 只。本實驗取得南京醫(yī)科大學(xué)附屬淮安第一醫(yī)院動物實驗倫理委員會批準。高氧組新生大鼠按本實驗室方法于生后即置于>95%氧濃度環(huán)境中持續(xù)暴露7 d 建立高氧肺損傷模型[15],空氣組僅暴露于同室空氣環(huán)境中,適時補充飼料和水,更換墊料。空氣暴露和高氧暴露的母鼠每24 h 互換,以免母鼠因氧中毒影響新生鼠的哺乳喂養(yǎng),交換母鼠過程輕拿輕放,防止母鼠激惹發(fā)生食子現(xiàn)象,記錄大鼠生長情況。

    1.2 標本收集

    兩組大鼠均于生后第8天稱重后腹腔注射10%水合氯醛(4 mL/kg)麻醉,采用心臟取血法留取血1~2 mL。頸正中暴露氣管,剪開一小口插入導(dǎo)管并固定,向?qū)Ч軆?nèi)緩緩注入1 mL預(yù)冷0.9%氯化鈉溶液反復(fù)回抽3 次,回收率80%~90%,留取支氣管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)??焖偌糸_胸腔,取出雙側(cè)肺臟,肉眼觀察后,用PBS沖洗;左上肺制成肺組織勻漿,右上肺組織以4%多聚甲醛固定,石蠟包埋后連續(xù)切片,厚度為5 μm,供免疫組化和組織學(xué)檢查用。

    1.3 肺組織病理檢查

    蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin staining,HE)染色后觀察肺組織病理學(xué)改變,以輻射狀肺泡計數(shù)(radical alveolar counts,RAC)評估肺泡發(fā)育程度,在100倍光鏡視野下,隨機選取5個視野,計數(shù)肺泡數(shù)并取其均值。

    1.4 ELISA法測定血清可溶性LRP1和MMP9水平

    采血后室溫下靜置2 h,再置4℃冰箱3~4 h,待血液凝固血塊收縮后,4 000 r/min 離心10 min,取上清,保存于-80℃冰箱中。取BALF 于1 h 內(nèi)4 000 r/min 離心10 min,取上清,保存于-80℃冰箱中。采用可溶性LRP1(soluble LRP1,sLRP1)(江蘇酶免實業(yè)有限公司)、MMP9(武漢三鷹生物技術(shù)有限公司)ELISA試劑盒,按照產(chǎn)品說明書檢測血清及BALF中相應(yīng)指標的濃度。

    1.5 Western blot檢測蛋白水平

    肺組織勻漿用BCA 法測定蛋白濃度,待測樣品以10%SDS-聚丙烯酰胺凝膠進行電泳分離,然后把膠上的蛋白電轉(zhuǎn)移到醋酸纖維膜上,5%無脂奶粉封閉,分別與兔抗鼠GAPDH 多克隆抗體一抗(Gentex,美國)(稀釋度為1∶5 000)、兔抗鼠LRP1單克隆抗體一抗(Abcam,英國)(稀釋度為1∶5 000)、兔抗鼠Pyk2單克隆抗體一抗(Abcam,英國)(稀釋度為1∶5 000)、兔抗鼠pPyk2多克隆抗體一抗(Affinity,美國)(稀釋度為1∶2 000)、兔抗鼠MMP9多克隆抗體一抗(Proteintech,美國)(稀釋度為1∶2 000)孵育雜交,4℃過夜洗膜后,再加辣根過氧化物酶標記的二抗,室溫孵育1 h,洗膜后進行顯色,曝光于X線膠片上,在圖像分析系統(tǒng)計算目的蛋白條帶灰度值與內(nèi)參蛋白條帶灰度值的比值,代表目的蛋白的相對表達量。

