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    五子衍宗方免煎顆粒對實(shí)驗(yàn)性自身免疫性腦脊髓炎小鼠炎性反應(yīng)的影響及機(jī)制

    2023-07-11 02:36:10王旭李艷榮樊慧杰孫芮芮賈多賈璐呂建軍肖保國馬存根柴智山西藥科職業(yè)學(xué)院中藥系山西太原000山西中醫(yī)藥大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院山西晉中0069復(fù)旦大學(xué)華山醫(yī)院神經(jīng)病學(xué)研究所上海0005山西大同大學(xué)腦科學(xué)研究所山西大同07009
    中藥新藥與臨床藥理 2023年5期
    關(guān)鍵詞:五子髓鞘性反應(yīng)

    王旭,李艷榮,樊慧杰,孫芮芮,賈多,賈璐,呂建軍,肖保國,馬存根,4,柴智 (.山西藥科職業(yè)學(xué)院中藥系,山西 太原 000;.山西中醫(yī)藥大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,山西 晉中 0069;.復(fù)旦大學(xué)華山醫(yī)院神經(jīng)病學(xué)研究所,上海 0005;4.山西大同大學(xué)腦科學(xué)研究所,山西 大同 07009)

    多發(fā)性硬化(Multiple sclerosis,MS)以中樞神經(jīng)系統(tǒng)慢性炎性脫髓鞘病變?yōu)樘攸c(diǎn),主要累及脊髓和白質(zhì),表現(xiàn)為神經(jīng)功能缺損[1]。該疾病的發(fā)病具有遺傳易感性,患者成年早期發(fā)病率高,且女性高于男性,大部分患者反復(fù)發(fā)作,伴隨空間多發(fā)性和時間多發(fā)性,極易致殘[2]。MS 的病理過程涉及炎性反應(yīng)如γ 干擾素(IFN-γ)、腫瘤壞死因子α(TNF-α)、白細(xì)胞介素17(IL-17)等炎性因子的釋放,大量炎性細(xì)胞浸潤是MS 的病理特征,炎癥在MS 的各個階段都會導(dǎo)致脫髓鞘及組織損傷[3]。抑制炎性反應(yīng)可有效延緩MS 的病程和進(jìn)展[4]。實(shí)驗(yàn)性自身免疫性腦脊髓炎(Experimental allergic encephalomyelitis,EAE)模型是以特異性致敏的CD4+T 細(xì)胞介導(dǎo)為主的,以中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)小血管周圍出現(xiàn)單個核細(xì)胞浸潤及髓鞘脫失為特征的自身免疫性疾病,是人類MS 的理想動物模型,被廣泛應(yīng)用于MS 的實(shí)驗(yàn)研究[5-6]。中醫(yī)藥在改善MS 患者疾病癥狀、穩(wěn)定疾病發(fā)展及整體調(diào)節(jié)等方面具有獨(dú)特優(yōu)勢[7]。本課題組前期研究表明,經(jīng)典補(bǔ)腎名方五子衍宗丸能夠改善EAE 小鼠神經(jīng)功能評分[8],對脫髓鞘模型小鼠有促進(jìn)再髓鞘化的作用[9],可能與降低炎癥因子分泌進(jìn)而改善炎性環(huán)境有關(guān)。故本研究擬基于EAE 小鼠模型進(jìn)一步探討五子衍宗方免煎顆粒對MS 炎性反應(yīng)的影響及機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 動物 8~10 周齡雌性C57BL/6 小鼠36 只,SPF級,體質(zhì)量(20±2)g,購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動物科技有限公司,實(shí)驗(yàn)動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(京)2017-0011。本實(shí)驗(yàn)經(jīng)山西中醫(yī)藥大學(xué)倫理委員會批準(zhǔn),動物倫理審批號:2018DW116。動物適應(yīng)性飼養(yǎng)1 周后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

