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    長(zhǎng)效穩(wěn)定表達(dá)桿狀病毒基因傳遞載體的構(gòu)建及表達(dá)效率研究

    2021-04-09 07:04:00王志昇李夢(mèng)婷姬勇敢楊萌萌

    王志昇,李夢(mèng)婷,姬勇敢,楊 文,楊 麗,楊萌萌

    近年來,桿狀病毒作為基因傳遞載體吸引了眾多研究者的關(guān)注。然而,由于其介導(dǎo)的外源基因無法整合到宿主染色體中,隨著傳代次數(shù)的增多,外源基因逐漸降解,導(dǎo)致無法長(zhǎng)效表達(dá)目的蛋白,限制了其作為基因傳遞載體的廣泛應(yīng)用。研究表明,睡美人(sleeping beauty, SB)轉(zhuǎn)座子系統(tǒng),通過以經(jīng)典的DNA“剪切-粘貼”模式,能夠?qū)⑼庠椿蛘系剿拗骰蚪M中特異性的位點(diǎn)中?;谝陨戏治?,為了克服桿狀病毒瞬時(shí)表達(dá)的缺陷,該研究擬構(gòu)建SB轉(zhuǎn)座子-桿狀病毒嵌合載體系統(tǒng),以綠色熒光蛋白基因EGFP作為靶基因,以此來評(píng)價(jià)SB轉(zhuǎn)座系統(tǒng)介導(dǎo)的桿狀病毒作為基因傳遞載體在哺乳動(dòng)物體內(nèi)外的表達(dá)效率。

    1 材料與方法

    1.1 質(zhì)粒、菌株和細(xì)胞

    pFastBac DUAL表達(dá)質(zhì)粒購自美國(guó)Thermo公司;pT2/HB、pCMV(CAT)T7-SB100質(zhì)粒購自美國(guó)Addgene公司;人膠質(zhì)瘤U87細(xì)胞和昆蟲Sf-9細(xì)胞購自中科院細(xì)胞庫。Sf-9細(xì)胞在Grace昆蟲培養(yǎng)基(包含10% FBS、3.3 g/L酵母提取物和水解乳蛋白),27 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng);U87細(xì)胞在DMEM培養(yǎng)基(10% FBS、1%青鏈霉素),37 ℃、5% CO潮濕培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    SPF級(jí)BALB/c裸小鼠,4~6周齡,雄性,體質(zhì)量18~22 g,購自寧夏醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(寧)2020-0001。動(dòng)物飼養(yǎng)于溫度(22±1)℃、濕度(50±5)%、12 h/12 h晝夜交替的SPF級(jí)屏障實(shí)驗(yàn)室中。

    1.3 主要試劑

    Taq 酶、限制核酸內(nèi)切酶和T4連接酶購自美國(guó)Thermo公司;CloneExpressUltra One Step Cloning Kit購自南京諾唯贊生物公司;質(zhì)粒小提試劑盒與凝膠回收試劑盒購自北京天根公司;丁酸鈉購自美國(guó)Sigma公司;MTT試劑盒購自江蘇凱基生物;DMEM培養(yǎng)基、Grace培養(yǎng)基、FBS及脂質(zhì)體購自美國(guó)Gibco公司;兔抗EGFP多克隆抗體、Cy3-山羊抗兔熒光二抗、DAPI染液、抗熒光淬滅封片劑和EDTA(pH8.0)抗原修復(fù)液購自武漢谷歌生物。

    1.4 主要儀器

    T100型PCR儀購自美國(guó)BIORAD公司;Multiskan FC型全波長(zhǎng)酶標(biāo)儀和Forma 311型CO培養(yǎng)箱購自美國(guó)Thermo公司;Axio Vert.A1型倒置熒光顯微鏡購自德國(guó)蔡司公司;CI-L型正置熒光顯微鏡購自日本尼康公司;5430R型高速冷凍離心機(jī)購自美國(guó)Eppendorf公司;CytoFLEX FCM型流式細(xì)胞儀購自美國(guó)貝克曼公司;石蠟切片系統(tǒng)購自德國(guó)徠卡公司。

    1.5 引物設(shè)計(jì)

    構(gòu)建長(zhǎng)效穩(wěn)定表達(dá)桿狀病毒基因傳遞載體所需的引物、序列、擴(kuò)增片段以及每條引物引入的酶切位點(diǎn)(下劃線所示)如表1所示。

    1.6 載體構(gòu)建

    1.6.1

    pBac-CE質(zhì)粒的構(gòu)建 在pFastBac DUAL質(zhì)粒pPh啟動(dòng)子下游插入pCMV-IE-EGFP表達(dá)原件;pCMV-IE-EGFP融合基因通過引物CE-F/CE-R,從pEGFP-C1質(zhì)粒中擴(kuò)增獲得,預(yù)期擴(kuò)增的pCMV-IE-EGFP大小為1 300 bp。經(jīng)PCR和測(cè)序鑒定正確的重組質(zhì)粒命名為pBac-CE。具體引物序列、酶切位點(diǎn)及擴(kuò)增的片段如表1所示。

