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    自噬標志物LC3的節(jié)律表達破壞參與β1-AA誘導的H9c2大鼠心肌細胞死亡*

    2021-02-05 01:02:22賈微微李朋佳陸潔蓓王曉暉
    中國病理生理雜志 2021年1期
    關鍵詞:節(jié)律心肌細胞標志物

    賈微微, 寧 娜, 孫 聰, 李朋佳, 陸潔蓓, 張 晟,原 媛 , 王 麗 ,3, 王曉暉 ,3△

    (山西醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院 1病理教研室,2形態(tài)學實驗室,3基礎醫(yī)學研究中心,山西太原030001)

    心功能不全是多種心臟疾病的終末階段,是重要的全球公共健康問題,但發(fā)病機制尚未完全闡明[1]。研究表明,在40%~60%心功能不全患者血清中可檢測到針對自身β1-腎上腺素受體(β1-adrenergic receptor,β1-AR)產(chǎn)生的自身抗體(β1-AR autoantibodies,β1-AA)[2]。β1-AA 可以持續(xù)激活 β1-AR 導致心肌細胞死亡,從而參與心功能不全的發(fā)生發(fā)展[3]。然而,β1-AA引起心肌細胞死亡的機制尚不明確。

    自噬是一種細胞自主的防御機制,可將細胞質內(nèi)的一些物質運輸?shù)饺苊阁w內(nèi)進行消化降解[4]。自噬被認為是細胞死亡和存活之間的交匯點,可以保護心肌細胞免于凋亡和其他重大傷害[5]。早在1970年,Pfeifei[6]在電鏡下就觀察到小鼠心肌、視網(wǎng)膜和胰腺等多種組織細胞中存在自噬體數(shù)量的節(jié)律性波動。自噬標志蛋白微管相關蛋白1 輕鏈3(microtubule-associated protein 1 light chain 3,LC3)的表達水平在小鼠肝臟中也呈現(xiàn)出顯著的震蕩節(jié)律[7-8]。

    特異性敲除小鼠心肌自噬相關基因ATG5可以使自噬的節(jié)律喪失,誘導心功能下降[9],提示自噬震蕩節(jié)律的異??梢杂绊懶募〖毎?。然而,β1-AA 對心肌細胞自噬標志物LC3 的節(jié)律表達是否有影響及其對心肌細胞死亡的作用目前尚不清楚。因此,本研究用β1-AR 細胞外第二環(huán)(the second extracellular loop of β1-AR,β1-AR-ECII)抗原肽段主動免疫大鼠,再將從大鼠血清中提純的β1-AA作用于H9c2大鼠心肌細胞,觀察LC3 的節(jié)律性表達,探究自噬節(jié)律的破壞是否參與β1-AA 誘導的心肌細胞死亡,以期為β1-AA陽性心功能不全患者的治療提供實驗參考資料。

    材 料 和 方 法

    1 材料

    1.1 動物及細胞 清潔級8 周齡雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠12只,體質量180~200 g,由山西醫(yī)科大學動物中心[許可證號:SCXK(晉)2015-0001]提供。H9c2細胞系由中國科學院上海細胞庫提供。

    1.2 主要試劑 β1-AR-ECII 抗原肽段(吉爾生化上海有限公司);抗LC3 抗體和抗Per2 抗體(Abcam);抗GAPDH 抗體、辣根過氧化酶標記的山羊抗小鼠IgG 和辣根過氧化酶標記的山羊抗兔IgG(中杉金橋公司);RNAiso Plus、PrimeScript RT Master Mix 和SYBR Premix Ex TaqTMII(TaKaRa);胎牛血清(中喬新舟公司);Cell Counting Kit-8(CCK-8;Dojindo);地塞米松(索萊寶科技有限公司);慢病毒(lentivirus,LV)-shPer2 和LV-NC(中國漢恒生物科技有限公司)。

