黃應(yīng)翔
(福建省老年醫(yī)院呼吸與危重癥醫(yī)學科 福州350009)
曲霉菌廣泛存在于自然界中,為條件致病菌,可在肺或上呼吸道大量繁殖生長并全身播散致病。 肺曲霉?。≒ulmonary Aspergillosis, PA)是一種臨床常見的肺部真菌感染性疾病,臨床分為3型:肺曲霉球、變態(tài)反應(yīng)性曲霉病、侵襲性肺曲霉病(Invasive Pulmonary Aspergillosis, IPA)[1]。其中,IPA 嚴重威脅著免疫受損患者的生命,IPA 早期癥狀隱匿,痰培養(yǎng)陽性率低(<10%)。
核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域樣受體蛋白3(Nucleotide Binding Oligomerization Domain-like Receptor Protein 3, NLRP3)受體是一種細胞質(zhì)內(nèi)的模式識別受體, 參與多種疾病炎癥反應(yīng)和免疫應(yīng)答[2]。 文獻報道在應(yīng)激、炎癥、免疫反應(yīng)狀態(tài)下,NLRP3可表達于多種炎性細胞內(nèi),NLRP3激活后可定位到質(zhì)膜啟動下游因子受體相互作用蛋白(RIP2)、核因子-κB(NF-κB)活化,促進多種細胞因子分泌,發(fā)生一系列級聯(lián)式炎癥反應(yīng),該信號通路貫穿于整個炎癥過程[3]。 由于對NLRP3在曲霉菌感染中發(fā)揮作用的研究尚少,NLRP3、RIP2及NF-κB 三者在肺曲霉病發(fā)病機制中扮演的角色尚不明確。 本研究旨在探討NLRP3、RIP2、NF-κB 在肺曲菌病患者外周血中的表達情況,探討其相關(guān)致炎機制。 現(xiàn)報道如下:
1.1 一般資料 選取2016年5月~2019年10月福建省老年醫(yī)院收治的肺曲菌病患者62例為研究對象,分為侵襲性肺曲霉菌病組(IPA 組)24例和非侵襲性肺曲霉菌病組(NIPA 組)38例,并選取同期20例非真菌感染者作為對照組。 其中男45例,女37例;年齡54~81歲,平均(57.68±15.35)歲。 所有患者采血前簽署知情同意書,本次研究通過我院醫(yī)學倫理委員會審核。
1.2 納入標準 根據(jù)2008年美國感染病學會曲霉病診治臨床實踐指南的分級診斷標準,將肺曲霉病分為確診、擬診和疑診3級[4]。 確診患者需要組織病理學依據(jù)或者符合正常無菌部位標本曲霉培養(yǎng)陽性標準,擬診需同時滿足宿主因素、臨床表現(xiàn)和微生物學證據(jù)條件,疑診需滿足宿主因素外,還需有臨床表現(xiàn)或微生物學證據(jù)中一項。 非侵襲性肺曲霉病組包括慢性肺曲霉病、過敏性肺曲霉病、慢性壞死性肺曲霉病。
1.3 檢測方法
1.3.1 標本處理 入院后留取各組患者外周血5ml,2500r/min 離心10min, 將上清轉(zhuǎn)移至新的EP管保存。 再用PBS 洗滌血小板2次,以800r/min 離心10min 獲得沉淀, 加入1ml-1Trizol 重懸。 按Trizol 一步法提取總RNA,加20μl 無RNA 酶的水溶解,按照Takara 公司逆轉(zhuǎn)錄試劑說明書要求合成cDNA,標本存于-80℃。
1.3.2 實時熒光定量PCR 法檢測NLRP3、RIP2和NF-κB mRNA 水平 每組取1ml 的外周血標本,加入200ul 的Trizol 裂解液中, 先提取總RNA,并按照逆轉(zhuǎn)錄試劑說明書逆轉(zhuǎn)錄為cDNA, 依據(jù)GenBank 設(shè)計NLRP3、RIP2、NF-κB、β-actin 引物序列。 見表1。 擴增PCR 反應(yīng)體系,反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性1min 30s;94℃變性30s,57℃退火30s,72℃延伸30s,循環(huán)40次;最后72℃延伸5min。每份標本3個復(fù)孔, 復(fù)孔間Ct 值差異<0.5, 以β-actin為內(nèi)參,Ct 值減去內(nèi)參的Ct 值作為△Ct, 用2-△△Ct 表示目的基因的表達量。
表1 依據(jù)GenBank 序列設(shè)計引物
1.3.3 Western Blot 法檢測NLRP3、RIP2、NF-κB 蛋白表達 每條泳道上樣后,在聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜,封閉后分別加入一抗、二抗孵育,ECL 發(fā)光試劑顯色后攝像,圖像分析,測定灰度值,以NLRP3、RIP2、NF-κB 與對應(yīng)的內(nèi)參β-actin 蛋白灰度值對比作為相對表達量。