    1.6 Real-Time PCR法檢測mRNA相對表達量

    TRIzol 法抽提2 組大鼠肺組織總RNA(美國Invitrogen公司),采用逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)法檢測LRP1 mRNA、MMP9 mRNA的表達變化,逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及聚合酶鏈反應(yīng)試劑盒購自日本Takara 公司。熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)體系為20 μL,2×SYBR Premix Ex Taq Ⅱ 10 μL,上下游引物 (10 μmol/L)各 0.8 μL, ROX 0.4 μL, cDNA 2.0 μL, dH2O 6.0 μL。反應(yīng)條件為95℃預(yù)變性30 s;95℃變性5 s,60℃退火20 s,40 個循環(huán);溶解曲線為95℃15 s,60℃60 s,95℃15 s。擴增引物序列LRP1-F: 5'-CCACTATGGATGCCCCTAAAAC-3', LRP1-R:5'-GCAATCTCTTTCACCGTCACA-3';MMP9-F:5'-CCCTGCGTATTTCCATTCAT-3', MMP9-R: 5'-AAACCCCACTTCTTGTCAGC-3'; GAPDH-F: 5'-CCTTCATTGACCTCAACTACATGG-3', GAPDH-R:5'-CTCGCTCCTGGAAGATGGTG-3'。

    1.7 統(tǒng)計學(xué)分析

    采用SPSS 20.0 統(tǒng)計學(xué)軟件對所有數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學(xué)比較分析,計量資料以均數(shù)±標準差()表示,兩組間比較采用兩樣本t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 大鼠生長狀況

    空氣組大鼠活動良好、反應(yīng)靈敏、毛發(fā)光澤、膚色紅潤,無異常表現(xiàn)。高氧組大鼠反應(yīng)遲鈍、精神萎靡、活動減少,毛發(fā)發(fā)澀、無光澤,皮膚蒼白、干燥,口周發(fā)紺,氧依賴表現(xiàn)明顯,體重增長較空氣組緩慢(P<0.05),見表1。

    表1 兩組大鼠生后各時間點體重比較 (,g)

    表1 兩組大鼠生后各時間點體重比較 (,g)

    images/BZ_106_1284_764_1431_827.pngimages/BZ_106_1431_764_1504_827.pngimages/BZ_106_1504_764_1689_827.pngimages/BZ_106_1689_764_1874_827.pngimages/BZ_106_1874_764_2059_827.pngimages/BZ_106_1284_945_1431_1063.png空氣組高氧組8 8images/BZ_106_1431_945_1504_1063.pngimages/BZ_106_1504_945_1689_1063.png7.5±0.4 7.5±0.6images/BZ_106_1689_945_1874_1063.png10.6±0.6 9.8±1.7images/BZ_106_1874_945_2059_1063.png13.8±1.2 12.1±1.4第7天15.8±0.8 13.0±1.2 5.732<0.001

    2.2 大鼠肺組織病理變化

    HE 染色結(jié)果顯示,空氣組大鼠肺組織結(jié)構(gòu)完整;高氧組可見肺泡數(shù)減少,肺泡大小不均一,肺泡間隔水腫增厚及纖維化(圖1)??諝饨MRAC值 (19.1±2.0) 大 于 高 氧 組 (13.2±1.7)(t=6.321,P<0.05)。提示BPD小鼠模型構(gòu)建成功。

    圖1 兩組大鼠肺組織病理切片

    2.3 兩組大鼠sLRP1及MMP9水平變化

    高氧組大鼠血清及BALF 中sLRP1、MMP9 水平均高于空氣組(P<0.05),見表2~3。

    表2 兩組大鼠血清中sLRP1及MMP9水平比較 (,pg/mL)

    表2 兩組大鼠血清中sLRP1及MMP9水平比較 (,pg/mL)

    注:[sLRP1] 可溶性低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白1;[MMP9]基質(zhì)金屬蛋白酶9。

    231±94 1 332±376images/BZ_106_1284_2764_1549_2826.pngimages/BZ_106_1549_2764_1686_2826.pngimages/BZ_106_1686_2764_1965_2826.png8 8images/BZ_106_1965_2764_2243_2826.pngimages/BZ_106_1284_2945_1549_3063.png空氣組高氧組images/BZ_106_1549_2945_1686_3063.pngimages/BZ_106_1686_2945_1965_3063.png55±8 100±14images/BZ_106_1965_2945_2243_3063.png

