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    酶法自茶葉中提取茶多酚工藝和口味研究

    2020-07-29 12:35:44李映陳佳蕓吳亞楠聞雪暢葛喜珍
    關(guān)鍵詞:茶多酚口味茶葉

    李映 陳佳蕓 吳亞楠 聞雪暢 葛喜珍

    [摘 要]目的:探討酶法對(duì)茶葉和茶葉渣中茶多酚提取效果及口味的影響。方法:設(shè)計(jì)單因素及正交試驗(yàn),使用纖維素酶和果膠酶酶解茶葉和茶葉渣,紫外分光光度法和HPLC法檢測(cè)茶多酚含量,HPLC法檢測(cè)氨基酸含量,評(píng)價(jià)提取液口味。結(jié)果:酶法提取最佳條件為復(fù)合酶用量2.4%,料液比1∶10 g/mL,酶解pH 5.6,提取溫度60 ℃,提取時(shí)間75 min。酶法自茶葉和茶葉渣提取茶多酚產(chǎn)率分別為23.36%、10.38%,與不加酶相比分別提高55.94%、15.46%;酶法自茶葉和茶葉渣提取氨基酸產(chǎn)率分別為4.98%、3.12%,與不加酶相比分別提高20.42%、25.32%;茶葉加酶處理得到氨基酸含量高、收斂強(qiáng)度和苦味弱,總體接受度與氨基酸含量一致。結(jié)論:酶法可高效提取茶葉有效成分,茶葉渣可作為原料提取茶多酚,用于食品工業(yè)。

    [關(guān)鍵詞]茶葉;茶葉渣;茶多酚;口味

    [中圖分類(lèi)號(hào)]TS 272[文獻(xiàn)標(biāo)志碼]A[文章編號(hào)]1005-0310(2020)03-0077-06

    0 引言

    作為世界三大飲品之一,茶葉具有較高的營(yíng)養(yǎng)和藥用價(jià)值。茶葉富含茶多酚、氨基酸、多糖、維生素等物質(zhì)。茶多酚有抗癌、抗衰老、降血糖、抗輻射等作用;氨基酸具有鮮味,如酸、甜等[1-2]。茶多酚和氨基酸普遍用于食品加工行業(yè)。茶葉中茶多酚的提取方法包括溶劑萃取法、超聲波提取法、微波提取法、離子沉淀法、樹(shù)脂吸附法和酶法等,其中酶法提取安全、溫和、環(huán)保、效率高、簡(jiǎn)潔[3]。本研究基于酶法從茶葉和茶葉渣中提取茶多酚和氨基酸,并檢測(cè)其味質(zhì),探討酶法提取對(duì)茶多酚、氨基酸和提取物口味的影響,以及探究自茶葉或茶葉渣中提取茶多酚的高效、環(huán)保生產(chǎn)工藝。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    原料:綠茶購(gòu)自山東日照天潤(rùn)茶業(yè)有限公司,茶葉渣(用100 ℃水浸泡茶葉30 min,連續(xù)沖泡3遍,烘干茶葉,得茶葉渣);纖維素酶(400 U/mg)、果膠酶(500 U/mg)由上海瑞永生物科技有限公司提供;乙醇、茚三酮、氯化亞錫、硫酸亞鐵、酒石酸鉀鈉(北京化工廠,分析純);磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀(北京益利精細(xì)化學(xué)品有限公司,分析純);標(biāo)準(zhǔn)品:表兒茶素沒(méi)食子酸酯(ECG)標(biāo)準(zhǔn)品、表沒(méi)食子兒茶素沒(méi)食子酸酯(EGCG)標(biāo)準(zhǔn)品、表兒茶素(EC)標(biāo)準(zhǔn)品、沒(méi)食子酸(GA)標(biāo)準(zhǔn)品、標(biāo)準(zhǔn)氨基酸(異亮氨酸)均購(gòu)自國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)中心;咖啡堿(CAF)標(biāo)準(zhǔn)品購(gòu)自北京北納創(chuàng)聯(lián)生物技術(shù)研究院。

