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      大黃素通過(guò)調(diào)控ROS/TXNIP/NLRP3軸介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡途徑減輕重癥肺炎大鼠肺損傷*

      2021-08-04 03:15:18王亞靜宋衛(wèi)衛(wèi)高延秋
      中國(guó)病理生理雜志 2021年7期
      關(guān)鍵詞:洗液黃素肺泡

      王亞靜, 張 靜, 宋衛(wèi)衛(wèi), 高延秋

      (鄭州大學(xué)附屬鄭州中心醫(yī)院 1呼吸康復(fù)科,2呼吸重癥科,河南鄭州450006)

      肺炎是威脅人類健康的重要疾病之一,主要是由細(xì)菌、病毒等病原體引起肺部感染造成,肺炎的嚴(yán)重程度取決于肺部炎癥程度、肺部炎癥的擴(kuò)散程度等,出現(xiàn)嚴(yán)重低氧血癥、急性呼吸衰竭、低血壓和休克等不良表現(xiàn)即可認(rèn)定為重癥肺炎,重癥肺炎時(shí)肺組織產(chǎn)生大量炎癥因子,機(jī)體炎癥反應(yīng)過(guò)度激活,引發(fā)全身炎癥反應(yīng),因此尋找具有抗炎作用的藥物對(duì)于緩解重癥肺炎具有積極作用[1-2]。大黃素是中藥大黃的干燥根和莖中有效活性成分之一,具有抗炎、止血、降血脂和抗氧化等多種生物活性[3]。Dai 等[4]的研究顯示大黃素可顯著提高甲型流感病毒肺炎小鼠的存活率,減輕肺水腫程度,抑制機(jī)體炎癥反應(yīng)及氧化應(yīng)激反應(yīng),對(duì)小鼠的肺組織具有一定的保護(hù)作用。但關(guān)于其可能的機(jī)制報(bào)道卻較少。資料顯示,急性肺損傷可導(dǎo)致機(jī)體炎癥反應(yīng)加劇及活性氧簇(reactive oxygen species,ROS)的過(guò)度產(chǎn)生,進(jìn)而促進(jìn)硫氧還蛋白相互作用蛋白(thioredoxin-interacting protein,TXNIP)的表達(dá),TXNIP 參與核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域樣受體蛋白3(nucleotide-binding oligomerization domain-like receptor protein 3,NLRP3)炎癥小體的激活,促進(jìn)細(xì)胞內(nèi)炎性因子的釋放,最終導(dǎo)致細(xì)胞焦亡[5-6]。Meng 等[7]證實(shí),洋地黃黃酮對(duì)于緩解脂多糖誘導(dǎo)的小鼠急性肺損傷具有積極作用,并認(rèn)為它可能是通過(guò)減少機(jī)體ROS 產(chǎn)生、抑制NLRP3 炎癥小體的激活而發(fā)揮作用的。因此,本項(xiàng)工作在前人研究的基礎(chǔ)上探究大黃素對(duì)重癥肺炎大鼠肺損傷的影響是否與ROS/TXNIP/NLRP3 通路相關(guān),以期為重癥肺炎的治療提供參考資料。

      材料和方法

      1 動(dòng)物

      40只SD 雄性大鼠(北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司),SPF級(jí),8周齡,體質(zhì)量230~260 g,生產(chǎn)許可證號(hào)為SCXK(京)2016-0011。所有大鼠在干凈整潔的環(huán)境中飼養(yǎng),12 h 晝夜交替,自由飲食、飲水,溫度約25 ℃,相對(duì)濕度約50%,定時(shí)清潔鼠籠。在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中按照動(dòng)物使用的“3R”原則給予人道主義關(guān)懷。本研究經(jīng)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)同意。

      2 主要試劑

      ROS 激活劑氧化三甲胺(trimethylamineN-oxide,TMAO)和大黃素購(gòu)于陶素生化;HE 染色試劑盒、高效RIPA 裂解液和BCA 蛋白濃度測(cè)定試劑盒購(gòu)于北京索萊寶科技有限公司;腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細(xì)胞介素6(interleukin-6,IL-6)和IL-1β ELISA 試劑盒及ROS 檢測(cè)試劑盒購(gòu)于上海碧云天公司;兔源TXNIP、NLRP3、含caspase募集結(jié)構(gòu)域的凋亡相關(guān)斑點(diǎn)樣蛋白(apoptosis-associated speck-like protein containing a caspase recruitment domain,ASC)、caspase-1 和 GAPDH Ⅰ抗及羊抗兔IgG Ⅱ抗購(gòu)于Abcam。G-100 血?dú)夥治鰞x(深圳市西爾曼科技有限公司);XElx800 酶標(biāo)儀(PerkinElmer);Trans-Blot SD 半干轉(zhuǎn)膜儀(Bio-Rad);GIS-500凝膠成像儀(Miulab)。

