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    高溫脅迫對(duì)黑木耳菌絲保護(hù)酶活性的影響

    2020-10-25 13:55:10馬銀鵬孔祥輝韓增華馬慶芳戴肖東劉佳寧張介馳張丕奇
    食用菌 2020年5期
    關(guān)鍵詞:菌絲體黑木耳菌絲

    馬銀鵬 孔祥輝 韓增華 馬慶芳 戴肖東 劉佳寧 張介馳 張丕奇

    (黑龍江省科學(xué)院微生物研究所,黑龍江哈爾濱150010)

    黑木耳(Auricularia heimuer)[1]營(yíng)養(yǎng)豐富,具有藥用價(jià)值,是一種珍貴的食藥用菌[2]。東北地區(qū)由于其獨(dú)特的冷涼氣候特點(diǎn),黑木耳色黑、肉厚、品質(zhì)佳,受到消費(fèi)者青睞[3]。目前,黑木耳栽培以全光地?cái)[栽培模式為主[4],環(huán)境的可控性差,整個(gè)生長(zhǎng)發(fā)育期間時(shí)常受到極端非生物脅迫影響。

    溫度、光照、濕度等環(huán)境因子均會(huì)影響食用菌菌絲體的正常生長(zhǎng),從而影響食用菌的產(chǎn)量和品質(zhì)[5]。溫度是影響食用菌生長(zhǎng)發(fā)育最活躍、最重要的因素[6]。高溫是導(dǎo)致食用菌產(chǎn)量降低和品質(zhì)下降的重要非生物脅迫因子之一,生物體對(duì)高溫脅迫的耐受性是其賴以生存和正常發(fā)育的重要特性[7-8]。

    高溫脅迫下,氧化應(yīng)激反應(yīng)引起活性氧(ROS)增加,ROS 氧化生物膜,形成脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物,損傷細(xì)胞[9]。超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、過氧化物酶(POD)等是重要的細(xì)胞保護(hù)酶系統(tǒng),抗氧化酶作用尤為突出[10]。劉秀明等[11]對(duì)肺形側(cè)耳高溫脅迫生理的研究表明,高溫脅迫導(dǎo)致菌絲內(nèi)ROS 顯著增加,抗氧化酶類活性均升高。郭敬等[12]研究發(fā)現(xiàn)高溫(35 ℃)和低溫(4 ℃)脅迫下白玉菇、杏鮑菇、真姬菇三種食用菌菌絲酶活性的動(dòng)態(tài)變化規(guī)律各有差異。黑木耳胞外酶活性研究已有報(bào)道,王玉江等[13]研究了黑木耳栽培過程中胞外酶活性變化;李紅等[14]研究了黑木耳栽培過程中抗霉能力及胞外酶活性變化。但是對(duì)于黑木耳高溫脅迫條件下黑木耳酶活性變化研究報(bào)道較少。

    為些,筆者研究高溫脅迫對(duì)黑木耳菌絲體POD、SOD、CAT 保護(hù)酶活性和MDA 含量的影響,以探討黑木耳菌絲體對(duì)高溫的生理反應(yīng),為耐高溫黑木耳菌株篩選奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    黑木耳菌株為DH2、10 號(hào)。DH2 菌株菌絲體較耐高溫,44 ℃熱激4 h后仍能恢復(fù)生長(zhǎng);10號(hào)菌株菌絲體不耐高溫,44 ℃熱激4 h 后不能恢復(fù)生長(zhǎng)。黑木耳菌株保藏于黑龍江省科學(xué)院微生物研究所菌種保藏中心。

    1.2 菌絲培養(yǎng)

    黑木耳菌株在培養(yǎng)皿中活化,活化后用1 cm 打孔器打孔,取接種塊接種于加鋪玻璃紙的PDA 平板上,28 ℃避光培養(yǎng)5 d、7 d 時(shí)分別收集菌絲體,培養(yǎng)7 d 時(shí)轉(zhuǎn)移到44 ℃培養(yǎng)箱中熱激4 h 后收集菌絲體,然后轉(zhuǎn)移到28 ℃培養(yǎng)箱中恢復(fù)培養(yǎng)3 d、5 d 后分別收集菌絲體。菌絲體分別收集于1.5 mL 離心管中,液氮速凍后于-70 ℃下保存。

