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    基于生物信息學(xué)的潰瘍性結(jié)腸炎免疫細胞的浸潤模式分析

    2021-01-27 02:47:30陶弘武柳越冬林亞南許博佳羅瑞娟姜莎莎
    中國免疫學(xué)雜志 2020年24期
    關(guān)鍵詞:記憶性調(diào)節(jié)性肥大細胞

    李 娜 陶弘武 柳越冬 林亞南 許博佳 羅瑞娟 王 磊 姜莎莎

    (遼寧中醫(yī)藥大學(xué),沈陽 110032)

    潰瘍性結(jié)腸炎(ulcerative colitis,UC)是一種特發(fā)性復(fù)發(fā)性炎癥性疾病,發(fā)病率較高。雖然UC的病因尚不清楚,但其特征表現(xiàn)為連續(xù)性腸道黏膜的炎癥,從直腸開始,并可累及整個結(jié)腸。環(huán)境和生活方式與藥物使用、高糖和高脂肪的飲食、污染、較高的社會經(jīng)濟地位、壓力與UC有關(guān),免疫反應(yīng)在UC的全過程中起重要作用。免疫耐受的喪失導(dǎo)致各種免疫炎癥因子的增加而誘發(fā)炎癥。它們刺激抗原特異性效應(yīng)物的增殖,從而觸發(fā)適應(yīng)性免疫系統(tǒng),導(dǎo)致局部和全身炎癥。UC的免疫應(yīng)答和炎癥途徑表明,各種類型的細胞,包括抗原呈遞細胞、T輔助細胞、調(diào)節(jié)性T細胞和自然殺傷T細胞,通過調(diào)控炎癥在UC發(fā)病中發(fā)揮重要作用。本文利用GEO數(shù)據(jù)庫中UC的微陣列測序, 并利用CIBERSORT[1]計算其免疫細胞組成, 進一步分析其與UC的相關(guān)性,并初步評估 UC中免疫細胞浸潤情況,為進一步研究 UC 的分子機制提供了新思路。

    1 材料與方法

    1.1數(shù)據(jù)下載 數(shù)據(jù)采集本研究利用了GEO[2]數(shù)據(jù)庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gds)的數(shù)據(jù)。MeSH檢索詞為“colitis,ulcerative”或“Ulcerative colitis”和“Homo sapiens”和“Expression profiling by array”和“tissue”,GSE11223微陣列測序數(shù)據(jù)集[3],樣本通過Agilent-012391全人類基因組Oligo微陣列測序,平臺文件為GPL1708,包括了67例UC患者腸道不同解剖部位的上皮活檢分析,病理結(jié)果分為炎癥組織和非炎癥組織,剔除非炎癥組織。此外,該數(shù)據(jù)集還包含了31例正常對照組腸道不同解剖部位上皮組織樣本,剔除其中8個病理報告為假膜性結(jié)腸炎、例憩室炎、阿米巴病等[3]炎癥的組織樣本。

    1.2數(shù)據(jù)預(yù)處理 使用R軟件[4](version 4.0.3,http://r-project.org/)的affy包[5]分別讀取兩個數(shù)據(jù)集的原始數(shù)據(jù),通過RMA算法[6]分別進行背景校正、數(shù)據(jù)歸一化處理。然后在Bioconductor[7]應(yīng)用GPL1708平臺所對應(yīng)的基因注釋文件對探針矩陣進行注釋。將基因表達數(shù)據(jù)集是使用標準的注釋文件和數(shù)據(jù)上傳到CIBERSORT網(wǎng)站門戶[8](http://cibersort.stanford.edu/), CIBERSORT是一種基于基因表達的反卷積算法[9]中,對每個樣本以CIBERSORT值P<0.05為標準篩選,將過濾后的免疫細胞表達矩陣與 GEO的信息矩陣融合,并對UC的免疫細胞進行評價。

    1.3數(shù)據(jù)處理和免疫細胞浸潤的評估 在GSE11223微陣列中,原始樣本數(shù)目為202,從UC中剔除病理報告為非炎癥組織的樣本,獲得63個樣本;同時在正常對照組中,剔除病理報告為炎癥組織,獲得69個樣本,應(yīng)用CIBERSORT標準,P<0.05進行過濾,有44個UC樣本和31個正常樣本符合過濾條件。

