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    萜類化合物在釀酒酵母中的合成生物學(xué)研究進(jìn)展

    2020-12-21 09:19:58李佳秀蔡倩茹吳杰群
    生物技術(shù)通報(bào) 2020年12期
    關(guān)鍵詞:合酶萜類輔酶

    李佳秀 蔡倩茹 吳杰群

    (浙江工業(yè)大學(xué)綠色制藥協(xié)同創(chuàng)新中心,杭州 310014)

    萜類化合物(Terpenoids)是自然界中普遍存在的最大類的天然產(chǎn)物,目前已鑒定得到的種類超過(guò)55 000多個(gè),占所有天然化合物的60%[1]。萜類化合物多樣性豐富,具有廣泛的生物學(xué)功能,作為代謝產(chǎn)物在細(xì)胞層面影響其組成和能量供應(yīng),作為激素等媒介因子影響生物體之間的拮抗和互生共生關(guān)系[2]。萜類化合物可以保護(hù)多種植物、動(dòng)物和微生物免受捕食者、病原體和競(jìng)爭(zhēng)者的攻擊,并參與生物種群中關(guān)于食物、配偶和敵人的信息傳達(dá)[3]。在過(guò)去幾十年中,由于其多樣的生物活性和極高的生物利用價(jià)值,萜類化合物已被廣泛用于醫(yī)藥和工業(yè)應(yīng)用領(lǐng)域,市場(chǎng)需求巨大[4-5]。

    目前,萜類化合物有以下3種生產(chǎn)方式:傳統(tǒng)提取法、化學(xué)合成法以及微生物合成法。由于大多數(shù)產(chǎn)業(yè)應(yīng)用規(guī)模化的萜類化合物為次級(jí)代謝產(chǎn)物,含量較低且分離過(guò)程復(fù)雜,從天然原料中提取的萜類化合物的產(chǎn)量難以滿足市場(chǎng)需求,且會(huì)消耗大量生物資源,對(duì)生態(tài)環(huán)境造成不可逆的影響[6]。例如,人參干燥根中人參皂苷的含量?jī)H為其干重的0.01%[7]。提取1 kg的紫杉醇需要砍伐數(shù)千株成熟紅豆杉,為提供一個(gè)癌癥病人所需的治療劑量需要犧牲2-4株成年樹[8]。同時(shí),由于萜類化合物本身結(jié)構(gòu)復(fù)雜,通過(guò)化學(xué)方法全合成復(fù)雜萜類化合物的路線繁瑣,反應(yīng)條件、原料較為苛刻,得率極低,同樣不能滿足工業(yè)生產(chǎn)需要。例如,紫杉醇的全合成需要35-51個(gè)步驟,最高產(chǎn)率僅0.4%[9]。微生物發(fā)酵生產(chǎn)萜類化合物具有成本低廉、綠色環(huán)保、生產(chǎn)效率高等優(yōu)勢(shì),近年來(lái)合成生物學(xué)的興起也使真核來(lái)源的復(fù)雜萜類化合物的微生物合成得以實(shí)現(xiàn)。