    1.3 主要儀器 Heracell 150i CO2恒溫細胞培養(yǎng)箱(Thermo Scientific);酶聯(lián)免疫檢測儀(SoftMax);LR56495 低溫高速離心機(Thermo Fisher);PCR 擴增儀(Stratagene);熱循環(huán)儀(MJ Research);垂直電泳儀和半干轉轉膜儀(BIO-RAD);BioSpectrum 810 凝膠成像系統(tǒng)(UVP)。

    2 實驗方法

    2.1 建立主動免疫大鼠模型 參照文獻進行大鼠主動免疫[10],誘導其血清中產(chǎn)生β1-AA,具體實驗設計見圖1A。選取12 只8 周齡雄性SD 大鼠按隨機數(shù)字表法分為免疫組(β1-AR 組)和對照(control)組,每組6 只。使用Na2CO3溶液溶解β1-AR-ECII 抗原肽段,按1∶1的比例與完全弗氏佐劑乳化混勻后,于SD大鼠背部皮下多點注射法進行首次免疫(0.4 μg/g),隨后將已稀釋的β1-AR-ECII 抗原肽段與不完全弗氏佐劑1∶1乳化,采用單點背部皮下注射,每隔2周加強免疫 1 次,共免疫 8 周;control 組用等量 Na2CO3溶液替代抗原溶液,實驗方案同免疫組。隨后從血清中檢測并提純β1-AA。

    2.2 鏈霉抗生物素蛋白(streptavidin,SA)-酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)檢測β1-AA 使用β1-AR-ECII 抗原肽段(10 mg/L)包被空白ELISA 板,加入磷酸鹽緩沖液、待測血清、生物素標記的Ⅱ抗和辣根過氧化物酶標記的SA,且以上各步驟均在37℃水浴1 h;底物顯色30 min;最后檢測405 nm 處吸光度(A),計算P/N 值判定結果。P/N=(標本A值-空白對照A值)/(陰性對照A值-空白對照A值),P/N≥2.1 定為抗體陽性,P/N≤1.5定為抗體陰性。

    2.3 純化β1-AA 冰箱取出層析柱放置室溫30 min,三蒸水沖洗保存在柱子中的乙醇,用結合緩沖液沖洗柱子,使用含有β1-AA 的血清濾過柱子并用洗脫緩沖液沖洗柱子,使β1-AA 隨同洗脫緩沖液一起滴到EP管中。

    2.4 細胞培養(yǎng)及處理 培養(yǎng)H9c2 細胞至匯合度達80%左右時用終濃度0.1 μmol/L[11]的地塞米松溶液同步化處理3 h,同步化結束時間記為CT0。細胞隨機分為 4 組:control 組(1 μmol/L 陰性 IgG 處理細胞)、β1-AA組(1 μmol/L β1-AA處理細胞)、LV-NC組(LV-NC 感染細胞,MOI=30)和 LV-shPer2 組(LV-shPer2 感染細胞,MOI=30)。各組細胞分別在同步化并給藥誘導之后于不同時點(CT0、CT4、CT8、CT12、CT16和CT20)收樣,用于后續(xù)研究。

    2.5 通過慢病毒感染敲減Per2基因 參照文獻[12],采用慢病毒感染H9c2 細胞以敲減Per2基因,進而得到LC3 節(jié)律異常的細胞。由上海漢恒生物科技有限公司協(xié)助構建含shPer2 質粒同時帶有GFP 的慢病毒。采取1/2小體積感染法:前一日進行細胞計數(shù)和傳代,次日細胞換液后加入1/2 體積培養(yǎng)基,根據(jù)最佳MOI加入適宜體積的慢病毒,感染4 h后加入另外1/2 體積新鮮培養(yǎng)基,12~16 h 后將含病毒的培養(yǎng)基換為普通完全培養(yǎng)液。

