陽莉,丘秀生,胡元,陳曉燕,陳偉材,盧建溪*
(1中山大學附屬第三醫(yī)院生物治療中心,廣州510000; 2中山大學附屬第三醫(yī)院疫苗研究所,廣州510000;3東莞長安港灣醫(yī)院內(nèi)科,東莞 523000)
自然殺傷細胞(natural killer cell, NK細胞)是機體內(nèi)的固有免疫細胞,負責殺傷老化、受病毒感染、腫瘤等異常細胞,并且無MHC限制性,它能自己識別和攻擊外來病毒、癌細胞和異常細胞[1~3]。目前,NK細胞不僅廣泛用于腫瘤病人的免疫治療,還可應(yīng)用于預(yù)防腫瘤發(fā)生及提高亞健康人群生活質(zhì)量[4]。
檢測NK細胞殺傷活性是評估體外培養(yǎng)的NK細胞生物學功能的主要方法。目前檢測細胞毒性的方法有同位素釋放法、MTT法、CCK-8法、LDH釋放法、Calcein-AM釋放法和流式細胞術(shù)等方法。同位素的方法對設(shè)備要求較高,費用較高,操作繁瑣,又存在放射性污染的問題,使其推廣使用受到限制;而酶反應(yīng)比色法容易受各種因素影響致結(jié)果出現(xiàn)較大差異,重復(fù)性不佳;流式細胞技術(shù)可在單細胞水平分析細胞的自然凋亡和靶細胞的死亡,是近幾年發(fā)展的一種方法[5~7]。本研究選取流式細胞術(shù)和LDH的方法檢測體外培養(yǎng)的NK細胞對K562細胞的殺傷活性,對檢測結(jié)果進行分析,優(yōu)化了細胞濃度和效靶細胞比,為NK細胞功能評估提供穩(wěn)定可靠的檢測方案。
白血病細胞株K562為本實驗室保存。14例腫瘤患者外周血均來自中山大學附屬第三醫(yī)院嶺南醫(yī)院,其中男7例,女7例,年齡40~85歲,平均年齡(59.57 ± 3.38)歲,所有患者均簽署知情同意書。
ALYS505NK-AC培養(yǎng)液和ALYS505NK-EX培養(yǎng)液(日本CSTI公司),RPMI1640培養(yǎng)液和胎牛血清(美國Gibco公司),重組人白細胞介素2(山東泉港藥業(yè)),人淋巴細胞分離液(挪威Axis-shield公司),赫賽汀(美國Roche公司),淋巴細胞檢測試劑盒CD45/CD56/CD19/CD3(美國Beckman Coulter公司),PI溶液(美國Sigma公司),羥基熒光素二醋酸鹽琥珀酰亞胺脂(5,6-carboxyfluorescein diacetate succinimidy ester,CFSE)(美國 Thermo Fisher Scientific公司),LDH細胞毒性檢測試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司),流式細胞分析儀為 CytoFLEX(美國Beckman Coulter公司),酶標儀為 Spark 10M(瑞士TECAN公司),離心機為Centrifuge 5810R(德國Eppendorf公司),二氧化碳培養(yǎng)箱240i(美國Thermo Scientific公司)。
3.1 K562細胞株培養(yǎng)
白血病細胞株K562培養(yǎng)于含10% FBS的RPMI1640培養(yǎng)液中,置于37℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每隔3d換液。
3.2 NK細胞培養(yǎng)
用肝素鈉抗凝管采集14份靜脈血,密度梯度離心法分離外周血單個核細胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC),用 ALYS505NK-AC培養(yǎng)液重懸細胞,調(diào)整細胞密度為(1~3)×106個/ml,加入預(yù)先用赫賽汀包被好的培養(yǎng)瓶中,37. 5℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。每隔3d用ALYS505NK-EX培養(yǎng)液對細胞進行補液。培養(yǎng)14d后,收獲細胞,使用淋巴細胞檢測試劑盒CD45/CD56/CD19/CD3在流式細胞儀上測定NK細胞(CD3-CD56+)含量。
4.1 LDH釋放法
培養(yǎng)14d后,對NK細胞進行殺傷功能檢測。以K562細胞作為靶細胞,濃度調(diào)整為1.0×105個/ml,按100μl/孔接種于96孔板;以NK細胞作為效應(yīng)細胞,濃度調(diào)整為4×106個/ml,然后進行倍比稀釋,每組效應(yīng)細胞濃度分別為4×106個/ml、2×106個 /ml、1×106個 /ml和 5×105個 /ml,按 100μl/孔接種于96孔板,最終效應(yīng)細胞與靶細胞的比例(效靶比)(effective target ratio, E/T ratio)分別為40:1、20:1、10:1和5:1,同時設(shè)靶細胞自然釋放對照組和最大釋放對照組,每組設(shè)3個復(fù)孔;250×g,離心5min后,將該96孔板置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中孵育4h。取出 96 孔板,400×g,離心 5min,取 120μl上清液,加入到一新96孔板相應(yīng)孔中,按LDH細胞毒性檢測試劑盒說明書進行測定。
