王 琦,沈佳娣,吳欣祎,謝海峰,陳 晨
樹(shù)脂與牙本質(zhì)的粘接都依賴于“混合層(HL)”的形成,它是決定粘接強(qiáng)度的主要因素[1]。在牙科粘接劑體系中摻入功能性單體被發(fā)現(xiàn)可以防止HL層的降解[2],10-甲基丙烯酰氧基癸基磷酸二氫鹽(10-MDP)是一種使用最廣泛、最穩(wěn)定的酸性功能單體,已有研究證明10-MDP可與羥基磷灰石建立穩(wěn)定的化學(xué)相互作用并耐水解,從而延長(zhǎng)HL的保存時(shí)間[3-4]。HL內(nèi)暴露的膠原纖維水解是HL降解的主要因素之一,而暴露的膠原纖維極易受到人牙本質(zhì)中內(nèi)源性基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)的影響,從而導(dǎo)致混合層水解,降低粘接強(qiáng)度[5]。既然10-MDP與羥基磷灰石能夠形成鈣鹽,而這一化學(xué)結(jié)合是否有助于保護(hù)牙本質(zhì)膠原纖維抵抗MMPs的降解尚值得研究。當(dāng)前研究即通過(guò)微拉伸粘接強(qiáng)度、原位酶譜及X射線衍射分析評(píng)價(jià)10-MDP-鈣鹽的形成對(duì)牙本質(zhì)粘接成績(jī)的影響。
經(jīng)南京醫(yī)科大學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn),收集20顆新鮮拔除無(wú)齲人類第三磨牙,去除牙齒表面的雜質(zhì)及軟組織。在流水狀態(tài)下使用低速金剛砂切割機(jī)(Isomet 1000, Buehler Ltd., Lake Bluff, IL, 美國(guó))垂直于牙體長(zhǎng)軸切割出16個(gè)3 mm厚的和4個(gè)1 mm厚的牙本質(zhì)片,去除表面牙釉質(zhì),牙本質(zhì)片表面依次使用400目和600目碳化硅砂紙濕拋光1 min,以制備玷污層。使用牙科顯微鏡(OMS2350牙科顯微鏡,Zumax,中國(guó))仔細(xì)檢查所有的牙本質(zhì)表面,以確保沒(méi)有殘留的牙釉質(zhì)或牙髓暴露。然后,將牙本質(zhì)儲(chǔ)存在4 ℃ Hanks平衡鹽溶液中,用于制備牙本質(zhì)粘接試件。
本實(shí)驗(yàn)所用的含10-MDP的底涂劑參照以下配方制備[6]:10%的10-MDP(DM Healthcare Products,美國(guó)); 88.8%的無(wú)水乙醇(上海滬試,中國(guó)); 0.3%樟腦醌(CQ,阿拉丁,中國(guó));0.9%的4-二甲基氨基苯甲酸乙酯(4EDMAB,阿拉丁,中國(guó))。所有牙本質(zhì)表面均用35%磷酸酸蝕劑(Gluma Etch 35 Gel,德國(guó))酸蝕15 s,然后用水徹底沖洗30 s,牙本質(zhì)表面用吸水紙輕拭去除多余水分。然后將16個(gè)3 mm厚的牙本質(zhì)片隨機(jī)分為4組(n=4),按照表1分組進(jìn)行處理。
表1 各組牙本質(zhì)試件的表面處理Tab.1 Surface treatment of dentin specimens in each group
使用含10-MDP的底涂劑涂布于10-MDP組酸蝕后的牙本質(zhì)表面20 s,并用光固化燈(EliparTMS10,3M ESPE,美國(guó))光固化20 s;將CHX(維真園,中國(guó))涂布于CHX組酸蝕后的牙本質(zhì)表面60 s,牙本質(zhì)表面用吸水紙輕拭去除多余水分。隨后每組將各自使用的粘接劑涂布于牙本質(zhì)表面,光固化20 s。然后,將復(fù)合樹(shù)脂(Filtek Z250,3M ESPE,美國(guó))分兩層堆置到涂布粘接劑的牙本質(zhì)表面上,每層2 mm,牢固壓實(shí)并光固化40 s。將每組的牙本質(zhì)/樹(shù)脂粘接樣本在37 ℃的蒸餾水中保存24 h和6個(gè)月。