    1.2 藥物及試劑 每1 g 五子衍宗方免煎顆粒由菟絲子(炒)0.56 g、枸杞子0.07 g、覆盆子0.139 g、鹽車前子0.21 g、五味子(蒸)0.021 g 五味藥組成,原方配伍比例為8∶8∶4∶2∶1。本研究所用五子衍宗方免煎顆粒均購自太原市同仁堂藥店,批號:16091703。將五子衍宗方免煎顆粒研磨成微細(xì)粉末狀,用0.9%生理鹽水溶解配制成0.32 g·mL-1溶液備用,使用前充分搖勻。

    髓鞘少突膠質(zhì)細(xì)胞糖蛋白多肽35-55(MOG35-55),上海強(qiáng)耀生物科技有限公司,批號:9001;百日咳毒素,美國Sigma 公司,批號:231144;結(jié)核分枝桿菌,美國Becton Dickinson 公司,批號:231141;完全弗氏佐劑,美國Alexis 公司,批號:60301;HE染色試劑盒(貨號:G1120-100),LFB 染色試劑盒(貨號:M066),均購自北京索萊寶科技有限公司;IL-12(貨號:DY406-05)、TNF-α(貨號:DYDY419-05)、IFN-γ(貨號:DY421-05)、IL-17(貨號:DY410-05)ELISA 檢測試劑盒,均購自美國R&D 公司;RNA 提取液(貨號:G3013)、Servicebio?RT First Strand cDNA Synthesis Kit(貨號:G3330)、2×SYBR Green qPCR Master Mix(貨號:G3320),均購自武漢賽維爾生物科技有限公司;異丙醇(貨號:80109218)、HyPure TMMolecular Biology Grade Water(貨號:SH3053802),美國HyClone 公司; TLR4、TNF-α引物,由北京擎科生物科技公司合成;Rho 蛋白激酶2(ROCKII)抗體,美國eBioscience 公司,批號:124024;磷酸化肌球蛋白磷酸酶(P-MYPT1)抗體,美國ENZO 公司,批號:E03110;核因子-κB/p65(NF-κB/p65)抗體,英國Abcam 公司,批號:ab124024;β 肌動蛋白(β-actin)抗體,美國Cell Signaling 公司,批號:4870S;HRP Goat anti-rabbit IgG,上??禐獒t(yī)療科技發(fā)展有限公司,批號:01334/10412。

    1.3 主要儀器 PowerPacTM型電泳儀、PowerPacTM型半干轉(zhuǎn)膜儀、HOOD-Ⅱ型凝膠成像分析儀、CFX96型實(shí)時熒光定量PCR 儀器,美國Bio-Rad 公司;CM1950 型冰凍切片機(jī)、DM2000 型熒光顯微鏡,德國Leica 公司;NanoDrop2000 型超微量分光光度計(jì),美國Thermo Fisher 公司;SpectraMax Plus 384 型酶標(biāo)儀,美國Molecular Devices 公司。

    1.4 模型復(fù)制 用生理鹽水溶解MOG35-55配成水劑,用完全弗氏佐劑將結(jié)核分枝桿菌配成油劑,使用針管混合器把油劑與水劑按1∶1 充分混合,制成油包水樣抗原乳劑,靜置后無分層視為合格。于小鼠背部第4~5 節(jié)脊椎兩側(cè)選4 個點(diǎn),皮下注射抗原乳劑(每只0.1 mL,MOG35-55含量為250 μg,結(jié)核分枝桿菌含量為350 μg);免疫當(dāng)日和48 h 后,各組小鼠分別腹腔注射百日咳毒素(每只每次300 ng)。以小鼠尾張力下降為EAE 發(fā)病起始。

    1.5 分組及給藥[8]將36 只C57BL/6 小鼠隨機(jī)分為正常組、模型組及五子衍宗方組(五子衍宗方免煎顆粒,16 g·kg-1·d-1),每組12 只。從免疫后第3 天開始灌胃(0.05 mL·g-1·d-1)給藥,每天2 次,早晚間隔12 h,持續(xù)干預(yù)25 d;正常組和模型組小鼠給予等體積生理鹽水(0.5 mL)灌胃。