    表3 兩組大鼠BALF中sLRP1及MMP9水平比較 (,pg/mL)

    表3 兩組大鼠BALF中sLRP1及MMP9水平比較 (,pg/mL)

    注:[sLRP1] 可溶性低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白1;[MMP9]基質(zhì)金屬蛋白酶9。

    MMP9 88±30 530±130 9.375<0.001images/BZ_107_237_471_465_534.pngimages/BZ_107_465_471_642_534.pngimages/BZ_107_642_471_919_534.png8 8images/BZ_107_237_652_465_770.png空氣組高氧組images/BZ_107_465_652_642_770.pngimages/BZ_107_642_652_919_770.png13±6 76±21

    2.4 Western blot 法檢測兩組大鼠肺組織勻漿蛋白表達變化

    LRP1、MMP9 蛋白在高氧組的表達水平明顯高于空氣組(P<0.05)。pPyk2蛋白在高氧組的表達水平較空氣組也明顯升高(P<0.05),但Pyk2蛋白水平在兩組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖2、表4。

    圖2 Western blot法檢測兩組大鼠肺組織勻漿LRP1、pPyk2、MMP9蛋白表達電泳圖

    表4 兩組大鼠肺組織勻漿蛋白相對表達量比較 ()

    表4 兩組大鼠肺組織勻漿蛋白相對表達量比較 ()

    注:[LRP1]低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白1;[MMP9]基質(zhì)金屬蛋白酶9;[pPyk2]磷酸化酪氨酸激酶2;[Pyk2]酪氨酸激酶2。

    Pyk2 0.50±0.04 0.52±0.05 0.666 0.530images/BZ_107_237_2017_374_2073.pngimages/BZ_107_374_2017_438_2073.pngimages/BZ_107_438_2017_627_2073.png4 4images/BZ_107_627_2017_817_2073.pngimages/BZ_107_817_2017_1006_2073.pngimages/BZ_107_237_2187_374_2300.png空氣組高氧組images/BZ_107_374_2187_438_2300.pngimages/BZ_107_438_2187_627_2300.png0.69±0.06 0.94±0.09images/BZ_107_627_2187_817_2300.png0.60±0.05 0.79±0.07images/BZ_107_817_2187_1006_2300.png0.92±0.08 1.22±0.09

    2.5 RT-PCR 法檢測兩組大鼠肺組織勻漿sLRP1及MMP9的mRNA水平變化

    高氧組LRP1 mRNA 和MMP9 mRNA 的相對表達量均高于空氣組(P<0.05),見表5。

    表5 兩組大鼠LRP1及MMP9的mRNA水平比較 ()

    表5 兩組大鼠LRP1及MMP9的mRNA水平比較 ()

    注:[LRP1]低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白1;[MMP9]基質(zhì)金屬蛋白酶9。

    MMP9 1.04±0.32 2.91±0.88 3.461 0.026images/BZ_107_239_2891_480_2947.pngimages/BZ_107_480_2891_635_2947.pngimages/BZ_107_635_2891_929_2947.png6 6images/BZ_107_239_3061_480_3174.png空氣組高氧組images/BZ_107_480_3061_635_3174.pngimages/BZ_107_635_3061_929_3174.png0.99±0.06 11.96±0.59

    3 討論

    BPD 易發(fā)生在接受機械通氣的早產(chǎn)兒中,并可能最終導(dǎo)致長期肺部疾?。?6]。然而,BPD 的發(fā)病機制尚未完全了解,可能與肺泡和血管肺發(fā)育停滯、纖維化和慢性炎癥有關(guān)[17]。目前研究已發(fā)現(xiàn),MMPs在BPD進展中發(fā)揮著核心作用,主要影響B(tài)PD 肺發(fā)育停滯和組織重塑纖維化過程[18],其中MMP9受到了高度重視。