    合成生物學(xué)是一門綜合學(xué)科,它將工程方法與化學(xué)、生物學(xué)、數(shù)學(xué)和物理學(xué)等基礎(chǔ)科學(xué)方法相結(jié)合[10],在非自然化學(xué)系統(tǒng)中重現(xiàn)了生命系統(tǒng)遺傳和進(jìn)化的特性[11]。依托合成生物學(xué)技術(shù)平臺(tái),科學(xué)家們?cè)趶?fù)雜萜類化合物來(lái)源生物(微生物、植物和真菌)中收集與其生化途徑相關(guān)編碼酶的基因,對(duì)其修飾和改良后引入經(jīng)工程改造、適合生產(chǎn)的底盤細(xì)胞中,從而實(shí)現(xiàn)高價(jià)值萜類化合物的生物合成[6]??汞懠菜幬锴噍锼厍绑w青蒿酸在釀酒酵母中的高效異源表達(dá)就是合成生物學(xué)研究的標(biāo)志性成果[12-13]。目前,通過(guò)合成生物學(xué)與后續(xù)化學(xué)修飾工藝耦合,青蒿素的工業(yè)生產(chǎn)成本已與植物提取相當(dāng)。自此,關(guān)于微生物合成復(fù)雜萜類化合物研究的創(chuàng)新成果層出不窮。人參皂苷Rh2來(lái)源于人參屬植物,是一種癌癥預(yù)防及治療的候選藥物。Wang等[7]通過(guò)模塊化工程設(shè)計(jì)優(yōu)化了甲羥戊酸途徑以及人參皂苷P450酶的表達(dá)水平,構(gòu)建了高產(chǎn)人參皂苷糖苷配糖原二醇(Protopanaxadiol,PPD)的底盤細(xì)胞,從而提高了人參皂苷Rh2的產(chǎn)量(10 L發(fā)酵罐分批補(bǔ)料發(fā)酵產(chǎn)量為2.25 g/L)。青蒿素和人參皂苷僅是數(shù)以千計(jì)潛在的高價(jià)值萜類化合物中的兩種,合成生物學(xué)方法為合成多元化高價(jià)值萜類化合物提供了可持續(xù)的生產(chǎn)途徑,并為新化合物的發(fā)現(xiàn)開辟了新的可能性。

    釀酒酵母由于其遺傳操作便捷、培養(yǎng)成本低、抗噬菌體感染、具有真核表達(dá)修飾系統(tǒng)等特點(diǎn),被廣泛用于生產(chǎn)各種小分子和大分子化合物,是許多生物過(guò)程的首選底盤細(xì)胞[14-15]。近年來(lái),基因合成成本大幅降低[16],基因編輯技術(shù)不斷革新(如CRISPR/Cas系統(tǒng)的應(yīng)用[17]),合成生物學(xué)在生物技術(shù)工業(yè)中的應(yīng)用正在加速發(fā)展[18-19]。越來(lái)越多基于釀酒酵母底盤細(xì)胞的合成生物學(xué)策略應(yīng)用于高價(jià)值萜類化合物的生物合成。因此,本文將從優(yōu)化異戊二烯前體途徑酶、改造中央碳代謝、平衡競(jìng)爭(zhēng)途徑、異源表達(dá)細(xì)胞色素P450酶4個(gè)方面闡述在釀酒酵母底盤細(xì)胞中高價(jià)值萜類化合物的合成生物學(xué)的最新策略與進(jìn)展。

    1 優(yōu)化異戊二烯前體途徑相關(guān)酶

    萜類化合物定義為以2-甲基丁-1,3-二烯(又名異戊二烯,Isoprene)碳骨架為基本單元的碳?xì)浠衔锛捌溲苌?,其起源于前體物質(zhì)異戊烯基焦磷酸(Isopentenyl diphosphate,IPP)和二甲基烯丙基焦磷酸(Dimethylallyl diphosphate,DMAPP)[20]。IPP和DMAPP在不同生物體內(nèi)涉及兩種不同的途徑:在大多數(shù)原核生物和植物細(xì)胞質(zhì)體中,這些化合物通過(guò)甲基-D-赤蘚糖醇-4-磷酸(2-C-methyl-Derythritol 4-phosphate,MEP)途徑產(chǎn)生(圖1-A),而在大多數(shù)真核生物、古細(xì)菌和某些原核生物(具有核心類異戊二烯途徑模塊)中,其通過(guò)甲羥戊酸(Mevalonate,MVA)途徑產(chǎn)生(圖1-B)[21]。