    1.6.2

    pBacSB-CE質(zhì)粒的構(gòu)建 CMV-SB100X-SV40 PA表達(dá)原件通過引物CMV-SB-SV-F/CMV-SB-SV-R從質(zhì)粒pCMV(CAT)T7-SB100中擴(kuò)增,然后將擴(kuò)增產(chǎn)物與經(jīng)同樣位點(diǎn)酶切后的pFastBac Dual根據(jù)CloneExpressUltra One Step Cloning Kit手冊(cè)同源重組,獲得的質(zhì)粒命名為pBac-SB100X,預(yù)期擴(kuò)增的CMV-SB100X-SV40 PA融合基因大小約為2.1 kb;CMV-EGFP-SV40 PA表達(dá)原件通過引物CE-SV-F/CE-SV-R從質(zhì)粒pBac-CE中擴(kuò)增,然后與經(jīng)

    Eco

    RV和

    Bgl

    Ⅱ雙酶切后的pT2/HB按照同樣的方法進(jìn)行同源重組,獲得的質(zhì)粒命名為pT2/HB-CE,預(yù)期擴(kuò)增的CMV-EGFP-SV40 PA融合基因大小約為1.6 kb;IR/DR-CMV-EGFP-SV40 PA-IR/DR表達(dá)原件通過引物IR/DR-CE-F和IR/DR-CE-R從質(zhì)粒pT2/HB-CE中擴(kuò)增,然后與Not Ⅰ和Avr Ⅱ雙酶切后的pBac-SB100X經(jīng)同源重組獲得重組質(zhì)粒pBacSB-CE,預(yù)期擴(kuò)增的IR/DR-CMV-EGFP-SV40 PA-IR/DR融合基因大小約為2.3 kb。

    1.7 重組病毒粒子的獲得

    依據(jù)Bac-to-Bac(invitrogen)說明書方法將pBac-CE和pBacSB-CE轉(zhuǎn)化DH10Bac,提取經(jīng)藍(lán)白斑篩選后的陽性菌落DNA,即Bacmid DNA,然后將Bacmid DNA用脂質(zhì)體法轉(zhuǎn)染Sf-9昆蟲細(xì)胞(9×10個(gè)/ml),27 ℃培養(yǎng),待細(xì)胞出現(xiàn)大量綠色熒光時(shí)收集細(xì)胞培養(yǎng)上清液,作為原毒種P1代毒,以感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection, MOI)為1繼續(xù)接種Sf-9細(xì)胞,收集上清液作為P2代毒,繼續(xù)接種獲得P3代毒,-80 ℃凍存?zhèn)溆?。獲得的病毒分別命名為Bac-CE和BacSB-CE,病毒的滴度通過終點(diǎn)稀釋法測(cè)定。

    1.8 重組桿狀病毒對(duì)U87細(xì)胞活力的影響

    桿狀病毒轉(zhuǎn)導(dǎo)哺乳動(dòng)物細(xì)胞的方法參照文獻(xiàn)。簡(jiǎn)述如下,將U87細(xì)胞懸液按4×10/ml的細(xì)胞密度,每孔100 μl接種于96孔板中,待細(xì)胞貼壁后,將Bac-CE和BacSB-CE分別以MOI 100、200、400 轉(zhuǎn)導(dǎo)U87細(xì)胞,對(duì)照組為不含病毒的空轉(zhuǎn)導(dǎo)組,72 h后,每孔加入50 μl 1×MTT繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸棄上清液,加入150 μl DMSO終止反應(yīng),然后通過酶標(biāo)儀在490 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度(optical density, OD)。細(xì)胞存活率(%)=OD/OD×100%

    1.9 重組桿狀病毒在U87細(xì)胞中的表達(dá)效率

    將100 MOI Bac-CE和BacSB-CE按照上述的方法分別轉(zhuǎn)導(dǎo)U87細(xì)胞,每隔3 d在倒置熒光顯微鏡下記錄發(fā)熒光細(xì)胞比例,并收集細(xì)胞,一部分細(xì)胞繼續(xù)傳代培養(yǎng),另一部分細(xì)胞用于流式細(xì)胞儀檢測(cè)EGFP總熒光強(qiáng)度(total fluorescence intensity, TFI),每個(gè)樣本檢測(cè)10 000個(gè)細(xì)胞。TFI=細(xì)胞總數(shù)×陽性細(xì)胞百分比×平均熒光強(qiáng)度。