    2.6 Western blot 實驗 采用Western blot 法檢測各時點LC3 和Per2 蛋白的表達。同2.4 處理后于各時點收集細胞,BCA法測蛋白濃度,定量的蛋白經(jīng)SDSPAGE分離后,轉至PVDF膜,奶粉室溫封閉2 h,相應抗體4℃孵育過夜,TBST 洗膜后加入相應Ⅱ抗室溫孵育2 h。利用凝膠成像系統(tǒng)曝光,使用ImageJ 軟件對圖像進行灰度分析。

    2.7 real-time PCR 實驗 采用 real-time PCR 檢測Per2 mRNA 表達和各時點LC3 mRNA 表達。將各組細胞處理,充分裂解后收集細胞,提取總RNA 并反轉錄為cDNA,使用SYBR Green 試劑盒擴增cDNA 產(chǎn)物。引物設計如下:LC3 的上游引物序列為5′-AGCTCTGAAGGCAACAGCAACA-3′,下游引物序列為 5′-GCTCCATGCAGGTAGCAGGAA-3′;GAPDH 的上游引物序列為5′-GGCACAGTCAAGGCTGAGAATG-3′,下游引物序列為 5′-ATGGTGGTGAAGACGCCAGTA-3′;Per2 的上游引物序列為 5′-AGCAACACCACCTTTCACAA-3′,下 游引 物序 列為 5′-CGTAGGCTTAGACCACCATC-3′。所有結果用control組 CT0 時 GAPDH 的表達進行標化,采用 2-ΔΔCt法進行相對定量。

    2.8 CCK-8 法檢測細胞活力 將密度為每孔(2~3)×104的細胞懸液接種于96 孔板,待細胞貼壁后更換培養(yǎng)基并對各組細胞進行加藥處理;藥物作用24 h 后每孔加入CCK-8 溶液10 μL,混勻后繼續(xù)孵育1.5 h;最后檢測450 nm 處A值,對各組A值進行處理分析得到其相較于control 組細胞的相對活力。計算公式為:細胞相對活力(%)=(實驗組A值-空白對照組A值)/(陰性對照組A值-空白對照組A值)×100%。

    3 統(tǒng)計學處理

    實驗數(shù)據(jù)采用SPSS 16.0 軟件進行分析,以均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示。兩組間比較采用兩獨立樣本t檢驗;多組間比較采用單因素方差分析,多重比較采用LSD法。檢驗水準α=0.05。

    采用R 統(tǒng)計軟件包2.10.0 版進行JTK_CYCLE算法[13-15]來識別數(shù)據(jù)的循環(huán)變量,以查看24 h 節(jié)律。JTK_CYCLE 算法是一種可以從微陣列數(shù)據(jù)中檢測循環(huán)記錄的非參數(shù)測試程序,提供每個循環(huán)記錄的基于置換的P值(校正的P值),其所需的置信區(qū)間為95%。

    結 果

    1 主動免疫大鼠血清中β1-AA的A值顯著升高

    SA-ELISA 結果顯示,與 control 組(0.65±0.02)相比,β1-AR 組大鼠血清中 β1-AA 的A值(2.47±0.07)顯著升高(P<0.05),進一步采用親和層析法提純β1-AA,用于后續(xù)細胞實驗,見圖1。

    2 β1-AA顯著降低H9c2細胞活力

    CCK-8 結果顯示,與 control 組相比,1 μmol/L 的β1-AA 作用于H9c2心肌細胞24 h后細胞活力顯著下降(P<0.05),見圖2。

    3 β1-AA破壞H9c2細胞LC3的節(jié)律表達

    real-time PCR 及 Western blot 結果顯示,control組LC3 mRNA 和蛋白表達水平均在CT8~CT12 時升高,CT12 以后開始下降;經(jīng)β1-AA 處理后,LC3 的表達高峰前移至CT8,見圖3。

    使用JTK_CYCLE 算法對所得數(shù)據(jù)進行分析,可得到 control 組 LC3 的 JTK_CYCLEP值小于 0.05,經(jīng)β1-AA 處理后,LC3 的 JTK_CYCLEP值大于 0.05,見表1。

