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    多酶催化串聯(lián)策略在復(fù)雜天然產(chǎn)物合成中的應(yīng)用

    2020-08-07 05:53:06賀俊斌孟松潘海學(xué)唐功利
    合成生物學(xué) 2020年2期
    關(guān)鍵詞:途徑生物

    賀俊斌,孟松,潘海學(xué),唐功利

    (中國(guó)科學(xué)院上海有機(jī)化學(xué)研究所,生命有機(jī)化學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海200032)

    結(jié)構(gòu)新穎、復(fù)雜多樣的天然產(chǎn)物及其衍生物一直以來(lái)都是現(xiàn)代藥物的重要組成部分和新藥發(fā)現(xiàn)的重要源泉。研究表明,在1981—2014 年間上市的1500 多種小分子藥物中,超過(guò)50%的藥物直接或間接來(lái)源于天然產(chǎn)物及其衍生物,包括著名的抗瘧藥青蒿素和抗腫瘤藥紫杉醇[1]。然而,傳統(tǒng)的從植物、微生物及動(dòng)物中提取分離天然產(chǎn)物的方法往往存在步驟繁瑣、耗時(shí)長(zhǎng)、成本高、提取效率低等問(wèn)題,一定程度上制約了新型藥物的研發(fā)[2-3]。因此,人工合成具有重要生物活性、結(jié)構(gòu)復(fù)雜、新穎的天然產(chǎn)物具有重要意義。

    天然產(chǎn)物全合成主要包括化學(xué)合成和生物合成。自1828 年德國(guó)化學(xué)家W?hler 實(shí)現(xiàn)尿素的合成以來(lái)[4],天然產(chǎn)物的化學(xué)全合成取得了輝煌的成就,化學(xué)家們不斷挑戰(zhàn)合成結(jié)構(gòu)復(fù)雜的天然產(chǎn)物,完成了包括維生素B12、??舅?、軟海綿素等一系列具有里程碑意義的全合成工作[5-9]。盡管人們能夠設(shè)計(jì)合成自然界存在的幾乎任何天然化合物,甚至可以合成理論存在但自然界尚未發(fā)現(xiàn)的設(shè)想的理論分子,但在一些含有多手性中心、結(jié)構(gòu)復(fù)雜的天然產(chǎn)物化學(xué)全合成過(guò)程中也存在一些問(wèn)題,如合成步驟繁瑣(通常幾十步)、產(chǎn)率低(通常<1%)、產(chǎn)物選擇性不強(qiáng)、反應(yīng)條件劇烈、需要昂貴試劑或所用有機(jī)溶劑易造成污染、難以實(shí)現(xiàn)大量合成等[10-11]。近年來(lái),隨著高通量測(cè)序技術(shù)、生物信息學(xué)、分子生物學(xué)等技術(shù)的發(fā)展,天然產(chǎn)物生物合成取得了巨大的進(jìn)展。以合成生物學(xué)、酶催化合成、組合生物合成為主的生物合成為復(fù)雜天然產(chǎn)物的全合成提供了有效策略[12-16]。其中,體外酶催化合成因其具有催化效率高、反應(yīng)選擇性強(qiáng)、產(chǎn)物專一性強(qiáng)、反應(yīng)條件溫和、綠色環(huán)保等優(yōu)點(diǎn)[17-20],吸引了研究人員的關(guān)注。本文作者介紹了近年來(lái)采用體外酶催化方法合成復(fù)雜天然產(chǎn)物的相關(guān)研究進(jìn)展,重點(diǎn)介紹了多酶催化串聯(lián)法在復(fù)雜天然產(chǎn)物合成中的應(yīng)用研究進(jìn)展以及目前存在的問(wèn)題和解決對(duì)策。

    1 多酶催化串聯(lián)法合成復(fù)雜天然產(chǎn)物

    串聯(lián)反應(yīng)提供了一種新的合成思路,其體系是一套經(jīng)過(guò)精心設(shè)計(jì)的反應(yīng)系統(tǒng),每一步反應(yīng)的產(chǎn)物都作為下一步反應(yīng)的底物,在整個(gè)反應(yīng)體系中初始底物經(jīng)過(guò)逐步催化后,會(huì)最終轉(zhuǎn)化為結(jié)構(gòu)復(fù)雜的功能分子。在復(fù)雜天然產(chǎn)物的全合成中設(shè)計(jì)串聯(lián)反應(yīng)體系具有可以節(jié)省原料、溶劑及催化劑用量、減少反應(yīng)時(shí)間、無(wú)需進(jìn)行每步反應(yīng)之間的分離純化步驟等眾多優(yōu)點(diǎn)[21]。因此,串聯(lián)反應(yīng)體系已成為天然產(chǎn)物全合成中的重要合成策略。

    酶催化串聯(lián)反應(yīng)源于大自然中生命有機(jī)體為了維持生命過(guò)程而進(jìn)化出的各種代謝通路。本質(zhì)上,大自然中的生命體便是一個(gè)復(fù)雜精妙的一鍋多酶串聯(lián)體系,在這個(gè)串聯(lián)系統(tǒng)中,酶作為催化劑,在多個(gè)區(qū)間分別參與進(jìn)行不同的代謝合成反應(yīng),多步反應(yīng)環(huán)環(huán)相扣,最終形成結(jié)構(gòu)復(fù)雜、多種多樣的生物活性分子(天然產(chǎn)物)[22-24]。體外酶催化串聯(lián)反應(yīng)可以分為一鍋串聯(lián)、一鍋分步串聯(lián)以及分步串聯(lián)。一鍋串聯(lián)反應(yīng)步驟簡(jiǎn)單、無(wú)需分離中間體產(chǎn)物、合成效率高,但有時(shí)體系中存在的輔因子或產(chǎn)生的副產(chǎn)物可抑制某些酶的活性。對(duì)此,可采用一鍋分步串聯(lián)或分步串聯(lián)進(jìn)行解決。然而,一鍋分步串聯(lián)步驟相對(duì)繁瑣,需要目標(biāo)中間體產(chǎn)物產(chǎn)生后,才能進(jìn)行下一步串聯(lián)反應(yīng)。此外,分步串聯(lián)需要中間體產(chǎn)物的分離純化,且耗時(shí)較長(zhǎng)。但不管哪種串聯(lián)方式,相比于化學(xué)催化劑,酶作為催化劑的多酶催化串聯(lián)體系往往具有催化效率高、毒性小、反應(yīng)條件簡(jiǎn)單溫和以及容易控制、選擇性強(qiáng)(化學(xué)、立體和區(qū)域)、產(chǎn)物構(gòu)型專一、省時(shí)環(huán)保等特點(diǎn),因而在藥物、精細(xì)化工品、食品、農(nóng)化產(chǎn)品等的合成生產(chǎn)中得到了廣泛的應(yīng)用[17-19,23,25-26]。隨著測(cè)序技術(shù)、生物信息學(xué)、分子生物學(xué)、遺傳操作等技術(shù)的發(fā)展,近年來(lái)越來(lái)越多結(jié)構(gòu)復(fù)雜的天然產(chǎn)物的生物合成途徑得到解析,在此基礎(chǔ)上研究者們也采用多酶催化串聯(lián)法成功合成了許多具有重要活性的天然產(chǎn)物。本節(jié)就近年來(lái)多酶催化串聯(lián)策略在復(fù)雜天然產(chǎn)物合成中的應(yīng)用作一介紹。