    1.3 酶活性測(cè)定

    POD、SOD、CAT 活性及 MDA 含量均采用試劑盒測(cè)定,具體操作步驟按照試劑盒說明書。試劑盒購(gòu)自蘇州格銳思生物科技有限公司。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

    采用SPSS 16 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,采用單因素方差分析方法進(jìn)行顯著性分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 高溫脅迫對(duì)供試黑木耳菌株菌絲體POD 活性影響

    由圖1可知,DH2菌株菌絲培養(yǎng)5 d、7 d,POD活性變化不明顯。菌絲44 ℃熱激4 h 后,POD 活性呈先升高后降低趨勢(shì)。高溫脅迫后菌絲體POD 活性與培養(yǎng)7 d 時(shí)酶活性相比差異不顯著(P>0.05)。但是菌絲體恢復(fù)3 d(培養(yǎng)10 d)時(shí),POD 活性顯著升高,與熱激前酶活性相比差異顯著(P<0.05);菌絲體恢復(fù)5 d(培養(yǎng)12 d)時(shí),POD活性下降。

    10號(hào)菌株菌絲培養(yǎng)5 d、7 d時(shí),POD活性變化不明顯。菌絲44 ℃熱激4 h 后,POD 活性呈先升高后降低趨勢(shì)。高溫脅迫后菌絲體POD 活性與培養(yǎng)7 d時(shí)酶活性相比差異顯著(P<0.05)。但是菌絲體恢復(fù)3 d(培養(yǎng) 10 d)、5 d(培養(yǎng) 12 d)時(shí),POD 活性逐漸下降。

    圖1 高溫脅迫對(duì)供試黑木耳菌株菌絲體POD活性影響

    2.2 高溫脅迫對(duì)供試黑木耳菌株菌絲體SOD 活性影響

    由圖2可知,DH2菌株菌絲培養(yǎng)5 d、7 d時(shí),SOD活性變化不明顯。菌絲44 ℃熱激4 h 后,SOD 活性顯著升高,菌絲體恢復(fù)時(shí)SOD 活性降低。高溫脅迫后菌絲體SOD 活性與培養(yǎng)7 d 時(shí)酶活性相比差異顯著(P<0.05)。但是菌絲體恢復(fù)3 d(培養(yǎng)10 d)、5 d(培養(yǎng)12 d)時(shí),SOD活性下降至高溫脅迫前水平。

    圖2 高溫脅迫對(duì)供試黑木耳菌株菌絲體SOD活性影響

    10號(hào)菌株菌絲培養(yǎng)5 d、7 d時(shí),SOD活性變化不明顯。菌絲44 ℃熱激4 h 后,SOD 活性顯著升高,菌絲體恢復(fù)時(shí),SOD 活性降低。高溫脅迫后菌絲體SOD 活性與培養(yǎng)7 d 時(shí)酶活性相比差異顯著(P<0.05)。但是菌絲體恢復(fù)3 d(培養(yǎng)10 d)、5 d(培養(yǎng)12 d)時(shí),SOD活性下降至高溫脅迫前水平。

    2.3 高溫脅迫對(duì)供試黑木耳菌株菌絲體CAT 活性影響

    由圖 3 可知,DH2 菌絲培養(yǎng) 5 d 和 7 d 時(shí),CAT 活性變化不明顯。菌絲44 ℃熱激4 h 后,CAT 活性升高,菌絲體恢復(fù)時(shí)CAT 活性逐漸降低。高溫脅迫后菌絲體CAT 活性與培養(yǎng)7 d 時(shí)酶活性相比差異顯著(P<0.05)。但是菌絲體恢復(fù)3 d(培養(yǎng)10 d)和5 d(培養(yǎng)12 d)時(shí),CAT活性呈下降趨勢(shì)。