    1.2 儀器設(shè)備

    分光光度計(jì)(上海奧析科學(xué)儀器有限公司);LC-16高效液相色譜儀(島津儀器(蘇州)有限公司);Waters 2695 高效液相色譜儀(Empower 工作站);PHS-3CpH計(jì)(上海精密科學(xué)儀器有限公司);JM-A6002電子天平(諸暨市超澤衡器設(shè)備有限公司);HCP-500 A高速多功能粉碎機(jī)(浙江省永康市金穗機(jī)械制造廠);TG16臺(tái)式高速離心機(jī)(長(zhǎng)沙英泰儀器有限公司)。

    1.3 茶多酚提取工藝

    取茶葉或茶葉渣,將復(fù)合酶溶液加入茶葉或茶葉渣、酶解;加乙醇溶液提取,提取物過(guò)濾,離心,得上清液;檢測(cè)上清液中茶多酚和氨基酸含量,計(jì)算茶多酚和氨基酸提取率,同時(shí)評(píng)估口味。

    1.4 單因素試驗(yàn)

    1.4.1 酶用量(復(fù)合酶占茶葉質(zhì)量百分比)篩選

    配制復(fù)合酶水溶液(根據(jù)預(yù)試結(jié)果纖維素酶、果膠酶各2.0 mg/mL)。稱取茶葉1.0 g于三角瓶,加入復(fù)合酶溶液(1.2%、2.4%、3.6%、4.8%、6.0%),加水至60 mL,調(diào)pH=5.4,溫度45 ℃,酶解300 min。加75%乙醇至100 mL,50 ℃提取60 min,探討不同酶用量對(duì)茶葉中茶多酚提取率的影響。

    1.4.2 料液比(茶葉質(zhì)量與提取劑體積比)篩選

    稱取茶葉1.0 g于三角瓶,加1.2%的復(fù)合酶,加水至60 mL,調(diào)pH=5.4,溫度45 ℃,酶解300 min。加75%乙醇(料液比為1∶6、1∶8、1∶10、1∶12、1∶14 g/mL),50 ℃提取60 min,探討不同料液比對(duì)茶葉中茶多酚提取率的影響。

    1.4.3 酶解pH篩選

    稱取茶葉1.0 g于三角瓶,復(fù)合酶用量1.2%,加水至60 mL,調(diào)pH(3.8、4.4、5.0、5.6、6.2、6.8),溫度45 ℃,酶解300 min。加75%乙醇至100 mL,50 ℃提取60 min,料液比為1∶10 g/mL,探討不同pH對(duì)茶葉中茶多酚提取率的影響。

    1.4.4 提取溫度篩選

    稱取茶葉1.0 g于三角瓶,復(fù)合酶用量1.2%,加水至60 mL,酶解pH為5.4,酶解300 min。加75%乙醇,50 ℃提取60 min,料液比為1∶10 g/mL,探討不同提取溫度(30、40、50、60、70、80 ℃)對(duì)茶葉中茶多酚提取率的影響。

    1.4.5 提取時(shí)間篩選

    稱取茶葉1.0 g于三角瓶,復(fù)合酶用量1.2%,加水至60 mL,酶解pH為5.4,酶解300 min。加75%乙醇,50 ℃,料液比為1∶10 g/mL,探討不同提取時(shí)間(15、30、45、60、75、90 min)對(duì)茶葉中茶多酚提取率的影響。

    1.5 正交試驗(yàn)

    根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,進(jìn)行4因素3水平的L9(3)4正交設(shè)計(jì)試驗(yàn)。分別以茶葉和茶葉渣為原料,以復(fù)合酶用量(A)、料液比(B)、提取溫度(C)和提取時(shí)間(D)為因素,以茶多酚提取率為指標(biāo),利用Latin正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,建立酶法自茶葉、茶葉渣中提取茶多酚的最優(yōu)工藝參數(shù),見(jiàn)表1。

    1.6 驗(yàn)證試驗(yàn)

    以不加酶為對(duì)照,分別用茶葉和茶葉渣為底物,利用正交試驗(yàn)所得最佳條件提取茶多酚和氨基酸,用酒石酸亞鐵比色法和高效液相色譜法測(cè)定茶多酚提取率,高效液相色譜法測(cè)定氨基酸含量。