    1.4統(tǒng)計學(xué)方法 使用R語言4.0.3版本,應(yīng)用arrayImpute、arraryMissPattern軟件包處理微陣列缺失值,因缺失數(shù)據(jù)很少,采用簡單插補,即用均值來替換變量中的缺失值。使用barplot函數(shù)繪制其22種浸潤免疫細胞的占比柱狀圖,應(yīng)用pheatmap包分別分析和繪制免疫細胞表達熱圖,采用vioplot包繪制小提琴圖,使用corrplot包繪制不同免疫細胞間的占比相關(guān)圖。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1樣本數(shù)據(jù)標準化 圖1為GSE11223中69個正常對照組樣本和63個UC組織樣本的基因表達量,用R 語言的ggplot2包和boxplot函數(shù)繪制未校正的原始箱式圖。隨后進一步應(yīng)用affy包和其中的rma函數(shù),其中normalize.method使用的quantiles方法,無需假設(shè)任何參數(shù),對差異表達基因數(shù)據(jù)進行標準化及處理,然后以箱式圖(圖2)呈現(xiàn),使得各個樣本數(shù)據(jù)處于相同的水平,從而得到具有生物學(xué)意義的基因表達量的變化情況。

    圖1 樣本未經(jīng)校正的原始箱式圖Fig.1 Uncorrected original box diagram of SamplesNote:The graph is GSE11223 in the normal control group (69 samples) and ulcerative colitis patients (63 samples)gene expression level of boxplot.

    圖2 樣本表達校正箱式圖Fig.2 Sample expression correction box diagramNote:The mean value of gene expression after sample normalization[10].

    2.2UC組織免疫細胞占比和含量分析 圖3和圖4聯(lián)合分析所示, 在UC組織中浸潤水平最高的10種免疫細胞類型分別是:幼稚B細胞、靜息狀態(tài)下記憶CD4+T細胞、活化的CD4+記憶性T細胞、M2巨噬細胞、M0巨噬細胞、M1巨噬細胞、CD8+T細胞、靜息狀態(tài)下的肥大細胞、激活的自然殺傷細胞、濾泡輔助性T細胞、調(diào)節(jié)性T細胞。

    圖3 GSE11223樣本中22種免疫細胞占比的柱狀圖Fig.3 Histogram of proportion of 22 kinds of immune cells in GSE11223 samples

    2.3對UC免疫細胞進行無監(jiān)督聚類分析 使用免疫細胞比例進行的無監(jiān)督聚類分析顯示了5個亞群,如圖4所示。細胞亞群1由樹突狀細胞(活化)、肥大細胞(活化)、自然殺傷細胞(靜息)、單核細胞、調(diào)節(jié)性T細胞構(gòu)成。細胞亞群2由活化的 CD4+記憶性T細胞、M1巨噬細胞、CD8+T細胞構(gòu)成。細胞亞群3由自然殺傷細胞(活化)、M2巨噬細胞、肥大細胞(靜息)組成。細胞亞群4由M0巨噬細胞、γδT細胞組成。細胞亞群5由幼稚B細胞、靜息狀態(tài)下記憶CD4+T細胞組成。研究表明,相對于細胞亞群3和細胞亞群4功能的失調(diào),細胞亞群1、細胞亞群2的活躍,上述主要細胞亞群的變化差異是UC的發(fā)生發(fā)展的直接原因。

    圖4 GSE11223樣本中22 種免疫細胞含量熱圖Fig.4 Heatmap of 22 immune cells in GSE11223 samplesNote:The blue control group represents the normal control group,and the red Treat group represents ulcerative colitis group.