    1.10 重組桿狀病毒在體內(nèi)的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率

    取200 μl生長(zhǎng)狀態(tài)良好的U87細(xì)胞懸液(1×10個(gè)/ml)接種在BALB/c裸小鼠背部左側(cè)皮下,當(dāng)腫瘤體積長(zhǎng)至100 mm時(shí),隨機(jī)分為兩組,每組9只,分別瘤內(nèi)注射200 μl Bac-CE和BacSB-CE(1×10pfu/ml),于注射后第1、5和10天每組分別處死3只,分離腫瘤組織,制作石蠟切片,經(jīng)脫蠟水化處理后,加入兔抗EGFP多克隆抗體4 ℃過夜孵育,然后加入Cy3-山羊抗兔熒光二抗室溫孵育1 h后,PBS清洗3次,DAPI染液室溫避光復(fù)染10 min,用抗熒光淬滅封片劑封片,于正置熒光顯微鏡下觀察并采集圖像。

    表1 擴(kuò)增片段引物序列

    2 結(jié)果

    2.1 桿狀病毒基因傳遞載體構(gòu)建模式圖

    以pFastBac-DUAL質(zhì)粒為骨架,在pPh啟動(dòng)子下游插入pCMV-IE-EGFP表達(dá)原件,獲得的重組質(zhì)粒命名為pBac-CE;將pPh啟動(dòng)子替換為pCMV-SB100X-PA-IR/DR-pCMV-IE-EGFP-PA-IR/DR表達(dá)原件,獲得的重組質(zhì)粒命名為pBacSB-CE,載體構(gòu)建模式圖如圖1所示。

    2.2 重組質(zhì)粒PCR鑒定

    重組質(zhì)粒pBac-CE和pBacSB-CE分別用相應(yīng)的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,然后經(jīng)1.0 %瓊脂糖凝膠電泳在預(yù)期的位置處均出現(xiàn)了特異性條帶(圖2),與預(yù)期結(jié)果一致,證明已成功構(gòu)建了重組質(zhì)粒pBac-CE和pBacSB-CE。

    圖1 以質(zhì)粒pFastBac Dual為骨架構(gòu)建的重組桿狀病毒基因傳遞載體模式圖

    圖2 重組質(zhì)粒PCR鑒定

    2.3 重組Bacmid PCR鑒定

    將pBac-CE和pBacSB-CE轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞DH10Bac,然后從陽性菌落中提取病毒DNA,經(jīng)PCR和核酸瓊脂糖凝膠電泳鑒定,均在預(yù)期位置處出現(xiàn)了插入的片段(圖3),證明目的片段已成功插入病毒基因組中。

    圖3 重組Bacmid PCR鑒定

    2.4 重組桿狀病毒對(duì)U87細(xì)胞活力的影響

    為了證實(shí)重組病毒在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中的安全性,將不同滴度的BacSB-CE和Bac-CE分別轉(zhuǎn)導(dǎo)U87細(xì)胞,3 d后通過MTT法測(cè)定細(xì)胞的存活率。結(jié)果如圖4所示,病毒感染復(fù)數(shù)是100、200、400 MOI時(shí),BacSB-CE和Bac-CE組的細(xì)胞存活率與對(duì)照組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,表明重組桿狀病毒對(duì)細(xì)胞的生長(zhǎng)無影響。

    圖4 重組桿狀病毒對(duì)U87細(xì)胞活力的影響

    2.5 重組桿狀病毒在U87細(xì)胞中的表達(dá)效率

    為了驗(yàn)證重組病毒BacSB-CE在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中的表達(dá)效率,將100 MOI重組病毒BacSB-CE和Bac-CE分別轉(zhuǎn)導(dǎo)U87細(xì)胞,轉(zhuǎn)導(dǎo)后每隔3 d在倒置熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞的熒光狀態(tài)。結(jié)果如圖5A所示,隨著時(shí)間的增加,熒光細(xì)胞的數(shù)目逐漸減少,到第15天的時(shí)候,Bac-CE組已基本上看不到熒光細(xì)胞,而BacSB-CE組則仍可看到熒光直至實(shí)驗(yàn)期結(jié)束(60 d)。進(jìn)一步通過流式細(xì)胞儀檢測(cè)EGFP TFI,結(jié)果如圖5B所示,BacSB-CE組能持續(xù)檢測(cè)到熒光信號(hào)(約10a.u.)直至實(shí)驗(yàn)期結(jié)束(60 d),而Bac-CE組在15 d之后下降到低于檢測(cè)限(10~10)a.u.,結(jié)果表明SB轉(zhuǎn)座子介導(dǎo)的桿狀病毒能夠有效延長(zhǎng)外源基因在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中持續(xù)穩(wěn)定表達(dá)。

    圖5 重組桿狀病毒在U87細(xì)胞中的表達(dá)效率

    圖6 組織免疫熒光分析重組桿狀病毒介導(dǎo)的EGFP在體內(nèi)的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率 ×100