    1.6.1 茶葉中茶多酚含量測(cè)定

    將提取液冷卻至室溫,過(guò)濾,取濾液,3 600 r/min離心10 min,取上清,根據(jù)國(guó)標(biāo)GB/T 8313—2002《茶 茶多酚測(cè)定》中的酒石酸亞鐵比色法來(lái)測(cè)定提取液中茶多酚含量。精確吸取1 mL待測(cè)液于25 mL容量瓶,加入5 mL酒石酸亞鐵溶液和4 mL蒸餾水,混合搖勻,再滴加pH 7.5的磷酸鹽緩沖溶液定容,以空白溶液作參比,在540 nm的波長(zhǎng)下測(cè)量吸光度A。

    1.6.2 兒茶素和咖啡堿含量檢測(cè)

    對(duì)照品制備:分別稱量表兒茶素沒(méi)食子酸酯(ECG)標(biāo)準(zhǔn)品、表沒(méi)食子兒茶素沒(méi)食子酸酯(EGCG)、沒(méi)食子酸(GA)、咖啡堿(CAF)標(biāo)準(zhǔn)品,用三蒸水定容。ECG、EGCG和CAF的質(zhì)量濃度均為2 mg/mL,GA質(zhì)量濃度 0.1 mg/mL,備用。兒茶素和咖啡堿用高效液相色譜法(HPLC)測(cè)定:ZORBAX SB-C18 ODS色譜柱,5 μm,4.6 mm×150 mm,柱溫:35 ℃,流動(dòng)相為30%甲醇加0.5‰ H3PO4;進(jìn)樣量:10 μL,流動(dòng)相流速1 mL/min,紫外檢測(cè)器λ=284 nm。供試茶葉或茶葉渣提取液,冷卻至室溫,過(guò)濾,濾去反應(yīng)體系中的茶粉或茶渣,再用0.45 μm微孔濾膜過(guò)濾,待測(cè)。

    1.6.3 氨基酸含量檢測(cè)

    氨基酸組分含量測(cè)定參考尹軍峰等方法[4]。采用Waters 高效液相色譜儀檢測(cè),Empower 軟件工作站, Agilent G1 321 A熒光檢測(cè)器,激發(fā)波長(zhǎng)(Ex):250 nm,發(fā)射波長(zhǎng)(Em):395 nm,AccQ-Tag 氨基酸(15 mm×3.9 mm×4.6 mm),流速:1 mL/min,柱溫:27 ℃,進(jìn)樣量:10 μL,流動(dòng)相A(乙腈∶水=60∶40),流動(dòng)相B(乙腈∶磷酸鹽緩沖液=10∶90,0.013 mol/L的磷酸鹽緩沖液pH 8.1),檢測(cè)波長(zhǎng): 360 nm。梯度洗脫(0~2 min,A∶B=0∶100;2~15 min,A∶B=20∶80;15~30 min,A∶B=30∶70;30~40 min,A∶B=80∶20;40~45 min,A∶B=100∶0),用外標(biāo)法定量氨基酸組成的含量。

    1.6.4 茶多酚提取率計(jì)算

    茶多酚提取率用茶葉干物質(zhì)的質(zhì)量百分比表示,根據(jù)國(guó)標(biāo)GB/T 8313—2002《茶 茶多酚測(cè)定》中的酒石酸亞鐵比色法,用以下公式計(jì)算:

    茶多酚提取率=A×1.957 ×21 000×L1L2×M×m×100%。

    其中,L1為試液的總量(mL);L2為測(cè)定時(shí)的用液量(mL);M為試樣的質(zhì)量(g);m為試樣的干物質(zhì)含量(%);A為吸光度。

    1.7 口味評(píng)定

    口味評(píng)估由7位訓(xùn)練有素的專(zhuān)家(男4名,女3名,35~56歲)組成,樣品在室溫(約25°C)下提供,每個(gè)小組成員對(duì)口味屬性(苦味、收斂性、鮮味和接受程度)進(jìn)行評(píng)分。采用十分制,其中8~10為“極強(qiáng)”,6~8為“強(qiáng)”,4~6為“中性”,2~4為“弱”,0~2為“極弱”。對(duì)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,確定不同樣本得分差異,每個(gè)評(píng)估在不同的日期重復(fù)3次[5]。

    2 試驗(yàn)結(jié)果及分析

    2.1 單因素試驗(yàn)