    2.4免疫細胞在正常對照組和UC組的比例差異 與UC組織相比,在正常組織中,M2巨噬細胞、未活化的樹突狀細胞的比例普遍較高(P<0.05)。與正常組織相比,在UC組織中活化的 CD4+記憶性T細胞、調(diào)節(jié)性T細胞、單核細胞、中性粒細胞、M0巨噬細胞、活化的肥大細胞、未活化的肥大細胞的比例普遍較高(P<0.05),見圖5。

    圖5 樣本免疫細胞占比小提琴圖Fig.5 Proportion of immune cells in a violin diagramNote:Samples of normal control group and inflammatory tissue samples of patients with ulcerative colitis from GSE11223.Green represents normal control group,blue represents ulcerative colitis group.

    2.5UC組織免疫細胞的相關(guān)分析 圖6可見,在UC組織中,構(gòu)成比相關(guān)系數(shù)較大的免疫細胞包括:負相關(guān)的可見未活化的CD4+記憶性T細胞與CD8+T細胞(-0.5),未活化的CD4+記憶性T細胞與活化的CD4+記憶性T細胞(-0.43),幼稚B細胞與漿細胞(-0.52),幼稚B細胞與記憶B細胞(-0.49),幼稚B細胞與M1巨噬細胞(-0.49),M2巨噬細胞與M0巨噬細胞(-0.56),以上負相關(guān)提示活化的CD4+記憶性T細胞、CD8+T細胞與未活化的CD4+記憶性T細胞之間在UC疾病進程中相互抑制。正相關(guān)的可見活化的肥大細胞與活化的樹突細胞(0.64),活化的肥大細胞與中性粒細胞(0.47),活化的樹突細胞與中性粒細胞(0.42),上述正相關(guān)提示活化的樹突細胞、活化的肥大細胞、中性粒細胞三種免疫細胞在UC疾病過程中具有相互協(xié)同作用的關(guān)系。

    圖6 UC組織樣本中每種免疫細胞占比相關(guān)圖Fig.6 Correlation of proportion of each immune cell in ulcerative colitis tissue samples

    3 討論

    UC是一種慢性結(jié)腸特發(fā)性炎癥性腸病,可引起從直腸向近端結(jié)腸持續(xù)的黏膜炎癥,且炎癥程度不一,UC接受藥物治療的患者需要持續(xù)長時間應(yīng)用皮質(zhì)類固醇控制,因此解決UC免疫反應(yīng)成為當務(wù)之急。固有免疫是病原微生物入侵腸道黏膜的第一道防線。本研究從全人類基因組Oligo微陣列數(shù)據(jù)分析的角度開展。在正常組織中,巨噬細胞M2(P=0.014)、靜息樹突狀細胞(P=0.012)高表達。而UC參與固有免疫的特征性細胞有單核細胞(P=0.037)、巨噬細胞M0(P=0.001)、中性粒細胞(P=0.011),上述細胞初次與抗原接觸即能發(fā)揮效應(yīng),但無記憶性,也是特異性免疫的基礎(chǔ)。

    在談到特異性免疫時,樹突狀細胞一直被認為是體內(nèi)唯一能夠?qū)⒖乖岢式o初始狀態(tài)CD4+T細胞的抗原提呈細胞。樹突狀細胞轉(zhuǎn)化為適應(yīng)性免疫反應(yīng),活化的樹突狀細胞停留在上皮屏障附近,和黏膜固有層的巨噬細胞一起激活局部適應(yīng)性反應(yīng)[11]?,F(xiàn)在已有研究證實B細胞表達的Toll樣受體及其信號通路對CD4+T細胞的活化和分化發(fā)揮著關(guān)鍵作用,刷新了CD4+T細胞對抗病原微生物過程的反應(yīng)的認識[12]。