      3 主要方法

      3.1 動(dòng)物模型制備及分組給藥 重癥肺炎大鼠模型的構(gòu)建參考文獻(xiàn)[8]方法制備,將肺炎克雷伯桿菌濃度調(diào)整為1.5×1012CFU/L,將大鼠用2%的戊巴比妥鈉麻醉后固定,常規(guī)消毒后切開頸部皮膚,使氣管暴露,用注射器將0.15 mL 的肺炎克雷伯桿菌液由氣管滴入,將大鼠保持直立位20 s 以保證菌液進(jìn)入肺部,當(dāng)觀察到大鼠呼吸急促、呆滯、反應(yīng)遲鈍,出現(xiàn)嚴(yán)重的低氧血癥時(shí)(SaO2<90%)認(rèn)為重癥肺炎模型構(gòu)建成功。40 只SD 大鼠隨機(jī)分為對(duì)照(control)組、模型(model)組、大黃素(emodin)組[9]、TMAO 組[10]和emodin+TMAO 組,每組8 只,除對(duì)照組外其余各組均構(gòu)建大鼠重癥肺炎模型,對(duì)照組以生理鹽水替代菌液,其余操作均相同。大黃素組大鼠每天灌胃80 mg/kg 大黃素,TMAO 組大鼠每天灌胃110 mg/kg TMAO 溶液,大黃素+TMAO 組大鼠每天灌胃80 mg/kg 大黃素后再灌胃110 mg/kg TMAO 溶液,持續(xù)灌胃2周,對(duì)照組和模型組以生理鹽水替代。

      3.2 大鼠動(dòng)脈血?dú)夥治?末次灌胃結(jié)束后24 h,將大鼠麻醉后采用肝素抗凝管取血1 mL,用全自動(dòng)血?dú)夥治鰞x分析各組大鼠動(dòng)脈血二氧化碳(carbon dioxide,CO2)含量、動(dòng)脈 CO2分壓(arterial CO2partial pressure,PaCO2)、動(dòng)脈血氧飽和度(arterial blood oxygen saturation,SaO2)和動(dòng)脈氧分壓(arterial oxygen partial pressure,PaO2)。

      3.3 大鼠肺泡灌洗液和肺臟組織的采集 將大鼠麻醉處死,胸部皮膚常規(guī)消毒,剪開胸部皮膚暴露胸腔,結(jié)扎大鼠右側(cè)支氣管,將磷酸鹽緩沖液由左側(cè)主氣管注入左側(cè)肺泡,觀察到大鼠肺部膨隆后抽回緩沖液,反復(fù)沖洗 3 次,合并緩沖液,250×g離心 10 min,上清液用于炎癥因子水平的測(cè)定,沉淀物用于炎癥細(xì)胞的分類計(jì)數(shù)。取大鼠右側(cè)肺組織,一部分用于HE 染色,一部分用于ROS/TXNIP/NLRP3 通路相關(guān)指標(biāo)的測(cè)定。

      3.4 大鼠肺組織HE 染色觀察 取適量大鼠肺組織,于4%甲醛溶液中固定48 h,采用自動(dòng)組織脫水機(jī)將肺組織進(jìn)行脫水、透明處理,常規(guī)石蠟包埋并切成4 μm 厚的薄片,貼附在載玻片上,參考HE 染色試劑盒的要求進(jìn)行操作,主要包括脫蠟至水、蘇木素染色、分化、返藍(lán)、伊紅染色、封片等操作,于顯微鏡下觀察并分析。