    前體在代謝工程中是一個(gè)關(guān)鍵的限制因素,增加異戊二烯的前體供應(yīng)可以提高萜類化合物的產(chǎn)量。基于釀酒酵母內(nèi)源的甲羥戊酸途徑,增加前體DMAPP和IPP供應(yīng)的傳統(tǒng)策略是優(yōu)化MVA途徑相關(guān)酶(圖1-B)[22]。早期研究表明,MVA途徑中大多數(shù)結(jié)構(gòu)基因(ERG10、ERG13、HMGR、ERG12、ERG8、IDI1和ERG20)的過(guò)度表達(dá),都可以增加萜類化合物的產(chǎn)量[23]。此外,HMG1的N端截短版本(tHMG1)的過(guò)表達(dá)可催化其蛋白C端定位于細(xì)胞質(zhì),從而解除法尼基焦磷酸(Farnesyl pyrophosphate,F(xiàn)PP)的反饋抑制,可顯著增加角鯊烯的生產(chǎn)[24-25]。這種截短修飾被廣泛應(yīng)用于萜類化合物的生產(chǎn),例如檀香烯的生產(chǎn)[26]。組合設(shè)計(jì)是求解復(fù)雜代謝途徑最優(yōu)解的有效策略。Song等[27]結(jié)合啟動(dòng)子、整合拷貝數(shù)、染色體整合位點(diǎn)等因素,對(duì)于MVA途徑關(guān)鍵酶進(jìn)行組合洗牌優(yōu)化,可使香葉基香葉醇的產(chǎn)量提高至1 315.44 mg/L。

    除了內(nèi)源的MVA途徑,也有研究將異源的異戊二烯前體途徑引入釀酒酵母基因組中[28]。由于NADH需要氧氣氧化來(lái)維持氧化還原狀態(tài),而MEP途徑不會(huì)產(chǎn)生額外的NADH,因此導(dǎo)入異源MEP途徑相關(guān)酶(DXS、IspC~H等基因)的工程酵母能夠在低曝氣條件下僅依靠MEP途徑而不是MVA途徑來(lái)合成萜類化合物(圖1-A)[29]。將帶有線粒體靶向信號(hào)序列的MVA途徑基因整合到釀酒酵母基因組中,構(gòu)建得到具有天然的胞質(zhì)MVA途徑和工程的外源線粒體MVA途徑的釀酒酵母底盤細(xì)胞,其可以同時(shí)利用胞質(zhì)和線粒體乙酰輔酶A,可使工程酵母中異戊二烯的產(chǎn)量提升至2.5 g/L(圖1-C)[30]。

    圖1 萜類化合物的生物合成的前體途徑優(yōu)化策略

    2 提高乙酰輔酶A利用率的中心碳代謝研究進(jìn)展

    在酵母中,乙酰輔酶A(Acetyl-CoA)連接了中心碳代謝與甲羥戊酸途徑,是萜類化合物合成的重要代謝節(jié)點(diǎn)。酵母中的乙酰輔酶A合成途徑較為復(fù)雜,主要分為兩個(gè)部分:細(xì)胞質(zhì)中的乙酰輔酶A通過(guò)糖的分解代謝生成,其中涉及的酶為PDH旁路中的乙醛脫氫酶(ALD6)、乙酰輔酶A合成酶(ACS)及丙酮酸脫氫酶(PDC);線粒體中的乙酰輔酶A通過(guò)丙酮酸脫氫酶復(fù)合體(PDHC)產(chǎn)生,該途徑為細(xì)胞內(nèi)乙酰輔酶A的主要合成途徑。不同細(xì)胞器間生成的乙酰輔酶A沒(méi)有直接轉(zhuǎn)運(yùn)[31]。針對(duì)PDH旁路,過(guò)量表達(dá)乙醛脫氫酶(ALD6)、乙酰輔酶A合成酶(ACS)以及丙酮酸脫羧酶(PDC)是在酵母中增加乙酰輔酶A供應(yīng)的傳統(tǒng)策略(圖2-A),通過(guò)此策略可顯著提高紫穗槐二烯的產(chǎn)量[32]。

    真核細(xì)胞的代謝被劃分在不同的亞細(xì)胞器中,不同細(xì)胞器合成的乙酰輔酶A不能透膜,乙酰輔酶A主要在線粒體中通過(guò)PDHC復(fù)合體產(chǎn)生,但目標(biāo)代謝產(chǎn)物的生物合成通常在細(xì)胞溶膠中進(jìn)行。因此將線粒體中的PDHC復(fù)合體重建至胞漿具有重要意義(圖1-B),可以在不積累副產(chǎn)物乙醇、不依賴ATP的情況下增加胞內(nèi)乙酰輔酶A的供應(yīng)[33]。然而,由于PDHC復(fù)合體亞單位活化輔因子硫辛酸的生物合成定位于線粒體,PDHC復(fù)合體在胞漿中的重建具有挑戰(zhàn)性[34]。