    圖7系統(tǒng)地展示了本研究的結(jié)果。在本項研究中,CD4+記憶性T細胞在UC與正常組織之間存在顯著差異(P<0.05),在UC組織中,CD4+記憶性T細胞的比例普遍高于正常組織。生理正常狀態(tài)下,CD4+記憶性T細胞是體液免疫中由B細胞分化而來的一種免疫細胞。CD4+記憶性T細胞在抗原二次感染細胞時,可直接增殖、分化產(chǎn)生效應(yīng)T細胞。CD4+記憶性T細胞可在人體內(nèi)存在數(shù)月,甚至幾十年,使人體避免受到相應(yīng)病原體的二次侵入。研究證實病理狀態(tài)下,腸道內(nèi)CD4+T細胞[13]、調(diào)節(jié)性T細胞浸潤,CD4+T細胞和調(diào)節(jié)性T細胞的基線百分比與UC結(jié)局相關(guān)[14]。 CD4記憶效應(yīng)T細胞,可以導(dǎo)致IL-7表達水平增高,誘導(dǎo)腸道黏膜固有層炎癥發(fā)生。而調(diào)節(jié)性T細胞的IL-8+Foxp3+細胞亞群在UC的微環(huán)境中,不僅抑制人體免疫反應(yīng),還可誘導(dǎo)關(guān)鍵的炎癥細胞因子,調(diào)動中性粒細胞聚集和轉(zhuǎn)運,中性粒細胞表達量的顯著差異,從側(cè)面支持了中性粒細胞在急性黏膜炎癥和損傷中扮演重要角色,由于大量炎癥細胞存在于結(jié)腸導(dǎo)致的隱窩膿腫[15-17]。甚至促進啟動潰瘍性大腸癌的發(fā)生。

    圖7 基于GSE11223微陣列數(shù)據(jù)集,UC免疫特征性細胞在固有性免疫及特異性免疫的差異表達Fig.7 Based on GSE11223 data set, characteristic cells in UC were differentially expressed in innate immuni-ty and specific immunityNote:① In UC tissue, antigen-presenting cells (dendritic cells, macrophages, B cells) react with naive CD4+T cells,which activated CD4+T cells (P<0.05); ②TLR signal expressed by B cells also promotes the activation of CD4+T cells;③CD4+ memory T cells showed significant difference between ulcerative colitis and normal tissue (P<0.05);④The characteristic expression of macrophage M2 is decreased in UC (P<0.05), considering that the polarization of M2 induced by PPAR is inhibited[26-29];⑤The characteristic cells involved in the innate immunity of UC are monocytes (P=0.037), macrophage M0 (P=0.001) and neutrophils (P=0.011).

    盡管目前有研究指出UC患者巨噬細胞表型向M1轉(zhuǎn)移,呈現(xiàn)高促炎細胞因子分泌,可增強細胞毒性和吞噬能力[18,19]。而本研究表明,M1巨噬細胞在UC與正常組織之間不存在顯著差異(P>0.05,圖5所示)。在UC組織中M0巨噬細胞的比例普遍較高(P<0.05)。而在UC組織中M2巨噬細胞的比例普遍較低(P<0.05)。在一項對兒童UC研究的芯片數(shù)據(jù)集GSE87473進行免疫細胞浸潤分析顯示[20],兒童UC中調(diào)節(jié)性T細胞、單核細胞、M0巨噬細胞和活化肥大細胞比例較高,而M2巨噬細胞和活化樹突狀細胞比例在UC的患者中較低,在該項研究中,M1巨噬細胞也不存在特征性差異,與本研究分析結(jié)果具有一致性。目前已知M2 巨噬細胞,參與了潰瘍性大腸癌腫瘤血管生成,在克隆恩病和結(jié)直腸癌中高表達,其發(fā)生機制為IL-4/IL-13和IL-10激活STAT3和STAT6時,增加巨噬細胞M2的極化水平有關(guān)[21-23]。但作為巨噬細胞M2的轉(zhuǎn)錄因子,PPARγ缺失均導(dǎo)致巨噬細胞M2極化受到抑制[24,25],目前也被認為是導(dǎo)致巨噬細胞M2在潰瘍性結(jié)腸炎中特征性低表達的原因之一[26-29]。

    本研究應(yīng)用生物信息學(xué)分析技術(shù),基于CIBERSORT研究方法,分析了正常結(jié)腸組織和UC組織的全人類基因組Oligo微陣列測序,它提供關(guān)于UC免疫細胞的明確信息。

    本研究結(jié)果表明,CD4+記憶性 T 細胞、巨噬細胞M2型、調(diào)節(jié)性T細胞和UC的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),而這些特征性免疫細胞可能是藥物治療作用效應(yīng)的重要決定因素,也是免疫治療評估的中心焦點,更能為UC患者的治療評估策略提供標志性參考。

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