水儲(chǔ)24 h或6個(gè)月后,用低速切割機(jī)將每個(gè)牙本質(zhì)粘接的樣本垂直牙體長(zhǎng)軸切成約1 mm×1 mm的柱狀試件,每個(gè)粘接樣本中取最靠近中心的4~5根柱狀試件,用電子游標(biāo)卡尺(MNT-150,Meinaite,中國(guó))測(cè)量并記錄每根試件的橫截面積,精確至0.01 mm。將每個(gè)柱狀試件用氰基丙烯酸粘接劑粘接到微拉伸裝置(micro tensile tester,BISCO,美國(guó))的夾具上,并以1 mm/min的速度施加拉力,直到發(fā)生斷裂,記錄拉力F(N)。測(cè)量結(jié)果以MPa表示,是通過(guò)將斷裂時(shí)的作用力F(N)除以單個(gè)樣品的粘接面積得出的。記錄每組24 h和6個(gè)月水儲(chǔ)的微拉伸測(cè)試粘接強(qiáng)度(μTBS),并計(jì)算平均值和標(biāo)準(zhǔn)差。采用SPSS 25.0軟件進(jìn)行雙因素方差分析(Two-way ANOVA),P<0.05為差異有顯著性意義。
取0.3 g羥基磷灰石粉,分為3份,按照表1分組進(jìn)行處理,反應(yīng)4 h。反應(yīng)完成后,加入丙酮,3 500 r/min離心20 min,倒出上清液,反復(fù)清洗3次,然后將反應(yīng)殘余物放置于37 ℃恒溫箱干燥4 h。通過(guò)射線衍射儀上進(jìn)行分析,工作電壓為40 kV,電流為200 mA,以連續(xù)方式進(jìn)行掃描,掃描2θ范圍為0.6°~40.0°,速度為0.02°/s,記錄實(shí)驗(yàn)結(jié)果。
按照表1分組對(duì)4個(gè)1 mm厚的牙本質(zhì)片表面進(jìn)行處理。將厚度為1 mm的流動(dòng)樹(shù)脂(Filtek Flow,3M ESPE,美國(guó))堆置到牙本質(zhì)上并光固化20 s,然后用低速切割機(jī)將其垂直于粘接界面切成1 mm厚的薄片,從厚度為1 mm的薄片中心區(qū)域切取出1 mm的柱狀試件,暴露出樹(shù)脂-粘接劑-牙本質(zhì)界面。
用砂紙將柱狀試件磨至厚度為500 μm的樣本,然后用氰基丙烯酸粘接劑粘到顯微鏡載玻片上以備用。使用DQ-明膠(dyequenched-gelatin)作為MMP底物(EnzChekTMGelatinase/Collagenase Assay Kit, Thermo Fisher Scientific, 美國(guó))進(jìn)行原位酶譜分析。通過(guò)向含有DQ-明膠的管中加入1.0 mL純水制備成1.0 mg/mL熒光素標(biāo)記的明膠溶液,將其儲(chǔ)存在-20 ℃直至使用。用1∶1的PBS緩沖液以體積比1∶8稀釋明膠原液,避光保存。用移液槍將50 μL明膠混合物置于載玻片上,使明膠混合液充分浸泡試件,并蓋上蓋玻片。將載玻片避光保存并在37 ℃恒溫箱內(nèi)孵育24 h。使用激光共聚焦顯微鏡(CLSM)(Zeiss LSM880 with NLO & Airyscan, 德國(guó))進(jìn)行分析,評(píng)估牙本質(zhì)內(nèi)源性明膠分解酶的活性。
4組試件分別在37 ℃水浴鍋中儲(chǔ)存24 h和6個(gè)月后的微拉伸強(qiáng)度測(cè)試值,見(jiàn)表2。
表2 在不同水儲(chǔ)情況下,4組μTBS結(jié)果Tab.2 μTBS results of 4 groups under different water storage conditions MPa