    1.6 神經(jīng)功能評分 從免疫當(dāng)天起,參考國際通用的5 分制評分[10],每日對各組小鼠進(jìn)行神經(jīng)功能評分。0 分:無癥狀;1 分:尾張力消失,輕度步態(tài)笨拙;2 分:單側(cè)后肢無力,輔助翻身后恢復(fù);3 分:雙側(cè)后肢均癱瘓無力,刺激后可稍有挪動;4 分:雙側(cè)后肢均癱瘓并伴有前肢單側(cè)或雙側(cè)癱瘓;5 分:動物處于瀕死或死亡狀態(tài)。如癥狀介于兩者之間的以±0.5 分計(jì)。

    1.7 樣品采集與處理 脾細(xì)胞懸液制備:實(shí)驗(yàn)第28 天,小鼠麻醉后在無菌條件下摘取完整脾臟,迅速置于高糖培養(yǎng)基(滅菌)中低溫保存。隨后于無菌操作臺上,用注射器的無菌注射芯在0.7 μm 濾皿中將脾臟完全、充分研磨,剔除白色筋膜;加入1 mL 高糖培養(yǎng)基,連同脾細(xì)胞一起全部移入無菌離心管中;用臺盼藍(lán)染液對脾細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)。

    脊髓組織冰凍切片制備:取出脾臟后,通過心臟灌注生理鹽水至肝臟發(fā)白,然后推注4%多聚甲醛溶液灌流進(jìn)行體內(nèi)組織固定。分離脊髓,以O(shè)CT 包埋,在液氮中冷凍,用冰凍切片機(jī)制備厚度10 μm的脊髓冰凍切片。

    1.8 HE 染色法檢測脊髓炎性細(xì)胞浸潤情況 取脊髓組織冰凍切片于水中浸泡2 min,蘇木素染色5 min;快速水洗后,于0.5%鹽酸乙醇分化5~15 s;快速水洗,伊紅染色2 min;快速水洗,依次經(jīng)70%、80%、90%、95%、100%乙醇梯度脫水;二甲苯透明,中性樹膠封片,光鏡下觀察并分析脊髓白質(zhì)區(qū)炎性細(xì)胞浸潤面積占整個脊髓面積的比值。

    1.9 LFB 染色法檢測脊髓髓鞘脫失情況 取脊髓組織冰凍切片于95%乙醇中浸泡15 min 固定,然后浸入固藍(lán)溶液中,60 ℃烤箱孵育過夜。次日取出切片,在95%乙醇溶液和去離子水中分別浸洗10 min;然后在0.05%碳酸鋰溶液中快速浸洗10 s;于70%乙醇溶液中分化至肉眼能夠清晰分辨灰白質(zhì);最后經(jīng)浸洗、梯度乙醇脫水、二甲苯透明及中性樹膠封片后,于光鏡下觀察并分析脊髓白質(zhì)區(qū)髓鞘脫失面積占整個脊髓面積的比值。

    1.10 ELISA 法檢測小鼠脾細(xì)胞上清液中炎性因子水平 將各組小鼠脾細(xì)胞混懸液在常溫下以1 500 r·min-1(離心半徑8 cm)離心5 min,棄上清;移入10 mL 滅菌離心管中,PBS 沖洗后,以2 000 r·min-1(離心半徑8 cm)離心10 min,棄上清;加入20 mL 含MOG的高糖培養(yǎng)基,在5% CO2培養(yǎng)箱中孵育48 h 后,離心取上清液,保存?zhèn)溆?。?yán)格按照ELISA 試劑盒說明書步驟操作,分別檢測上清液中IFN-γ、TNF-α、IL-17、IL-12、IL-6 及IL-1β 含量。

    1.11 qRT-PCR 法檢測小鼠脾細(xì)胞TLR4、TNF-α mRNA 表達(dá)情況 取各組脾細(xì)胞懸液,采用TRIzol試劑提取總RNA,以紫外分光光度法檢測總RNA 濃度及純度。采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)制備cDNA,反應(yīng)條件:25 ℃、5 min,50 ℃、15 min,85 ℃、5 min,4 ℃、10 min。然后進(jìn)行熒光定量PCR 反應(yīng),取0.2 mL PCR 管,配制PCR 反應(yīng)體系:7.5 μL 2×qPCR Mix、4.0 μL ddH2O、2.0 μL cDNA、正/反向引物各0.75 μL。PCR 擴(kuò)增反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性10 min,95 ℃下變性15 s,60 ℃下退火30 s,共循環(huán)40 次;擴(kuò)增循環(huán)結(jié)束后,降溫至65 ℃,每15 s 升溫0.3 ℃,升溫至95 ℃完成熔解。反應(yīng)結(jié)束后,計(jì)算Ct 值,以β-actin 為內(nèi)參基因,采用2-△△Ct法計(jì)算目的基因相對表達(dá)水平。各基因合成引物序列見表1。

