周文美,陶陶,吳霜,王廷龍,楊正奕,張瑩
1.貴州醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院康復(fù)醫(yī)學(xué)科,貴州貴陽市 550001;2.貴州省人民醫(yī)院康復(fù)醫(yī)學(xué)科,貴州貴陽市 550002;3.貴州醫(yī)科大學(xué)附屬人民醫(yī)院康復(fù)醫(yī)學(xué)科,貴州貴陽市 550002;4.貴州省食品藥品檢驗所,貴州貴陽市550004
缺血性腦卒中通常由栓塞或血栓性動脈阻塞引起,導(dǎo)致腦血流量減少,引起缺氧和目標(biāo)腦區(qū)域葡萄糖供應(yīng)中斷,細(xì)胞出現(xiàn)能量代謝減慢、壞死和凋亡[1]。腦缺血再灌注損傷(cerebral ischemia reperfusion injury,CIRI)是缺血性腦卒中的繼發(fā)損傷,由于側(cè)支循環(huán)建立,在缺血中心區(qū)周圍的半暗帶,細(xì)胞仍可維持部分代謝活力[2]。防止缺血半暗帶區(qū)演變?yōu)楣K绤^(qū),恢復(fù)神經(jīng)細(xì)胞活性,是缺血性腦卒中治療研究的熱點(diǎn)。
豐富環(huán)境是一種非侵入性干預(yù)方法,它依賴于自愿的身體活動、無壓力的調(diào)節(jié)、社會互動和對新刺激的引入,已被證實(shí)可以促進(jìn)腦缺血后神經(jīng)發(fā)生和功能恢復(fù)[3]。缺氧誘導(dǎo)因子?1α (hypoxia inducible factor?1α,HIF?1α)是機(jī)體缺血缺氧時觸發(fā)內(nèi)源性保護(hù)機(jī)制的始動因子和共同途徑,能通過調(diào)控下游葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白?1(glucose transporter 1,GLUT1)和6?磷酸果糖?2?激酶/果糖?2,6?雙磷酸酶3 (6?phosphofructo?2?kinase/fruc?tose?2,6?bisphosphatase?3,PFKFB3)的表達(dá),改善葡萄糖代謝[4?6]。豐富環(huán)境可上調(diào)CIRI 大鼠腦組織HIF?1α表達(dá),參與大腦神經(jīng)功能保護(hù)[7?8]。
本研究觀察豐富環(huán)境對大鼠CIRI模型神經(jīng)功能的療效,觀察腦組織病理結(jié)構(gòu)改變,檢測缺血半暗帶區(qū)ATP、ADP 和AMP 含量,以 及HIF?1α 及其下游GLUT1、PFKFB3 mRNA 和蛋白的表達(dá),探討豐富環(huán)境對CIRI大鼠的腦保護(hù)作用及其可能機(jī)制。
SPF 級成年雄性Sprague?Dawley 大鼠72 只,體質(zhì)量240~260 g,購于貴州醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗動物中心,實(shí)驗動物生產(chǎn)批準(zhǔn)號SCXK(黔)2018?0001。本實(shí)驗在貴州醫(yī)科大學(xué)分子生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗室和貴州省食品藥品檢驗所進(jìn)行,所涉及的動物操作嚴(yán)格遵循動物倫理學(xué)的相關(guān)規(guī)定和準(zhǔn)則。
采用隨機(jī)數(shù)字表法,分為假手術(shù)組、模型組和豐富環(huán)境組,各24只。