1.3.4 ELISA 檢測外周血超敏C 反應(yīng)蛋白 (hs-CRP)與白細胞介素-6(IL-6)表達水平 嚴格根據(jù)人hs-CRP 和IL-6的ELISA 試劑盒說明書進行操作。
1.4 觀察指標比較三組NLRP3、RIP2、NF-κB mRNA 及蛋白表達水平,三組外周血hs-CRP 與IL-6表達水平, 采用Spearman 相關(guān)性分析分析NLRP3mRNA 與RIP2、NF-κB、IL-6、hs-CRP 之間的相關(guān)性。
1.5 統(tǒng)計學處理 采用SPSS25.0統(tǒng)計學軟件分析數(shù)據(jù)。 數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布,計量資料采用(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析。不符合正態(tài)分布的數(shù)據(jù),采用Spearman 相關(guān)性分析。 以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 三組NLRP3、RIP2和NF-κB mRNA 表達水平比較 所有標本重復(fù)3次,并計算各組均值,將3組數(shù)據(jù)進行比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。 IPA組、NIPA 組NLRP3、RIP2、NF-κB mRNA 表達水平均高于對照組,且IPA 組高于NIPA 組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。 見表2。
表2 三組NLRP3、RIP2、NF-κB mRNA 表達水平比較(±s)
表2 三組NLRP3、RIP2、NF-κB mRNA 表達水平比較(±s)
注:與對照組比較,*P<0.05;與NIPA 組比較,#P<0.05。
組別 n NLRP3mRNA RIP2mRNA NF-κB mRNA對照組NIPA 組IPA 組FP 2024381.34±0.353.45±0.85*7.57±1.71*#22.3610.0091.59±0.337.93±1.93*12.09±3.21*#18.4820.01812.43±3.3136.63±9.11*59.73±13.03*#19.4530.011
2.2 三組NLRP3、RIP2和NF-κB 蛋白表達水平比較 將三組數(shù)據(jù)進行比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。IPA 組、NIPA 組NLRP3、RIP2、NF-κB 蛋白表達水平均高于對照組,且IPA 組高于NIPA 組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。 見表3。
表3 三組NLRP3、RIP2、NF-κB 蛋白表達水平比較(±s)
表3 三組NLRP3、RIP2、NF-κB 蛋白表達水平比較(±s)
注:與對照組比較,*P<0.05;與NIPA 組比較,#P<0.05。
組別 n NLRP3 RIP2 NF-κB對照組NIPA 組IPA 組FP 2024380.76±0.091.21±0.22*1.84±0.63*#32.2810.0040.59±0.121.23±0.57*1.78±0.47*#28.6370.0100.48±0.110.98±0.22*1.42±0.53*#23.6910.023
2.3 三組IL-6、hs-CRP 水平比較 將三組數(shù)據(jù)進行比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。IPA 組、NIPA組炎癥介質(zhì)IL-6、hs-CRP 水平均高于對照組,且IPA 組高于NIPA 組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表4。
表4 三組IL-6與hs-CRP 水平比較(±s)
表4 三組IL-6與hs-CRP 水平比較(±s)
注:與對照組比較,*P<0.05;與NIPA 組比較,#P<0.05。
組別 n IL-6(ng/ml) hs-CRP(mg/L)對照組NIPA 組IPA 組F P 2024386.32±1.3719.47±4.85*25.53±6.02*#19.5220.0173.98±0.8912.46±3.42*19.27±4.25*#22.7520.008