上標(biāo)大寫(小寫)字母表示表格中數(shù)值的橫向(縱向)比較,相同上標(biāo)大寫(小寫)字母表明兩組μTBS數(shù)據(jù)沒(méi)有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)
使用HSD檢驗(yàn)法和最小顯著性法統(tǒng)計(jì)分析發(fā)現(xiàn),水儲(chǔ)24 h后,不同處理方式的4組微拉伸粘接強(qiáng)度均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P均大于0.05),然而水儲(chǔ)6個(gè)月后,對(duì)照組、10-MDP組、SBU組的微拉伸粘接強(qiáng)度相對(duì)于24 h者均顯著降低(P<0.05),其中對(duì)照組最低;CHX組則在水儲(chǔ)6個(gè)月后維持了微拉伸粘接強(qiáng)度的穩(wěn)定(P=0.352)。
如圖1所示:對(duì)照組,10-MDP組和SBU組反應(yīng)殘留物的XRD圖譜,10-MDP組和SBU組分別在2θ=4.16°,7.34°和2θ=4.66°,7.02°(箭頭所示)有兩個(gè)特征性的峰,表明MDP-鈣鹽的形成[7]。
圖1 XRD結(jié)果Fig.1 Results of XRD
各組樣本經(jīng)過(guò)24 h孵育后,原位酶譜結(jié)果如圖2顯示,對(duì)照組中在混合層以及牙本質(zhì)小管中可以看出強(qiáng)烈的綠色熒光標(biāo)記,這表明對(duì)照組中的明膠水解較強(qiáng)烈;與對(duì)照組相比,10-MDP組與SBU組熒光強(qiáng)度明顯減弱,表明這兩組明膠有被水解,但水解程度低于對(duì)照組,而10-MDP組與SBU組間的熒光程度沒(méi)有明顯區(qū)別;CHX組的熒光強(qiáng)度也較對(duì)照組低。
R:樹(shù)脂;D:牙本質(zhì);HL:混合層圖2 原位酶譜結(jié)果Fig.2 Results of in situ zymography
CHX是一種有效和非特異性的MMPs抑制劑,在微拉伸結(jié)果中顯示,CHX組在24 h和6個(gè)月時(shí)的粘接強(qiáng)度無(wú)明顯區(qū)別(P>0.05),這與原位酶譜結(jié)果一致,如圖1所示,在CHX組表現(xiàn)為最低的熒光強(qiáng)度,這與先前的研究一致[16]。Favetti等[17]提出,CHX可以在6個(gè)月內(nèi)保持粘接強(qiáng)度的耐久性。與CHX組比較,10-MDP組和SBU組微拉伸強(qiáng)度均有所降低(P<0.05),這表明雖然10-MDP-鈣鹽的形成對(duì)內(nèi)源性牙本質(zhì)MMPs的活性被表現(xiàn)為抑制,但其抑制能力并不強(qiáng)于CHX。
此外,在微拉伸的結(jié)果中,10-MDP組與SBU組從24 h到6個(gè)月,粘接強(qiáng)度表現(xiàn)為明顯的降低(P<0.05)。這與一些研究結(jié)果不一致[18-19]。這可能是因?yàn)閷⒀辣举|(zhì)粘接樣本存儲(chǔ)在水環(huán)境中時(shí),粘接劑會(huì)吸收水分,使其內(nèi)部的親水性和疏水性成分發(fā)生相分離,會(huì)增加水解作用的敏感性,從而使樹(shù)脂-牙本質(zhì)界面水解,導(dǎo)致微拉伸強(qiáng)度的下降[20]。
酸性功能單體10-MDP之所以能發(fā)揮作用,離不開(kāi)與羥基磷灰石之間相互作用形成的10-MDP-鈣鹽,通過(guò)10-MDP-鈣鹽保護(hù)暴露的膠原纖維不接觸到MMPs而免于水解,這對(duì)延長(zhǎng)樹(shù)脂-牙本質(zhì)粘接界面的保存時(shí)間有顯著意義。