    10 號(hào)菌絲培養(yǎng) 5 d 和 7 d 時(shí),CAT 活性變化不明顯。菌絲44 ℃熱激4 h 后,CAT 活性升高,菌絲體恢復(fù)時(shí),CAT 活性逐漸降低。高溫脅迫后菌絲體CAT活性與培養(yǎng)7 d 時(shí)酶活性相比差異顯著(P<0.05)。但是菌絲體恢復(fù)3 d(培養(yǎng)10 d)、5 d(培養(yǎng)12 d)時(shí),CAT活性呈下降趨勢(shì)。

    圖3 高溫脅迫對(duì)供試黑木耳菌株菌絲體CAT活性影響

    2.4 高溫脅迫對(duì)供試黑木耳菌株菌絲體MDA含量影響

    由圖 4 可知,DH2 菌株菌絲培養(yǎng) 5 d、7 d 時(shí),MDA 含量變化不明顯。菌絲44 ℃熱激4 h 后,MDA含量上升,菌絲體恢復(fù)時(shí)MDA含量顯著升高后又降低。高溫脅迫后菌絲體MDA含量與培養(yǎng)7 d時(shí)含量相比差異不顯著(P>0.05)。但是菌絲體恢復(fù)3 d(培養(yǎng)10 d),MDA 含量顯著上升,與培養(yǎng)7 d 含量相比差異顯著(P<0.05)。

    10 號(hào)菌株菌絲培養(yǎng) 5 d、7 d,MDA 含量變化不明顯。菌絲44 ℃熱激4 h 后,MDA 含量顯著升高,菌絲體恢復(fù)時(shí),MDA 含量降低。高溫脅迫后菌絲體MDA 含量與培養(yǎng)7 d 時(shí)含量相比差異顯著(P<0.05)。但是菌絲體恢復(fù)3 d(培養(yǎng)10 d)和5 d(培養(yǎng)12 d)時(shí),MDA含量與高溫脅迫前基本一致。

    圖4 高溫脅迫對(duì)供試黑木耳菌株菌絲體MDA含量影響

    3 小結(jié)與討論

    在食用菌生長(zhǎng)發(fā)育過程中,高溫能導(dǎo)致食用菌菌絲細(xì)胞組織結(jié)構(gòu)損傷和生理代謝紊亂,從而造成食用菌菌絲生長(zhǎng)停滯甚至死亡。高溫脅迫下,細(xì)胞內(nèi)活性氧增加,導(dǎo)致細(xì)胞結(jié)構(gòu)損傷,多種保護(hù)酶發(fā)生應(yīng)激變化,以緩解高溫脅迫造成的傷害[15]。研究發(fā)現(xiàn),黑木耳菌絲44 ℃熱激處理4 h后,菌絲POD活性、SOD 活性、CAT 活性、MDA 含量上升。筆者研究與戚元成等[16]對(duì)40 ℃高溫脅迫下糙皮側(cè)耳(Pleurotus ostreatus)菌絲丙二醛含量、超氧化物歧化酶和過氧化物酶活性變化研究一致。因此,黑木耳菌絲中丙二醛含量、菌絲保護(hù)酶活性提高,能有效地清除各種活性氧基團(tuán),防止這些基團(tuán)對(duì)細(xì)胞膜系統(tǒng)的損壞,這對(duì)于維持生物細(xì)胞自由基處于較低水平有重要作用。

    研究發(fā)現(xiàn),供試兩個(gè)黑木耳菌株菌絲高溫脅迫后,菌絲體保護(hù)酶響應(yīng)時(shí)間有差異:DH2 菌株菌絲高溫脅迫后,SOD 活性、CAT 活性迅速上升,但是POD 活性、MDA 含量對(duì)高溫脅迫響應(yīng)較慢,POD 活性、MDA含量在菌絲恢復(fù)培養(yǎng)時(shí)升高。10號(hào)菌株菌絲高溫脅迫后,POD 活性、SOD 活性、CAT 活性和MDA 含量均迅速升高,表明10 號(hào)菌株對(duì)高溫脅迫較敏感。

    黑木耳菌絲高溫耐受性與菌絲保護(hù)酶響應(yīng)快慢是否有相關(guān)性需要進(jìn)一步研究,另外后續(xù)可開展高溫脅迫后熱激蛋白表達(dá)相關(guān)研究。

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