林穎 王燕燕 于放
摘 要:長春花(Catharanthus roseus)可以產(chǎn)生多種萜類吲哚生物堿,其中包括多種天然的抗癌藥物,但合成含量很低,茉莉酸信號通路可以調(diào)控這些萜類吲哚生物堿的生物合成,茉莉酸-異亮氨酸合成酶為茉莉酸信號通路中的關鍵元件。為了研究其功能,該文以長春花葉片為材料,分析了CrJAR1基因所編碼的氨基酸序列,并進行原核表達。結(jié)果表明:CrJAR1基因編碼了585個氨基酸,該蛋白不存在跨膜區(qū)域,定位于細胞質(zhì)中,且該蛋白不含有信號肽;進一步系統(tǒng)進化樹分析表明, 長春花CrJAR1與筍瓜和番木瓜的JAR1同源性最高;對二級、三級結(jié)構(gòu)進行預測,發(fā)現(xiàn)CrJAR1蛋白主要由α-螺旋構(gòu)成;同時,成功構(gòu)建了pET-30b-CrJAR1重組表達質(zhì)粒,并經(jīng)IPTG誘導后在大腸桿菌BL21中異源表達,經(jīng)16、37 ℃分別誘導至16 h后,均顯示出最高的表達量。綜上結(jié)果,對長春花中CrJAR1蛋白進行生物信息學分析,并成功在大腸桿菌中進行異源表達,這對體外該蛋白功能的研究具有深遠影響,為調(diào)節(jié)茉莉酸信號通路甚至調(diào)控長春花中次級代謝產(chǎn)物的生物合成提供了指導。
關鍵詞:長春花, 茉莉酸-異亮氨酸合成酶, 序列分析, 三級結(jié)構(gòu)預測, 原核表達
中圖分類號:Q943
文獻標識碼:A
文章編號:1000-3142(2020)08-1181-07
Abstract:Catharanthus roseus can produce a variety of terpeniod indole alkaloids, including a variety of natural anti-cancer, but the biosynthesis content is very low. The jasmonic acid signaling pathway regulates the biosynthesis of these terpeniod indole alkaloids. The jasmonic acid-isoleucine synthase is a key component in the jasmonic acid signaling pathway. In order to study its function, the amino acid sequence of CrJAR1 was analyzed, and prokaryotic expression was performed. Results had shown that the CrJAR1 gene encoded 585 amino acids, and the protein did not contain transmembrane structure. The subcellular localization analysis showed that the protein might be localized in the cytoplasm, and the protein did not contain signal peptide. Further phylogenetic tree analysis showed that the CrJAR1 had the highest homology with the JAR1 of the Cucurbita maxima and Carica papaya. The secondary and tertiary structures were predicted, and it was found that the CrJAR1 protein was mainly composed of α-helix. In addition, the recombinant expression plasmid pET-30b-CrJAR1 was constructed and successfully expressed in Escherichia coli BL21 after induction by IPTG. Induction at 16 and 37 ℃ after 16 hours, both showed the highest expression levels. In this paper, the bioinformatics analysis of CrJAR1 protein in Catharanthus roseus was successfully carried out and heterologously expressed in Escherichia coli. The study will have deep effect on research of CrJAR1 protein function in vitro, and provide instructive revelation for regulation of jasmonic acid signaling pathway, and even the regulation of the biosynthesis of secondary metabolites in Catharanthus roseus.