    1.1 聚酮類化合物

    腸道菌素(enterocin,1)是由日本科學(xué)家于1975年分離于鏈霉菌(Streptomycessp.)的一種聚酮類抗生素,具有良好的抗菌活性[27]。隨后人們從海洋微生物S.maritimus中也分離得到腸道菌素(1)以及聚酮類化合物wailupemycins[28]。Moore課題組[28-30]一直從事腸道菌素(1)的生物合成途徑、體外酶催化合成以及類似物合成研究,通過(guò)異源表達(dá)生物合成基因簇、基因敲除以及體外酶催化實(shí)驗(yàn)成功解析了腸道菌素(1)的生物合成途徑。腸道菌素(1)的生物合成來(lái)源于1 分子的苯甲酸(benzoic acid)和7 分子的丙二酸單酰輔酶A(malonyl-CoA),其生物合成基因簇中并不包括編碼環(huán)化酶或芳香化酶的基因,而是包含一個(gè)編碼黃素依賴的氧化酶基因(encM),該基因負(fù)責(zé)催化類Favorskii 氧化重排反應(yīng)從而形成腸道菌素(1)獨(dú)特的籠狀三環(huán)和吡喃酮結(jié)構(gòu)。在解析腸道菌素(1)的生物合成途徑后,該課題組通過(guò)表達(dá)純化腸道菌素(1)生物合成途徑中的關(guān)鍵酶以及利用商業(yè)化的輔因子蛋白,采用一鍋分步串聯(lián)在體外成功合成了腸道菌素(1),其總產(chǎn)率約25%[31]。值得一提的是,在體外一鍋串聯(lián)EncA/B、EncC、EncD 和EncN 蛋白時(shí),其產(chǎn)物主要以wailupemycin F(2)和wailupemycin G(3)為主。隨后該課題組又通過(guò)不同酶相互串聯(lián)以及以苯甲酸類似物為底物,成功在體外酶法全合成了8個(gè)5-deoxyenterocin(4)類似物和16 個(gè)wailupemycin 類似物,其中包括18 個(gè)新化合物[32]。腸道菌素(1)的生物合成、體外酶催化合成以及類似物研究為后來(lái)復(fù)雜天然產(chǎn)物的生物合成研究提供了很好的思路(圖1)。

    Gilvocarcins是S.griseoflavusG?3592 及其他鏈霉菌產(chǎn)生的一系列具有苯并[d]萘[1,2-b]吡喃-6-酮骨架結(jié)構(gòu)的非典型角蒽環(huán)聚酮化合物,具有顯著的抗腫瘤活性[33-34]。 臘伯羅霉素(rabelomycin,5)和defucogilvocarcin M(6)是gilvocarcin 生物合成途徑中的兩個(gè)中間體[35-36]。臘伯羅霉素(5)是1970 年分離于橄欖色鏈霉菌S.olivaceusATCC 21549 發(fā)酵液中的一種角蒽環(huán)類抗生素,具有良好的抗革蘭氏陽(yáng)性菌活性[37]。Rohr課題組[38]利用不同生物合成途徑來(lái)源的聚酮合酶,即來(lái)源于gilvocarcin、ravidomycin 和杰多霉素(jadomycin)生物合成途徑,采用多酶催化串聯(lián)一鍋法以乙酰輔酶A(acetyl-coA)和丙二酸單酰輔酶A 為底物在體外成功合成了抗生素臘伯羅霉素(5)。該體系包括6 個(gè)酶:酮基合成酶KSα和鏈長(zhǎng)因子KSβ融合的蛋白JadAB、?;d體蛋白質(zhì)RavC、?;d體蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)酰基酶GilP、聚酮合酶相關(guān)的酮基還原酶GilF、兩個(gè)環(huán)化酶RavG 和JadD,經(jīng)一鍋反應(yīng)2h,臘伯羅霉素(5)的產(chǎn)率可達(dá)80%(圖2)。在此基礎(chǔ)上,該課題組又將6個(gè)不同來(lái)源的后修飾酶(3 個(gè)加氧酶GilOI、GilOII 和JadF、2 個(gè)甲基轉(zhuǎn)移酶GilM 和GilMT 以及1 個(gè)氧化還原酶GilR)與上述聚酮合酶進(jìn)行串聯(lián),并加入了輔因子再生所需的黃素還原酶(flavin reductase)和葡萄糖-6-磷酸脫氫酶(glucose-6-phosphate dehydrogenase);通過(guò)15 個(gè)酶進(jìn)行串聯(lián)催化,一鍋法在體外成功合成了defucogilvocarcin M(6)[36]。臘伯羅霉素(5)和defucogilvocarcin M(6)的體外全酶法合成進(jìn)一步闡明了gilvocarcin生物合成途徑中的氧化重排反應(yīng),同時(shí)也為角蒽環(huán)聚酮化合物的全合成提供了新的策略。

    司替霉素(steffimycin)是1967 年分離于斯特菲斯堡鏈霉菌(S.steffiburgensis)的一種蒽環(huán)類抗生素,具有顯著的抑癌作用;presteffimycinone(7)是其生物合成途徑中的一個(gè)關(guān)鍵中間體[39-41]。同樣地,利用光輝霉素(mithramycin)、gilvocarcin和司替霉素生物合成途徑中的不同聚酮合酶和后修飾酶,以乙酰輔酶A和丙二酸單酰輔酶A(由丙二酰輔酶A:?;d體蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)?;窶atB合成)為底物,通過(guò)多酶催化串聯(lián)一鍋法在體外成功合成了presteffimycinone(7),其對(duì)確定司替霉素生物合成途徑中環(huán)化酶StfX 和酮基還原酶StfT 的催化順序提供了新的參考(圖2)[39-40]。類似地,聚酮類抗生素特曲霉素(tetracenomycins)也通過(guò)體外全酶法催化合成[42-43]。

    圖1 多酶催化串聯(lián)法合成腸道菌素(1)和wailupemycinsFig.1 Multienzyme-catalyzed tandem synthesis of enterocin(1)and wailupemycins

    1.2 生物堿類化合物

    賽洛西賓(psilocybin,8)又名裸頭草堿、裸蓋菇素、光蓋菇素,最早分離于致幻蘑菇Psilocybe屬,是一種具有神經(jīng)致幻作用的神經(jīng)毒素,結(jié)構(gòu)上屬于吲哚生物堿類(色胺衍生物)[44-45]。研究表明,賽洛西賓(8)具有潛在的治療抑郁癥等精神疾病以及藥物上癮的效果,目前正在進(jìn)行治療抑郁癥的Ⅱ期臨床試驗(yàn)[46-47]。盡管賽洛西賓(8)在減輕抑郁癥及相關(guān)疾病方面具有潛在的應(yīng)用價(jià)值,但其生物合成途徑一直以來(lái)未被解析。最近,F(xiàn)ricke等[48]通過(guò)體外酶催化實(shí)驗(yàn)以及生物轉(zhuǎn)化成功解析了賽洛西賓(8)的生物合成途徑,其主要有4個(gè)酶參與:色氨酸脫羧酶PsiD、細(xì)胞色素P-450 單加氧酶PsiH、激酶PsiK 和甲基轉(zhuǎn)移酶PsiM。進(jìn)一步的體外多酶催化串聯(lián)一鍋法研究發(fā)現(xiàn),以4-羥基-L-色氨酸(4-hydroxy-L-tryptophan)為底物,利用PsiD、PsiK和PsiM 三個(gè)酶即可在體外實(shí)現(xiàn)賽洛西賓(8)的酶法全合成(圖3),產(chǎn)率約26%。賽洛西賓(8)的體外酶法全合成研究進(jìn)一步體現(xiàn)了多酶催化串聯(lián)法在藥物合成中的重要應(yīng)用價(jià)值。