      3.5 大鼠肺泡灌洗液中炎癥因子及炎癥細(xì)胞測(cè)定 取大鼠肺泡灌洗液上清,用ELISA試劑盒檢測(cè)其中TNF-α、IL-6及IL-1β水平,具體操作按照相關(guān)試劑盒的說(shuō)明書進(jìn)行。取大鼠肺泡灌洗液沉淀物,用生理鹽水重懸后均勻涂抹于載玻片中央,干燥后用瑞氏染液染色3 min,水洗,干燥后用中性樹膠進(jìn)行封片,于顯微鏡下選取200個(gè)白細(xì)胞,由經(jīng)驗(yàn)豐富的細(xì)胞形態(tài)學(xué)檢測(cè)人員統(tǒng)計(jì)其中嗜酸性粒細(xì)胞(eosinophils,EOS)、淋巴細(xì)胞和中性粒細(xì)胞等各類白細(xì)胞的數(shù)目。

      3.6 大鼠肺組織ROS/TXNIP/NLRP3 通路相關(guān)指標(biāo)檢測(cè) 取大鼠肺組織,剪碎后制成組織勻漿,采用ROS 試劑盒測(cè)定其中ROS 活性,具體操作參考相關(guān)試劑盒的要求進(jìn)行。取剩余大鼠肺組織,剪碎后加入高效RIPA 裂解液提取總蛋白,用BCA 蛋白測(cè)定試劑盒測(cè)定蛋白質(zhì)含量,將蛋白樣品用蛋白上樣液調(diào)成相同濃度,高溫加熱至蛋白變性,SDS-PAGE 分離蛋白,濕轉(zhuǎn)法將分離的蛋白轉(zhuǎn)移至NC膜上,于5%脫脂奶粉溶液中封閉處理,加入兔源TXNIP、NLRP3、ASC、caspase-1 和 GAPDH Ⅰ抗,4 ℃孵育過(guò)夜,用TBST 緩沖液沖洗后加入辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔IgG Ⅱ抗,室溫孵育1 h,經(jīng)TBST 緩沖液沖洗后顯色、定影,于凝膠成像儀中觀察、拍照并分析。

      4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

      以SPSS 22.0軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,多組間比較采用單因素方差分析,進(jìn)一步兩組間比較行LSD-t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      結(jié) 果

      1 各組大鼠動(dòng)脈血?dú)夥治銮闆r

      與對(duì)照組相比,模型組大鼠PaCO2顯著升高(P<0.05),CO2含量、PaO2和SaO2顯著降低(P<0.05);與模型組相比,大黃素組大鼠PaCO2顯著降低(P<0.05),CO2含量、PaO2和SaO2顯著升高(P<0.05);模型組與TMAO 組相比上述指標(biāo)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);與大黃素組相比,emodin+TMAO 組大鼠PaCO2顯著升高(P<0.05),CO2含量、PaO2和 SaO2顯著降低(P<0.05),見表1。

      表1 各組大鼠血?dú)夥治鲋笜?biāo)比較Table 1.Comparison of blood gas analysis of the rats in each group(Mean±SD. n=8)

      2 各組大鼠肺組織HE染色觀察

      對(duì)照組大鼠肺組織無(wú)明顯病變,結(jié)構(gòu)完整;模型組大鼠肺組織損傷較嚴(yán)重,存在炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、肺間質(zhì)增厚、肺泡萎陷等現(xiàn)象;與模型組相比,大黃素組大鼠肺組織受損得到一定恢復(fù),模型組與TMAO 組肺組織病理表現(xiàn)相當(dāng);與大黃素組相比,emodin+TMAO組大鼠肺組織恢復(fù)效果較差。見圖1。

      Figure 1.HE staining of lung tissue in each group.Red arrows indicated alveolar collapse;yellow arrows indicated inflammatory cell infiltration;blue arrows indicated thickening of lung interstitium.The scale bar=100 μm.圖1 各組大鼠肺組織HE染色圖片

      3 各組大鼠肺泡灌洗液中炎癥因子水平比較

      與對(duì)照組相比,模型組大鼠肺泡灌洗液中TNF-α、IL-6和IL-1β水平顯著升高(P<0.05);與模型組相比,大黃素組大鼠肺泡灌洗液中TNF-α、IL-6和IL-1β水平顯著降低(P<0.05);模型組與TMAO 組相比,TNF-α、IL-6 和 IL-1β 水平差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);與大黃素組相比,emodin+TMAO 組大鼠肺泡灌洗液中 TNF-α、IL-6 和 IL-1β 水平顯著升高(P<0.05),見表2。

      表2 各組大鼠肺泡灌洗液中炎癥因子水平比較Table 2.Comparison of inflammatory factors in alveolar lavage fluid of the rats in each group(ng/L.Mean±SD. n=8)