    4 β1-AA破壞H9c2細胞Per2蛋白的節(jié)律表達

    Western blot 結果顯 示 ,control 組 Per2 蛋白在CT8 和 CT16 時表達較高,其中以 CT16 時最高;經(jīng) β1-AA 處理后,Per2 蛋白的生成高峰前移至CT12,見圖4。

    使用JTK_CYCLE 算法對所得數(shù)據(jù)進行分析,結果表明 control 組 Per2 蛋白的 JTK_CYCLEP值小于0.05,經(jīng)β1-AA 處理后,JTK_CYCLEP值大于0.05,見表1。

    Figure 1.Detection and purification of β1-AA from rat serum.A:diagram of detection and purification of β1-AA;B:serum β1-AA level in control group and β1-AR active immunization group was determined by SA-ELISA.Mean±SEM. n=6. *P<0.05 vs control group.圖1 β1-AR主動免疫后檢測及提純β1-AA

    Figure 2.β1-AA decreased the viability of H9c2 cells.Mean±SEM. n=6. *P<0.05 vs control group.圖2 β1-AA顯著降低H9c2細胞活力

    5 敲減Per2 基因破壞H9c2 細胞LC3 節(jié)律表達后細胞活力顯著降低

    5.1 慢病毒感染成功敲減H9c2 細胞的Per2基因采用LV-shPer2感染H9c2細胞,MOI=30時熒光強度較高且與MOI=50 時差異不大(圖5A),故選定MOI為30用于后續(xù)實驗。隨后檢測病毒對目的基因Per2的敲減效果,結果顯示,與LV-NC 感染的H9c2 細胞(3.69±0.26)相比 ,LV-shPer2 感 染 使 H9c2 細胞Per2 mRNA 表達水平(1.98±0.37)顯著降低(P<0.05),見圖5B;Per2 蛋白表達也顯著降低(1.22±0.25vs0.56±0.09,P<0.05),見圖5C。

    5.2 慢病毒感染敲減Per2基因破壞H9c2 細胞LC3的節(jié)律表達 Western blot 結果顯示,LV-NC 組LC3節(jié)律表達與control 組類似,且JTK_CYCLE 算法分析的P值 小 于 0.05,而 LV-shPer2 組 LC3 的 JTK_CYCLEP值大于0.05,見圖6及表1。

    5.3 LC3 節(jié)律表達破壞可引起H9c2 細胞活力下降 CCK-8 結果顯示,LV-NC 組 H9c2 細胞活力(96.90%±6.42%)與 control 組(97.50%±1.43%)相比無顯著差異,而破壞LC3 節(jié)律表達后,細胞活力顯著下降(37.95%±3.76%,P<0.05),見圖7。

    討 論

    本研究觀察到,β1-AA 可以誘導H9c2 心肌細胞自噬標志物LC3 的節(jié)律表達破壞。研究表明,自噬節(jié)律表達受生物鐘基因調控,于是本研究采用LV-shPer2 敲減生物鐘基因Per2以破壞細胞自噬標志物LC3 的節(jié)律表達,觀察到心肌細胞活力顯著下降,提示自噬標志物LC3 的節(jié)律表達破壞促進β1-AA 誘導的H9c2心肌細胞死亡。

    β1-AA 是一種針對β1-AR-ECII 產(chǎn)生的自身抗體[16],可以持續(xù)激活β1-AR導致心肌細胞死亡[3]。β1-AA可以通過結合β1-AR的構象表位而影響受體的構象和下游cAMP 信號傳導,進而誘導MCP-1 蛋白產(chǎn)生,引起心肌細胞死亡[17]。β1-AA 還可以通過誘導CD4+T 細胞增加,導致心肌細胞凋亡和心力衰竭[18]。本研究也觀察到β1-AA作用H9c2心肌細胞24 h可顯著降低心肌細胞活力,與之前的研究一致。