    圖2 Gilvocarcin V和司替霉素的結(jié)構(gòu)式及多酶催化串聯(lián)法合成臘伯羅霉素(5)、defucogilvocarcin M(6)和presteffimycinone(7)Fig.2 Chemical structures of gilvocarcin V and steffimycin and the multienzyme-catalyzed tandem synthesis of rabelomycin(5),defucogilvocarcin M(6)and presteffimycinone(7)

    圖3 多酶催化串聯(lián)法合成賽洛西賓(8)Fig.3 Multienzyme-catalyzed tandem synthesis of psilocybin(8)

    芐基異喹啉生物堿(benzylisoquinoline alkaloids)是一類結(jié)構(gòu)多樣的重要天然產(chǎn)物,具有抗菌、抗腫瘤、抗炎、抗氧化、抗病毒、心血管保護(hù)以及中樞神經(jīng)系統(tǒng)等方面的藥理活性,如目前廣泛使用的鎮(zhèn)痛藥嗎啡和可待因、抗癌藥長(zhǎng)春花堿以及具有抗菌消炎作用的小檗堿等[49-50]。芐基異喹啉生物堿目前主要從開(kāi)花植物中提取獲得,但存在植物資源匱乏、含量低、提取難度大、純度低等問(wèn)題;此外,化學(xué)全合成又受到產(chǎn)物手性的限制[49,51]。生物合成途徑上,芐基異喹啉生物堿的合成一般以氨基酸作為初始前體,如酪氨酸,再經(jīng)過(guò)一系列的羥化、脫羧、甲基化、Pictet-Spengler 縮合以及氧化還原等酶催化反應(yīng)生成不同的化合物[52]。最近,Wang 等[53]通過(guò)多酶催化串聯(lián)反應(yīng)成功實(shí)現(xiàn)了芐基異喹啉生物堿的體外酶法全合成。研究人員首先通過(guò)克隆表達(dá)與功能驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),篩選獲得了來(lái)源于Candidatus Nitrosopumilus salariaBD31 中的酪氨酸酶CnTYR和糞腸球菌(Enterococcus faecalisDC32)的酪氨酸脫羧酶EfTyrDC,隨后將它們與來(lái)源于紫色桿菌 (Chromobacterium violaceum) 的轉(zhuǎn)氨酶CvTAm 和來(lái)源于黃唐松草(Thalictrum flavum)的去甲烏藥堿合成酶TfNCS 進(jìn)行組合,以L-酪氨酸及其衍生物為底物,通過(guò)酶催化串聯(lián)一鍋法或分步串聯(lián)在體外成功合成了8 個(gè)高立體選擇性的芐基異喹啉生物堿[(9)~(16)],包括6 個(gè)非天然生物堿;其轉(zhuǎn)化產(chǎn)率約35%~99%,分離產(chǎn)率約23%~66%(圖4)。其中,化合物13 能達(dá)到克級(jí)別規(guī)模的合成,為復(fù)雜天然產(chǎn)物的規(guī)?;苽涮峁┝酥匾?。

    Thaxtomin 是瘡痂病菌代謝產(chǎn)生的一類植物毒素,最早是在1989 年分離于感染瘡痂病的土豆切片中;thaxtomin 系列化合物是一類含有4-硝基吲哚的二酮哌嗪分子,其化學(xué)結(jié)構(gòu)的顯著特征是4-硝基吲哚和C-羥基-2,5-二酮哌嗪環(huán),差別在于N-甲基、酚羥基以及二酮哌嗪環(huán)上羥基的存在與否以及取代與否[54]。因其獨(dú)特的化學(xué)結(jié)構(gòu)組成單元,thaxtomin 家族化合物[(17)~(21)]尤其是thaxtomin A(17)作為除草劑和挑選耐受瘡痂病的土豆品種的篩選劑在農(nóng)業(yè)領(lǐng)域具有潛在的應(yīng)用價(jià)值[55]。然而在化學(xué)全合成thaxtomin 中仍存在立體或區(qū)域選擇等挑戰(zhàn),而生物合成為其提供了更有效的策略[56-58]。Jiang 等[57]首先通過(guò)體外酶催化實(shí)驗(yàn),確定了thaxtomin 生物合成途徑中TxtA、TxtB和TxtC 三個(gè)酶的功能并考察了它們的底物譜,其中TxtA 和TxtB 是兩個(gè)非核糖體肽合成酶,它們催化苯丙氨酸和4-硝基色氨酸合成N,N-二甲基二酮哌嗪環(huán)并具有底物寬泛性,而TxtC 是一個(gè)細(xì)胞色素P-450酶,其可以催化thaxtomin D(20)的C-14和C-20 位發(fā)生羥基化反應(yīng)。隨后研究人員們將這三個(gè)酶與thaxtomin 生物合成途徑中負(fù)責(zé)催化L-色氨酸(L-tryptophan)C-4 位發(fā)生硝基化反應(yīng)的P-450酶TxtE(嵌合蛋白TB14)進(jìn)行串聯(lián),成功在體外通過(guò)酶催化全合成了thaxtomin化合物(圖5)。起初將TB14、TxtA、TxtB以及TxtC進(jìn)行串聯(lián),以L-色氨酸和L-苯丙氨酸(L-phenylalanine)為底物一鍋法合成thaxtomin 化合物,但總轉(zhuǎn)化產(chǎn)率低于9%,可能與反應(yīng)體系中存在的NADPH再生體系有關(guān)。隨后他們采用分步串聯(lián)的策略,即首先串聯(lián)TB14、TxtA 和TxtB 三個(gè)酶,然后再加入TxtC,thaxtomin 的轉(zhuǎn)化產(chǎn)率可達(dá)47%。通過(guò)多酶催化串聯(lián)一鍋法或分步串聯(lián)一鍋法策略,以L-色氨酸、L-苯丙氨酸以及它們的類似物為底物,Jiang 等[57]在體外實(shí)現(xiàn)了124 個(gè)thaxtomin 化合物的酶催化全合成,且研究表明部分化合物具有顯著的除草活性(IC50值小于2 μmol/L)。Thaxtomin化合物的體外酶法全合成進(jìn)一步體現(xiàn)了酶作為催化劑在豐富天然產(chǎn)物結(jié)構(gòu)多樣性方面的重要作用。

    圖4 多酶催化串聯(lián)法合成芐基異喹啉生物堿[(9)~(16)]Fig.4 Multienzyme-catalyzed tandem synthesis of benzylisoquinoline alkaloids[(9)~(16)]

