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    富氫水對(duì)小鼠膿毒癥胰腺損傷的改善作用

    2021-08-26 08:03:10李悅嫻秦樹存張錦
    天津醫(yī)藥 2021年8期
    關(guān)鍵詞:淀粉酶病理學(xué)膿毒癥

    李悅嫻,秦樹存,張錦△

    膿毒癥是宿主對(duì)感染反應(yīng)失調(diào)造成的一種嚴(yán)重全身炎癥反應(yīng)綜合征,最終導(dǎo)致多器官功能衰竭和膿毒性休克[1],是重癥感染死亡的主要原因。胰腺損傷是膿毒癥重要的器官功能障礙之一[2]。氫分子具有選擇性清除羥基自由基和過(guò)氧亞硝酸鹽陰離子的作用,是一種新型抗氧化劑,于2007 年被首次應(yīng)用于醫(yī)療領(lǐng)域[3]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),氫分子可明顯改善膿毒癥誘導(dǎo)的肝損傷[4]、心功能障礙[5]和肺損傷[6-8]。氫分子對(duì)膿毒癥腎損傷亦有治療作用[9],但對(duì)膿毒癥胰腺損傷是否有改善作用卻鮮見(jiàn)報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)脂多糖(LPS)尾靜脈注射建立小鼠胰腺損傷模型,觀察氫分子對(duì)膿毒癥胰腺損傷的作用。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料 LPS 購(gòu)自美國(guó)Sigma-Aldrich 公司;富氫水(HRS)購(gòu)自北京活力氫源公司;異氟烷購(gòu)自深圳瑞沃德公司;無(wú)水乙醇、二甲苯、中性塑膠購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;HE 染液套裝購(gòu)自武漢Servicebio 公司;淀粉酶檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海江萊生物科技有限公司;腫瘤壞死因子(TNF)-α、白細(xì)胞介素(IL)-6、髓過(guò)氧化物酶(MPO)和丙二醛(MDA)檢測(cè)試劑盒購(gòu)自武漢優(yōu)爾生公司;包埋機(jī)JB-P5購(gòu)自武漢俊杰電子有限公司;病理切片機(jī)RM2016 購(gòu)自上海徠卡儀器有限公司;正置光學(xué)顯微鏡Eclipase E100、成像系統(tǒng)DS-U3購(gòu)自日本尼康公司;低溫高速離心機(jī)3-18K購(gòu)自德國(guó)SIGMA公司;酶標(biāo)儀ELX 808購(gòu)自美國(guó)Biotek公司。

    1.2 動(dòng)物模型制備及分組 SPF 級(jí)C57BL/6J 雄性小鼠18只,體質(zhì)量18~20 g,購(gòu)自中國(guó)醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物部。所有動(dòng)物管理和手術(shù)操作均經(jīng)中國(guó)醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(倫理編號(hào):2020PS701K)。小鼠飼養(yǎng)于標(biāo)準(zhǔn)化環(huán)境中,環(huán)境溫度為(24±2)℃,光照條件為12 h晝夜節(jié)律,可自由食用標(biāo)準(zhǔn)食物和飲水。

    按隨機(jī)數(shù)字表法將C57BL/6J雄性小鼠分為對(duì)照組、模型組(LPS 組)和HRS 處理組(LPS+HRS 組),每組6 只。LPS 組和LPS+HRS 組小鼠給予尾靜脈單次注射LPS 5 mg/kg,建立胰腺損傷模型[8],對(duì)照組小鼠尾靜脈給予相同劑量的生理鹽水。參考本課題組前期研究[5-6],LPS+HRS 組小鼠在 LPS 給藥后1 h 給予10 mL/kg HRS 腹腔注射,對(duì)照組和LPS 組小鼠于相同時(shí)間點(diǎn)腹腔注射相同劑量的生理鹽水。

    LPS 給藥后24 h,小鼠異氟烷麻醉后仰臥固定,乙醇消毒,經(jīng)腹正中線剪開(kāi)皮膚,暴露腹主動(dòng)脈取血0.5 mL;而后脫頸處死小鼠,取胰腺組織。血液室溫自然凝固10~20 min,3 000 r/min離心20 min,吸取上清液,置于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩R认俳M織一半完全浸泡于10%福爾馬林溶液,另一半于-80 ℃冰箱保存。