    我們前期研究結果表明,β1-AA 可顯著抑制心肌細胞自噬功能,繼而導致線粒體膜電位下降,參與心功能不全的發(fā)生發(fā)展[19]。自噬在生理過程中起著“管家”的作用,可以清除長壽、錯誤折疊的蛋白質和受損的細胞器,參與細胞生長和衰老的調節(jié)[20]。已有研究表明,細胞自噬存在節(jié)律性震蕩[21];早在1970年就觀察到大鼠某些組織自噬空泡的豐度在一日中具有節(jié)律性波動[6];另有研究表明,LC3-II 蛋白表達在小鼠肝臟、骨骼肌及腎臟中也具有節(jié)律性[22]。LC3作為自噬的分子標記物位于細胞質中,自噬發(fā)生時LC3-I 與磷脂酰乙醇胺共價結合,形成LC3-II 并定位于自噬體膜上參與自噬小體的形成[23]。在本研究中,我們重點關注自噬標志物LC3 的節(jié)律表達情況。為了對相關蛋白在24 h 的節(jié)律變化進行分析,我們采用的是公認的晝夜節(jié)律震蕩性分析軟件JTK_CYCLE[24-25]。JTK_CYCLE 是一種新穎的非參數(shù)統(tǒng)計算法,采用R 語言來識別樣本的循環(huán)變量。而且本研究以H9c2 大鼠心肌細胞系為研究對象,細胞系的節(jié)律不會被環(huán)境變化所加強,所以節(jié)律性震蕩較低,但是經(jīng)過與其他算法相比較,JTK_CYCLE 算法能很好識別這些數(shù)據(jù)中的循環(huán)轉錄本。而且JTK_CYCLE算法對于24 h內(nèi)的樣本數(shù)據(jù)較其他算法相比具有更高的特異性和準確性[13-15]。我們的結果顯示,control組LC3 的表達確實存在顯著節(jié)律性震蕩,LC3 在CT8~CT12時升高,CT12開始下降,提示在主觀白天LC3 的生成處于較低狀態(tài),心肌細胞產(chǎn)生的衰老、損傷的蛋白質會出現(xiàn)累積,主觀夜間LC3 的生成增多,自噬開始發(fā)揮吞噬降解衰老損傷的蛋白質及細胞器的作用,維持心肌細胞的正常狀態(tài)。由此可見,自噬節(jié)律的正常運轉對于心肌細胞穩(wěn)態(tài)的維持至關重要。而給予β1-AA 處理后LC3 生成的最高點由CT12提前至CT8,JTK_CYCLE 算法分析得出其節(jié)律性震蕩被破壞。這提示β1-AA可以引起H9c2心肌細胞自噬標志物LC3的節(jié)律表達破壞。

    Figure 3.Autophagy marker LC3 rhythm was disrupted in H9c2 cardiomyocytes by β1-AA.The samples were collected every 4 h within 24 h.A:real-time PCR demonstrated that the LC3 mRNA rhythmic expression in the H9c2 cardiomyocytes was disrupted by β1-AA(1 μmol/L);B,C:Western blot showed that the LC3 protein rhythmic expression in the H9c2 cardiomyocytes was disrupted by β1-AA(1 μmol/L).Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs control group.圖3 β1-AA破壞H9c2心肌細胞自噬標志物LC3的節(jié)律表達

    Figure 4.The rhythmic expression of Per2 protein in H9c2 cardiomyocytes was disrupted by β1-AA(1 μmol/L).The samples were collected every 4 h within 24 h.Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs control group.圖4 β1-AA破壞H9c2心肌細胞Per2蛋白的節(jié)律表達

    Figure 5.H9c2 cells were infected with LV-shPer2 to knock down the expression of Per2.A:GFP fluorescence images with MOI of 5,10,30 and 50(scale=1 mm);B:real-time PCR showed that the mRNA expression of Per2 was reduced by LV-shPer2(MOI=30)in the H9c2 cardiomyocytes;C:Western blot showed that the protein expression of Per2 was reduced by LV-shPer2(MOI=30)in the H9c2 cardiomyocytes.Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs LV-NC group.圖5 LV-shPer2感染H9c2心肌細胞敲減Per2的表達