    雙環(huán)霉素(bicyclomycin,22)是日本科學(xué)家于1972 年從鏈霉菌中分離獲得的一種抗生素,具有顯著的抗革蘭氏陰性菌活性,也是目前已知的唯一來(lái)源于天然產(chǎn)物的轉(zhuǎn)錄終止因子Rho蛋白的選擇性抑制劑[59-61]。雙環(huán)霉素(22)屬于氧雜橋環(huán)二酮哌嗪類化合物,其結(jié)構(gòu)特異,可分為三部分:[4,2,2]-氧雜橋環(huán)骨架、C1 三羥基基團(tuán)以及C5=C5a環(huán)外亞甲基(圖6)。作為一種具有橋環(huán)三維結(jié)構(gòu)、脂肪鏈被高度氧化修飾的活性天然產(chǎn)物,雙環(huán)霉素(22)自發(fā)現(xiàn)以來(lái)就引起了有機(jī)合成化學(xué)家的極大興趣,其最高效且立體專一性的化學(xué)全合成是由Williams等[62-63]完成,整個(gè)合成路線有12步,總產(chǎn)率約為4%~5%。作者課題組一直從事復(fù)雜天然產(chǎn)物的生物合成研究,最近通過(guò)采用在體外重構(gòu)所有酶催化反應(yīng)的策略成功解析了雙環(huán)霉素(22)的生物合成途徑[64]。雙環(huán)霉素(22)的生物合成途徑包含7 個(gè)酶:1 個(gè)環(huán)二肽合酶BcmA、5 個(gè)非血紅素鐵依賴的雙加氧酶BcmB/C/E/F/G和1個(gè)細(xì)胞色素P-450 單加氧酶BcmD。其詳細(xì)途徑在體外通過(guò)逐個(gè)酶催化的方法解析如下:首先,BcmA 催化一分子異亮氨酰tRNA 和一分子亮氨酰tRNA 縮合并環(huán)化,形成雙環(huán)霉素(22)骨架環(huán)異亮氨酸亮氨酸(cIL);隨后在BcmE、BcmC 和BcmG 催化的連續(xù)羥化反應(yīng)以及BcmB催化的脫氫-環(huán)氧化作用下,形成具有[4,2,2]-雙環(huán)骨架的氧雜橋環(huán);最后經(jīng)BcmD 催化的羥化反應(yīng)和BcmF 催化的脫氫反應(yīng)形成最終的產(chǎn)物雙環(huán)霉素(圖6)。在此基礎(chǔ)上,以環(huán)二肽cIL 為底物,筆者課題組通過(guò)采用分步串聯(lián)策略,即BcmE 首先催化cIL 發(fā)生羥化反應(yīng),隨后同時(shí)加入BcmB、BcmC、BcmD、BcmF和BcmG,一鍋法在體外實(shí)現(xiàn)了雙環(huán)霉素(22)的酶法全合成。雙環(huán)霉素(22)的生物合成途徑中包括了連續(xù)多步惰性C—H鍵活化,以及在C—H鍵活化基礎(chǔ)上的一步脫氫-環(huán)氧化-橋環(huán)形成過(guò)程,其體外酶法全合成的實(shí)現(xiàn)為構(gòu)筑含有多手性中心中鏈氧雜橋環(huán)的分子提供了的新途徑。

    圖5 Thaxtomins的生物合成途徑Fig.5 Biosynthetic pathway of thaxtomins

    1.3 萜類和甾體類化合物

    赤霉素類(gibberellins,GAs)化合物是一類具有重要生理活性的植物激素,它們參與許多植物的生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程,如種子發(fā)芽、莖干延長(zhǎng)、誘導(dǎo)開(kāi)花、性別分化等,目前在農(nóng)業(yè)、林業(yè)、釀造業(yè)、化妝品等領(lǐng)域具有廣泛應(yīng)用[65]。赤霉素類化合物在結(jié)構(gòu)上屬于四環(huán)二萜,其生物合成途徑目前基本被闡明。同植物其他萜類化合物的生物合成途徑,赤霉素類化合物的生物合成分為3個(gè)過(guò)程:牻牛兒基牻牛兒基焦磷酸(geranylgeranyl diphosphate,GGPP)的合成,其主要是由乙酰輔酶A 通過(guò)甲羥戊酸(mevalonate)途徑或甲基赤藻糖磷酸途徑合成;GA12-醛的合成,其是由GGPP經(jīng)古巴焦磷酸合成酶(copalyl pyrophosphate synthase,CPS)、內(nèi)根-貝殼杉烯合成酶(ent-kaurene synthase,KS)、內(nèi)根-貝殼杉烯酸氧化酶(ent-kaurenoic acid oxidase,KAO)以及內(nèi)根-貝殼杉烯氧化酶(ent-kaurene oxidase,KO)催化合成;赤霉素類化合物的合成,包括多步的氧化以及氧化去飽和過(guò)程[65]。

    2011 年,Sugai 等[66]成功實(shí)現(xiàn)了赤霉素GA4(23)的體外酶法全合成(圖7)。研究人員首先以乙酸鈉(sodium acetate)為起始底物,通過(guò)甲羥戊酸途徑中4個(gè)酶的催化,在體外成功合成了甲羥戊酸,產(chǎn)率約54%。隨后以甲羥戊酸為底物,串聯(lián)6個(gè)生物合成相關(guān)的酶,成功在體外合成了關(guān)鍵前體化合物內(nèi)根-貝殼杉烯(ent-kaurene),產(chǎn)率約3%;而將這10個(gè)酶串聯(lián)起來(lái)也可以通過(guò)一鍋法全合成內(nèi)根-貝殼杉烯,但產(chǎn)率僅為0.3%。最后,研究人員將分離得到內(nèi)根-貝殼杉烯為底物,在反應(yīng)體系中加入兩個(gè)P-450氧化酶KO 和KAO 以及兩個(gè)非血紅素鐵依賴的氧化酶20ox 和3ox,成功合成了赤霉素GA4(23)。同樣地,將上述14 個(gè)酶進(jìn)行串聯(lián)通過(guò)一鍋法全合成GA4(23)時(shí),產(chǎn)率為0.15%。

    圖6 雙環(huán)霉素(22)的生物合成途徑(a)和體外酶催化合成(b)Fig.6 Biosynthetic pathway(a)and in vitro multienzyme-catalyzed synthesis(b)of bicyclomycin(22)

    熊去氧膽酸(ursodeoxycholic acid,UDCA,24)屬甾體膽酸類化合物,在臨床上主要用于治療膽結(jié)石、膽汁淤積性肝病、肝炎、脂肪肝等相關(guān)疾?。?7]。UDCA(24)目前主要是由?;蝙Z等動(dòng)物的膽汁中提取的鵝去氧膽酸(epimer chenodeoxycholic acid,CDCA)通過(guò)化學(xué)半合成獲得,但其產(chǎn)量并不能有效滿足臨床需求;生物合成中UDCA(24)則是由羥甾類脫氫酶類(hydroxysteroid dehydrogenases,HSDHs)催化CDCA轉(zhuǎn)化產(chǎn)生[68-69]。華東理工大學(xué)的許建和課題組[68]最近通過(guò)采用酶催化串聯(lián)一鍋法在體外成功實(shí)現(xiàn)了CDCA到UDCA的高效轉(zhuǎn)化。研究人員首先鑒定了一個(gè)來(lái)源于扭鏈瘤胃球菌(Ruminococcus torquesATCC 35915)的自養(yǎng)型羥甾類脫氫酶7β-HSDHRt,隨后將該酶與來(lái)源于Clostridium absonum的自養(yǎng)型羥甾類脫氫酶7α-HSDHCa進(jìn)行串聯(lián),在體外一鍋法實(shí)現(xiàn)了從CDCA到UDCA(24)的合成,產(chǎn)率約73%,但同時(shí)存在中間體產(chǎn)物7-O-石膽酸(7-oxolithocholic acid,7-oxo-LCA)約5%。為了減少體系中中間體副產(chǎn)物的產(chǎn)生,研究人員隨后將7α-HSDHCa替換為來(lái)源于大腸桿菌(Escherichia coli)的7α-HSDHEc,采用分步串聯(lián)一鍋法進(jìn)行UDCA(24)的合成,即首先由7α-HSDHEc和乳酸脫氫酶LDH進(jìn)行CDCA的第一步氧化反應(yīng),待CDCA 完全轉(zhuǎn)化后對(duì)7α-HSDHEc和LDH進(jìn)行煮沸滅活;再加入7β-HSDHRt和葡萄糖脫氫酶GDH 進(jìn)行第二步還原反應(yīng)。通過(guò)分步串聯(lián)一鍋法,UDCA(24)的產(chǎn)率可高達(dá)98%(圖8)。