HIF?1α 兔多克隆抗體、β?actin 兔多克隆抗體:博奧森公司。PFKFB3 兔單克隆抗體:ABCAM 公司。GLUT1兔多克隆抗體:PROTEINTECH公司。PCR逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和SYBR Premix Ex TaqTM試劑盒:TAKA?RA 公司。線栓:北京西濃科技有限公司。ATP 標(biāo)準(zhǔn)品(93.0%)、ADP 標(biāo)準(zhǔn)品(85.3%)、AMP 標(biāo)準(zhǔn)品(92.7%):中國食品藥品檢定研究院。山羊抗兔抗體:THERMO FISHER公司。
LC?20AT 高效液相色譜儀:日本島津公司。實(shí)時熒光定量PCR 儀:美國ABI 公司。ND2000 型超微量紫外分光光度計:美國THERMO FISHER公司。所有引物均由上海生工設(shè)計和合成。
1.3.1 動物模型建立[9]
大鼠術(shù)前禁食12 h。大鼠10%水合氯醛3.5 ml/kg腹腔注射麻醉,仰臥位固定,頸正中切口,分離右側(cè)頸外、頸總和頸內(nèi)動脈,依次結(jié)扎頸外和頸總動脈近心端,微動脈夾暫時夾閉頸內(nèi)動脈。經(jīng)頸總動脈近分叉處剪口,將直徑約0.26 mm 的線栓(前端燒熔成半球形,18 mm處有標(biāo)記)插入頸內(nèi)動脈,至感受到輕微阻力,插入深度(距頸總動脈分叉口)約18.0 mm。60 min后,緩慢退出線栓。
假手術(shù)組大鼠行相同手術(shù)步驟,但不插入線栓。
術(shù)后24 h 采用改良神經(jīng)損害嚴(yán)重程度評分(modi?fied Neurological Severity Scores,mNSS)[10]進(jìn)行神經(jīng)功能評估。取7~12分大鼠進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗,不合格大鼠剔除,按隨機(jī)抽樣原則抽取備用大鼠補(bǔ)齊。
1.3.2 豐富環(huán)境和標(biāo)準(zhǔn)環(huán)境設(shè)置[11]
豐富環(huán)境組于造模后立即飼養(yǎng)在豐富環(huán)境中。85×50×75 cm 金屬網(wǎng)格籠,籠內(nèi)有爬梯、鏈條、不同形狀管道、色塊、積木、球類和跑輪等玩具,每3 天重新布置環(huán)境1 次;每天持續(xù)播放舒緩音樂及多色光照射2 h,每籠飼養(yǎng)6只。
假手術(shù)組和模型組均飼養(yǎng)在標(biāo)準(zhǔn)環(huán)境中。25×15×20 cm 塑料籠,籠內(nèi)僅放置墊料,每籠飼養(yǎng)2 只大鼠。所有動物籠內(nèi)飼料、墊料和水均一致,12 h 明暗循環(huán)條件,共飼養(yǎng)28 d。
1.3.3 mNSS
于造模前(0 d)及造模后1 d、7 d、14 d、21 d、28 d,每組各取8只大鼠由一名不了解實(shí)驗分組的研究者對各組大鼠行mNSS評定。評分越高,損傷越嚴(yán)重。
1.3.4 取材
各組于造模后1 d、28 d,行mNSS 評定后,10%水合氯醛3.5 ml/kg 腹腔注射麻醉后,斷頭處死大鼠,冰板上快速取出腦組織,預(yù)冷PBS 緩沖液洗凈,切取缺血半暗帶區(qū)腦組織[12],假手術(shù)組取對應(yīng)部位,液氮速凍6 min 后,-80 ℃冰箱保存,用于mRNA、蛋白,以及ATP、ADP、AMP 檢測。剩余腦組織4%多聚甲醛固定,用于HE染色。
1.3.5 HE染色
各組取3 只,腦組織4%多聚甲醛液固定24 h 以上,石蠟包埋,切片厚4 μm,常規(guī)HE 染色,光學(xué)顯微鏡下觀察病理改變。
1.3.6 逆轉(zhuǎn)錄實(shí)時定量聚合酶鏈反應(yīng)(reverse transcrip?tion real?time quantitative polymerase chain reaction,RT?qPCR)