計算公式為:靶細胞殺傷率=(實驗組OD值-靶細胞自然釋放孔OD值)/(靶細胞最大釋放孔OD值-靶細胞自然釋放孔OD值)×100%。
4.2 CFSE/PI雙染法流式細胞術(shù)
標記靶細胞:K562細胞濃度調(diào)整為1.0×106個/ml,加入熒光染料CFSE對靶細胞進行標記,37℃避光,染色20min;加5倍體積預(yù)冷的含10% FBS的RPMI1640培養(yǎng)液,冰浴5min,終止染色;調(diào)整細胞濃度至1.0×105個/ml。共培養(yǎng):加入NK細胞作為效應(yīng)細胞,每組效應(yīng)細胞數(shù)目分別為4×106個/ml、2×106個 /ml、1×106個 /ml和 5×105個 /ml,最終效應(yīng)細胞與靶細胞的比例分別為40:1、20:1、10:1和5:1,同時設(shè)靶細胞對照孔,250×g,離心5min后,置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中孵育4h;熒光染料PI標記死亡細胞,4℃避光,染色30min;用CytoFLEX流式細胞儀進行檢測及數(shù)據(jù)分析。
計算公式: 靶細胞殺傷率=(靶細胞死亡率-靶細胞自發(fā)死亡率)/(100-靶細胞自發(fā)死亡率)×100%。
采用GraphPad Prism 6統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計學處理。各組靶細胞殺傷率用表示,兩組間均數(shù)比較采用獨立樣本t檢驗,組內(nèi)均數(shù)比較采用配對樣本t檢驗,P<0.05代表差異顯著有統(tǒng)計學意義。
從培養(yǎng)第5d開始,細胞呈對數(shù)生長。流式細胞術(shù)測定NK細胞含量顯示,CD3-/CD56+細胞第0d時比例為16.14%±2.07%,培養(yǎng)至第14d時,CD3-/CD56+細胞的比例為72.56 %± 4.14%,人外周血NK細胞經(jīng)體外誘導增殖后,純度較高(圖1)。
靶細胞經(jīng)過預(yù)先標記,可明顯與效應(yīng)細胞區(qū)分開來。靶細胞未標記時有少量的自發(fā)熒光(8.07%);靶細胞經(jīng)CFSE染色后,37℃、5% CO2培養(yǎng)4h,部分細胞發(fā)生增殖,熒光分子隨細胞分裂分配到兩個子代細胞中,故出現(xiàn)兩個峰,可見靶細胞的標記率達99.35%。與效應(yīng)細胞共孵育后,能夠顯著地與未標記的效應(yīng)細胞進行區(qū)分(圖2)。
圖1 PBMCs培養(yǎng)前后NK細胞純度比較。A,培養(yǎng)前;B,培養(yǎng)至14d時Fig.1 Comparison of the purity of NK cells before and after PBMCs culture. A, before culture; B, after cultured for 14d
圖2 CFSE對靶細胞標記率。A,未標記;B,CFSE標記Fig. 2 CFSE labeling rate of target cells. A, unlabeled cells; B, CFSE labeled cells
靶細胞和效應(yīng)細胞混合孵育后,于倒置顯微鏡下觀察,效靶細胞比為5:1時,細胞之間不能有效接觸;效靶細胞比為10:1時,細胞接觸良好且細胞團很少;效靶比為20:1時,細胞雖接觸良好但細胞團較多;效靶細胞比為40:1時,大量細胞聚集成團,細胞團太多太大,效靶細胞反而不能有效接觸。因此靶細胞濃度為1×105個/ml,效靶比為10:1的細胞密度比較合適(圖3)。
流式細胞術(shù)CFSE/PI雙色熒光標記法以CFSE+細胞進行設(shè)門(圖4中P1門),分析該群細胞PI+的細胞,CFSE+PI-為正常靶細胞,CFSE+PI+為死亡的靶細胞(圖4中P3門)。LDH法和流式細胞術(shù)檢測NK細胞對白血病K562細胞株的殺傷活性顯示,效靶比越大,其殺傷活性越強;其中在5:1低效靶比時,流式細胞術(shù)檢測出的細胞殺傷活性明顯高于LDH釋放法,在10:1、20:1和40:1高效靶比時,兩種方法檢出的靶細胞死亡率無顯著差異(表1)。