      4 各組大鼠肺泡灌洗液中炎癥細(xì)胞的分類比較

      與對(duì)照組相比,模型組大鼠肺泡灌洗液中EOS、淋巴細(xì)胞和中性粒細(xì)胞顯著升高(P<0.05);與模型組相比,大黃素組大鼠肺泡灌洗液中EOS、淋巴細(xì)胞和中性粒細(xì)胞顯著降低(P<0.05);模型組與TMAO組相比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);與大黃素組相比,emodin+TMAO 組大鼠肺泡灌洗液中EOS、淋巴細(xì)胞和中性粒細(xì)胞顯著升高(P<0.05),見表3。

      表3 各組大鼠肺泡灌洗液中炎癥細(xì)胞比較Table 3.Comparison of inflammatory cells in alveolar lavage fluid of the rats in each group(×106/L.Mean±SD. n=8)

      5 各組大鼠肺組織ROS/TXNIP/NLRP3 通路相關(guān)指標(biāo)的比較

      與對(duì)照組相比,模型組大鼠肺組織中ROS 活性及 TXNIP、NLRP3、ASC 和 caspase-1 蛋白水平顯著升高(P<0.05);與模型組相比,大黃素組大鼠肺組織中ROS 活性及 TXNIP、NLRP3、ASC 和 caspase-1 蛋白水平顯著降低(P<0.05);模型組與TMAO 組相比上述指標(biāo)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);與大黃素組相比,emodin+TMAO 組大鼠肺組織中ROS 活性及TXNIP、NLRP3、ASC 和 caspase-1 蛋白水平顯著升高(P<0.05),見表4及圖2。

      表4 各組大鼠肺組織ROS活性及ROS/TXNIP/NLRP3通路相關(guān)蛋白表達(dá)的情況Table 4.ROS activity and ROS/TXNIP/NLRP3 pathway-related protein expression in lung tissues of the rats in each group(Mean±SD. n=8)

      Figure 2.Expression of ROS/TXNIP/NLRP3 signaling pathwayrelated proteins in the rats of each group.圖2 各組大鼠ROS/TXNIP/NLRP3通路相關(guān)蛋白表達(dá)情況

      討 論

      肺炎是由微生物、多種理化因素等造成的肺泡、肺間質(zhì)炎癥性疾病,常見的為細(xì)菌性肺炎。重癥肺炎患者機(jī)體炎癥反應(yīng)程度、肺部炎癥擴(kuò)散程度較高,有嚴(yán)重低氧血癥、低血壓、急性呼吸衰竭等不良表現(xiàn),具有較高的病死率[11-12]。肺炎克雷伯桿菌是一種革蘭氏陰性菌,是常見的毒性較強(qiáng)的病原菌之一,本研究通過(guò)氣管滴入肺炎克雷伯桿菌構(gòu)建大鼠重癥肺炎模型,結(jié)果顯示,模型組大鼠動(dòng)脈血PaCO2值顯著高于正常組大鼠,動(dòng)脈血CO2含量、PaO2和SaO2值顯著低于正常組大鼠,HE 染色結(jié)果顯示模型組大鼠肺組織損傷較嚴(yán)重,存在炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、肺泡萎縮,肺間質(zhì)增厚等現(xiàn)象,肺泡灌洗液中炎性因子(TNF-α、IL-6 和IL-1β)及炎性細(xì)胞顯著增多,提示肺炎克雷伯桿菌可造成大鼠肺部炎癥反應(yīng)加劇,導(dǎo)致大鼠出現(xiàn)嚴(yán)重低氧血癥,表明大鼠重癥肺炎模型構(gòu)建成功。