    圖2 乙酰輔酶A的中央碳代謝優(yōu)化策略

    研究表明,天然乙酰輔酶A合成酶(ACS1、ACS2)對(duì)ATP的需求限制了MVA途徑下游產(chǎn)物的產(chǎn)量[33]。一項(xiàng)對(duì)途徑化學(xué)計(jì)量、自由能供應(yīng)和氧化還原平衡的研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)含有ATP依賴與ATP不依賴相關(guān)酶的乙酰輔酶A合成路線耦合時(shí),法尼烯的理論產(chǎn)率最高[35]。然而,要實(shí)現(xiàn)乙酰輔酶A合成在這兩條途徑之間的精確分布,需要先進(jìn)的合成生物學(xué)工具來(lái)平衡酶的相對(duì)表達(dá)水平和代謝通量?;仡櫧甑暮铣缮飳W(xué)進(jìn)展,該設(shè)想已經(jīng)實(shí)現(xiàn)。Meadows等[36]結(jié)合幾種策略來(lái)提高M(jìn)VA途徑的能量效率并降低細(xì)胞需氧量,最終使釀酒酵母發(fā)酵產(chǎn)生了體積分?jǐn)?shù)為15%的法尼烯。這些策略(圖1-C)包括異源表達(dá)5-磷酸木酮糖(X5P)特異性磷酸酮醇酶(xPK)和磷酸轉(zhuǎn)乙酰化酶(PTA),打通從X5P到乙酰輔酶A的通路,減少糖酵解帶來(lái)的碳損失;異源表達(dá)乙醛脫氫酶(ADA),降低ATP需求;通過(guò)敲除內(nèi)源RHR2等基因,下調(diào)細(xì)胞原有PDH旁路流量。這種人工構(gòu)建的非天然途徑將碳利用率(葡萄糖轉(zhuǎn)化為萜烯的比例)提高了20%,氧氣利用率提高至驚人的280%,使萜烯的工業(yè)生產(chǎn)成本大大降低,商業(yè)化規(guī)模生產(chǎn)變得可能。這也預(yù)示著中央碳代謝工程正處于一個(gè)高度活躍的領(lǐng)域,仍有許多針對(duì)于此的遺傳修飾可以嘗試,增加MVA途徑通量的潛力巨大。

    3 平衡競(jìng)爭(zhēng)途徑

    3.1 在C15節(jié)點(diǎn)上控制MVA路徑競(jìng)爭(zhēng)

    酵母MVA途徑提供了幾種重要代謝物質(zhì),例如麥角固醇、泛醌、法尼醇、血紅素A、多氫酚等[37]。其中麥角固醇由鯊烯合酶(ERG9)將兩個(gè)C15法尼基焦磷酸(FPP)分子縮合得到。由于青蒿素和法尼烯等C15類異戊二烯產(chǎn)品也需要FPP作為前體,目標(biāo)C15代謝產(chǎn)物合成與細(xì)胞自身生長(zhǎng)所需代謝產(chǎn)物合成之間存在直接競(jìng)爭(zhēng)關(guān)系[38]。通過(guò)更換啟動(dòng)子(替換為MET3p或CRT3p啟動(dòng)子)下調(diào)鯊烯合酶的表達(dá),可以減少FPP向甾醇路徑的通量(圖3-A)[39];通過(guò)將蛋白質(zhì)降解標(biāo)簽附著到角鯊烯合酶的C端,也可以成功地下調(diào)甾醇表達(dá),該方法使奈洛哌啶醇的滴度提高86%,產(chǎn)量達(dá)100 mg/L[40]。通過(guò)dCas9靶向MVA途徑的啟動(dòng)子來(lái)調(diào)控相關(guān)途徑酶的活化或抑制,實(shí)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄水平的精細(xì)調(diào)節(jié),從而控制通量流向,使得目標(biāo)產(chǎn)物胡蘿卜素的產(chǎn)量得到提升[41]。其他基因表達(dá)的動(dòng)態(tài)調(diào)控方法也已證明可用于控制酵母生長(zhǎng)與生產(chǎn)之間的競(jìng)爭(zhēng),但尚未應(yīng)用于類異戊二烯合成。例如,合成群體感應(yīng)[42]、RNA干擾[43]、合成雜交啟動(dòng)子[44]、合成應(yīng)激反應(yīng)啟動(dòng)子[45]、合成mRNA莖環(huán)結(jié)構(gòu)和核糖開關(guān)[46],以上策略都具有MVA途徑中的通量重定向潛力。