    圖7 多酶催化串聯(lián)法合成赤霉素GA4(23)Fig.7 Multienzyme-catalyzed tandem synthesis of gibberellin A4(23)

    圖8 多酶催化串聯(lián)法合成熊去氧膽酸(24)Fig.8 Multienzyme-catalyzed tandem synthesis of ursodeoxycholic acid(24)

    盡管實(shí)現(xiàn)了UDCA(24)的酶法高效合成,但上述酶催化串聯(lián)反應(yīng)隨著反應(yīng)時(shí)間的延長(zhǎng),其體系中副產(chǎn)物7-oxo-LCA 會(huì)還原為CDCA,同時(shí)熱處理滅活7α-HSDHEc又耗時(shí)繁瑣,大大限制了該法進(jìn)一步的工業(yè)化應(yīng)用研究。對(duì)此,許建和課題組[69]又采用了固定化酶技術(shù)對(duì)UDCA 的酶法合成體系進(jìn)行了優(yōu)化。固定化酶技術(shù)是用物理法或化學(xué)法,將游離酶人工固定在特定載體上進(jìn)行特有的催化作用,可回收并長(zhǎng)時(shí)間使用的一種技術(shù)。固定化酶較游離酶具有穩(wěn)定性高、易于控制、可反復(fù)使用、回收方便、成本低廉等優(yōu)點(diǎn),因此在生物工程、醫(yī)學(xué)、能源開(kāi)發(fā)等領(lǐng)域具有重要作用[70-71]。許建和課題組首先篩選了不同的固定化方法,最后將7α-HSDHEc和LDH、7β-HSDHRt-M1(突變體T189V/V207I)和GDH 分別在環(huán)氧化樹(shù)脂ES-103 上進(jìn)行了共固定化,并對(duì)固定化條件進(jìn)行了優(yōu)化。隨后研究人員設(shè)計(jì)了一種流動(dòng)式填充床反應(yīng)器,以固定化酶LDH-7α-HSDH@ES-103 和7β-HSDH-GDH@ES-103 為催化劑,通過(guò)優(yōu)化填充床反應(yīng)器系統(tǒng)條件,實(shí)現(xiàn)了CDCA 到UDCA(24)的高效轉(zhuǎn)化,其轉(zhuǎn)化產(chǎn)率高達(dá)100%,時(shí)空產(chǎn)率約88.5 g/(L·d)(圖8)[69]。這樣一個(gè)將固定化技術(shù)與酶催化串聯(lián)法結(jié)合大量合成UDCA(24)的實(shí)例為復(fù)雜天然產(chǎn)物的規(guī)?;苽涮峁┝诵碌乃悸?。

    1.4 大環(huán)內(nèi)酰胺類化合物

    多環(huán)特特拉姆酸大環(huán)內(nèi)酰胺(polycyclic tetramate macrolactams,PoTeMs)是一類具有特特拉姆酸結(jié)構(gòu)單元及多環(huán)體系的大環(huán)內(nèi)酰胺類化合物,具有多樣的生物學(xué)活性[72]。斑鳩霉素(ikarugamycin,25)是第一個(gè)報(bào)道的5/6/5 三環(huán)PoTeMs 化合物, 1972 年從嗜色鏈霉菌(S.phaeochromogenes)中首次分離獲得,具有抗菌、抗炎、抗腫瘤、抗原蟲、抗?jié)兊壬锘钚裕?3-74]。此外,斑鳩霉素(25)還可抑制巨噬細(xì)胞中氧化低密度脂蛋白誘導(dǎo)的攝取以及HIV-1 Nef 誘導(dǎo)的細(xì)胞表面CD4 受體蛋白的下調(diào),被認(rèn)為是一種網(wǎng)格蛋白依賴性的內(nèi)吞抑制劑[75-76]。斑鳩霉素(25)因其多樣的生物活性自發(fā)現(xiàn)以來(lái)就引起了有機(jī)合成化學(xué)家對(duì)其全合成的探索。然而,斑鳩霉素(25)結(jié)構(gòu)的高度復(fù)雜性在很大程度上限制了高效化學(xué)合成方法的探索,目前化學(xué)全合成產(chǎn)率小于1%[72,77]。斑鳩霉素(25)的生物合成途徑由三個(gè)酶負(fù)責(zé)催化:雜合聚酮合酶IkaA(iPKS/NRPS)負(fù)責(zé)形成特特拉姆酸(26)、氧化還原酶IkaB 負(fù)責(zé)5/6 雙環(huán)體系的形成、乙醇脫氫酶IkaC 則負(fù)責(zé)斑鳩霉素(25)中內(nèi)5 元環(huán)的形成[72,74]。此外,斑鳩霉素(25)中的環(huán)己烯基單元可能是通過(guò)自發(fā)的Diels-Alder 反應(yīng)合成[72,74]。Greunke 等[72]通過(guò)采用酶催化串聯(lián)一鍋法在體外成功實(shí)現(xiàn)了斑鳩霉素(25)的全合成(圖9)。研究人員首先成功表達(dá)了來(lái)源于Streptomycessp.Tü6239 的蛋白IkaA 和IkaB以及來(lái)源于Salinispora arenicolaCNS-205的同源蛋白IkaC。隨后以乙酰輔酶A、丙二酸單酰輔酶A和L-鳥氨酸(L-ornithine)為底物,在反應(yīng)體系中同時(shí)加入IkaA、IkaB 和IkaC 以及相關(guān)輔因子,實(shí)現(xiàn)了斑鳩霉素(25)的體外酶法全合成,產(chǎn)率約9%。此外,為了減少成本,研究人員將IkaA、IkaB和IkaC與合成乙酰輔酶A的乙酸激酶AckA和磷酸轉(zhuǎn)乙酰酶Pta 以及與丙二酸單酰輔酶A 合成酶MatB 進(jìn)行串聯(lián),一鍋法在體外也成功實(shí)現(xiàn)了斑鳩霉素(25)的酶法全合成。僅利用3個(gè)酶,就可構(gòu)筑斑鳩霉素(25)中15 個(gè)C—C 鍵、2 個(gè)C—N 鍵以及8個(gè)手性中心的形成,充分展示了酶催化的神奇之處,也充分體現(xiàn)了酶作為催化劑在復(fù)雜天然產(chǎn)物全合成中發(fā)揮的強(qiáng)大作用。

    圖9 斑鳩霉素(25)的生物合成途徑Fig.9 Biosynthetic pathway of ikarugamycin(25)