    1.3 檢測(cè)指標(biāo)與方法

    1.3.1 小鼠行為學(xué)表現(xiàn) LPS給藥后觀察各組小鼠精神狀態(tài)和活動(dòng)狀況。

    1.3.2 胰腺組織HE染色和改良Schmidt組織病理學(xué)評(píng)分 取經(jīng)10%福爾馬林溶液固定后的胰腺組織,用磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗,經(jīng)70%、80%、90%和無(wú)水乙醇浸泡梯度脫水,純二甲苯透明后,進(jìn)行石蠟包埋。包埋后切成5 μm厚切片,經(jīng)脫蠟、復(fù)水后,蘇木素染色5~10 min,PBS洗滌,0.1%鹽酸乙醇分化液分化10 s,伊紅染色30 s~2 min,PBS洗去多余染液。經(jīng)脫水、透明和中性塑膠封片后,置于顯微鏡下觀察。對(duì)Schmidt胰腺組織病理學(xué)評(píng)分[10]進(jìn)行改良,從水腫、炎癥、出血和壞死4個(gè)方面對(duì)進(jìn)行胰腺組織病理學(xué)量化評(píng)分[11]。將出血(實(shí)質(zhì)出血面積)評(píng)分進(jìn)一步改進(jìn)為:0 分,無(wú);1 分,≤25%;2分,>25%~50%;3分,>50%~75%;4分,>75%~100%。

    1.3.3 酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)法檢測(cè)血清淀粉酶、胰腺組織炎性因子、MPO和MDA水平 從-80 ℃冰箱取出小鼠血清和胰腺組織。胰腺組織用PBS沖洗后稱質(zhì)量剪碎,按10%勻漿比例加入預(yù)冷的含蛋白酶抑制劑的PBS 勻漿。吸取勻漿液到離心管,4 ℃、5 000 r/min 離心5~10 min,取上清液,嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明書操作測(cè)定血清淀粉酶,胰腺組織TNF-α、IL-6、MPO和MDA水平。

    1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用GraphPad Prism 8.0.1 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間多重比較行LSD-t檢驗(yàn);非正態(tài)分布的計(jì)量資料以M(P25,P75)表示,多組間比較采用Kruskal-WallisH檢驗(yàn),組間多重比較行Dunn’s 檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組小鼠行為學(xué)表現(xiàn) LPS給藥后10 h LPS組小鼠出現(xiàn)1 只死亡。因此,各組小鼠24 h 檢測(cè)數(shù)據(jù)樣本量均為5只。與對(duì)照組相比,LPS組小鼠表現(xiàn)為嗜睡、寒戰(zhàn)、行動(dòng)遲緩,梳毛活動(dòng)減少,并出現(xiàn)嚴(yán)重腹瀉。與LPS 組相比,LPS+HRS 組小鼠嗜睡和寒戰(zhàn)程度減輕、梳毛活動(dòng)增加、腹瀉減輕、排泄物減少。

    2.2 各組小鼠胰腺組織形態(tài)學(xué)變化 HE染色結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,LPS 組小鼠胰腺出現(xiàn)組織水腫、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、出血及壞死,各項(xiàng)改良Schmidt組織病理學(xué)評(píng)分及總分升高(P<0.05);與LPS 組相比,LPS+HRS 組水腫、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、出血及壞死程度和范圍明顯減輕,各項(xiàng)改良Schmidt組織病理學(xué)評(píng)分無(wú)明顯變化(P>0.05),改良Schmidt 組織病理學(xué)評(píng)分總分降低(P<0.05);LPS+HRS組與對(duì)照組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)圖1、表1。

    Fig.1 HE staining of pancreatic tissues in the three groups of mice(×200)圖1 小鼠胰腺組織HE染色(×200)

    Tab.1 Histopathological scores of pancreatic injury in the three groups of mice表1 各組小鼠胰腺損傷的組織病理學(xué)評(píng)分 [n=5,分,M(P25,P75)]

    2.3 各組小鼠血清淀粉酶變化 LPS組小鼠血清淀粉酶水平顯著高于對(duì)照組,LPS+HRS 組小鼠血清淀粉酶水平明顯低于LPS 組,但仍高于對(duì)照組(均P<0.05),見(jiàn)表2。