    3.2 C10和C20的異戊二烯磷酸代謝

    C10單萜具有多種用途,可作為香料和高級(jí)生物燃料。由于MVA途徑中沒(méi)有專用的C10前體合酶,天然通量都被“聚集”到C15的生產(chǎn)中。天然酵母FPP合酶(ERG20)是一個(gè)雙功能酶,它催化C5異構(gòu)體IPP和DMAPP縮合產(chǎn)生C10前體牻牛兒基焦磷酸(Geranyl diphosphate,GPP),同時(shí)GPP與IPP縮合生成C15前體FPP。ERG20的催化作用不會(huì)在GPP生成之后停止,導(dǎo)致GPP無(wú)法積累;同時(shí)FPP又是生物體內(nèi)必不可少的前體物質(zhì),因此傳統(tǒng)的通量重定向技術(shù)(例如基因敲除)是不可行的。為克服該問(wèn)題,Ignea等[47]使用各種蛋白質(zhì)工程技術(shù)成功地將天然FPP合酶(Erg20p)轉(zhuǎn)化為GPP合酶(Erg20pF96W-N127W),使檜萜的產(chǎn)量增加了340倍(圖3-B)。重要的是,工程改造的FPP合酶保留了低水平的FPP合成能力,使其具備麥角甾醇合成能力以支持細(xì)胞生長(zhǎng)。將蛋白質(zhì)降解標(biāo)簽K3K15與ERG20蛋白融合,同時(shí)結(jié)合甾醇應(yīng)答啟動(dòng)子進(jìn)行動(dòng)態(tài)反饋調(diào)節(jié),可使芳樟醇的產(chǎn)量提高27倍(圖3-C)[48]。通過(guò)引入異源橙花基焦磷酸(Neryl diphosphate,NPP)合成酶,構(gòu)建單萜化合物正交合成途徑,可以在不阻礙細(xì)胞生長(zhǎng)的情況下高水平生產(chǎn)單萜(圖3-D)[34]。Cheng等[49]提出了工程化正交檸檬烯生物合成(OLB)途徑的策略,該策略組合NPP合成酶、以NPP為底物的檸檬烯合成酶,在酵母中實(shí)現(xiàn)了檸檬烯的高效合成。Ignea等[50]在釀酒酵母中引入西紅柿來(lái)源的橙花基二磷酸合酶(NPPS)合成NPP,替換原始前體GPP,構(gòu)建酵母萜類化合物正交網(wǎng)絡(luò),并通過(guò)鑒定決定單萜合酶中的異構(gòu)底物選擇性的單一殘基F571,對(duì)5種不同的單萜合酶進(jìn)行改造,以更高的速率與特異性接受替代底物NPP,實(shí)現(xiàn)了單萜化合物的高效合成。

    C20二萜可形成結(jié)構(gòu)復(fù)雜的分子,例如抗癌藥前體紫杉二烯[51]和香紫蘇醇等[52]。盡管酵母中有內(nèi)源性香葉基焦磷酸(Geranylgeranyl diphosphate,GGPP)合酶(BTS1)生成C20前體,但它不能與ERG9和ERG20蛋白的催化作用進(jìn)行有效競(jìng)爭(zhēng),這意味著GGPP庫(kù)的通量相對(duì)較小。Ignea等[52]通過(guò)氨基酸替換的方法對(duì)ERG20中同源區(qū)域的活性位點(diǎn)進(jìn)行逆向進(jìn)化,從而將FPP合酶(Erg20p)轉(zhuǎn)化為GGPP合酶(Erg20pF96C),實(shí)現(xiàn)了二萜化合物的工業(yè)化生產(chǎn)(圖3-E)。