    2.1.1 酶用量對(duì)茶多酚提取率的影響

    由圖1可知,復(fù)合酶含量在0~1.2%范圍,底物和酶充分接觸,隨酶量增加茶多酚提取率提高;當(dāng)復(fù)合酶用量大于1.2%時(shí),茶多酚提取率下降,推測(cè)復(fù)合酶飽和后,酶解反應(yīng)效率下降,故復(fù)合酶添加量以1.2%為宜。

    2.1.2 料液比對(duì)茶多酚提取率的影響

    由圖2可知,當(dāng)料液比在1∶6~1∶10 g/mL時(shí),有助于茶多酚向溶劑轉(zhuǎn)移,當(dāng)料液比超過(guò) 1∶10 g/mL時(shí),溶劑用量增加,浸出物被稀釋?zhuān)罄m(xù)濃縮、干燥成本增加,故最佳料液比為1∶10 g/mL。

    2.1.3 酶解pH對(duì)茶多酚提取率的影響

    由圖3可知,隨酶解pH增加,茶多酚提取率先升后降,復(fù)合酶pH值為5.6時(shí)酶解作用最強(qiáng),當(dāng)pH偏離最佳值時(shí),酶活中心的部分基團(tuán)離子發(fā)生變化,酶活性減弱;當(dāng)pH大大偏離最佳值時(shí),酶蛋白結(jié)構(gòu)改變、變性失活,茶多酚提取率隨之降低。

    2.1.4 提取溫度對(duì)茶多酚提取率的影響

    由圖4可知,隨酶解溫度升高,茶多酚的提取率增高,適當(dāng)升溫能有效破壞細(xì)胞壁,促進(jìn)胞內(nèi)物質(zhì)滲出,當(dāng)溫度達(dá)50 ℃后,繼續(xù)升溫,酶失活,故最佳酶解溫度為50 ℃。

    2.1.5 提取時(shí)間對(duì)茶多酚提取率的影響

    由圖5可知,在30~90 min范圍內(nèi),隨提取時(shí)間延長(zhǎng),茶多酚提取率提高,提取60 min后,茶多酚含量增加偏緩,提取時(shí)間太長(zhǎng),茶葉中有效成分可能會(huì)發(fā)生轉(zhuǎn)化,一些酶解產(chǎn)物例如酚類(lèi)、單寧、花色素,可成為纖維素酶的抑制劑,且隨提取時(shí)間延長(zhǎng),提取成本增加,適宜的提取時(shí)間為60 min。

    2.2 正交試驗(yàn)方案與結(jié)果

    正交試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2,正交試驗(yàn)數(shù)據(jù)分析見(jiàn)表3。

    據(jù)正交結(jié)果,各因素影響茶多酚得率的主次排列如下:料液比 B>提取時(shí)間 D>提取溫度 C>酶用量A,最佳組合為A2B2C2D3,即復(fù)合酶用量2.4%,料液比1∶10 g/mL,提取溫度60 ℃,提取時(shí)間75 min。

    2.3 驗(yàn)證試驗(yàn)

    2.3.1 不同提取方法對(duì)游離氨基酸和茶多酚提取率的影響

    由表4可知,在茶葉或茶葉渣提取體系中加入復(fù)合酶,采用最佳工藝參數(shù)提取,茶多酚提取率分別為23.36%、10.38%,與不加復(fù)合酶比較,分別提高55.94%、15.46%;氨基酸提取率分別為4.98%、3.12%,與不加復(fù)合酶比較,分別提高20.42%和25.32%。

    2.3.2 提取液中兒茶素及咖啡堿含量

    表5高效液相色譜(HPLC)檢測(cè)結(jié)果表明,與茶葉或茶葉渣不加酶比較,用復(fù)合酶酶解,表兒茶素沒(méi)食子酸酯(ECG增加12.13%、3.70%)、表沒(méi)食子兒茶素沒(méi)食子酸酯(EGCG增加10.69%、2.42%)、咖啡堿(CAF增加8.31%、4.35%)的提取量均有不同程度的增加,且酶解未發(fā)現(xiàn)有新成分。色譜未檢測(cè)到?jīng)]食子酸(GA)。另外,茶葉經(jīng)開(kāi)水浸泡后茶葉渣中尚含大量茶多酚,通過(guò)酶法提取可以將其中的有效成分提取,避免資源浪費(fèi)。