    1.5 UK-2A類似物

    Fenpicoxamid(商品名Inatreq)是陶氏益農(nóng)公司最新研發(fā)的一種新型吡啶酰胺類農(nóng)用殺菌劑,其被真菌吸收后可在體內(nèi)重新轉(zhuǎn)化為UK-2A[78]。UK-2A 可特異性地抑制電子傳遞鏈泛醌Q1,阻斷線粒體呼吸作用從而發(fā)揮抗真菌作用,且無(wú)交叉耐藥性[79]。研究表明,UK-2A 的抗真菌活性主要來(lái)源于其C-3 位的3'-羥基-4'-甲氧基吡啶酸結(jié)構(gòu)單元[80-81]。近日,Tan 等[82]通過(guò)多酶催化串聯(lián)法成功實(shí)現(xiàn)了對(duì)UK-2A 藥效官能團(tuán)C-3-吡啶甲酸結(jié)構(gòu)的定向改造。研究人員首先通過(guò)挖掘分析UK-2A 的生物合成基因簇并結(jié)合體外酶催化實(shí)驗(yàn)鑒定了7 個(gè)關(guān)鍵基因,闡明了UK-2A 的生物合成途徑。其中,C-3-吡啶甲酸結(jié)構(gòu)的合成是通過(guò)腺嘌呤苷酸結(jié)合蛋白UkaF 將3-羥基吡啶酸(3'-hydroxypicolinic acid)上載至肽基載體蛋白UkaG 上,然后經(jīng)P-450 酶UkaL 和甲基轉(zhuǎn)移酶UkaN 的修飾形成最后的C-3 位結(jié)構(gòu)片段。同時(shí),考察UkaF 的底物譜發(fā)現(xiàn)其具有寬泛的底物雜泛性,可識(shí)別13 種水楊酸(salicylic acids)及其衍生物。隨后,研究人員通過(guò)多酶催化串聯(lián)一鍋法,以3-羥基吡啶酸或13 種水楊酸及其衍生物為底物,在體外成功合成了14 個(gè)新的脫?;鵘K-2A(deacyl UK-2A,DAUK-2A)類似物[(27)~(40)],轉(zhuǎn)化產(chǎn)率高達(dá)100%;首次實(shí)現(xiàn)了UK-2A 的C-3 位官能團(tuán)的高效定向改造(圖10)。

    圖10 多酶催化串聯(lián)法合成UK-2A類似物Fig.10 Multienzyme-catalyzed tandem synthesis of UK-2A analogues

    1.6 核苷類化合物

    核苷類似物islatravir(原名MK-8591,41)是美國(guó)默克公司研發(fā)的一種HIV 逆轉(zhuǎn)錄酶移位抑制劑,目前正在進(jìn)行臨床試驗(yàn)研究,其非凡的功效和長(zhǎng)效的作用有望在降低HIV治療次數(shù)和暴露前預(yù)防感染中發(fā)揮作用[83-84]。Islatravir(41)主要通過(guò)化學(xué)合成獲得,但化學(xué)合成存在步驟繁瑣(需要12~18 步)且效率低等問(wèn)題,主要在于難以控制2'-脫氧核糖的立體選擇性[85-86]。鑒于此,Huffman等[87]在天然細(xì)菌核苷補(bǔ)救途徑的啟發(fā)下,采用逆向合成思路,通過(guò)定向進(jìn)化改造五種天然酶使其作用于非天然底物,并通過(guò)采用多酶催化串聯(lián)一鍋法成功實(shí)現(xiàn)了islatravir(41)的經(jīng)濟(jì)高效合成(圖11)。

    圖11 多酶催化串聯(lián)法合成islatravir(41)Fig.11 Multienzyme-catalyzed tandem synthesis of islatravir(41)

    細(xì)菌核苷補(bǔ)救途徑為脫氧核糖核苷提供了逆向合成方法,該過(guò)程主要使用三種酶降解嘌呤2'-脫氧核糖核苷:嘌呤核苷磷酸化酶(purine nucleoside phosphorylase,PNP)用磷酸替換核苷堿基得到脫氧核糖1-磷酸;隨后磷酸戊糖變位酶(phosphopentomutase,PPM)將磷酸鹽轉(zhuǎn)移至5位;所得的5-磷酸糖在5-磷酸脫氧核糖醛縮酶(deoxyribose 5-phosphate aldolase,DERA)催化下將醛醇縮醛裂解為3-磷酸甘油醛和乙醛。當(dāng)逆向合成時(shí),該過(guò)程即可從簡(jiǎn)單的起始底物合成核苷[88-89]。基于此,研究人員充分利用了酶催化反應(yīng)的可逆性,采用逆向合成策略進(jìn)行islatravir(41)的合成。然而,islatravir(41)結(jié)構(gòu)中具有的炔基取代基和氟取代基不易被天然酶所識(shí)別。對(duì)此,研究人員首先對(duì)核苷補(bǔ)救途徑中的三種酶進(jìn)行了探索研究。通過(guò)定向進(jìn)化改造來(lái)源于E.coli的PNP 和PPM 以及來(lái)源于希瓦氏菌(Shewanella halifaxensis)的DERA,成功獲得了對(duì)非天然底物具有高活性高耐鹽的PNPRd5BB突變體和高活性的PPMRd3BB突變體,其活性較野生型酶分別提高了70 倍和350 倍;同時(shí)也獲得了高選擇性以及對(duì)乙醛高耐受的DERARd3BB突變體。由于PNP 和PPM 串聯(lián)的反應(yīng)被副產(chǎn)物磷酸鹽所抑制,研究人員向反應(yīng)體系中加入了蔗糖磷酸化酶(sucrose phosphorylase,SP)和蔗糖(sucrose),以消耗副產(chǎn)物無(wú)機(jī)磷酸鹽,推動(dòng)反應(yīng)平衡。為了合成3-磷酸-2-炔基甘油醛(42),研究人員選擇了對(duì)2-乙炔基甘油(43)先氧化再磷酸化的路線。通過(guò)對(duì)E. coli來(lái)源的泛酸激酶(pantothenate kinase,PanK)定向進(jìn)化并將其與海棲熱袍菌(Thermotoga maritima)來(lái)源的熱穩(wěn)定乙酸激酶(acetate kinase,AcK)配對(duì),提高了PanK 的活性(較野生型提高100 倍)和穩(wěn)定性,并實(shí)現(xiàn)了PanK 所需輔因子腺苷三磷酸的再生。在氧化還原酶的篩選中,研究人員鑒定了禾谷鐮孢菌(Fusarium graminearum)來(lái)源的半乳糖氧化酶突變體(galactose oxidase,GOase)并對(duì)其進(jìn)行定向進(jìn)化,獲得了具有高活性高選擇性的GOaseRd13BB突變體。需要注意的是,GOase 催化的反應(yīng)體系需要額外的過(guò)氧化氫酶和辣根過(guò)氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)。

    實(shí)現(xiàn)了從2-乙炔基甘油(43)到islatravir(41)合成的每一步反應(yīng)后,研究人員設(shè)計(jì)了一個(gè)3 步9 酶催化串聯(lián)反應(yīng)(圖11)。但由于反應(yīng)體系中引入的酶量較大,對(duì)終產(chǎn)物的過(guò)濾造成了困難,同時(shí)體系中的PanK 可直接催化初始底物2-乙炔基甘油(41)形成副產(chǎn)物。為此研究人員對(duì)PanK(配對(duì)Ack)和GOase 進(jìn)行了酶的固定化操作,減少了水溶液中的酶量,并避免了初始底物的直接磷酸化。最終,通過(guò)優(yōu)化酶催化串聯(lián)反應(yīng)平臺(tái),首次實(shí)現(xiàn)了islatravir(41)的規(guī)模化合成,其總產(chǎn)率高達(dá)51%,純度高達(dá)95%[87]。Islatravir(41)的體外酶法高效全合成是酶催化串聯(lián)法在復(fù)雜天然產(chǎn)物合成應(yīng)用研究中的重大突破,其合成過(guò)程中涉及到的逆向合成思維以及定向進(jìn)化和酶的固定化等策略,為設(shè)計(jì)合成其他復(fù)雜分子提供了新的思路和重要借鑒。