    圖3 競(jìng)爭(zhēng)路徑平衡策略

    4 細(xì)胞色素P450酶介導(dǎo)的萜類合成

    類異戊二烯的合成生物學(xué)的另一個(gè)新興領(lǐng)域是通過(guò)細(xì)胞色素P450介導(dǎo)的氧化修飾反應(yīng)生產(chǎn)復(fù)雜萜類化合物(例如抗瘧藥青蒿素、抗癌藥紫杉醇和抗癌/抗炎化合物丹參酮等)[53-54]。P450可催化多種氧化反應(yīng),包括向sp3雜化的碳原子引入氧原子、C=C雙鍵的環(huán)氧化、氮氧化、脫胺、脫鹵和脫烷基化。此外,P450還可以催化特殊的重排反應(yīng)以及C-C鍵的斷裂等其他反應(yīng)[55]。

    與大腸桿菌相比,酵母作為萜類化合物的合成生物學(xué)“底盤細(xì)胞”,具有獨(dú)特的優(yōu)勢(shì),因?yàn)樗骖櫫苏婧讼到y(tǒng)的功能性表達(dá)體系(可以表達(dá)復(fù)雜的真核蛋白,如細(xì)胞色素P450)和大規(guī)模微生物發(fā)酵的固有優(yōu)勢(shì)。目前,釀酒酵母已經(jīng)成功表達(dá)多種具有功能活性的植物來(lái)源的P450[56]。青蒿素在釀酒酵母中的半合成可以追溯到2006年[57],首先通過(guò)導(dǎo)入黃花苜蓿中的紫穗槐二烯合酶(ADS)、紫穗槐二烯氧化酶(細(xì)胞色素P450酶,CYP71AV1)及其同源還原酶(CPR1)至釀酒酵母中,合成得到高達(dá)100 mg/mL青蒿酸[58]。然而。前體紫穗槐二烯在酵母中的表達(dá)量(150 mg/L)與大腸桿菌(25 g/L)相比很低[13],紫穗槐二烯轉(zhuǎn)化為青蒿酸的能力也很差[53]。研究表明,高水平的青蒿酸生產(chǎn)與CYP71AV1及其同源還原酶的表達(dá)并非顯著相關(guān),而是需要另外3種植物酶CYB5、ADH1和ALDH1的聯(lián)合表達(dá)來(lái)提高產(chǎn)率。此外,CYP71AV1:CPR1的表達(dá)比例也很關(guān)鍵,通過(guò)降低CPR1的表達(dá),優(yōu)化CYP71AV1:CPR1的表達(dá)比例,可實(shí)現(xiàn)青蒿酸的高水平生產(chǎn)(圖4-A),其在2 L發(fā)酵罐中產(chǎn)量高達(dá)25 g/L[12]。