    1.12 Western Blot 法檢測小鼠脾臟ROCKII、P-MYPT1 及NF-κB 蛋白表達(dá)情況 4 ℃條件下,將小鼠脾臟組織加裂解液充分裂解,提取總蛋白,采用BCA 法測定蛋白含量。加Loading buffer 上樣緩沖液制備樣品,經(jīng)SDS-PAGE 電泳、轉(zhuǎn)膜后,用5%脫脂奶粉封閉1.5 h;洗滌后,分別加入一抗ROCKII、P-MYPT1、NF-κB 及β-actin 抗體,4 ℃下孵育過夜;次日洗膜后,加入相應(yīng)二抗,室溫下孵育2 h;洗滌后,以凝膠成像分析儀檢測蛋白條帶;采用Image Lab 3.0 軟件進(jìn)行灰度值比較,以β-actin 為內(nèi)參,對目的蛋白進(jìn)行半定量分析。

    1.13 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理方法 采用GraphPad Prism 8.0 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析;計(jì)量資料以均數(shù)± 標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示;多組間比較采用單因素方差分析(One-way ANOVA),兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),不滿足方差齊性則采用非參數(shù)檢驗(yàn);以P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 五子衍宗方免煎顆粒對EAE 小鼠神經(jīng)功能的影響 結(jié)果見圖1。與正常組比較,模型組小鼠在免疫后第10 天開始發(fā)病,平均起病時間為(11.20±1.10)d;小鼠開始出現(xiàn)精神萎靡不振、皮毛失澤不整,尾部及后肢肌力下降甚至出現(xiàn)癱瘓,平均最高神經(jīng)評分為(3.50±0.35)分,神經(jīng)功能評分顯著升高(P<0.05,P<0.01)。與模型組比較,五子衍宗方組小鼠在免疫后第14 天開始發(fā)病,平均起病時間為(15.00±1.00)d,起病時間明顯推遲(P<0.05);小鼠精神狀態(tài)及相關(guān)癥狀得到明顯改善,平均最高神經(jīng)評分為(2.50±0.35)分,神經(jīng)功能評分顯著降低(P<0.05,P<0.01)。

    圖1 各組小鼠的神經(jīng)功能評分(±s,n=12)Figure 1 Neurological function score of mice in each group(±s,n=12)

    2.2 五子衍宗方免煎顆粒對EAE 小鼠脊髓炎性細(xì)胞浸潤的影響 結(jié)果見圖2。正常組、模型組、五子衍宗方組小鼠脊髓白質(zhì)區(qū)炎性細(xì)胞浸潤面積占整個脊髓面積的比值分別為(0.56±0.11)%、(6.16±0.75)%、(3.79±0.25)%。與正常組比較,模型組小鼠脊髓炎性細(xì)胞浸潤顯著增加(P<0.001);與模型組相比,五子衍宗方組小鼠脊髓炎性細(xì)胞浸潤顯著減少(P<0.01)。

    圖2 各組小鼠脊髓炎性細(xì)胞浸潤情況(HE 染色,×50,×200;±s,n=12)Figure 2 Infiltration of inflammatory cells in spinal cord of mice in each group(HE staining,×50,×200;±s,n=12)

    2.3 五子衍宗方免煎顆粒對EAE 小鼠脊髓髓鞘脫失的影響 結(jié)果見圖3。正常組、模型組、五子衍宗方組小鼠脊髓白質(zhì)區(qū)髓鞘脫失面積占整個脊髓面積的比值分別為(1.77±0.58)%、(9.81±1.66)%、(4.12±0.67)%。與正常組比較,模型組小鼠髓鞘脫失顯著增加(P<0.01);與模型組相比,五子衍宗方組小鼠髓鞘脫失顯著減少(P<0.01)。