各組取6只大鼠腦缺血半暗帶區(qū)組織,Trizol溶液提取總RNA,紫外分光光度計測定濃度和純度,將RNA 逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,用SYBR Green 試劑盒進(jìn)行實(shí)時熒光定量多聚酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng),計算2-ΔΔCt值。引物序列如下。
HIF?1α:上游5'?AGA GTG GTA CTC ACA GTC GG?3';下游5'?CCC TGC AGT AGG TTT CTG CT?3'。
GLUT1:上游5'?AGA GTC CAT CCC ATC CAC CA?3';下游5'?CCT GCC AAA GCG ATT AAC AA?3'。
PFKFB3:上游5'?ATT GAA TAT GCC GTC TCC?3';下游5'?CAC AAG ATA CAC ACA TGG?3'。
β?actin:上 游5'?ATT TGG CAC CAC ACT TTC TAC?3';下 游5'?ATC TGG GTC ATC TTT TCA CGG?3'。
1.3.7 Western blotting
各組6 只大鼠腦缺血半暗帶區(qū)組織,充分研磨成勻漿,離心取上清液,紫外分光光度計下測量蛋白濃度。10%SDS?PAGE 電泳分離,轉(zhuǎn)膜2 h 后,5%脫脂牛奶封閉2 h,分別加入HIF?1α(1∶1000)、GLUT1(1∶1000)、PFKFB3(1∶3000)和β?actin(1∶5000)一抗,4 ℃搖床孵育過夜,次日洗膜后加二抗(羊抗兔IgG,1∶3000)室溫孵育1 h,滴加ECL 液顯色。以β?actin為內(nèi)參,利用Image J 軟件分析各條帶相對灰度值,測量3次,取均值。
1.3.8 高效液相色譜法
各組取3 只,稱取缺血半暗帶區(qū)腦組織500 mg,冰上用0.4 mol/L HCLO4制成10%勻漿。超聲粉碎后,低溫離心取上清液。加3 mol/L K2CO30.1 ml中和,離心、過濾后制成試品溶液,-80 ℃儲存。
采用高效液相色譜法測定ATP、ADP、AMP 含量。色譜條件:Waters Bridge R C18 反相色譜柱(4.6×150 mm,5 μm)。流動相:0.2 mmol/L 磷酸鹽緩沖液(磷酸氫二鈉35.8 g、磷酸二氫鉀13.6 g、四丁基溴化氨1.61 g),95%甲醇搖勻。檢測波長259 nm,流速1.0 ml/min,柱溫20 ℃,進(jìn)樣量10 μl。
精密稱取標(biāo)準(zhǔn)ATP 10.18 mg,ADP 10.87 mg,AMP 10.07 mg,超純水溶解,稀釋后ATP、ADP、AMP 的濃度分別為48.37 μg/ml、46.36 μg/ml、46.67 μg/ml。梯度稀釋(2、2.5、5、10、50、100 倍),取各濃度梯度對照品溶液10 μl 進(jìn)樣,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算樣本ATP、AMP、ADP濃度,并進(jìn)一步計算能量負(fù)荷(energy charge,EC)[13]。
每個樣本進(jìn)樣3次。
采用SPSS 22.0 統(tǒng)計軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計量資料以()表示,多組間比較采用單因素方差分析。顯著性水平α=0.05。
各組造模前及假手術(shù)組各時間點(diǎn)mNSS 評分均為0,行為無異常;造模后1 d,模型組和豐富環(huán)境組均出現(xiàn)行走時向一側(cè)傾倒或轉(zhuǎn)圈,感覺、平衡異常等神經(jīng)功能缺失癥狀,mNSS 評分高于假手術(shù)組(P <0.05);術(shù)后14 d 開始,豐富環(huán)境組mNSS 評分較模型組降低(P <0.05)。見表1。
表1 各組各時間點(diǎn)mNSS比較