    Figure 6.The expression of LC3 rhythm was disrupted after LV-shPer2 infection.The samples were collected every 4 h within 24 h.A:real-time PCR demonstrated that the LC3 mRNA rhythmic expression in the H9c2 cardiomyocytes was disrupted by LV-shPer2(MOI=30);B,C:Western blot showed that the LC3 protein rhythmic expression in the H9c2 cardiomyocytes was disrupted by LV-shPer2(MOI=30)Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs LV-NC group.圖6 LV-shPer2敲減Per2使心肌細胞自噬標志物LC3節(jié)律破壞

    研究表明,人類清醒時,饑餓增加胰島素水平,進而激活心臟mTOR 信號通路,導致自噬節(jié)律異常,從而發(fā)生心功能不全[9,26]。FoxO3 誘導心肌細胞中幾種自噬相關基因節(jié)律性異常表達,導致心肌細胞變小,心功能下降[27]。這些研究表明,自噬節(jié)律異常可能會對心肌細胞和心功能產(chǎn)生影響。因此,我們需要進一步探究β1-AA誘導的H9c2心肌細胞自噬標志物LC3的節(jié)律表達破壞是否參與其細胞死亡。

    自噬的震蕩節(jié)律受生物鐘調控[28]。生物晝夜節(jié)律是地球上所有生物體以太陽作為參考點將生物周期調整為近似24 h 的震蕩節(jié)律。轉錄-翻譯反饋環(huán)路(transcriptional translation feedback loop,TTFL)是目前公認的節(jié)律維持機制[29]。其中,β-AR活化能夠顯著改變 Per2 蛋白和 mRNA 的節(jié)律性表達[30],即 β-AR 的激活會引起生物鐘基因Per2的變化。而且本研究也觀察到,H9c2心肌細胞control組的Per2蛋白通過JTK_CYCLE 算法分析表現(xiàn)出顯著的晝夜節(jié)律性震蕩,其表達量于CT8 和CT16 時相對較高,其中以CT16 時最高;而β1-AA 能夠顯著破壞 Per2 蛋白的晝夜節(jié)律性震蕩,使其生成最高峰前移至CT12。有研究表明,成纖維細胞Per2基因沉默后,LC3蛋白表達顯著下降,節(jié)律也出現(xiàn)顯著異常[31]。因此,本研究使用LV-shPer2 感染H9c2 心肌細胞,降低Per2表達,進而破壞自噬標志物LC3 的節(jié)律表達,結果細胞活力出現(xiàn)顯著下降,表明β1-AA 誘導的H9c2 心肌細胞自噬標志物LC3 的節(jié)律表達破壞了參與其細胞死亡。

    表1 JTK_CYCLE 算法分析LC3 mRNA、LC3 蛋白和Per2蛋白表達的晝夜節(jié)律參數(shù)Table 1.The circadian parameters of LC3 mRNA,LC3 protein and Per2 protein using JTK_CYCLE algorithm analysis

    Figure 7.The viability of H9c2 cardiomyocytes was reduced after the rhythm of LC3 was destroyed by LV-shPer2.Mean±SEM. n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LV-NC group.圖7 LV-shPer2 敲減Per2 基因使心肌細胞LC3 節(jié)律表達破壞后心肌細胞的活力顯著降低

    綜上所述,β1-AA 可引起H9c2 心肌細胞自噬標志物LC3 的節(jié)律表達破壞和細胞活力降低;敲減生物鐘基因來破壞H9c2 心肌細胞LC3 節(jié)律表達后,細胞活力顯著下降。由此可見,自噬標志物LC3 節(jié)律表達的破壞在β1-AA 誘導的心肌細胞死亡過程中發(fā)揮重要作用;早期合理調控自噬標志物LC3 的節(jié)律表達有望成為β1-AA 陽性心功能不全患者的治療策略。

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