Key words: Catharanthus roseus, jasmonic acid-isoleucine synthase (JAR1), sequence analysis, prediction of tertiary structure, prokaryotic expression
茉莉酸(jasmonic acid,JA)是一種植物激素,它在植物體內(nèi)廣泛存在,是植物的生長調(diào)節(jié)物質(zhì)。在植物中,茉莉酸類物質(zhì)可以作為調(diào)節(jié)信號,通過積累次級代謝產(chǎn)物,從而調(diào)節(jié)植物的防御應答反應(杜紅梅等,2009)。茉莉酸及其衍生物能夠影響生物體內(nèi)多個基因的表達,從而影響植物次級代謝產(chǎn)物的積累(Vom et al., 2007)。當植物受到外源脅迫或內(nèi)源影響時,會產(chǎn)生相應的信號,這些信號可以促進植物體內(nèi)JA的生成,JA從過氧化物酶體中生成,而后被運送到細胞質(zhì)中,由茉莉酸-異亮氨酸合成酶(JAR1)作用形成茉莉酸-異亮氨酸(JA-Ile)。JA-Ile促進泛素連接酶復合物(SCFCOI1)與茉莉素ZIM結(jié)構(gòu)域蛋白(JAZ)形成復合物,當形成復合物后,26S蛋白酶就會把JAZ蛋白水解掉。JAZ蛋白被水解后,之前被抑制活性的轉(zhuǎn)錄因子MYC2就會被釋放出來,可以和下游靶基因的 G-box相結(jié)合,從而影響下游基因的表達,進而影響不同的次級代謝途徑,生成一系列次級代謝產(chǎn)物(Wasternack & Strnad,2015;Wasternack & Song,2016)。
長春花(Catharanthus roseus)是夾竹桃科長春花屬植物,其自身能夠產(chǎn)生超過130種萜類吲哚生物堿(terpeniod indole alkaloids,TIAs),其中包括目前應用最廣泛的天然植物抗腫瘤藥物長春堿(vinblastine)和長春新堿(vincristine),它們可用于治療惡性淋巴腫瘤、急性白血病等疾病,此外,長春花中的阿瑪堿(ajmalicine)可以起到降低血壓以及治療心臟等病癥(Li et al., 2013),而蛇根堿(serpentine)能夠止疼。長春質(zhì)堿(catharanthine)可以使血糖降低,并且還能夠消毒止血,同時還有利尿的功能,長春質(zhì)堿還是合成長春堿、長春新堿等生物堿的前體化合物(向蓓蓓等,2010)。但是由于這些萜類吲哚生物堿分布于長春花的不同組織器官中(Rischer et al., 2006),且含量很少,導致提取困難,且因結(jié)構(gòu)復雜,合成難度非常大,因此許多研究者是通過利用基因工程的手段來提高TIAs的產(chǎn)量(楊致榮等,2005)。而在長春花的茉莉酸信號通路中,螺旋-環(huán)-螺旋(bHLH)、AP2/ERFs和WRKY三個家族的轉(zhuǎn)錄因子都參與調(diào)控了TIAs的生物合成,其中,CrMYC2是通過與AP2/ERFs轉(zhuǎn)錄因子家族中的ORCA2/3啟動子上的 G-box 相似元件相結(jié)合,從而激活了轉(zhuǎn)錄因子基因的表達,進而調(diào)控了大多數(shù)TIAs的生物合成途徑(Zhang et al., 2011)。
JAR1作為茉莉酸信號的重要元件,它能夠形成JA-Ile,在植物次生代謝調(diào)節(jié)方面具有非常重要的作用,但是目前對于長春花中CrJAR1蛋白的研究還很少。本課題組在前期工作中成功地克隆了長春花中的JAR1基因(徐巖等,2017),即CrJAR1,并且在長春花葉片中過表達了CrJAR1,發(fā)現(xiàn)顯著提高了合成長春質(zhì)堿和文多靈途徑中相關關鍵酶基因的表達量,并且促進了文多靈和長春質(zhì)堿的積累。為了進一步研究長春花中CrJAR1蛋白在茉莉酸信號通路中的功能以及對下游TIAs的生物合成的影響,本研究將CrJAR1進行原核細胞表達,初步確定了表達條件,并對該蛋白的氨基酸序列以及其結(jié)構(gòu)進行了分析。這為體外研究JAR1功能、深入研究茉莉酸信號通路調(diào)控次級代謝產(chǎn)物的生成具有重要意義。