    圖3 各組小鼠脊髓髓鞘脫失情況(LFB 染色,×50,×200;±s,n=12)Figure 3 Demyelination of spinal cord in each group of mice(LFB staining,×50,×200;±s,n=12)

    2.4 五子衍宗方免煎顆粒對EAE 小鼠脾細(xì)胞炎性因子表達(dá)水平的影響 結(jié)果見圖4、圖5。與正常組比較,模型組小鼠脾細(xì)胞IFN-γ、TNF-α、IL-17、IL-12、IL-6 及IL-1β 的表達(dá)水平顯著上升(P<0.001);與模型組比較,五子衍宗方組小鼠脾細(xì)胞IFN-γ、TNF-α、IL-17、IL-12、IL-6 及IL-1β 的表達(dá)水平顯著降低(P<0.01,P<0.001)。

    圖4 各組小鼠脾細(xì)胞炎性因子IFN-γ、TNF-α、IL-17 及IL-12 的表達(dá)情況(±s,n=6)Figure 4 Expressions of inflammatory factors IFN-γ,TNF-α,IL-17 and IL-12 in splenocyte of mice in each group(±s,n=6)

    圖5 各組小鼠脾細(xì)胞炎性因子IL-6、IL-1β 的表達(dá)情況(±s,n=6)Figure 5 Expressions of inflammatory factors IL-6 and IL-1β in splenocyte of mice in each group(±s,n=6)

    2.5 五子衍宗方免煎顆粒對EAE 小鼠脾細(xì)胞TLR4、TNF-α mRNA 表達(dá)的影響 結(jié)果見圖6。與正常組比較,模型組小鼠脾細(xì)胞TLR4、TNF-α mRNA 表達(dá)水平均顯著上升(P<0.01,P<0.001);與模型組比較,五子衍宗方組小鼠脾細(xì)胞TLR4、TNF-α mRNA表達(dá)水平均顯著降低(P<0.01,P<0.001)。

    圖6 各組小鼠脾細(xì)胞TLR4、TNF-α mRNA 表達(dá)情況(±s,n=3)Figure 6 The mRNA expressions of TLR4 and TNF- α in splenocyte of mice in each group(±s,n=3)

    2.6 五子衍宗方免煎顆粒對EAE 小鼠脾臟組織ROCKII、P-MYPT1、NF-κB 蛋白表達(dá)的影響 結(jié)果見圖7。與正常組比較,模型組小鼠脾臟ROCKII、P-MYPT1、NF-κB 蛋白表達(dá)量顯著升高(P<0.01,P<0.001);與模型組比較,五子衍宗方組小鼠脾臟ROCKII、P-MYPT1、NF-κB 蛋白表達(dá)量均顯著降低(P<0.01)。

    圖7 各組小鼠脾臟組織ROCKII、P-MYPT1、NF-κB 蛋白表達(dá)情況(±s,n=3)Figure 7 The protein expressions of ROCKII,P-MYPT1 and NF-κB in splenic of mice in each group(±s,n=3)

    3 討論

    多發(fā)性硬化(MS)因病變累及部位的空間多發(fā)性而導(dǎo)致臨床癥狀廣泛,主要表現(xiàn)為肢體麻木無力、肌力減退、共濟(jì)失調(diào)、自主神經(jīng)功能紊亂及精神障礙等[11]。中醫(yī)將MS 歸屬為“痿證”“痹證”范疇,認(rèn)為病位在“腦與髓”,“腎虛”是本病的根本病因,五子衍宗方具有補(bǔ)腎益精之功效[12],可用于本病的治療。本研究表明,五子衍宗方免煎顆粒能夠明顯延長EAE 小鼠的發(fā)病時間,降低神經(jīng)功能評分,顯示出治療效果。此外,MS 的病理表現(xiàn)無論在急性期還是緩解期均有廣泛的白質(zhì)炎性脫髓鞘[13]。其病灶部位不僅局限于白質(zhì)區(qū)域,皮層也有受累,隨疾病進(jìn)程,炎性細(xì)胞浸潤和髓鞘脫失持續(xù)惡化[14]。本研究通過病理學(xué)觀察表明,EAE 模型組小鼠脊髓呈現(xiàn)大量炎性細(xì)胞浸潤和脫髓鞘現(xiàn)象,五子衍宗方免煎顆粒干預(yù)后,脊髓白質(zhì)炎性細(xì)胞浸潤及脫髓鞘程度顯著減輕。由此可見,五子衍宗方免煎顆粒治療可明顯緩解EAE 小鼠的臨床神經(jīng)功能癥狀,減輕脊髓炎性病變及髓鞘脫失,具有神經(jīng)保護(hù)作用。