假手術(shù)組腦組織結(jié)構(gòu)清晰,神經(jīng)細(xì)胞規(guī)則排列,胞核居中,胞核胞質(zhì)染色均勻一致。術(shù)后1 d,模型組和豐富環(huán)境組腦組織出現(xiàn)明顯梗死區(qū),可見細(xì)胞水腫,神經(jīng)元脫失或出現(xiàn)核固縮邊緣化、核仁消失,組織疏松呈空泡樣排列和拉網(wǎng)狀改變。術(shù)后28 d,模型組和豐富環(huán)境組水腫、神經(jīng)元脫失、核固縮、空泡等病理改變減少,豐富環(huán)境組細(xì)胞水腫等病理改變較模型組改善。見圖1。
圖1 各組腦病理改變(HE染色,bar=50 μm)
術(shù)后1 d,模型組和豐富環(huán)境組HIF?1α、GLUT1和PFKFB3 mRNA 均較假手術(shù)組增高(P<0.05),但兩組間無顯著性差異(P>0.05)。術(shù)后28 d,模型組和豐富環(huán)境組HIF?1α、GLUT1 和PFKFB3 mRNA 表達(dá)雖有下降,但仍高于假手術(shù)組(P<0.05),豐富環(huán)境組各mRNA表達(dá)高于模型組(P<0.05)。見表2。
表2 各組HIF-1α、GLUT1和PFKFB3 mRNA表達(dá)(2-ΔΔCt)
術(shù)后1 d,模型組和豐富環(huán)境組HIF?1α、GLUT1和PFKFB3 蛋白量均較假手術(shù)組增高(P<0.05),但兩組間無顯著性差異(P>0.05)。術(shù)后28 d,模型組與豐富環(huán)境組HIF?1α、GLUT1和PFKFB3蛋白量降低,但仍高于假手術(shù)組(P<0.05);豐富環(huán)境組各蛋白量高于模型組(P<0.05)。見圖2、表3。
圖2 各組HIF-1α、PFKFB3和GLUT1蛋白表達(dá)(Western blotting)
表3 各組HIF-1α、PFKFB3和GLUT1蛋白表達(dá)(/β?actin)
出峰次序依次為AMP、ADP 和ATP,保留時間分別為7.928 min、8.944 min 和13.438 min,與腦組織雜質(zhì)峰分離良好。見圖3。
圖3 高效液相色譜法分離ATP、ADP和AMP色譜圖
術(shù)后1 d,與假手術(shù)組相比,模型組、豐富環(huán)境組ATP、ADP 和EC 下降,AMP 上升(P <0.05);術(shù)后28 d,模型組、豐富環(huán)境組ATP 和EC 低于假手術(shù)組(P <0.05),但豐富環(huán)境組高于模型組(P <0.05)。見表4。
表4 各組ATP、ADP、AMP和EC變化
CIRI 會加重腦組織損傷和神經(jīng)功能障礙[14]。腦缺血后神經(jīng)功能恢復(fù)除受到生理、病理因素影響外,還與環(huán)境因素密切相關(guān)[15]。
豐富環(huán)境通過配備各種有康復(fù)作用的玩具,提供溫馨的生活環(huán)境,給予研究對象感覺、運(yùn)動、社會交往等方面的綜合刺激,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[16?17]。神經(jīng)功能依賴于腦組織能量代謝,而能量代謝障礙在腦組織器質(zhì)性病變發(fā)生之前就已經(jīng)出現(xiàn)[18]。長期豐富環(huán)境干預(yù)可通過增強(qiáng)突觸活動、調(diào)節(jié)神經(jīng)炎癥反應(yīng)等方式,恢復(fù)缺血后能量代謝紊亂,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[19?20]。
腦的能量代謝狀況可通過ATP 的變化觀察。在腦缺血模型中,ATP 從缺血核心區(qū)到缺血半暗帶區(qū)呈增加趨勢,細(xì)胞也表現(xiàn)出從壞死向凋亡的轉(zhuǎn)變[21]。本研究顯示,豐富環(huán)境干預(yù)28 d 后,缺血半暗帶區(qū)腦組織ATP 較模型組增高,反映細(xì)胞能量狀態(tài)的EC 進(jìn)一步增大;同時,神經(jīng)功能改善,缺血半暗帶組織病理改變減輕。