1 材料與方法
1.1 材料和試劑
采取野生型長春花葉片為材料。pET-30b載體和大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細胞均為本實驗室保藏。TRNzol Reagent 試劑、RNase free DNase I、TIAN Script M-MLV 反轉(zhuǎn)錄酶、pGM-T 載體、普通瓊脂糖凝膠 DNA 回收試劑盒購自天根生化科技有限公司;Prime STAR酶、ExTaq 酶、限制性核酸內(nèi)切酶(Kpn I、Sac I)、T4 DNA 連接酶購自 Takara 公司;瓊脂糖凝膠購自美國 Promega 公司;其他試劑如乙醇、氯仿、異丙醇等均購自北京化工廠。
1.2 長春花CrJAR1蛋白的氨基酸序列分析
長春花CrJAR1基因的克隆在本實驗室的前期已經(jīng)完成(徐巖等,2017)。通過 ExPASy Protemics Server提供的在線軟件 ProtParam(https://web.expasy.org/cgi-bin/protparam/)分析CrJAR1蛋白的氨基酸組成,并且預測CrJAR1基因編碼的蛋白質(zhì)的理化性質(zhì),通過InterPro Scan (http:/ /www.ebi.ac.uk/ interpro/) 來分析蛋白質(zhì)的保守區(qū)域。分別使用 TargetP 1.1 Server (http://www.cbs.dtu.dk/services/TargetP/)和SignalP 4.1 server(http:/ /www.cbs.dtu.dk/services/ SignalP /)及TMHMM (http:/ /www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/) 分析長春花CrJAR1蛋白的亞細胞定位、是否含有信號肽以及跨膜區(qū)域,通過MEGA 5.1 軟件的UPGMA法構(gòu)建系統(tǒng)進化樹,使用在線軟件SOPMA(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/secpred_sopma.pl)預測CrJAR1蛋白的二級結(jié)構(gòu),使用SWISS-MODEL(https://swissmodel.expasy.org/ interactive/RR9Bez/models/)預測三級結(jié)構(gòu)。
1.3 pET-30b-CrJAR1重組質(zhì)粒的構(gòu)建
利用限制性核酸內(nèi)切酶Kpn I和Sac I對pGM-T- CrJAR1質(zhì)粒和pET-30b載體進行雙酶切,37 ℃恒溫培養(yǎng)3 h,使用1%的瓊脂糖凝膠電泳進行分離。將酶切后的CrJAR1基因片段和pET-30b載體進行膠回收,通過T4 DNA 連接酶連接,連接體系:10×T4 DNA Ligantion Buffer 1 μL,回收的pET-30b載體3 μL,酶切后的CrJAR1 5 μL,T4 DNA Ligase 1 μL。在4 ℃連接24 h。將連接產(chǎn)物pET-30b-CrJAR1轉(zhuǎn)化到大腸桿菌XL-10Gold超級感受態(tài)細胞中。將連接產(chǎn)物pET-30b-CrJAR1加入到大腸桿菌XL-10Gold超級感受態(tài)細胞中,冰上放置5 min,42 ℃水浴30 s,冰上放置10 min,加入700 μL新鮮LB培養(yǎng)基,180 r·min-1 37 ℃震蕩1 h后,4 000 r·min-1離心3 min,涂布于平板上。挑取單菌落,并利用CrJAR1引物進行菌落PCR驗證,確定陽性克隆,并將正確的樣品進行測序驗證。
1.4 蛋白的誘導表達與SDS-PAGE檢測