    2.4 不同處理對(duì)提取液口味的影響

    由表4、圖6看出,茶葉加酶處理游離氨基酸含量最高,其他依次是茶葉不加酶、茶葉渣加酶、茶葉渣不加酶;總體接受度同游離氨基酸含量一致,即氨基酸含量越高被接受程度越高;收斂強(qiáng)度和苦味由強(qiáng)到弱依次是:茶葉渣不加酶、茶葉渣加酶、茶葉不加酶和茶葉加酶。

    3 討論與結(jié)論

    茶多酚的溶劑萃取法純化難度大;超聲波提取利用超聲波與媒介物質(zhì)互相作用,發(fā)生機(jī)械及空穴作用,破壞茶葉細(xì)胞壁,加速細(xì)胞中活性物質(zhì)的溶出,其缺點(diǎn)是設(shè)備費(fèi)用高[6];微波提取利用不同物質(zhì)在微波場(chǎng)中吸收微波能力不同,待提取成分被選擇性加熱時(shí),與提取體系分離,進(jìn)入吸收微波能力較差的提取劑中,提取成本高;離子沉淀法利用茶多酚與一些重金屬離子發(fā)生絡(luò)合形成沉淀,將金屬離子作沉淀劑,從混合物中分離純化得高純度茶多酚,此法重金屬可對(duì)產(chǎn)品造成二次污染;樹(shù)脂吸附法利用樹(shù)脂選擇性吸附茶多酚成本高、費(fèi)時(shí)費(fèi)力[7]。本研究表明,酶法自茶葉或茶葉渣中提取茶多酚的提取率比不加酶分別提高55.94%和15.46%,HPLC法檢測(cè)結(jié)果,茶多酚提取率較比色法提高幅度小,因茶多酚的主要成分是黃烷酮類(lèi)、花色素類(lèi)、黃酮醇類(lèi)、花白素類(lèi)和酚酸及縮酚酸類(lèi)化合物,其中黃烷酮類(lèi)(兒茶素類(lèi)化合物)占茶多酚總量的60%~80%,其次是黃酮類(lèi)、酚類(lèi)。茶多酚是混合物,兒茶素是其中的一類(lèi)物質(zhì),高效液相色譜法測(cè)定兒茶素雖能反映茶多酚的提取率高低,但不能完全檢測(cè)茶多酚中所有成分的變化,從總趨勢(shì)推斷,纖維素酶和果膠酶作為復(fù)合酶浸提茶多酚是一種有效的提取方式[3]。

    結(jié)果表明,酶法提取兒茶素沒(méi)食子酸酯、表沒(méi)食子兒茶素沒(méi)食子酸酯、咖啡堿和游離氨基酸的含量均有不同程度的增加。兒茶素分酯型與非酯型,酯型兒茶素收斂性強(qiáng),主要對(duì)茶湯苦澀味起作用,而非酯型兒茶素具有先苦后甜的滋味特征,口味甜[8]。表沒(méi)食子兒茶素沒(méi)食子酸酯(EGCG)和咖啡堿(CAF)是苦味的主要貢獻(xiàn)者;氨基酸類(lèi)表現(xiàn)為酸、甜、苦、鮮4種特征,是鮮味和甘味的主要貢獻(xiàn)者[9],可緩解茶的苦澀味[10]。酶法提取氨基酸含量增加,口感清爽度高、總體可接受程度高。

    以茶葉渣為底物提取茶多酚和氨基酸含量均比茶葉低,因熱水沖泡,部分茶多酚和氨基酸溶出,研究表明熱水沖泡后還有37.75%茶多酚、36.18%氨基酸保留在茶葉渣中,采用酶法提取,所得的茶多酚和氨基酸含量比對(duì)照(不用酶)分別高15.46%、25.32%,通過(guò)酶法可以將殘留在茶葉渣的有效成分提取。與茶葉相比,茶葉渣酶法提取物感官收斂、澀味較濃,但化學(xué)成分無(wú)明顯區(qū)別,茶葉渣可作為原料提取茶多酚,用于食品原料工業(yè)。

    [參考文獻(xiàn)]

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    (責(zé)任編輯 李亞青)

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