Amaral 等[22]發(fā)現(xiàn),腦缺血缺氧后,糖酵解成為腦組織的主要能量來源,缺氧細(xì)胞傾向于消耗更多葡萄糖滿足能量需求。葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)的關(guān)鍵蛋白GLUT1 表達(dá)增高代表這種適應(yīng)性轉(zhuǎn)變[23?24]。PFKFB3有很強(qiáng)的凈激酶活性,抑制PFKFB3 導(dǎo)致糖酵解減少,其介導(dǎo)的葡萄糖代謝是神經(jīng)保護(hù)的重要靶點(diǎn)[25]。本研究顯示,豐富環(huán)境干預(yù)后,GLUT1、PFKFB3 表達(dá)上調(diào),提示豐富環(huán)境可能增加葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)和糖酵解速度,改善能量供應(yīng),從而發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。
HIF?1α 可改善缺血后神經(jīng)元存活,促進(jìn)神經(jīng)功能恢復(fù)[26?27]。本研究顯示,腦缺血后,缺血半暗帶區(qū)HIF?1α表達(dá)立即增加,豐富環(huán)境干預(yù)后,HIF?1α表達(dá)較模型組增高。與以前的研究相符[7?8]。組織缺氧時,HIF?1α主要通過與其下游低氧反應(yīng)元件結(jié)合,介導(dǎo)相應(yīng)蛋白產(chǎn)物表達(dá),激活機(jī)體應(yīng)對缺血缺氧引起的病理性損傷[5]。HIF?1α激活后,上調(diào)GLUT1表達(dá),為糖酵解途徑補(bǔ)充葡萄糖[28]。在PFKFB3基因增強(qiáng)子區(qū)域中含有2 個拷貝的HIF?1α 結(jié)合基序(5'?ACGTG?3')[29],在缺氧條件下通過HIF?1α 介導(dǎo)PFKFB3 表達(dá)上調(diào)[30],進(jìn)而增強(qiáng)糖酵解途徑,提高細(xì)胞對缺氧的耐受。本研究顯示,豐富環(huán)境干預(yù)后,缺血半暗帶區(qū)HIF?1α、GLUT1、PFKFB3 的mRNA 與蛋白表達(dá)趨勢一致,推測豐富環(huán)境可能通過上調(diào)HIF?1α 的表達(dá),上調(diào)GLUT1 和PFKFB3 的表達(dá),改善缺血區(qū)葡萄糖代謝,促進(jìn)神經(jīng)元的存活。
綜上所述,豐富環(huán)境可促進(jìn)CIRI大鼠神經(jīng)功能恢復(fù),其機(jī)制之一可能通過上調(diào)腦缺血半暗帶區(qū)HIF?1α及其下游GLUT1、PFKFB3 的表達(dá),提高葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)和糖酵解速度,調(diào)節(jié)腦損傷后能量穩(wěn)態(tài),從而改善其神經(jīng)功能。進(jìn)一步可通過敲除或過表達(dá)HIF?1α 基因,來檢測GLUT1、PFKFB3 表達(dá)水平,明確豐富環(huán)境對HIF?1α以及GLUT1、PFKFB3的調(diào)控關(guān)系。
豐富環(huán)境作為一種輔助手段,對腦卒中患者神經(jīng)功能,特別是認(rèn)知功能和日常生活能力有促進(jìn)作用[31],有良好的應(yīng)用前景。但臨床豐富環(huán)境的設(shè)置及干預(yù)時間、強(qiáng)度等問題還需要進(jìn)一步深入研究。
利益沖突聲明:所有作者聲明不存在利益沖突。