    Tab.2 Comparison of serum amylase level,IL-6 and TNF-α levels in pancreatic tissue between the three groups of mice表2 各組小鼠血清淀粉酶、胰腺組織IL-6和TNF-α水平比較 (n=5,)

    Tab.2 Comparison of serum amylase level,IL-6 and TNF-α levels in pancreatic tissue between the three groups of mice表2 各組小鼠血清淀粉酶、胰腺組織IL-6和TNF-α水平比較 (n=5,)

    **P<0.01;a與對(duì)照組比較,b與LPS組比較,P<0.05

    組別對(duì)照組LPS組LPS+HRS組F血清淀粉酶(U/L)551.80±26.10 2 627.00±186.40a 1 555.00±142.70ab 289.800**IL-6(ng/L)9.15±0.59 27.81±0.93a 15.42±1.29ab 471.800**TNF-α(ng/L)51.53±1.74 157.10±5.62a 96.07±4.82ab 728.500**

    2.4 各組小鼠胰腺組織炎性因子變化 LPS組小鼠胰腺組織中IL-6和TNF-α水平均高于對(duì)照組,LPS+HRS 組小鼠胰腺組織中IL-6 和TNF-α 水平均低于LPS組,但仍高于對(duì)照組(均P<0.05),見(jiàn)表2。

    2.5 各組小鼠胰腺組織中MPO 和MDA 水平比較 LPS 組小鼠胰腺組織中MPO 和MDA 水平均高于對(duì)照組,LPS+HRS 組小鼠胰腺組織中MPO 和MDA 水平均低于LPS 組,但仍高于對(duì)照組(均P<0.05),見(jiàn)表3。

    Tab.3 Comparison of MPO and MDA levels in pancreatic tissues between the three groups of mice表3 各組小鼠胰腺組織MPO和MDA水平比較(n=5,)

    Tab.3 Comparison of MPO and MDA levels in pancreatic tissues between the three groups of mice表3 各組小鼠胰腺組織MPO和MDA水平比較(n=5,)

    **P<0.01;a與對(duì)照組比較,b與LPS組比較,P<0.05

    組別對(duì)照組LPS組LPS+HRS組F MPO(U/g)10.62±1.11 24.84±0.62a 16.05±5.18ab 27.180**MDA(μmol/g)22.28±1.64 65.20±1.74a 42.82±1.66ab 815.700**

    3 討論

    LPS注射是一種簡(jiǎn)便可重復(fù)的標(biāo)準(zhǔn)化膿毒癥制模方式,廣泛應(yīng)用于膿毒癥各種器官損害的研究。本研究采用LPS尾靜脈注射的方式成功建立了小鼠膿毒癥的胰腺損傷模型,膿毒癥小鼠出現(xiàn)嗜睡、寒戰(zhàn)和腹瀉等膿毒癥行為學(xué)表現(xiàn)。此外,本研究結(jié)果顯示,膿毒癥小鼠的胰腺組織學(xué)表現(xiàn)為水腫、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、出血及壞死,各項(xiàng)改良Schmidt 組織病理學(xué)評(píng)分及總分、血清淀粉酶升高,與既往研究報(bào)道的膿毒癥胰腺損傷的病理改變一致[2,11],提示在LPS誘導(dǎo)的膿毒癥中存在嚴(yán)重的胰腺損傷。

    氫分子是自然界中最小的分子,可穿透細(xì)胞膜和細(xì)胞器膜,作用于細(xì)胞核和線粒體等其他藥物難以到達(dá)的靶點(diǎn),可選擇性清除人體內(nèi)有害的活性氧(ROS)而不干擾人體內(nèi)正常的氧化還原反應(yīng),且終產(chǎn)物為水,無(wú)毒無(wú)害,因此被眾多學(xué)者應(yīng)用于各種氧化損傷和炎癥相關(guān)疾病的治療研究中,包括膿毒癥器官損傷[12]、胰腺炎[13]、缺血再灌注損傷[14]、阿爾茨海默癥[15]和動(dòng)脈粥樣硬化[16]等。HRS 是采用高壓物理溶解的方式制成的富含氫分子的水溶液。本研究結(jié)果顯示,HRS處理后小鼠的嗜睡、寒戰(zhàn)和腹瀉等行為學(xué)表現(xiàn)有所減輕,胰腺組織水腫、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、出血及壞死程度降低、總改良Schmidt 組織病理學(xué)評(píng)分和血清淀粉酶水平降低,提示HRS可明顯改善內(nèi)毒素誘導(dǎo)的小鼠胰腺損傷。與LPS 組相比,LPS+HRS 組小鼠胰腺組織水腫、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、出血及壞死的各項(xiàng)改良Schmidt 組織病理學(xué)評(píng)分無(wú)明顯變化,推測(cè)可能是樣本量較小的原因;但改良Schmidt 組織病理學(xué)評(píng)分總分降低,改良Schmidt 組織病理學(xué)評(píng)分總分更能評(píng)價(jià)胰腺組織的整體損傷程度。