將測序正確的陽性克隆接入50 mL LB培養(yǎng)基中,37 ℃復蘇,并以2%的接入量接入200 mL LB培養(yǎng)基中,37 ℃震蕩培養(yǎng)至OD600為0.6左右時,加入IPTG,終濃度分別為0.4、1 mmol·L-1,分別在16、37 ℃下誘導培養(yǎng),分別收集不同時間的表達產(chǎn)物(0、2、4、8、16 h)。分別配制分離膠和濃縮膠,首先配制濃度為10% 的分離膠,再配制濃度為5%的濃縮膠,進行電泳時,在濃縮膠部分,首先保持電壓為80 V,當?shù)竭_分離膠以后,調(diào)整電壓,使電壓保持在120 V,當樣品至分離膠底部時,關閉電源,將分離膠取出,用考馬斯亮藍進行染色,脫色后檢驗。
2 結(jié)果與分析
2.1 長春花CrJAR1氨基酸序列分析
長春花CrJAR1基因編碼585個氨基酸(圖1),通過 ExPASy Protemics Server提供的在線軟件 ProtParam預測分析CrJAR1基因所編碼的蛋白質(zhì)的一些基本理化性質(zhì),推測CrJAR1蛋白的分子量為65.95 kD,等電點pI為5.73,分子式為C2959H4614N772O880S27,帶正電荷的殘基(Arg+Lys)總數(shù)為65,帶負電荷的殘基(Asp+Glu)總數(shù)為75,脂肪指數(shù)為83.97,親水性為-0.254,不穩(wěn)定指數(shù)為40.02,這將CrJAR1蛋白歸類為不穩(wěn)定蛋白。通過使用InterPro Scan分析 CrJAR1蛋白,其結(jié)果顯示 CrJAR1蛋白含有保守結(jié)構(gòu)域,位于第19~560氨基酸處(茉莉酸酰胺合成酶,IPR031110),并且CrJAR1蛋白屬于GH3家族。
JAR1系統(tǒng)進化樹分析結(jié)果如圖2所示。從圖2可以看出,長春花與筍瓜和番木瓜的JAR1蛋白的親緣關系比較近。SignalP 4.1 server預測結(jié)果表明CrJAR1蛋白不含有信號肽,且不存在跨膜區(qū)域。通過使用TargetP 1.1 Server分析長春花CrJAR1蛋白的亞細胞定位,其中葉綠體的定位系數(shù)為0.124,線粒體的定位系數(shù)為0.086,其他位置為0.912,因此該蛋白可能位于細胞質(zhì)中。進一步利用SOPMA預測,發(fā)現(xiàn)α-螺旋占41.88%,不規(guī)則卷曲占38.8%,表明它們構(gòu)成了蛋白的主要結(jié)構(gòu),其次還包括部分延伸鏈(14.36%)和少部分β-轉(zhuǎn)角(4.96%)分散在蛋白質(zhì)中。SWISS-MODEL預測CrJAR1蛋白的三級結(jié)構(gòu),如圖3所示,以CrJAR1蛋白的同源模型5ech.2.A,在第10~584位氨基酸建模,其模型覆蓋率為 64.51%。
2.2 原核表達載體重組質(zhì)粒的構(gòu)建
通過Kpn I和Sac I對測序正確的pGM-T- CrJAR1質(zhì)粒和pET-30b載體進行雙酶切,分別回收載體片段和CrJAR1片段,通過T4 DNA 連接酶進行連接,構(gòu)建pET-30b-CrJAR1原核表達載體,并轉(zhuǎn)化到大腸桿菌XL-10Gold超級感受態(tài)細胞中。挑取單克隆菌落,經(jīng)過PCR驗證后,在1 700 bp左右存在明顯條帶。提取質(zhì)粒后,用Kpn I和Sac I進行雙酶切,其結(jié)果如圖4所示,結(jié)果正確。將該菌液送至北京華大基因進行測序,測序結(jié)果與前期克隆CrJAR1基因的結(jié)果一致,證明pET-30b-CrJAR1原核表達載體構(gòu)建成功。
2.3 重組蛋白的原核表達與SDS-PAGE 分析
將pET-30b-CrJAR1轉(zhuǎn)入BL21表達宿主中,復蘇后擴大培養(yǎng)至200 mL LB培養(yǎng)基中,待OD600為0.6左右時,取出2 mL菌液作為0 h樣品,然后分別加入終濃度0.4、1 mmol·L-1 IPTG在16、37 ℃誘導條件誘導表達,并且在2、4、8、16 h四個時間點分別收集菌液。通過SDS-PAGE分析蛋白表達情況。如圖5所示,在70和50 kD 之間有明顯條帶,與CrJAR1蛋白的分子量65.95 kD相近,并且在16、37 ℃兩種溫度誘導條件下,隨著誘導時間的增加,條帶明顯加深,表明隨著誘導時間的增加,CrJAR1蛋白的表達量越來越多。上述研究為后續(xù)純化以及體外研究提供一定依據(jù)。