    1.7 其他化合物

    除上述介紹的重要實(shí)例外,采用體外酶催化串聯(lián)一鍋法合成的天然產(chǎn)物還有維生素B12的前體hydrogenobyrinic acid(45)[90]、聚酮化合物灰黃霉素(griseofulvin,46)[91]、雜萜類merochlorin A(47)和merochlorin B(48)以及napyradiomycin A1(49)和napyradiomycin B1 (50)[92-93]、植物抗毒素camalexin(51)[94]、吡咯并吲哚類生物堿毒扁豆堿(physostigmine,52)[95]、色氨酸衍生物indolmycin(53)[96]、硝基咪唑類抗生素azomycin(54)[97]、糖類化合物碳霉糖(TDP-L-mycarose,55)[98]、多肽類抗生素56[99]、以及免疫抑制劑lipid IVA(57)[100],其結(jié)構(gòu)見(jiàn)圖12。

    圖12 酶催化串聯(lián)法合成的一些其他化合物(45~57)Fig.12 Enzymatic tandem synthesis of other compounds 45~57

    2 化學(xué)-酶催化串聯(lián)法合成復(fù)雜天然產(chǎn)物

    化學(xué)-酶催化串聯(lián)就是將化學(xué)合成與酶催化合成進(jìn)行串聯(lián),兩者互補(bǔ),各取所長(zhǎng),從而完成天然產(chǎn)物的合成?;瘜W(xué)催化劑如有機(jī)金屬催化劑具有寬泛的底物適用范圍和催化活性,可以彌補(bǔ)某些酶對(duì)非天然底物沒(méi)有催化活性以及在有機(jī)溶劑或高溫下出現(xiàn)的活性喪失等不足;而酶催化劑能在更加簡(jiǎn)單溫和的催化條件下將區(qū)域和立體選擇性發(fā)揮到極致,可以解決化學(xué)催化劑在沒(méi)有誘導(dǎo)劑或保護(hù)基團(tuán)的輔助下難以實(shí)現(xiàn)極高手性選擇性的問(wèn)題。然而,化學(xué)-酶催化串聯(lián)體系的實(shí)現(xiàn)較為困難,主要源于兩類催化劑所需的催化環(huán)境不同;當(dāng)生物酶和化學(xué)催化劑共存于同一反應(yīng)體系時(shí)往往存在相互抑制的情況[101]。盡管如此,利用酶自身催化反應(yīng)的高效性、高立體選擇性、高區(qū)域選擇性,以及利用化學(xué)催化劑具有的寬廣的底物適用范圍和催化活性,化學(xué)-酶催化串聯(lián)在復(fù)雜天然產(chǎn)物尤其是高手性化合物的合成中發(fā)揮了重要作用[102-106]。近年來(lái),無(wú)論是化學(xué)-單酶催化串聯(lián)還是化學(xué)-多酶催化串聯(lián),在復(fù)雜天然產(chǎn)物的合成中均取得了巨大的應(yīng)用進(jìn)展[107-111]。關(guān)于化學(xué)-酶催化串聯(lián)法在復(fù)雜天然產(chǎn)物合成中的應(yīng)用研究進(jìn)展,目前已有相關(guān)綜述進(jìn)行了較全面的總結(jié)[101-106,109]。本節(jié)以多殺菌素A(spinosyn A,58)[111]和肝素(heparin)[107]的化學(xué)-酶催化串聯(lián)合成研究為例,介紹化學(xué)合成與多酶法合成相互結(jié)合在復(fù)雜天然產(chǎn)物合成中的重要性。

    2.1 多殺菌素A 的合成研究

    多殺菌素A(58)是刺糖多胞菌(Saccharopolyspora spinosa)產(chǎn)生的大環(huán)內(nèi)酯類化合物,其作為生物殺蟲劑多殺菌素的主要活性成分之一,在農(nóng)業(yè)應(yīng)用中占有重要地位[112]。多殺菌素A(58)分子結(jié)構(gòu)復(fù)雜,以含有21 個(gè)碳所組成的獨(dú)特的5/6/5/12-四環(huán)作為基本骨架,并通過(guò)氧糖苷鍵在C-9 位和C-17 位分別與三氧甲基鼠李糖和福樂(lè)氨糖連接,整個(gè)分子中含有17個(gè)手性中心。多殺菌素A(58)的化學(xué)全合成已經(jīng)由Evans、Paquette、Roush 和Dai 四個(gè)課題組分別獨(dú)立完成,但由于多殺菌素A(58)獨(dú)特的四環(huán)結(jié)構(gòu)以及分子中眾多的手性中心,在合成過(guò)程中給他們帶來(lái)了巨大挑戰(zhàn)[103,113]。多殺菌素A(58)的生物合成途徑已被解析(圖13):其四環(huán)骨架結(jié)構(gòu)(59)是由模塊化Ⅰ型聚酮合酶SpnA-E 催化1 分子丙酰輔酶A、9 分子丙二酸單酰輔酶A 和1 分子甲基丙二酸單酰輔酶A 結(jié)合而成;隨后在SpnJ 的催化下將15-OH 氧化為羰基得到化合物60,并在SpnM 催化下脫水生成多烯化合物61;化合物61 在SpnF 催化的[4+2]-環(huán)加成Diels-Alder 反應(yīng)中形成化合物62,繼而在鼠李糖轉(zhuǎn)移酶SpnG 作用下進(jìn)行糖基化,并由SpnL催化C-2 位和C-14 位相連形成化合物63;化合物63 在甲基轉(zhuǎn)移酶SpnH、SpnI 和SpnK 的作用下對(duì)鼠李糖單元羥甲基化;最終在SpnP 的催化下引入福樂(lè)氨糖合成最終產(chǎn)物多殺菌素A(58)[114-116]。

    基于化學(xué)催化可合成寬廣的底物和酶催化反應(yīng)具有很高的立體選擇性和區(qū)域選擇性,研究人員在2014 年采用化學(xué)-酶催化串聯(lián)法成功實(shí)現(xiàn)了多殺菌素A(58)的全合成(圖13)[111]。由于多殺菌素A 生物合成途徑中化合物59 的結(jié)構(gòu)只是推測(cè)而來(lái),尚未分離鑒定,研究人員首先采用化學(xué)法合成了多烯大環(huán)內(nèi)酯化合物59?;衔?4 通過(guò)不對(duì)稱乙基化和羥醛縮合反應(yīng)等5步轉(zhuǎn)化獲得化合物65,隨后發(fā)生Stille 偶聯(lián)、Julia-Kocienski 烯基化以及Yamaguchi 大環(huán)內(nèi)酯化,經(jīng)7 步轉(zhuǎn)化完成了酶催化前體59 的合成。隨后研究人員以化合物59 為底物,通過(guò)在反應(yīng)體系中加入多殺菌素A(58)生物合成途徑相關(guān)的8 個(gè)酶以及優(yōu)化體系中各酶的濃度,在體外一鍋法實(shí)現(xiàn)了化合物66 的合成,其總轉(zhuǎn)化產(chǎn)率約19.6%,意味著每一步酶催化反應(yīng)的平均轉(zhuǎn)化產(chǎn)率至少為81.6%。由于多殺菌素A(58)生物合成途徑中最后一步SpnP 催化的糖基化反應(yīng)在體外需要輔助蛋白作用才能發(fā)揮活性,而多殺菌素A(58)生物合成基因簇中并沒(méi)有相關(guān)編碼基因存在。因此,研究人員最后采用了化學(xué)方法,在Lewis 酸活化下對(duì)化合物66 引入氨基葡萄糖實(shí)現(xiàn)了多殺菌素A(58)的全合成。多殺菌素A(58)的化學(xué)-酶催化串聯(lián)全合成工作充分體現(xiàn)了酶催化反應(yīng)的高效性、專一性和簡(jiǎn)便性,同時(shí)也證實(shí)了化學(xué)合成與生物合成相結(jié)合的策略在復(fù)雜天然產(chǎn)物合成中的重要價(jià)值。