    炎癥是膿毒癥的重要病理之一。LPS通過(guò)與脂多糖結(jié)合蛋白(LBP)結(jié)合形成LPS-LBP 復(fù)合物,活化Toll 樣受體4/核因子-κB(TLR4/NF-κB)通路[17],促進(jìn)炎性因子釋放,造成級(jí)聯(lián)放大的炎癥反應(yīng),形成膿毒癥炎癥反應(yīng)機(jī)制[18]。TLR4 亦存在于胰腺組織中[17,19]。研究發(fā)現(xiàn),抑制 TLR4/NF-κB 通路介導(dǎo)的IL-6 和TNF-α 表達(dá)的升高從而降低炎癥反應(yīng)可以改善LPS誘導(dǎo)的膿毒癥胰腺損傷[20]。本研究結(jié)果顯示,LPS 組小鼠胰腺組織中 IL-6 和 TNF-α 較對(duì)照組升高,HRS 顯著抑制了LPS 誘導(dǎo)的膿毒癥小鼠胰腺組織中IL-6和TNF-α表達(dá)的升高,提示HRS逆轉(zhuǎn)了介導(dǎo)膿毒癥胰腺損傷中的核心炎癥機(jī)制。MPO 常被用來(lái)評(píng)價(jià)中性粒細(xì)胞浸潤(rùn)。既往實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),在膿毒癥肺損傷[6]和胰腺炎[21]中 MPO 升高。在急性胰腺炎中,胰腺組織中的中性粒細(xì)胞可形成中性粒細(xì)胞胞外誘捕網(wǎng)(NETs),活化信號(hào)通路,參與炎癥反應(yīng)[13]。本研究結(jié)果顯示,在膿毒癥胰腺損傷中同樣存在MPO升高,HRS處理后MPO的升高被明顯抑制,提示HRS可顯著改善膿毒癥胰腺組織中的中性粒細(xì)胞浸潤(rùn),從而抑制炎癥。此外,在胰腺炎中存在內(nèi)源性ROS 生成增多導(dǎo)致的過(guò)氧化水平升高[22]。本研究用MDA 評(píng)價(jià)膿毒癥小鼠胰腺組織的氧化應(yīng)激水平,結(jié)果顯示,LPS 組胰腺組織中MDA 水平較對(duì)照組升高,HRS 處理顯著降低了MDA 水平,提示HRS 可明顯改善膿毒癥胰腺組織的氧化應(yīng)激損傷。同時(shí),本研究結(jié)果顯示,HRS 處理后血清淀粉酶、胰腺組織IL-6、TNF-α、MPO 和MDA 水平仍高于對(duì)照組,提示單次10 mL/kg 劑量腹腔注射的HRS 并不能獨(dú)立用于治療膿毒癥胰腺損傷。

    綜上所述,HRS 可通過(guò)抑制炎癥反應(yīng)和降低氧化應(yīng)激顯著改善內(nèi)毒素誘導(dǎo)的小鼠膿毒癥胰腺損傷。HRS 具有溫和抗氧化,可穿透細(xì)胞膜和細(xì)胞器膜,以及抗炎、抗氧化、抗凋亡、抗休克,調(diào)節(jié)多種分子通路和自噬等多種作用機(jī)制,且成本低廉等優(yōu)點(diǎn),故具有較好的研究和應(yīng)用前景。本研究尚存在不足之處,如未對(duì)HRS 改善LPS 誘導(dǎo)的膿毒癥胰腺損傷的上下游信號(hào)通路進(jìn)行探索,未設(shè)置膿毒癥胰腺損傷多時(shí)間點(diǎn)和HRS多劑量觀察,這將是本課題組下一步的研究方向。

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