    實(shí)驗(yàn)室規(guī)模的紫穗槐二烯和青蒿酸生物合成的工作在2008年完成[12,23],而隨著青蒿酸轉(zhuǎn)化為青蒿素的化學(xué)工藝開發(fā),青蒿素的商業(yè)化生產(chǎn)也于2013年實(shí)現(xiàn)[13,59]。合成生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展使得研究者對(duì)P450酶的酶學(xué)信息的理解更加深入,打破了P450酶在微生物宿主中催化效率低、專一性差等困境,使得微生物高效合成復(fù)雜萜類化合物成為可能。此外,應(yīng)用其他來(lái)源細(xì)胞色素P450合成高價(jià)值萜類化合物也是該領(lǐng)域研究的熱點(diǎn)。例如,在酵母中引入大戟和麻瘋樹來(lái)源基因ElC9OX1和JcC5OX2與ADH共表達(dá),可促進(jìn)千金二萜烷重要前體Jolkinol C的生物合成(圖4-C)[60]。通過(guò)進(jìn)化樹分析,鑒定得到纈草中纈草酸合成所需P450酶VoCYP71DJ1,將其引入甲羥戊酸高表達(dá)的酵母菌株中,同時(shí)異源表達(dá)黃花蒿來(lái)源的脫氫酶AaADH1和AaALDH1,可成功合成倍半萜纈草酸(圖4-B)[61]。Grewal等[62]通過(guò)在酵母中異源表達(dá)P450酶CYP76AD1W13L、MjDOD、Mj-cDOPA5GT構(gòu)建得到甜菜堿生物全合成通路,效價(jià)為17 mg/ L(顯色強(qiáng)度與10 g/L甜菜根提取物相對(duì)應(yīng)),并可通過(guò)喂養(yǎng)不同的氨基酸使其呈現(xiàn)不同顏色。Sun等[63]通過(guò)計(jì)算機(jī)建模識(shí)別分析以及實(shí)驗(yàn)改造來(lái)源于植物的P450單加氧酶CYP72A63中影響其化學(xué)和區(qū)域選擇性的關(guān)鍵殘基,從而改變其催化特性,實(shí)現(xiàn)了4種稀有甘草三萜化合物的特異性合成。Dai等[64]通過(guò)轉(zhuǎn)錄組分析以及酵母代謝工程平臺(tái)篩選得到了一種來(lái)源于植物山楂果實(shí)的P450氧化酶CYP716C49,通過(guò)實(shí)驗(yàn)證明了酶具有廣泛的底物特異性,可用于五環(huán)三萜類化合物的C-2α位氧化。在迷迭香和一些鼠尾草物種的研究中,Bathe等[65]發(fā)現(xiàn)了兩組主要的細(xì)胞色素P450加氧酶,它們與松香烷二萜前體的氧化有關(guān),其中CYP76AHs產(chǎn)生鐵銹醇和11-羥基鐵銹醇,而CYP76AKs在其C20位催化氧化;通過(guò)使用模塊化的Golden-Gate酵母表達(dá)組裝系統(tǒng),系統(tǒng)地對(duì)這些酶進(jìn)行了單獨(dú)或組合的催化測(cè)試,共檢測(cè)到其催化產(chǎn)生了14種松香烷二萜,其中8種是目前為止尚未報(bào)道的新化合物。

    圖4 細(xì)胞色素P450酶介導(dǎo)的復(fù)雜萜類化合物的生物合成

    5 展望

    近年來(lái),合成生物學(xué)的迅猛發(fā)展為微生物工廠生產(chǎn)高效、可持續(xù)的高價(jià)值萜類化合物開辟了新的機(jī)遇。合成生物學(xué)結(jié)合多個(gè)科學(xué)學(xué)科知識(shí)與工程學(xué)原理,將不同功能模塊引入適合大規(guī)模生產(chǎn)的微生物底盤細(xì)胞,擴(kuò)展了原有生物系統(tǒng)生產(chǎn)高價(jià)值萜類化合物的可能性。應(yīng)用合成生物學(xué)新工具與新方法,使得萜類化合物微生物合成的傳統(tǒng)策略重放異彩,創(chuàng)新成果也層出不窮:如異戊二烯前體途徑的優(yōu)化不再每次只針對(duì)一種酶,而是通過(guò)合成生物學(xué)手段對(duì)其進(jìn)行組合優(yōu)化;細(xì)胞原有中央碳代謝的能量利用效率不高,則引入異源途徑進(jìn)行精密耦合;酶的定向進(jìn)化與修飾方法的成熟也顯著改善了目標(biāo)萜類化合物合成酶催化效率不高、專一性低等問(wèn)題,單萜二萜化合物的富集得以實(shí)現(xiàn),復(fù)雜萜類化合物的異源細(xì)胞色素P450酶也得以高效表達(dá)。

    盡管合成生物學(xué)還是一門年輕的學(xué)科,但隨著基因組裝、基因組編輯和數(shù)學(xué)建模技術(shù)的迅速發(fā)展,該領(lǐng)域正在迎來(lái)巨大的發(fā)展。這些進(jìn)展加速了天然產(chǎn)物復(fù)雜的代謝途徑在底盤細(xì)胞中的裝配過(guò)程,也縮短了合成生物學(xué)研究的設(shè)計(jì)-建造-測(cè)試周期。同時(shí),釀酒酵母作為常用的微生物工業(yè)生產(chǎn)菌株,在高價(jià)值萜類化合物的生物合成上顯現(xiàn)出了巨大的潛力。在可預(yù)見(jiàn)的將來(lái),釀酒酵母作為底盤細(xì)胞在高價(jià)值萜類化合物的生物合成工業(yè)上仍將保持其最前沿的位置。

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