    圖13 化學(xué)-酶催化串聯(lián)法合成多殺菌素A(58)Fig.13 Chemoenzymatic synthesis of spinosyn A(58)

    2.2 肝素的合成研究

    化學(xué)-酶催化串聯(lián)合成的另一個(gè)經(jīng)典的例子是2011 年報(bào)道的肝素的全合成[107]。肝素是臨床上廣泛使用的抗凝藥物,是葡萄糖醛酸(glucuronic acid,GlcA)或艾杜糖醛酸(iduronic acid,IdoA)和葡萄糖胺(glucosamine,GlcN)通過(guò)1→4 糖苷鍵連接形成的二糖重復(fù)單元組成的糖胺聚糖。肝素大小不一、結(jié)構(gòu)各異,第一個(gè)化學(xué)全合成的五糖抗凝藥磺達(dá)肝素(商品名Arixtra)總共涉及50多步反應(yīng),且反應(yīng)條件復(fù)雜、產(chǎn)率極低(小于0.1%),極大地限制了商業(yè)化應(yīng)用[117-118]。肝素的體內(nèi)生物合成首先是在N-乙酰葡萄糖胺轉(zhuǎn)移酶(N-acetyl glucosaminyl transferase) 和肝素合酶(heparosan synthase-2,HS2)的作用下形成N-乙酰葡萄糖胺和葡萄糖醛酸交替連接的糖鏈骨架,隨后在N-硫酸化酶(N-sulfotransferase,NST)、C5-異構(gòu)酶(C5-epimerase,C5-epi)以及不同O-硫酸化酶(O-sulfotransferase,OST)的作用下對(duì)糖鏈骨架進(jìn)行修飾,從而得到不同大小及結(jié)構(gòu)的肝素。利用酶催化反應(yīng)高效的立體專一性,Xu等[107]采用化學(xué)-酶催化串聯(lián)法首次實(shí)現(xiàn)了兩個(gè)超低分子量肝素[(68)和(69)]的合成(圖14)。研究人員借助上述不同的糖基轉(zhuǎn)移酶(來(lái)源于E. coliK5 的KfiA和來(lái)源于Pasteurella multocida的pmHS2)、硫酸化酶以及C5-異構(gòu)酶,通過(guò)精細(xì)調(diào)控反應(yīng)順序,將天然葡萄糖胺、葡糖醛酸及硫酸根進(jìn)行“組合”,并結(jié)合堿性(三乙胺,triethylamine)條件下的脫保護(hù)化學(xué)過(guò)程,只需10~12 步反應(yīng)就高效合成了兩個(gè)超低分子量肝素[(68)和(69)],其產(chǎn)率分別為45%和37%,且抗凝血活性與商品藥磺達(dá)肝素相當(dāng)。肝素化學(xué)-酶法全合成的實(shí)現(xiàn)是化學(xué)-酶催化串聯(lián)法在復(fù)雜分子合成應(yīng)用中的里程碑創(chuàng)舉,其為抗凝血藥物肝素的研發(fā)開(kāi)辟了新的途徑。

    圖14 化學(xué)-酶催化串聯(lián)法合成超低分子量肝素(68)和(69)Fig.14 Chemoenzymatic synthesis of ultralow molecular weight heparins(68)and(69)

    3 結(jié)語(yǔ)

    實(shí)現(xiàn)天然產(chǎn)物的體外酶法全合成不僅可以拓展“酶”作為催化劑的應(yīng)用潛力,也為復(fù)雜天然產(chǎn)物的制備提供了新的思路。體外酶催化合成具有高效性、高選擇性、反應(yīng)條件溫和等優(yōu)點(diǎn),在復(fù)雜天然產(chǎn)物的合成中發(fā)揮了獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)。然而,體外酶法全合成的發(fā)展仍面臨諸多挑戰(zhàn)。首先,盡管復(fù)雜天然產(chǎn)物的生物合成研究近年來(lái)取得了很大進(jìn)展,但與化學(xué)合成相比,人們對(duì)于由生物大分子負(fù)責(zé)的生物合成機(jī)制的理解仍顯不足。天然產(chǎn)物的體外酶催化全合成需要在其生物合成途徑了解的基礎(chǔ)上進(jìn)行,這樣才能保證酶催化反應(yīng)中初始底物的真實(shí)性以及酶催化串聯(lián)反應(yīng)的有效性。然而一方面天然產(chǎn)物結(jié)構(gòu)多樣,另一方面相似化合物的生物合成途徑也是共性與差異共存,因此人們還需繼續(xù)努力挖掘生物合成基因簇和闡明更多的生物合成途徑。相信隨著測(cè)序技術(shù)、生物信息學(xué)以及基因編輯、結(jié)構(gòu)生物學(xué)、遺傳轉(zhuǎn)化等生物技術(shù)的迅速發(fā)展,越來(lái)越多復(fù)雜天然產(chǎn)物的生物合成途徑將得到解析,從而為復(fù)雜天然產(chǎn)物的體外酶催化全合成奠定基礎(chǔ)。其次,體外酶催化反應(yīng)的實(shí)現(xiàn)需要生物合成途徑中所有參與反應(yīng)的酶在體外能夠穩(wěn)定獲得且有活性,但目前仍有很多目標(biāo)蛋白無(wú)法通過(guò)常規(guī)的生物技術(shù)獲得、或蛋白不穩(wěn)定、或活性很低,極大限制了體外酶催化全合成的應(yīng)用。另外,復(fù)雜天然產(chǎn)物生物合成途徑中參與反應(yīng)的酶的功能多種多樣、酶學(xué)性質(zhì)不同,在體外將它們串聯(lián)在一起時(shí)容易出現(xiàn)蛋白互不兼容、反應(yīng)條件互不合適、中間體產(chǎn)物及輔因子容易抑制一些酶的活性等問(wèn)題,很大程度上影響了酶催化全合成的效率。對(duì)此,可通過(guò)優(yōu)化表達(dá)系統(tǒng)、篩選同源基因、構(gòu)建融合蛋白等來(lái)獲得目標(biāo)蛋白;通過(guò)優(yōu)化反應(yīng)條件、固定化、定向進(jìn)化等技術(shù)提高酶的穩(wěn)定性和兼容性。此外,也可通過(guò)分步串聯(lián)策略或多酶催化串聯(lián)流動(dòng)體系提高蛋白穩(wěn)定性、減少中間體產(chǎn)物及輔因子對(duì)酶活性的抑制,從而最大程度地提高體外酶催化串聯(lián)體系的合成效率。在體外酶催化途徑的設(shè)計(jì)中,應(yīng)該綜合考慮化學(xué)合成和酶催化的優(yōu)勢(shì),不拘泥于全酶串聯(lián),在一些特殊步驟中引入化學(xué)合成也將大大提高整體合成效率。綜上所述,天然產(chǎn)物的體外酶催化全合成研究近年來(lái)取得了較大進(jìn)展,相信隨著合成生物學(xué)理念的進(jìn)一步完善,蛋白質(zhì)工程和酶工程技術(shù)的發(fā)展,體外酶催化全合成將成為復(fù)雜天然產(chǎn)物合成的重要手段之一。

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