3 討論與結(jié)論
茉莉酸-異亮氨酸合成酶 (JAR1)的功能在許多植物中都有所報道,其作為茉莉酸信號通路中的關鍵酶,在調(diào)控茉莉酸信號方面起著十分重要的作用(Chen et al., 2018)。在茉莉酸信號通路中,茉莉酸通過腺苷化與異亮氨酸共價結(jié)合形成茉莉酸-異亮氨酸,從而開啟下游的信號傳導途徑,其JAR1關鍵酶的作用機理分為以下三個部分:腺苷化;共價結(jié)合;抗性基因表達的誘導(Shen et al., 2016)。長春花作為一種天然的抗癌抗腫瘤藥物,其本身含有多種萜類吲哚生物堿,但由于這些生物堿在長春花中的合成含量甚少(Pandey et al., 2016),其合成量遠遠小于需求量,所以近年來對于萜類吲哚生物堿的合成途徑的研究越來越多(Caputi et al., 2018)。其中,針對茉莉酸信號調(diào)節(jié)長春花中萜類吲哚生物堿的合成的相關研究還很少。在使用外源激素處理植物時,適宜的濃度和處理時間可以使產(chǎn)物大量合成,但濃度過高或處理時間過長則會使產(chǎn)量下降(乞永艷等,2006),并且大量使用外源激素成本較高,且易造成環(huán)境污染。但通過基因工程的手段來影響相關基因的表達,則可以避免這些問題,并且可以提高長春花中次級代謝產(chǎn)物的產(chǎn)量,因此,成功克隆并且了解合成JA-Ile途徑中的關鍵酶基因,對于目前的生產(chǎn)和研究來說是十分重要的。本實驗室的前期研究發(fā)現(xiàn)可以通過對茉莉酸信號通路的級聯(lián)放大來增加長春花中萜類吲哚生物堿的生物合成(徐巖等,2017),但對于CrJAR1蛋白的功能研究尚不完全。本研究克隆了長春花中的CrJAR1基因,并確定該基因編碼585個氨基酸,并且對長春花CrJAR1蛋白進行了生物信息學分析。經(jīng)過亞細胞定位分析,預測出該蛋白可能定位于細胞質(zhì)中,表明CrJAR1蛋白是在細胞質(zhì)中發(fā)揮功能的(Wasternack & Strnad,2015;Wasternack & Song,2016)。經(jīng)過對CrJAR1蛋白的保守結(jié)構(gòu)域進行預測,發(fā)現(xiàn)該蛋白含有茉莉酸酰胺合成酶保守的結(jié)構(gòu)域,屬于GH3家族成員,并且通過進化樹分析發(fā)現(xiàn)長春花CrJAR1蛋白與筍瓜和番木瓜的JAR1蛋白的親緣關系比較近,表明CrJAR1蛋白可能是在長春花的茉莉酸信號途徑中合成JA-Ile的關鍵酶。構(gòu)建重組質(zhì)粒pET-30b-CrJAR1,并且成功在大腸桿菌BL21中異源表達CrJAR1蛋白。通過不同濃度IPTG在不同溫度下進行誘導,發(fā)現(xiàn)誘導表達16 h后,CrJAR1蛋白表達量最高。此外,該酶體外功能驗證也在進行。盡管如此,現(xiàn)階段的研究仍有助于我們深入研究長春花中茉莉酸生物合成途徑以及信號傳導機制,并為研究長春花中次級代謝產(chǎn)物的生物合成提供依據(jù)。
目前對于長春花中次級代謝產(chǎn)物的研究主要集中在次級代謝產(chǎn)物的合成途徑上,但仍然有很多方面的因素可以影響次級代謝產(chǎn)物的生成,如內(nèi)源外源的刺激以及多種植物激素如茉莉酸、水楊酸等的調(diào)控(Goldhaber et al., 2014)等,因此,我們將繼續(xù)對長春花中茉莉酸-異亮氨酸合成酶的功能以及茉莉酸信號通路中其他重要的信號調(diào)節(jié)因子進行研究,進一步探討它們對次級代謝產(chǎn)物合成的影響,為后續(xù)的研究奠定理論基礎。
參考文獻:
CAPUTI L, FRANKE J, FARROW SC, et al., 2018. Missing enzymes in the biosynthesis of the anticancer drug vinblastine in Madagascar periwinkle [J]. Science, 360:1235-1239.