    2.6 重組桿狀病毒在體內(nèi)的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率

    為了評(píng)估重組病毒BacSB-CE在體內(nèi)的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率,建立裸鼠皮下膠質(zhì)瘤模型,通過組織免疫熒光檢測(cè)EGFP在腫瘤內(nèi)的表達(dá)情況。結(jié)果如圖6所示,在注射后的第1天,BacSB-CE和Bac-CE組,都能檢測(cè)到熒光細(xì)胞,在第5天的時(shí)候Bac-CE組基本看不到熒光細(xì)胞,而BacSB-CE組在第10天時(shí)仍能檢測(cè)到發(fā)熒光的細(xì)胞。這些結(jié)果表明,SB轉(zhuǎn)座子介導(dǎo)的重組病毒能有效地提高外源基因在體內(nèi)的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率。

    3 討論

    桿狀病毒由于對(duì)人和哺乳動(dòng)物不具備感染性,因此無針對(duì)桿狀病毒的特異免疫原性,而且能夠容納至少50 kb以上的外源片段插入以及重組病毒的獲得簡(jiǎn)單快速等優(yōu)點(diǎn),使得桿狀病毒在疫苗生產(chǎn)、真核蛋白表面展示等方面的報(bào)道屢見報(bào)端。近年來,越來越多的研究表明,在合適的功能啟動(dòng)子作用下,桿狀病毒能將外源基因有效地轉(zhuǎn)移到宿主細(xì)胞中,使得桿狀病毒作為基因傳遞載體的應(yīng)用時(shí)有報(bào)道。然而,桿狀病毒的基因組在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中隨著時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸被降解,外源基因無法持續(xù)表達(dá),限制了其在該領(lǐng)域中的進(jìn)一步應(yīng)用。

    為了克服桿狀病毒在哺乳動(dòng)物體內(nèi)瞬時(shí)表達(dá)的缺陷,本研究以pFastBac DUAL質(zhì)粒為骨架,構(gòu)建了含有SB轉(zhuǎn)座子的嵌合桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)(圖1~3),并證實(shí)了重組病毒載體攜帶

    EGFP

    基因?qū)87細(xì)胞的增殖沒有影響(圖4),說明重組病毒對(duì)哺乳動(dòng)物細(xì)胞的生長(zhǎng)無副作用。進(jìn)一步研究表明,在SB轉(zhuǎn)座子系統(tǒng)的作用下,BacSB-CE可明顯延長(zhǎng)EGFP在U87細(xì)胞中的表達(dá)時(shí)間(>60 d,本實(shí)驗(yàn)只設(shè)計(jì)了60 d),而對(duì)照組Bac-CE在第15天的時(shí)候已基本看不到熒光細(xì)胞(圖5A);流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果(圖5B)也表明,BacSB-CE和Bac-CE組在轉(zhuǎn)導(dǎo)初始都有很高的表達(dá)效率,而隨著時(shí)間的增加,二者的表達(dá)率急劇下降,在15 d之后BacSB-CE組仍能穩(wěn)定檢測(cè)到約10a.u的TFI,而Bac-CE組已經(jīng)降到檢測(cè)下限(10~10a.u.)。這個(gè)結(jié)果可能由于大量外源基因失敗整合到宿主基因組中,并且隨著傳代次數(shù)的增加,外源基因逐漸被降解、稀釋,從而導(dǎo)致轉(zhuǎn)導(dǎo)效率的急劇下降。體內(nèi)裸鼠膠質(zhì)瘤實(shí)驗(yàn)同樣證實(shí)了SB轉(zhuǎn)座子可以提高外源基因EGFP在體內(nèi)的表達(dá)效率(圖6)。這些結(jié)果說明在SB轉(zhuǎn)座子系統(tǒng)的介導(dǎo)下,外源基因成功整入到了宿主細(xì)胞的基因組中,并隨著宿主細(xì)胞的增殖而穩(wěn)定表達(dá)。這與Pan et al的研究結(jié)果一致。根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道,oriP/EBNA1,AAVITR等重組嵌合桿狀病毒載體均被開發(fā),這些載體均可不同程度的延長(zhǎng)外源蛋白在宿主細(xì)胞中的表達(dá)時(shí)間。為了提高病毒轉(zhuǎn)導(dǎo)效率,除了優(yōu)化載體設(shè)計(jì)外,轉(zhuǎn)導(dǎo)條件也應(yīng)考慮,如根據(jù)細(xì)胞的不同,可以將病毒和細(xì)胞的孵育時(shí)間增加到4~6 h;最好在26~27 ℃條件下轉(zhuǎn)導(dǎo),37 ℃可能會(huì)破壞病毒的完整性;添加3 mmol/L丁酸鈉(高濃度的丁酸鈉對(duì)細(xì)胞有毒性)等,這些都可有效地提高病毒的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率。

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