    MS 是主要由CD4+Th1 細(xì)胞介導(dǎo)的炎性脫髓鞘疾病,Th 細(xì)胞分化促進(jìn)炎性因子釋放,機(jī)體產(chǎn)生炎性病變[15]。IL-17 是一種高度致炎細(xì)胞因子,能啟動和刺激炎性細(xì)胞產(chǎn)生;IFN-γ 是EAE 發(fā)病的關(guān)鍵致病因子,可釋放TNF-α 等介質(zhì)并引起脫髓鞘;TNF-α、IL-6 及IL-1β 能刺激巨噬細(xì)胞釋放炎性介質(zhì);IL-12 在Th1 細(xì)胞分化中起重要作用,抑制IL-12 可調(diào)控Th1 細(xì)胞分化,減輕EAE 的病理變化[16]。研究[17]證實(shí),MS 患者血清和腦脊液中炎性因子水平的升高與臨床發(fā)病進(jìn)程密切相關(guān)。TLR4 是Toll 樣受體家族成員,分布廣泛,表達(dá)于中樞神經(jīng)系統(tǒng)多種細(xì)胞中[18]。研究[19]證明,TLR4 在炎性反應(yīng)中起著關(guān)鍵作用,可通過啟動相應(yīng)的炎性反應(yīng)參與識別和清除病原微生物。TLR4 介導(dǎo)的神經(jīng)炎性反應(yīng)參與了MS 的發(fā)生發(fā)展[20],激活TLR4 會產(chǎn)生高水平的促炎因子,造成髓鞘損傷[21]。在MS 患者和EAE 小鼠的脊髓中,TLR4 表達(dá)水平均明顯升高,而抑制TLR4 表達(dá)對延緩EAE 的發(fā)生有一定作用[22]。因此,減輕炎性反應(yīng)是緩解和治療MS 的重要策略。本研究結(jié)果顯示,EAE 小鼠脾細(xì)胞的IFN-γ、TNF-α、IL-17、IL-12、IL-6 及IL-1β 水平均顯著升高,TLR4 基因表達(dá)亦顯著上調(diào),提示小鼠體內(nèi)存在嚴(yán)重炎性反應(yīng);而五子衍宗方免煎顆粒干預(yù)后,炎性因子及炎性受體的表達(dá)水平均顯著下調(diào)。

    MS 的病理改變與Rho/ROCK 信號通路的激活有關(guān)[23]。在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中,Rho/ROCK 信號通路激活后,可進(jìn)一步激活效應(yīng)底物ROCKII,刺激效應(yīng)分子P-MYPT1 產(chǎn)生,促進(jìn)炎性反應(yīng)[24]。Rho 激酶抑制劑可下調(diào)NF-κB 表達(dá),減輕炎性反應(yīng),減少炎性細(xì)胞浸潤,促進(jìn)髓鞘再生[25]。本研究結(jié)果顯示,五子衍宗方免煎顆??梢种艵AE 小鼠脾臟組織NF-κB、ROCKII 及P-MYPT1 蛋白表達(dá),提示其可能通過抑制Rho 及NF-κB 信號通路的激活來抑制炎性反應(yīng)。

    綜上所述,五子衍宗方免煎顆粒能夠改善EAE小鼠的神經(jīng)功能,減少炎癥浸潤及脫髓鞘等病理損害,具有神經(jīng)保護(hù)作用,其作用機(jī)制可能與抑制Rho及NF-κB 信號通路,降低相關(guān)炎性因子水平有關(guān)。

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