    本研究發(fā)現(xiàn)在高氧組出現(xiàn)肺組織間質(zhì)水腫,肺泡腔可見水腫液形成、炎癥細胞浸潤及肺泡出血;血清和BALF 中MMP9 水平均較空氣組明顯升高,肺組織勻漿中MMP9 蛋白表達也增加,與Tambunting 等[19]研究相符。MMP9 在 BPD 中的功能已被研究[20],但其涉及的相關(guān)通路尚未明確。最新研究發(fā)現(xiàn),MMP9的活性不僅受到其組織抑制劑 的 調(diào) 節(jié)[21], 還 通 過 ERK1/2[22]、 NF-κB[23]、STAT3[24]、TRPV4[25]、ADAM17[26]等蛋白介導(dǎo)在肺相關(guān)疾病中發(fā)揮作用。近年來,有人提出MMP9可能還與LRP1密切相關(guān)[27]。

    LRP1目前在肺部疾病中的作用受到廣泛關(guān)注,在人類全基因組關(guān)聯(lián)研究中,LRP1 的單核苷酸多態(tài)性與人類肺功能相關(guān)[28],在平滑肌細胞中LRP1的失調(diào)影響基線肺功能和氣道反應(yīng)性[29];肺泡巨噬細胞上LRP1的表達介導(dǎo)其吞噬作用并調(diào)節(jié)炎癥介質(zhì)的釋放[4];成纖維細胞中LRP1表達的失調(diào)可能導(dǎo)致收縮性肌成纖維細胞無限制擴張,從而導(dǎo)致纖維化的發(fā)展[30]。另外,有文獻表明,LRP1與血管形成和新生血管有關(guān)[31]。LRP1通過蛋白水解從細胞表面脫落釋放出sLRP1。sLRP1可促進巨噬細胞炎癥介質(zhì)的表達;還可競爭性結(jié)合細胞外蛋白,阻止它們的內(nèi)吞作用[32]。本研究發(fā)現(xiàn),肺組織勻漿中LRP1 mRNA 及LRP1 蛋白表達均增加;高氧組血清和BALF 中sLRP1 水平均較空氣組升高,而我們前期臨床研究中的BPD患兒血清sLRP1水平升高,這提示LRP1 在高氧誘導(dǎo)的肺損傷及BPD發(fā)病中可能具有重要作用。

    本研究還發(fā)現(xiàn)LRP1 與MMP9 表達水平呈正相關(guān),有研究認為LRP1不僅介導(dǎo)MMP9的內(nèi)吞作用,還作為膜受體傳遞細胞內(nèi)信號,誘導(dǎo)MMP9 表達[33]。但是LRP1 在高氧誘導(dǎo)肺損傷中調(diào)控MMP9的具體機制尚未清楚。

    本研究結(jié)果顯示,在高氧組中肺組織勻漿pPyk2 表達增加。Pyk2 在多種疾病中發(fā)揮重要作用:在氣道高反應(yīng)性疾病中,Pyk2 磷酸化水平升高,會導(dǎo)致囊性纖維化氣道平滑肌功能異常[34];Pyk2 可通過激活缺氧誘導(dǎo)因子而加重肺動脈高壓[35];在缺血再灌注后,Pyk2 激活原存活信號分子,防止活性氧過度增加,從而對缺血再灌注損傷起到保護作用[36]。Revuelta-López 等[13]證實了在缺氧相關(guān)的血管疾病中存在LRP1-pPyk2-MMP9信號通路,LRP1 可通過增加細胞內(nèi)鈣水平,上調(diào)富含脯氨酸的Pyk2磷酸化,誘導(dǎo)MMP9表達增加。其研究結(jié)果表明心肌梗死后心肌成纖維細胞LRP1水平在MMP9表達上調(diào)及心室重構(gòu)相關(guān)機制中發(fā)揮重要作用[14],并強調(diào) LRP1-pPyk2-MMP9 軸參與了血管細胞遷移過程[37]。

    綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)在高氧誘導(dǎo)新生大鼠肺損傷中,肺組織LRP1表達上調(diào),Pyk2磷酸化水平增加,MMP9水平升高,提示LRP1-pPyk2-MMP9通路可能參與了BPD 的發(fā)病機制,但本文未對這條通路上下游行進一步干預(yù)研究,如基因敲除或過表達等,未來針對這條通路的研究可能為BPD的發(fā)病研究提供新的思路。

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