CHEN HJ, FU TY, YANG SL, et al., 2018. FIN219/JAR1 and cryptochrome1 antagonize each other to modulate photomorphogenesis under blue light in Arabidopsis [J]. PLoS Genet, 14(3):e1007248.
DU HM, TANG DM, HUANG DF, 2009. Effects of methyl jasmonate on in vitro tuberization of taro (Colocasia esculenta) ?[J]. J Shanghai Jiaotong Univ(Agric Sci), 27(5):480-484. ?[杜紅梅,唐東梅,黃丹楓,2009. 茉莉酸甲酯對芋試管成球的影響 [J]. 上海交通大學學報(農(nóng)業(yè)科學版),27(5):480-484.]
GOLDHABER GD, MUSTAFA NR, VERPOORTE R, 2014. Jasmonic acid effect on the fatty acid and terpenoid indole alkaloid accumulation in cell suspension cultures of Catharanthus roseus [J]. Molecules, 19(7):10242-10260.
LI CY, LEOPOLD AL, SANDER GW, et al., 2013. The ORCA2 transcription factor plays a key role in regulation of the terpenoid indole alkaloid pathway [J]. BMC Plant Biol, 13:155-171.
PANDEY SS, SINGH S, BABU CS, et al., 2016. Fungal endophytes of Catharanthus roseus enhance vindoline content by modulating structural and regulatory genes related to terpenoid indole alkaloid biosynthesis [J]. Sci Rep, 6:26583.
QI YY, BOVY A, TANG YX, 2006. Effects of exogenous jasmonic acid on isoflavonoids in Glycine max [J]. Soybean Sci, 25(1):87-90. [乞永艷,Arnaud Bovy,唐益雄,2006. 外源茉莉酸對大豆異黃酮的影響 [J]. 大豆科學,25(1):87-90. ]
RISCHER H, ORESIC M, LAAKSO TS, et al., 2006. Gene-to-metabolite networks for terpenoid indole alkaloid biosynthesis in Catharanthus roseus cells [J]. PNAS, 103(14):5614-5619.
SHEN Q, LU X, YAN TX, et al., 2016. The jasmonate-responsive AaMYC2 transcription factor positively regulates artemisinin biosynthesis in Artemisia annua [J]. New Phytol, 210:1269-1281.
TANG Q, MA XJ, MO CM, et al., 2011. An efficient approach to finding Siraitia grosvenorii triterpene biosynthetic genes by RNA-seq and digital gene expression analysis ?[J]. BMC Genomics, 12:343-355.
VOM ED, SOARES SM, KIJNE JW, et al., 2007. Identification of a bipartite jasmonate-responsive promoter element in the Catharanthus roseus ORCA3 transcription factor gene that interacts specifically with AT-hook DNA-binding proteins [J]. Plant Physiol, 144:1680-1689.