2.4 NLRP3mRNA 與RIP2、NF-κB、IL-6、hs-CRP的相關(guān)性分析 Spearman 相關(guān)性分析顯示,NLRP3mRNA 水平與下游基因RIP2、NF-κB mRNA 水平呈正相關(guān)(相關(guān)指數(shù)r=0.676,P<0.001;r=0.513,P<0.001);炎癥介質(zhì)IL-6、hs-CRP 水平與NLRP3mRNA水平呈正相關(guān)(相關(guān)指數(shù)r=0.467,P<0.001;r= 0.621,P<0.001)。 隨著炎癥介質(zhì)水平的升高,NLRP3mRNA 表達水平亦上升。
曲霉菌是一類條件致病性真菌,對機體致病的曲霉包括煙曲霉、黃曲霉、黑曲霉、土曲霉、構(gòu)巢曲霉等,肺是曲霉菌最常累及的部位[5]。 肺曲霉病可分布在不同臨床科室,臨床特點缺乏特異性,實驗室檢查陽性率低,故極易被漏診。 曲霉菌侵入呼吸道,隨即吸入的分生孢子可以激活肺泡中性粒細胞和巨噬細胞產(chǎn)生固有免疫,存活下來的曲霉菌株可觸發(fā)炎性細胞的吞噬作用。 肺泡中炎性細胞在介導(dǎo)肺炎癥反應(yīng)中具有重要作用,激活多種信號通路,釋放炎癥介質(zhì),啟動炎癥反應(yīng)和免疫應(yīng)答[6]。 本研究通過觀察NLRP3-RIP2-NF-κB 信號途徑在肺曲霉病患者外周血中的表達情況,進一步探討肺曲霉菌的發(fā)病機制,以期為臨床靶向治療提供依據(jù)。
NLRP3激活后可定位到細胞質(zhì)膜,RIP2激酶作為其下游激活物, 進一步啟動NF-κB 因子活化,調(diào)節(jié)相關(guān)靶基因轉(zhuǎn)錄,促進一系列炎癥介質(zhì)分泌[3]。關(guān)于炎性小體NLRP3在肺曲霉病患者中的表達情況的研究尚少, 故本研究通過觀察肺曲霉病患者外周血中NLRP3、RIP2、NF-κB 的表達情況,進一步討論炎性小體在肺曲霉病患者發(fā)病機制中發(fā)揮的作用。 我們發(fā)現(xiàn)IPA 組和NIPA 組NLRP3、RIP2、NF-κB mRNA 和蛋白的表達水平均較對照組高,NLRP3mRNA 水 平 與 下 游 基 因RIP2、NF-κB mRNA 水平呈正相關(guān)(P<0.001)。 說明炎性小體NLRP3參與肺曲霉患者的發(fā)病過程,發(fā)病機制可能是通過激活下游信號RIP2, 進一步活化NF-κB,誘導(dǎo)下游炎癥介質(zhì)、黏附分子及相關(guān)細胞凋亡蛋白等轉(zhuǎn)錄、表達[7]。 在肺曲霉菌侵襲的狀態(tài)下,經(jīng)過上述一系列級聯(lián)式反應(yīng)活化肺泡巨噬細胞和誘導(dǎo)炎性細胞聚集,促進肺泡巨噬細胞自噬,導(dǎo)致細胞凋亡或壞死,惡性循環(huán)使炎癥反應(yīng)擴大化,最終加重肺損傷,這與國外Gresnigt MS 等[8]人報道結(jié)果相一致。 可見本研究結(jié)果提示NLRP3為肺曲霉菌發(fā)病過程的重要始動因子,且參與了發(fā)病過程的調(diào)控,將其作為防治肺曲霉病的重要靶點具有一定的臨床價值。
IL-6、hs-CRP 作為下游重要的炎癥介質(zhì), 啟動調(diào)節(jié)急性應(yīng)激反應(yīng),加重炎癥損傷,其水平與疾病的嚴重程度密切相關(guān)。IL-6是一類趨化炎癥介質(zhì),主要由巨噬細胞、中性粒細胞產(chǎn)生, 具有多種生物學特點,能夠刺激參與細胞增殖、分化并提高其功能,促進炎癥損傷,加重肺部感染。 hs-CRP 作為一種急性時相反應(yīng)蛋白,在肺部真菌感染的早期CRP 與細胞膜形成復(fù)合物沉積于血管內(nèi)皮細胞, 促進炎性滲出[9]。 我們研究發(fā)現(xiàn)肺曲霉病患者炎癥介質(zhì)IL-6與hs-CRP 水平與正常對照組比較明顯升高,尤其IPA組患者升高明顯(P<0.001);相關(guān)性分析提示炎癥介質(zhì)IL-6、hs-CRP 水平與NLRP3mRNA 水平呈正相關(guān)(P<0.001)。 說明炎癥介質(zhì)IL-6、hs-CRP 升高與肺曲霉菌感染嚴重程度具有一定關(guān)系, 可以將NLRP3受體定量水平及下游炎癥介質(zhì)作為評估肺部曲霉菌感染嚴重程度的輔助效應(yīng)指標。
綜上所述, 外周血中NLRP3基因表達水平升高在肺曲霉病的發(fā)生、發(fā)展過程中發(fā)揮著重要作用。其機制可能與NLRP3-RIP2-NF-κB 信號途徑有關(guān),激活下游炎癥介質(zhì)hs-CRP、IL-6等釋放, 可導(dǎo)致炎癥反應(yīng)加重。 可考慮將NLRP3受體水平及下游炎癥介質(zhì)作為診斷曲霉菌感染嚴重程度的輔助指標,但關(guān)于肺曲霉病的具體發(fā)病機制仍需進一步研究。