圖3 不同效靶比下的細胞形態(tài)。A,5:1;B,10:1;C,20:1;D,40:1;箭頭,細胞團;比例尺,100μmFig.3 Cellular morphology at different E/T ratios. A, 5:1; B, 10:1; C, 20:1; D, 40:1; arrow, cell mass; scale bar, 100μm
過繼免疫療法是取患者自體淋巴細胞或免疫力強的供者淋巴細胞,經(jīng)體外活化、擴增后,再回輸入患者體內(nèi)發(fā)揮抗腫瘤作用。NK細胞由于獨特的抗腫瘤特點,在腫瘤免疫中的作用越來越受到重視[8-11]。鑒于NK細胞治療的廣闊應(yīng)用前景,亟需建立一種高效的NK細胞培養(yǎng)及質(zhì)量評估的方法,以滿足臨床應(yīng)用的需要。由于腫瘤患者普遍年齡偏大且免疫功能低下,外周血NK細胞比例更低、含量更少且活性較差,體外培養(yǎng)CD3-CD56+細胞比例也較低。
通常根據(jù)對靶細胞的殺傷作用來評估NK細胞的生物學功能,目前的檢測方法有很多種,各有優(yōu)缺點。通過檢測從細胞膜破裂的細胞釋放到培養(yǎng)液中的LDH活性,就可以實現(xiàn)對細胞毒性的定量分析。LDH釋放法被認為是傳統(tǒng)的51Cr釋放法進行細胞膜完整性檢測的安全有效的替代方法。
CFSE是一種穿透細胞膜的熒光染料,進入細胞后可以不可逆地與細胞內(nèi)的氨基結(jié)合偶聯(lián)到細胞蛋白質(zhì)上。當細胞分裂時,CFSE熒光可分配至兩個子代細胞中,因此其熒光強度大約是親代細胞的一半,利用流式細胞儀在488nm 激發(fā)光和FL1檢測通道可對其進行分析,可用于細胞示蹤和細胞增殖研究,同時也用于細胞毒活性的測定[12]。用CFSE標記活細胞,熒光在細胞中維持時間長、不易衰減、穩(wěn)定,且對細胞生理活動沒有影響,對靶細胞的標記率高,熒光強度強,可在流式細胞儀的FL-1通道檢測。PI是一種核酸染料,它不能通過活細胞膜,卻能穿過破損的細胞膜而對核染色在合適波長激發(fā)光的激發(fā)下發(fā)出明亮的紅色熒光,可在流式細胞儀的FL-2通道檢測。CFSE/PI雙色熒光染料標記,能同時對活細胞和死細胞染色,可有效區(qū)分靶細胞和效應(yīng)細胞以及靶細胞的自發(fā)凋亡和死亡[13]。
圖4 CFSE/PI法流式細胞術(shù)檢不同效靶比時NK細胞對K562細胞的細胞毒作用Fig. 4 Flow cytometric analysis (CFSE/PI) for cytotoxicity of NK cells to K562 cells at different E/T ratios
表1 兩種方法檢測NK細胞在不同效靶比下對靶細胞的細胞毒作用Tab.1 Cytotoxicity of NK cells against target cells at different E/T ratios detected by the two different detection methods
本文比較了LDH釋放法及流式細胞術(shù)CFSE/PI雙色熒光標記法在不同效靶比的細胞毒實驗結(jié)果,并探討了LDH法和流式細胞術(shù)的最佳實驗條件。結(jié)果表明,LDH法加入顯色試劑后隨反應(yīng)時間的增加其OD值逐漸增加,30min 以后OD值已不在檢測范圍內(nèi),最佳檢測時間為加入反應(yīng)試劑后25~30min,時間要嚴格控制,否則結(jié)果誤差很大。在實驗中發(fā)現(xiàn)隨著效靶比的增加,其結(jié)果變異越大,當效靶比為20:1和40:1時,開始出現(xiàn)OD值超出范圍的情況,分析認為當效靶比越高的時候,效應(yīng)細胞貢獻越多的LDH,使結(jié)果產(chǎn)生較大誤差[14]??梢?,LDH 法雖是常用測定細胞毒活性的簡便方法,具有經(jīng)濟、快速且需要樣本量少等優(yōu)點,但該方法易受溫度、培養(yǎng)液和反應(yīng)時間等因素的影響而導致結(jié)果重復(fù)性差。流式細胞術(shù)相對耗時較長,操作較繁瑣,優(yōu)點是可以明確區(qū)分效應(yīng)細胞和靶細胞及凋亡和死亡細胞,是一種靈敏、特異 、經(jīng)濟和穩(wěn)定的檢測 NK 細胞毒性的方法。綜合比較這兩種方法體外檢測免疫細胞對腫瘤細胞毒活性實驗,在較高的效靶比和較強的細胞毒作用下(10:1、20:1、40:1),兩種方法對靶細胞死亡率檢出的差異不具有統(tǒng)計學意義;但在效靶比弱細胞毒情況下(5:1),流式細胞術(shù)檢測靶細胞死亡率要高于LDH法,具有重復(fù)性好、靈敏度高等特點。
綜上所述,在體外評估NK細胞的殺傷功能實驗中,考慮到所需要的樣本細胞數(shù)量、細胞團的聚集程度以及顯色反應(yīng)的準確度,最優(yōu)的效靶細胞比為10:1。在效靶比為10:1時,LDH釋放法及CFSE/PI雙染色法均可用來檢測NK細胞殺傷活性,在其他效靶比情況下,流式細胞術(shù)要優(yōu)于LDH釋放法。