      重癥肺炎與肺部炎癥反應(yīng)聯(lián)系密切,大黃素是蒽醌類衍生物,是植物大黃根莖中的有效活性成分之一,具有抗炎、降血脂、抗氧化、抗腫瘤、抗病毒、抗糖尿病和免疫調(diào)節(jié)等多種生物活性,對(duì)于急性胰腺炎、哮喘、牙周炎、脂肪肝、糖尿病等疾病有潛在的治療價(jià)值[13-14],資料顯示大黃素具有廣譜抗菌、抗病毒的藥理作用,主要通過(guò)抑制病毒的吸附、穿入過(guò)程抑制病毒復(fù)制,用于治療新型冠狀病毒肺炎具有一定的可能性[15]。Pang等[16]研究顯示大黃素可通過(guò)降低TNF-α 和IL-1β 等炎癥因子水平、抑制肺泡上皮細(xì)胞凋亡、調(diào)節(jié)上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化等途徑減輕二氧化硅引起的肺損傷及肺纖維化,謝璟等[17]研究表明大黃素可顯著降低肺炎鏈球菌肺炎小鼠肺組織炎癥反應(yīng),降低小鼠肺組織中TNF-α、IL-1β 和 IL-6 等炎癥因子水平,進(jìn)而減輕肺組織損傷。本研究結(jié)果顯示,經(jīng)過(guò)大黃素處理的重癥肺炎大鼠動(dòng)脈血PaCO2、肺泡灌洗液中 TNF-α、IL-1β 和 IL-6 水平、炎癥細(xì)胞數(shù)量及 ROS活性顯著降低,動(dòng)脈血CO2含量、PaO2和SaO2顯著升高,肺組織損傷減輕,提示大黃素可顯著改善重癥肺炎大鼠的嚴(yán)重低氧血癥,抑制機(jī)體炎癥反應(yīng),對(duì)重癥肺炎大鼠損傷肺組織具有一定的保護(hù)作用。

      多項(xiàng)研究表明ROS/TXNIP/NLRP3 通路與焦亡及炎癥反應(yīng)聯(lián)系密切,肺炎克雷伯桿菌可誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生大量的ROS,ROS 的過(guò)度產(chǎn)生可促進(jìn)TXNIP 的表達(dá),TXNIP 參與NLRP3 炎癥小體的激活及促炎因子的成熟和分泌,NLRP3 炎癥小體信號(hào)是一類大分子多蛋白復(fù)合體,由 NLRP3、ASC 和 caspase-1 組成,可識(shí)別機(jī)體危險(xiǎn)信號(hào),激活的NLRP3 可通過(guò)ASC 招募caspase-1,促進(jìn)其水解形成有活性的caspase-1,典型的焦亡是由有活性的caspase-1 介導(dǎo)的,caspase-1可促進(jìn)IL-1β 等炎癥因子的釋放,加劇炎癥反應(yīng),引起組織、細(xì)胞的焦亡[18-19]。Jiang 等[20]研究發(fā)現(xiàn)脂多糖可引起小鼠肺組織炎癥反應(yīng)加劇,引發(fā)肺損傷,導(dǎo)致肺組織中 ROS 活性、TXNIP、NLRP3、ASC 和 caspase-1 蛋白表達(dá)增加,Han 等[21]研究發(fā)現(xiàn)抑制機(jī)體ROS 活性、下調(diào)肺組織中TXNIP、NLRP3、ASC 和 caspase-1 蛋白表達(dá)對(duì)于緩解脂多糖誘導(dǎo)的急性肺損傷具有一定的促進(jìn)作用。本研究結(jié)果顯示,模型組大鼠肺組織中 ROS 活性、TXNIP、NLRP3、ASC 和 caspase-1蛋白表達(dá)顯著高于正常大鼠,經(jīng)過(guò)大黃素治療后大鼠肺組織炎癥及損傷得到緩解,肺組織中ROS活性、TXNIP、NLRP3、ASC 和 caspase-1 蛋白表達(dá)顯著降低,ROS 激活劑TMAO 單獨(dú)處理與模型組大鼠各指標(biāo)差異不顯著,提示模型大鼠體內(nèi)ROS/TXNIP/NLRP3 通路可能已處于充分激活狀態(tài),但是大黃素和ROS 激活劑TMAO 聯(lián)合處理與大黃素單獨(dú)處理相比,大鼠肺組織炎癥及損傷加重且ROS 活性、TXNIP、NLRP3、ASC 和 caspase-1 蛋白表達(dá)顯著升高,提示大黃素緩解重癥肺炎大鼠肺損傷的作用可能與抑制ROS/TXNIP/NLRP3通路有關(guān)。

      綜上所述,大黃素可緩解重癥肺炎大鼠的肺部炎癥及肺損傷,可能與抑制ROS/TXNIP/NLRP3 通路有關(guān),而大黃素作用機(jī)制復(fù)雜,是否亦通過(guò)其他途徑發(fā)揮作用仍不清晰,故而后續(xù)需更深入的研究。

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